PS titulaire d&#39;une chaire de recherche du Canada en biologie cellulaire de la rétine et de la bourse de nouveau chercheur Institut de recherche Alcon. Ce travail a été soutenu par des subventions des Instituts de recherche en santé du Canada (221 478), l&#39;Association canadienne du diabète (OG-3-11-3329-PS), les sciences naturelles et en génie du Canada (418 637) et La Fondation lutte contre la cécité Canada. Appui a été fourni par le Réseau de Recherche en Santé de la Vision du Québec.

Déclaration éthique: Tout l&#39;expérimentation animale est conforme aux directives de protection des animaux établies par l&#39;Association pour la recherche en vision et en ophtalmologie (ARVO) Déclaration pour l&#39;utilisation d&#39;animaux dans ophtalmique et Vision Research et le Conseil canadien de protection des animaux. 1. Oxygène induit la rétinopathie (OIR) <ol><li> Enregistrer la date de naissance de souriceaux que P0. </li><li> Enregistrer tous les poids des animaux lors de l&#39;entrée en O 2 pour assurer une gamme de poids adéquat. Remarque: Pour C57BL / 6 à P17, le poids corporel doit être comprise entre 5 et 7,5 g pour NV maximale 32. Afin de maintenir la cohérence de l&#39;environnement, il est recommandé d&#39;utiliser la même portée que le contrôle (pour les souris génétiquement modifiées ainsi que les souris recevant des traitements expérimentaux). Lors de l&#39;évaluation des effets d&#39;un vecteur viral, il faut considérer le tropisme du virus et laisser suffisamment de temps pour la pleine expression de transgènes d&#39;origine virale livrés. Viral exprimant rapidementvecteurs tels que les lentivirus 3 e génération 24, 25, 33 sont recommandés. </li><li> Chiots Lieu de souris à P7 (C57BL / 6 ou souhaité souche) et CD1 favoriser mère dans une chambre à oxygène fixé à 75% d&#39;O 2 pendant 5 jours 27. L&#39;humidité ambiante et la température ont été maintenues constantes tout au long de l&#39;exposition O 2. Remarque: Les installations de recherche équipés d&#39;une source centrale d&#39;O 2 sont idéales et limitent le remplacement lourde de vide O 2 réservoirs. Si l&#39;on travaille avec des souris transgéniques ou knock-out, il est important de veiller à ce que le contrôle et les souris expérimentales sont acquis auprès du même fournisseur de limiter les dérives génétiques dans les mêmes souches 30, 29. </li><li> À P12, les souris retirer de la chambre de l&#39;oxygène et de revenir à la température ambiante animaux O 2. </li></ol> 2. Injection intravitréenne de livraison des composés de la rétine interne (WhEffets en Évaluation d&#39;un composé pharmacologique ou protéine recombinante) <ol><li> À P14, anesthésier les souris avec 2% d&#39;isoflurane dans de l&#39;oxygène de 2 L / min (ou à la protection des animaux anesthésique de choix comité approuvé). Afin de vérifier l&#39;efficacité de l&#39;anesthésie, pincer successivement la queue, pied arrière et l&#39;oreille avec une pince. </li><li> Placez la souris sur le ventre. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un 10 ul seringue stérile munie d&#39;une aiguille tirée verre biseauté, effectuer une injection d&#39;un volume maximal de 1 pl de solution contenant le composé objet de l&#39;enquête ou du véhicule (solution saline physiologique) au niveau du limbe postérieur de l&#39;oeil, avec un 45 ° angle d&#39;éviter la lentille. Remarque: Le verre-aiguille tirée est fixée à la seringue en utilisant une goutte de résine époxy. </li><li> Appliquer une goutte de pommade ophtalmique lubrifiant (de préférence avec un antibiotique) avec un tampon à l&#39;oeil de la souris. </li><li> Retour de la souris vers la cage avec la promotion de la mère. Les souris sont ensuite soigneusement surveillés jusqu&#39;à recouverte et entièrement ambulatoire. </li></ol> 3. Évaluation de la perfusion du navire et de la fonction barrière (intégrité) par angiographie à la fluorescéine <ol><li> Anesthésier les souris avec 2% d&#39;isoflurane dans de l&#39;oxygène de 2 L / min (ou à la protection des animaux anesthésique de choix comité approuvé). Afin de vérifier l&#39;efficacité de l&#39;anesthésie, pincer successivement la queue, pied arrière et l&#39;oreille avec une pince. Note: Ceci est généralement effectuée au P17 lorsque la régénération est évaluée. Porter-out également l&#39;analyse à P19 et P21 pour déterminer si l&#39;intégrité vasculaire est conservé au fil du temps. </li><li> Une fois anesthésié, peser la souris. </li><li> Faire une incision médiane de l&#39;abdomen avec des ciseaux de dissection. Remarque: Instruments de dissection doivent être régulièrement vérifiés et affûtés. </li><li> Couper les côtes latéralement et soulever la cage thoracique à l&#39;aide d&#39;une pince. Remarque: Il est nécessaire de couper que latéralement que possible pour éviter des dommages au coeur. </li><li> Après avoir retiré peripheral tissus du coeur, pince l&#39;aorte descendante avec des pinces hémostatiques. </li><li> Injecter lentement la fluorescéine-dextran dans le ventricule gauche à l&#39;aide d&#39;une aiguille G 25. Remarque: Si la fonction de barrière vasculaire est étudiée, 70 kDa fluorescéine-dextran est utilisé comme il fuira des navires lorsque l&#39;intégrité du navire est compromise. Si l&#39;enquêteur veut jeter les vaisseaux sanguins, 2 Mda fluorescéine-dextran est utilisé. Les étapes critiques: 1) Pour assurer une répartition homogène, centrifugeuse fluorescéine-dextran et injecter le surnageant, 2) Afin de prévenir la constriction des vaisseaux, injecter la solution de fluorescéine-dextran réchauffé, 3) Le temps de circulation ne devraient pas l&#39;excès de 4 min. </li><li> Décapiter souris 2 min après l&#39;injection avec des ciseaux d&#39;exploitation. </li></ol> 4. Énucléation des yeux et de fixation Remarque: Lors de l&#39;évaluation des taux de régénération vasculaire, d&#39;abord recueillir des rétines à P12 et P14 et en outre au P17. Augmenter le nombre de point de temps échantillonnés pour une détermination plus précise des taux de revascularisation 24. <ol><li> Incliner la tête de la souris et placez-le sur le côté. </li><li> Enlever la peau et les paupières couvrant l&#39;œil en utilisant des ciseaux de dissection. </li><li> Placez la pince courbes ci-dessous l&#39;oeil et tirez-le doucement jusqu&#39;à ce que le nerf optique est coupée. </li><li> Tournez la tête de la souris sur son autre côté et effectuer les mêmes étapes (étapes 4.2 et 4.3). </li><li> Afin d&#39;assurer une meilleure pénétration de fixateur, percer un trou dans la chambre antérieure de l&#39;oeil en utilisant aiguille G 30. </li><li> Transfert yeux dans un tube contenant 4% de paraformaldéhyde (PFA) et le fixer pendant 1 heure à température ambiante. </li><li> Retirer PFA et laver les yeux 4 fois avec une solution de PBS glacé. </li></ol> 5. Dissection de la rétine <ol><li> Placez les yeux de souris dans une boîte de Pétri contenant du PBS froid et effectuer la dissection des rétines sous un stéréomicroscope. </li><li> Retirez la graisse supplémentaire / tissu entourant l&#39;oeil avec micro-dissection sciencessors. </li><li> Coupez la cornée avec des ciseaux micro-dissection. </li><li> L&#39;utilisation de deux paires de pinces, éplucher minutieusement la sclérotique loin de la périphérie vers le nerf optique et jeter. </li><li> Pincez la lentille (boule blanchâtre en dessous de la cornée) avec une pince et l&#39;extraire de l&#39;œilleton. Utilisez une paire de pinces comme un support, et l&#39;autre pour saisir et soulever soigneusement et retirez l&#39;objectif. </li><li> Détachez les navires hyaloïde de la face interne de la rétine à l&#39;aide de petites brosses (taille 0) et des pinces. </li><li> Retirer des faisceaux de vaisseaux hyaloïde connectés au disque optique en utilisant une pince. </li><li> Transfert disséqué rétines à 2 tubes ml à centrifuger contenant du PBS et placer sur la glace avant de commencer la procédure de coloration. </li></ol> 6. Vasculaire rétinienne coloration <ol><li> Incuber les rétines disséqués pendant une nuit sous agitation douce à 4 ° C dans une solution de fluorescence couplée-isolectine B4 (rhodamine-lectine ou autre) dans du PBS contenant 1 mM CaCl 2, </sub&gt; (1:100 dilution d&#39;une solution à 2 mg / ml isolectine B4 est recommandé). Au cours de la procédure de coloration ensemble, couvrir tubes avec du papier d&#39;aluminium ou une feuille opaque pour protéger de la lumière. </li><li> Le lendemain, éliminer la solution colorante et laver rétines 3x dans du PBS pendant 10 min à température ambiante. </li></ol> 7. Préparation de la rétine Flatmounts <ol><li> Transfert rétines, photorécepteur côté vers le bas, sur une lame de microscope et faire quatre incisions radiales équidistantes profondes à l&#39;aide d&#39;un scalpel pour diviser la rétine en quatre quadrants de taille égale. Au cours des incisions, de bloquer la rétine avec une brosse de sorte qu&#39;il ne se déplace pas. </li><li> L&#39;utilisation de deux brosses trempées dans du PBS, aplatissez soigneusement quadrants photorécepteur tête en bas et plonger la rétine en milieu de montage pour empêcher photo-blanchiment. Ensuite, placer soigneusement une lamelle sur la surface de la rétine monté sans pression et faire en sorte que les bulles d&#39;air ne s&#39;accumulent pas sous la lamelle. &lt;/ Li&gt; </ol> 8. Imagerie et la quantification des Vasoobliteration (VO) et la néovascularisation (NV) comme décrit précédemment 31 <ol><li> Prenez des photos de toute montés rétines avec un microscope à épifluorescence à un grossissement de 10X. </li><li> Ouvrez l&#39;image rétinienne au logiciel de retouche photo, assembler et mesurer la superficie total de la rétine, et la zone avasculaire. Zone peut être exprimée en pixels. </li><li> Déterminer l&#39;étendue de VO en divisant le nombre de pixels dans la zone avasculaire par le nombre de pixels dans la zone de la rétine totale. </li><li> Déterminer l&#39;étendue de la SA en divisant le nombre de pixels de NV par le nombre de pixels dans la zone de la rétine totale comme décrit 31. </li></ol>

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L., Joly, S., Hardy, P., Chemtob, S., Lachapelle, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+oxygen+and+light+on+the+structure+and+function+of+the+neonatal+rat+retina.">The effect of oxygen and light on the structure and function of the neonatal rat retina.</a> Doc Ophthalmol. 118, 37-54 (2009).</li><li>Chopp, M., Zhang, Z. G., Jiang, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurogenesis,+angiogenesis,+and+MRI+indices+of+functional+recovery+from+stroke.">Neurogenesis, angiogenesis, and MRI indices of functional recovery from stroke.</a> Stroke. 38, 827-831 (2007).</li><li>Li, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Angiogenesis+and+improved+cerebral+blood+flow+in+the+ischemic+boundary+area+detected+by+MRI+after+administration+of+sildenafil+to+rats+with+embolic+stroke.">Angiogenesis and improved cerebral blood flow in the ischemic boundary area detected by MRI after administration of sildenafil to rats with embolic stroke.</a> Brain Res. 1132, 185-192 (2007).</li><li>Robinson, R., Barathi, V. A., Chaurasia, S. S., Wong, T. Y., Kern, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Update+on+animal+models+of+diabetic+retinopathy:+from+molecular+approaches+to+mice+and+higher+mammals.">Update on animal models of diabetic retinopathy: from molecular approaches to mice and higher mammals.</a> Dis Model Mech. 5, 444-456 (2012).</li><li>Chia, R., Achilli, F., Festing, M. F., Fisher, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+origins+and+uses+of+mouse+outbred+stocks.">The origins and uses of mouse outbred stocks.</a> Nat Genet. 37, 1181-1186 (2005).</li><li>Jenuth, J. P., Peterson, A. C., Shoubridge, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue-specific+selection+for+different+mtDNA+genotypes+in+heteroplasmic+mice.">Tissue-specific selection for different mtDNA genotypes in heteroplasmic mice.</a> Nat Genet. 16, 93-95 (1997).</li><li>Mattapallil, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rd8+mutation+of+the+Crb1+gene+is+present+in+vendor+lines+of+C57BL/6N+mice+and+embryonic+stem+cells,+and+confounds+ocular+induced+mutant+phenotypes.">The Rd8 mutation of the Crb1 gene is present in vendor lines of C57BL/6N mice and embryonic stem cells, and confounds ocular induced mutant phenotypes.</a> Investigative ophthalmolog., &amp; visual science. 53, 2921-2927 (2012).</li></ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Quel est le moyen le plus efficace pour stimuler la croissance de nouveaux vaisseaux sains dans les tissus nerveux ischémique? Est-il thérapeutique valable pour intervenir et accélérer naturels repousse vasculaire? Dans les pathologies neuro-ischémiques telles que les rétinopathies ischémiques ou accident vasculaire cérébral, la dégénérescence vasculaire est associée à la fonction neuronale réduite 35-38. Par conséquent, pour contrer blessure précoce, rétablir la micro-circulation régionale...

Tout au long de développement du système nerveux central, des nerfs, des cellules immunitaires et des vaisseaux sanguins établir des réseaux remarquablement couplés pour assurer une perfusion tissulaire suffisante et permettre la transmission de l&#39;information sensorielle 5.1. La ventilation des résultats des systèmes vasculaires de l&#39;oxygénation insuffisante des tissus et de l&#39;offre de compromis métabolique et est de plus en plus reconnu comme un facteur important dans la pathogenèse des maladies neurodégénératives 6. Abandon vasculaire et la détérioration de l&#39;unité neurovasculaire dans le cerveau, par exemple, est associé à la démence vasculaire, lésions vasculaires de la substance blanche du cerveau 7 et la maladie d&#39;Alzheimer avec une sténose des artérioles et des petits vaisseaux 8. En outre, la fonction vasculaire altération de la barrière est pensé pour contribuer sclérose en plaques 9 et la sclérose latérale amyotrophique 10. Un intérêt direct pour le modèle de la rétine décrite dans ce protocole, aveuglantedes maladies telles que la rétinopathie diabétique et la rétinopathie de la 11 prématurité 12, 13 sont caractérisés par une phase de dégénérescence vasculaire précoce. La contrainte ischémique qui a suivi sur la rétine neuro-vasculaire déclenche une deuxième phase de la néovascularisation excessive et pathologique qui provient probablement comme une réponse compensatoire de rétablir la oxygène et de l&#39;énergie 14-16. Une stratégie intéressante pour surmonter le stress ischémique qui est au cœur de la progression de la maladie est de rétablir les réseaux vasculaires fonctionnelles en particulier dans les zones ischémiques du neuro-rétine (figures 2 et 3). Provoquer une réponse angiogénique contrôlée peut apparaître comme contre-intuitif pour une condition dans laquelle les traitements anti-angiogéniques tels que des anti-VEGF sont considérés comme des traitements adaptés. Pourtant, la preuve de la validité de cette approche est de montage. Par exemple, l&#39;amélioration de la repousse vasculaire &quot;physiologique-like&quot; dans ischemrétinopathies ic a été élégamment démontré par l&#39;introduction de précurseurs de cellules endothéliales 17, l&#39;inhibition de Müller VEGF exprimés cellule-régulation négative induite par d&#39;autres facteurs angiogéniques 18, l&#39;injection de progéniteurs myéloïdes 19, l&#39;inhibition de la NADPH oxydase induite par l&#39;apoptose 20, ce qui augmente l&#39;alimentation ω-3 gras polyinsaturé l&#39;apport d&#39;acide 21, le traitement avec un fragment carboxy-terminal de tryptophane 22 ARNt synthétase, et l&#39;administration directe de VEGF ou le FGF-2, pour la protection des cellules gliales 23. De plus, nous avons démontré que la modulation de signaux de guidage neuronales classiques tels que Sémaphorines ou Nétrines dans les rétinopathies ischémiques vasculaire accélère la régénération des vaisseaux sains à l&#39;intérieur de la rétine et réduit l&#39;angiogenèse pathologique 24, 25 en conséquence. De pertinence clinique directe, plusieurs des études sur les animaux mentionnés ci-dessus fournissent des preuves que la promotion de re vasculairegénération pendant la phase ischémique précoce des rétinopathies peut réduire considérablement menaçant la vue néovascularisation pré-rétinienne 19, 23, 24, 26, probablement grâce à la réduction de la charge ischémique. L&#39;élaboration de stratégies thérapeutiques qui stimulent la régénération des vaisseaux fonctionnels demeure un défi important pour les biologistes vasculaires. Ici, nous décrivons un système expérimental qui utilise le modèle de souris de rétinopathie induite par l&#39;oxygène (OIR) pour explorer des stratégies pour moduler la repousse vasculaire dans la rétine. Développé par Smith et al., En 1994 27, ce modèle sert de proxy pour les rétinopathies prolifératives humaines et consiste à exposer les petits P7 de souris à 75% d&#39;O 2 jusqu&#39;à P12, puis réintroduire les chiots à la salle ambiante O 2-tension (Figure 1). Ce paradigme imite vaguement un scénario où un enfant prématuré est ventiléavec O 2. L&#39;exposition des souriceaux à hyperoxie provoque la dégénérescence des capillaires rétiniens et microvasculaire, et donne une zone de reproduction de vaso-oblitération (VO) généralement évalué à la sortie de O 2 à P12, même si la superficie maximale de VO est atteinte à 48 h (P9) après exposition à O 2 28. Chez la souris, les zones de VO avasculaires régénérer spontanément au cours de la semaine suivant la réintroduction de l&#39;air ambiant et, éventuellement, des zones VO sont complètement re-vascularisées (figure 2). Réintroduction de l&#39;air ambiant de souris soumises à OIR provoque également la néovascularisation pré-rétinienne (NV) (maximale à P17) qui est généralement évaluée afin de déterminer l&#39;efficacité des paradigmes de traitement anti-angiogéniques. Dans sa forme la plus pure, le modèle de ROC est un outil hautement reproductible et quantifiable pour évaluer la dégénérescence vasculaire induite par l&#39;oxygène et de déterminer l&#39;étendue de la destruction néovascularisation pré-rétinienne 29-31. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Divers paradigmes de traitement exploratoires qui modulent la régénération du SNC vasculaire peut être étudiée en utilisant le modèle de ROC y compris l&#39;utilisation de composés pharmacologiques, thérapie génique, une délétion du gène et plus. La propension d&#39;une approche donné pour influencer la repousse vasculaire est évaluée par étapes dans la fenêtre entre P12 (VO maximale après la sortie de l&#39;hyperoxie) et P17 (de NV maximale). Évaluation des résultats du traitement sur ​​NV pathologique peut être rapidement et facilement déterminée en parallèle et a été décrite en détail par Stahl et ses collègues 30, 31. Ici, nous fournissons une procédure simple étape par étape pour étudier la modulation de revascularisation physiologique dans la rétine neurale par des composés pharmacologiques, thérapeutiques potentiels, vecteurs viraux ou d&#39;étudier l&#39;influence de gènes candidats chez des souris transgéniques ou knock-out.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1224">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">C57Bl/6 mice ((Other strains may be used; angiogenic response varies from one strain to the other)</td>
			<td style="width:181px;"></td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td style="width:231px;"></td>
		</tr>
		<tr height="38">
			<td height="38" style="height:38px;width:639px;">CD1 nursing mothers</td>
			<td style="width:181px;">Vendor of choice</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:639px;">Operating Scissors straight</td>
			<td style="width:181px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:175px;">14192</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:639px;">Dissecting Scissors straight</td>
			<td style="width:181px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:175px;">14393</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Vannas Eye Scissors</td>
			<td style="width:181px;">Harvard Apparatus</td>
			<td style="width:175px;">72-8483</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:639px;">Iris Forceps, curved, serrated</td>
			<td style="width:181px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:175px;">15915</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Brushes 362R size 0</td>
			<td style="width:181px;">Dynasty</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:639px;">Dumont Forceps #3; straight</td>
			<td style="width:181px;">World Precision Instruments</td>
			<td style="width:175px;">500338</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Surgical Blade, size 10</td>
			<td style="width:181px;">Bard-Parker</td>
			<td style="width:175px;">371110</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Rhodamine Griffonia (Bandeiraea) Simplicifolia Lectin I</td>
			<td style="width:181px;">Vector Laboratories, Inc</td>
			<td style="width:175px;">RL-1102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Microscope slides</td>
			<td style="width:181px;">VWR</td>
			<td style="width:175px;">16004-368</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:639px;">Fluoromount G</td>
			<td style="width:181px;">Electron Microscopy Sciences</td>
			<td style="width:175px;">17984-25</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Zeiss Axio Observer Z1 Inverted Phase and Fluorescence Microscope</td>
			<td style="width:181px;">Zeiss</td>
			<td style="width:175px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="42" rowspan="2" style="height:42px;width:639px;">Leica MZ9.5 Stereomicroscope</td>
			<td rowspan="2" style="width:181px;">Leica</td>
			<td rowspan="2" style="width:175px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:639px;">Fluorescein isothicyanate-dextran, 70000</td>
			<td style="width:181px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:175px;">46945</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assessment of vascular regeneration in the cns using the mouse retina

La rétine de rongeurs est peut-être le système de mammifère la plus accessible qui pour enquêter interaction neurovasculaire dans le système nerveux central (SNC). Il est de plus en plus reconnu que plusieurs maladies neurodégénératives telles que la maladie d&#39;Alzheimer, la sclérose en plaques, sclérose en plaques et éléments présents latérale amyotrophique de compromis vasculaire. En outre, les causes les plus importantes de cécité chez les populations pédiatriques et en âge de travailler (rétinopathie du prématuré et de la rétinopathie diabétique, respectivement) sont caractérisées par une dégénérescence vasculaire et l&#39;échec de la repousse vasculaire physiologique. Le but de ce document technique est de fournir un protocole détaillé pour étudier la régénération du SNC vasculaire dans la rétine. Le procédé peut être utilisé pour élucider les mécanismes moléculaires qui conduisent à une défaillance de la croissance vasculaire après une lésion ischémique. En outre, les modalités thérapeutiques potentiels pour accélérer et restaurer plexus vasculaires sains peuvent être explorées. Les résultats obtained en utilisant l&#39;approche décrite peut fournir des pistes thérapeutiques pour les rétinopathies ischémiques telles que celle du diabète ou de prématurité et de bénéficier éventuellement d&#39;autres troubles vasculaires du SNC.

Le modèle de ROC est largement utilisée pour étudier la dégénérescence vasculaire induite par l&#39;oxygène et l&#39;ischémie induite par la néovascularisation pathologique dans la rétine et a joué un rôle dans le développement de traitements anti-angiogéniques actuellement utilisés pour les maladies oculaires 27, 29, 30. Les résultats obtenus à l&#39;aide de ce modèle peuvent être plus ou moins extrapolés à rétinopathies ischémiques telles que la rétinopathie diabétique proliférante...

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Assessment of Vascular Regeneration in the CNS Using the Mouse Retina

La rétine de rongeur a depuis longtemps été reconnue comme une fenêtre accessible au cerveau. Dans ce document technique que nous fournissons un protocole qui utilise le modèle de souris de la rétinopathie induite par l&#39;oxygène d&#39;étudier les mécanismes qui conduisent à l&#39;échec de la régénération vasculaire dans le système nerveux central après lésion ischémique. Le système décrit peut également être mise à profit pour explorer des stratégies pour favoriser la repousse des vaisseaux sanguins fonctionnels au sein de la rétine et du système nerveux central.

Évaluation de la régénération vasculaire dans le SNC Utilisation de la rétine de souris

The rodent retina is perhaps the most accessible mammalian system in which to investigate neurovascular interplay within the central nervous system (CNS). ...

assessment-of-vascular-regeneration-in-the-cns-using-the-mouse-retina

Research

JoVE Journal

Neuroscience

14.3K vues.  McGill University.  La rétine de rongeur a depuis longtemps été reconnue comme une fenêtre accessible au cerveau. Dans ce document technique que nous fournissons un protocole qui utilise le modèle de souris de la rétinopathie induite par l'oxygène d'étudier les mécanismes qui conduisent à l'échec de la régénération vasculaire dans le système nerveux central après lésion ischémique. Le système décrit peut également être mise à profit pour explorer des strat...

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Quantifying the Activity of cis-Regulatory Elements in the Mouse Retina by Explant Electroporation

Transcription factors within cellular gene networks control the spatiotemporal pattern and levels of expression of their target genes by binding to cis-regulatory elements (CREs), short (&tilde;300-600 bp) stretches of genomic DNA which can lie upstream, downstream, or within the introns of the genes they control. CREs (i.e., enhancers/promoters) typically consist of multiple clustered binding sites for both transcriptional activators and repressors1-3. They serve as logical integrators of transcriptional input giving a unitary output in the form of spatiotemporally precise and quantitatively exact promoter activity. Most studies of mammalian cis-regulation to date have relied on mouse transgenesis as a means of assaying the enhancer function of CREs4-5. This technique is time-consuming, costly and, on account of insertion site effects, largely non-quantitative. On the other hand, quantitative assays for mammalian CRE function have been developed in tissue culture systems (e.g., dual luciferase assays), but the in vivo relevance of these results is often uncertain. 
Electroporation offers an excellent alternative to traditional mouse transgenesis in that it permits both spatiotemporal and quantitative assessment of cis-regulatory activity in living mammalian tissue. This technique has been particularly useful in the analysis of cis-regulation in the central nervous system, especially in the cerebral cortex and the retina6-8. While mouse retinal electroporation, both in vivo and ex vivo, has been developed and extensively described by Matsuda and Cepko6-7,9, we have recently developed a simple approach to quantify the activity of photoreceptor-specific CREs in electroporated mouse retinas10. Given that the amount of DNA that is introduced into the retina by electroporation can vary from experiment to experiment, it is necessary to include a co-electroporated 'loading control' in all experiments. In this respect, the technique is very similar to the dual luciferase assay used to quantify promoter activity in cultured cells. 
When assaying photoreceptor cis-regulatory activity, electroporation is usually performed in newborn mice (postnatal day 0, P0) which is the time of peak rod production11-12. Once retinal cell types become post-mitotic, electroporation is much less efficient. Given the high rate of rod birth in newborn mice and the fact that rods constitute more than 70% of the cells in the adult mouse retina, the majority of cells that are electroporated at P0 are rods. For this reason, rod photoreceptors are the easiest retinal cell type to study via electroporation. The technique we describe here is primarily useful for quantifying the activity of photoreceptor CREs.

Quantifying the Activity of cis-Regulatory Elements in the Mouse Retina by Explant Electroporation

This protocol describes a simple and inexpensive way to quantify the activity of cis-regulatory elements (i.e., enhancer/promoters) in living mouse retinas via explant electroporation. DNA preparation, retinal dissection, electroporation, retinal explant culture, and post-fixation analysis and quantification are described.

Quantifier l&#39;activité des Cis Éléments de la réglementation-dans la rétine de souris par électroporation explantation

Transcription factors within cellular gene networks control the spatiotemporal pattern and levels of expression of their target genes by binding to ...

Recherche

Neurosciences

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge. Gene targeting to generate constitutive or conditional loss of function knockouts remains cost and labor intensive, as well as time consuming. Adding to these challenges, retina expressed genes may have essential roles outside the retina leading to unintended confounds when using a knockout approach. Furthermore, the ability to ectopically express a gene in a gain of function experiment can be extremely valuable when attempting to identify a role in cell fate specification and/or terminal differentiation.
We present a method for the rapid and efficient incorporation of DNA plasmids into the neonatal mouse retina by electroporation. The application of short electrical impulses above a certain field strength results in a transient increase in plasma membrane permeability, facilitating the transfer of material across the membrane 1,2,3,4. Groundbreaking work demonstrated that electroporation could be utilized as a method of gene transfer into mammalian cells by inducing the formation of hydrophilic plasma membrane pores allowing the passage of highly charged DNA through the lipid bilayer 5. Continuous technical development has resulted in the viability of electroporation as a method for in vivo gene transfer in multiple mouse tissues including the retina, the method for which is described herein 6, 7, 8, 9, 10. 
DNA solution is injected into the subretinal space so that DNA is placed between the retinal pigmented epithelium and retina of the neonatal (P0) mouse and electrical pulses are applied using a tweezer electrode. The lateral placement of the eyes in the mouse allows for the easy orientation of the tweezer electrode to the necessary negative pole-DNA-retina-positive pole alignment. Extensive incorporation and expression of transferred genes can be identified by postnatal day 2 (P2). Due to the lack of significant lateral migration of cells in the retina, electroporated and non-electroporated regions are generated. Non-electroporated regions may serve as internal histological controls where appropriate. 
Retinal electroporation can be used to express a gene under a ubiquitous promoter, such as CAG, or to disrupt gene function using shRNA constructs or Cre-recombinase. More targeted expression can be achieved by designing constructs with cell specific gene promoters. Visualization of electroporated cells is achieved using bicistronic constructs expressing GFP or by co-electroporating a GFP expression construct. Furthermore, multiple constructs may be electroporated for the study of combinatorial gene effects or simultaneous gain and loss of function of different genes. Retinal electroporation may also be utilized for the analysis of genomic cis-regulatory elements by generating appropriate expression constructs and deletion mutants. Such experiments can be used to identify cis-regulatory regions sufficient or required for cell specific gene expression 11. Potential experiments are limited only by construct availability.

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

A method for the incorporation of plasmid DNA into murine retinal cells for the purpose of performing either gain- or loss of function studies in vivo is presented. This method capitalizes on the transient increase in permeability of cell plasma membranes induced by the application of an external electrical field.

En électroporation in vivo de la rétine de souris en développement

The functional characterization of genes expressed during mammalian retinal development remains a significant challenge.  Gene targeting to generate ...

Fast Micro-iontophoresis of Glutamate and GABA: A Useful Tool to Investigate Synaptic Integration

One of the fundamental interests in neuroscience is to understand the integration of excitatory and inhibitory inputs along the very complex structure of the dendritic tree, which eventually leads to neuronal output of action potentials at the axon. The influence of diverse spatial and temporal parameters of specific synaptic input on neuronal output is currently under investigation, e.g. the distance-dependent attenuation of dendritic inputs, the location-dependent interaction of spatially segregated inputs, the influence of GABAergig inhibition on excitatory integration, linear and non-linear integration modes, and many more.
With fast micro-iontophoresis of glutamate and GABA it is possible to precisely investigate the spatial and temporal integration of glutamatergic excitation and GABAergic inhibition. Critical technical requirements are either a triggered fluorescent lamp, light-emitting diode (LED), or a two-photon scanning microscope to visualize dendritic branches without introducing significant photo-damage of the tissue. Furthermore, it is very important to have a micro-iontophoresis amplifier that allows for fast capacitance compensation of high resistance pipettes. Another crucial point is that no transmitter is involuntarily released by the pipette during the experiment.
Once established, this technique will give reliable and reproducible signals with a high neurotransmitter and location specificity. Compared to glutamate and GABA uncaging, fast iontophoresis allows using both transmitters at the same time but at very distant locations without limitation to the field of view. There are also advantages compared to focal electrical stimulation of axons: with micro-iontophoresis the location of the input site is definitely known and it is sure that only the neurotransmitter of interest is released. However it has to be considered that with micro-iontophoresis only the postsynapse is activated and presynaptic aspects of neurotransmitter release are not resolved. In this article we demonstrate how to set up micro-iontophoresis in brain slice experiments.

In this article we introduce fast micro-iontophoresis of neurotransmitters as a technique to investigate integration of postsynaptic signals with high spatial and temporal precision.

Rapide Micro-iontophorèse de glutamate et le GABA: un outil utile d&#39;étudier l&#39;intégration synaptique

One of the fundamental interests in neuroscience is to understand the integration of excitatory and inhibitory inputs along the very complex structure of ...

The Corneal Micropocket Assay: A Model of Angiogenesis in the Mouse Eye

The mouse corneal micropocket assay is a robust and quantitative in vivo assay for evaluating angiogenesis. By using standardized slow-release pellets containing specific growth factors that trigger blood vessel growth throughout the naturally avascular cornea, angiogenesis can be measured and quantified. In this assay the angiogenic response is generated over the course of several days, depending on the type and dose of growth factor used. The induction of neovascularization is commonly triggered by either basic fibroblast growth factor (bFGF) or vascular endothelial growth factor (VEGF). By combining these growth factors with sucralfate and hydron (poly-HEMA (poly(2-hydroxyethyl methacrylate))) and casting the mixture into pellets, they can be surgically implanted in the mouse eye. These uniform pellets slowly-release the growth factors over five or six days (bFGF or VEGF respectively) enabling sufficient angiogenic response required for vessel area quantification using a slit lamp. This assay can be used for different applications, including the evaluation of angiogenic modulator drugs or treatments as well as comparison between different genetic backgrounds affecting angiogenesis. A skilled investigator after practicing this assay can implant a pellet in less than 5 min per eye.

The protocol describes the corneal micropocket assay as developed in mice.

La cornée micropoche test: Un modèle de l&#39;angiogenèse dans l&#39;oeil de la souris

The mouse corneal micropocket assay is a robust and quantitative in vivo assay for evaluating angiogenesis. By using standardized slow-release pellets ...

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to blindness in many retinal diseases. Calcium (Ca2+), a key second messenger in photoreceptor signaling and metabolism, has been proposed to be indirectly linked with photoreceptor degeneration in various animal models. Systematically studying these aspects of cone physiology and pathophysiology has been hampered by the difficulties of electrically recording from these small cells, in particular in the mouse where the retina is dominated by rod photoreceptors. To circumvent this issue, we established a two-photon Ca2+ imaging protocol using a transgenic mouse line that expresses the genetically encoded Ca2+ biosensor TN-XL exclusively in cones and can be crossbred with mouse models for photoreceptor degeneration. The protocol described here involves preparing vertical sections (&#8220;slices&#8221;) of retinas from mice and optical imaging of light stimulus-evoked changes in cone Ca2+ level. The protocol also allows &#8220;in-slice measurement&#8221; of absolute Ca2+ concentrations; as the recordings can be followed by calibration. This protocol enables studies into functional cone properties and is expected to contribute to the understanding of cone Ca2+ signaling as well as the potential involvement of Ca2+ in photoreceptor death and retinal degeneration.

Imaging Ca2+ Dynamics in Cone Photoreceptor Axon Terminals of the Mouse Retina

We describe a protocol to monitor Ca2+ dynamics in the axon terminals of cone photoreceptors using an ex-vivo&#160;slice preparation of the mouse retina. This protocol allows comprehensive studies of cone Ca2+ signaling in an important mammalian model system, the mouse.

Imagerie Ca<sup&gt; 2+</sup&gt; Dynamics dans les terminaux cône photorécepteur Axon de la rétine de souris

Retinal cone photoreceptors (cones) serve daylight vision and are the basis of color discrimination. They are subject to degeneration, often leading to ...

Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous substances into the brain. These exogenous substances may induce injurious impact or constitute therapeutic strategy. The most common delivery methods of exogenous substances into the brain are based on systemic deliveries, such as subcutaneous or intravenous routes. Although commonly used, these approaches have several limitations, including low delivery efficacy into the brain. In contrast, surgical methods that locally deliver substances into the CNS are more specific and prevent the uptake of the exogenous substances by other organs. Several surgical methods for CNS delivery are available; however, they tend to be very traumatic. Here, we describe a mouse infusion microsurgery technique, which effectively delivers substances into the brain via the internal carotid artery, with minimal trauma and no interference with normal CNS functionality.

Mouse Microsurgery Infusion Technique for Targeted Substance Delivery into the CNS via the Internal Carotid Artery

The present protocol describes a mouse microsurgery infusion technique, which effectively delivers substances directly into the brain via the internal carotid artery.

Souris microchirurgie Infusion Technique pour ciblée Substance Livraison dans le SNC<i&gt; via</i&gt; L&#39;artère carotide interne

Animal models of central nervous system (CNS) diseases and, consequently, blood-brain barrier disruption diseases, require the delivery of exogenous ...

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Electroporation is an essential non-viral gene transfection approach to introduce DNA plasmids or small RNA molecules into cells. A sensory neuron in the dorsal root ganglion (DRGs) extends a single axon with two branches. One branch goes to the peripheral nerve (peripheral branch), and the other branch enters the spinal cord through the dorsal root (central branch). After the neural injury, the peripheral branch regenerates robustly whereas the central branch does not regenerate. Due to the high regenerative capacity, sensory axon regeneration has been widely used as a model system to study mammalian axon regeneration in both the peripheral nervous system (PNS) and the central nervous system (CNS). Here, we describe a previously established approach protocol to manipulate gene expression in mature sensory neurons in vivo via electroporation. Based on transfection with plasmids or small RNA oligos (siRNAs or microRNAs), the approach allows for both loss- and gain-of-function experiments to study the roles of genes-of-interests or microRNAs in regulation of axon regeneration in vivo. In addition, the manipulation of gene expression in vivo can be controlled both spatially and temporally within a relatively short time course. This model system provides a unique tool to investigate the molecular mechanisms by which mammalian axon regeneration is regulated in vivo.

Investigating Mammalian Axon Regeneration: In Vivo Electroporation of Adult Mouse Dorsal Root Ganglion

Electroporation is an effective approach to deliver genes of interests into cells. By applying this approach in vivo on the neurons of adult mouse dorsal root ganglion (DRG), we describe a model to study axon regeneration in vivo.

Chargée de l’enquête la régénération axonale mammifères : In Vivo électroporation du Ganglion de la racine dorsale de souris adulte

Electroporation is an essential non-viral gene transfection approach to introduce DNA plasmids or small RNA molecules into cells. A sensory neuron in the ...

The Power of Interstimulus Interval for the Assessment of Temporal Processing in Rodents

Temporal processing deficits have been implicated as a potential elemental dimension of higher-level cognitive processes, commonly observed in neurocognitive disorders. Despite the popularization of prepulse inhibition (PPI) in recent years, many current protocols promote using a percent of control measure, thereby precluding the assessment of temporal processing. The present study used cross-modal PPI and gap prepulse inhibition (gap-PPI) to demonstrate the benefits of employing a range of interstimulus intervals (ISIs) to delineate effects of sensory modality, psychostimulant exposure, and age. Assessment of sensory modality, psychostimulant exposure, and age reveals the utility of an approach varying the interstimulus interval (ISI) to establish the shape of the ISI function, including increases (sharper curve inflections) or decreases (flattening of the response amplitude curve) in startle amplitude. Additionally, shifts in peak response inhibition, suggestive of a differential sensitivity to the manipulation of ISI, are often revealed. Thus, the systematic manipulation of ISI affords a critical opportunity to evaluate temporal processing, which may reveal the underlying neural mechanisms involved in neurocognitive disorders.

Temporal processing, a preattentive process, may underlie deficits in higher-level cognitive processes, including attention, commonly observed in neurocognitive disorders. Using prepulse inhibition as an exemplar paradigm, we present a protocol for manipulating interstimulus interval (ISI) to establish the shape of the ISI function to provide an assessment of temporal processing.

La puissance de l’intervalle Interstimulus pour l’évaluation du traitement temporel chez les rongeurs

Temporal processing deficits have been implicated as a potential elemental dimension of higher-level cognitive processes, commonly observed in ...

Horizontal Hippocampal Slices of the Mouse Brain

The hippocampus is a highly organized structure in the brain that is a part of the limbic system and is involved in memory formation and consolidation as well as the manifestation of severe brain disorders, including Alzheimer&#8217;s disease and epilepsy. The hippocampus receives a high degree of intra- and inter-connectivity, securing a proper communication with internal and external brain structures. This connectivity is accomplished via different informational flows in the form of fiber pathways. Brain slices are a frequently used methodology when exploring neurophysiological functions of the hippocampus. Hippocampal brain slices can be used for several different applications, including electrophysiological recordings, light microscopic measurements as well as several molecular biological and histochemical techniques. Therefore, brain slices represent an ideal model system to assess protein functions, to investigate pathophysiological processes involved in neurological disorders as well as for drug discovery purposes.
There exist several different ways of slice preparations. Brain slice preparations with a vibratome allow a better preservation of the tissue structure and guarantee a sufficient oxygen supply during slicing, which present advantages over the traditional use of a tissue chopper. Moreover, different cutting planes can be applied for vibratome brain slice preparations. Here, a detailed protocol for a successful preparation of vibratome-cut horizontal hippocampal slices of mouse brains is provided. In contrast to other slice preparations, horizontal slicing allows to keep the fibers of the hippocampal input path (perforant path) in a fully intact state within a slice, which facilitates the investigation of entorhinal-hippocampal interactions. Here, we provide a thorough protocol for the dissection, extraction, and acute horizontal slicing of the murine brain, and discuss challenges and potential pitfalls of this technique. Finally, we will show some examples for the use of brain slices in further applications.

This article aims to describe a systematic protocol to obtain horizontal hippocampal brain slices in mice. The objective of this methodology is to preserve the integrity of hippocampal fiber pathways, such as the perforant path and the mossy fiber tract to assess dentate gyrus related neurological processes.

Tranches hippocampiques horizontales du cerveau de souris

The hippocampus is a highly organized structure in the brain that is a part of the limbic system and is involved in memory formation and consolidation as ...

Transpupillary Two-Photon In Vivo Imaging of the Mouse Retina

The retina transforms light signals from the environment into electrical signals that are propagated to the brain. Diseases of the retina are prevalent and cause visual impairment and blindness. Understanding how such diseases progress is critical to formulating new treatments. In vivo&#160;microscopy in animal models of disease is a powerful tool for understanding neurodegeneration and has led to important progress towards treatments of conditions ranging from Alzheimer&#39;s disease to stroke. Given that the retina is the only central nervous system structure inherently accessible by optical approaches, it naturally lends itself towards in vivo imaging. However, the native optics of the lens and cornea present some challenges for effective imaging access.
This protocol outlines methods for in vivo two-photon imaging of cellular cohorts and structures in the mouse retina at cellular resolution, applicable for both acute- and chronic-duration imaging experiments. It presents examples of retinal ganglion cell (RGC), amacrine cell, microglial, and vascular imaging using a suite of labeling techniques including adeno-associated virus (AAV) vectors, transgenic mice, and inorganic dyes. Importantly, these techniques extend to all cell types of the retina, and suggested methods for accessing other cellular populations of interest are described. Also detailed are example strategies for manual image postprocessing for display and quantification. These techniques are directly applicable to studies of retinal function in health and disease.

In vivo imaging is a powerful tool for the study of biology in health and disease. This protocol describes transpupillary imaging of the mouse retina with a standard two-photon microscope. It also demonstrates different in vivoimaging methods to fluorescently label multiple cellular cohorts of the retina.

Transpupillaire Imagerie in vivo à deux photons de la rétine de souris

The retina transforms light signals from the environment into electrical signals that are propagated to the brain. Diseases of the retina are prevalent ...