Name: a novel behavioral assay to investigate gustatory responses of individual, freely-moving bumble bees (bombus terrestris)
Uploaded: 2016-07-21T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris at JoVE.com

Ce travail a été financé par la subvention Leverhulme Trust (RPG-2012-708) et une subvention BBSRC (BB / M00709X / 1) à VAG.

1. Capturer les abeilles de la colonie et la période Starvation Note: Les expériences décrites ici ont été réalisées à l&#39; Université de Newcastle, au Royaume - Uni avec Bombus terrestris audax. Multiples (2-3) achetés dans le commerce des colonies ont été utilisés par traitement. Les colonies ont été maintenus sur un banc dans des conditions de laboratoire (25 ± 2 ° C et 28 ± 2% d&#39; humidité relative) dans l&#39; obscurité constante et ont été nourris avec du miel d&#39; abeille pollen récolté et des solutions de sucre ad libitum. <ol><li> Collecter des travailleurs individuels bourdons en utilisant un flacon en plastique (7 cm de long, 2,8 cm de diamètre intérieur) avec un bouchon en plastique perforé, après avoir ouvert la porte à la colonie juste assez longtemps pour une abeille à quitter et être pris au piège. </li><li> Avant l&#39;expérience, mourir de faim individuellement toutes les bourdons pour 2-4 heures dans les flacons en plastique et conserver à la température ambiante dans l&#39;obscurité totale. </li></ol> 2. Transfert des abeilles dans les tubes de maintien et la Habituation Phase <ol><li> Après la période de famine, transférer un bourdon directement à partir du flacon en plastique dans un tube de maintien. Le tube de retenue est un tube de 15 ml de centrifugeuse modifié (longueur: 119 mm, diamètre 17 mm), avec un trou de 4 mm foré à la pointe et un morceau de treillis en acier (de base: 8 mm, hauteur 30 mm) fixée à l&#39;intérieur par la fusion la matière plastique du tube avec une aiguille en acier chauffé à dissection. </li><li> Fixer le tube de retenue contenant le bourdon sur un support en polystyrène avec de la cire dentaire. Fixer les deux morceaux de carton de chaque côté du tube de maintien. Ceci est de protéger l&#39;abeille à partir des stimuli visuels qui pourraient interférer avec l&#39;expérience. </li><li> Placer une caméra microscopique numérique 5 cm au-dessus de la pointe du tube de maintien et connecter l&#39;appareil photo à un ordinateur portable compatible. </li><li> Ajuster le tube de retenue de sorte qu&#39;au moins les 18 premiers mm de la pointe du tube de maintien est dans le cadre de la vidéo. Avant l&#39;expérience, commencer la période d&#39;habituation 3 min. </li></ol> 3.Phase pré-test: Présenter une baisse de sucrose <ol><li> Connecter une seringue à un adaptateur femelle contenant une gouttelette de solution de saccharose (~ 3,5 pi, 500 mM de saccharose dissous dans de l&#39;eau déminéralisée). Présenter le sucrose intérieur de la pointe du tube de retenue pour motiver l&#39;extension de la trompe. </li><li> Donnez le bourdon à 5 min de consommer la gouttelette de saccharose. Si la gouttelette ne se consomme pas, retirez le bourdon de l&#39;expérience. </li><li> Commencez l&#39;enregistrement vidéo après la période d&#39;habituation. Dans cette étude, l&#39;activité proboscis a été enregistré à 26,7 images / s -1 avec un taux de grossissement 25X. </li></ol> 4. Phase Test: Présentation de la solution de test <ol><li> Remplir un tube microcapillaire 100 ul avec la solution d&#39;essai. Connectez-le à un morceau de tube en silicone (6 cm de longueur, 1 mm de diamètre intérieur) et le fixer à un micro manipulateur. <ol><li> Connectez le tube via un adaptateur mâle à un autre tube de silicone (6 cm de longueur, 4 mm de diamètre intérieur), which agit comme un bulbe de la pipette. </li><li> Positionner le microcapillaire tube de 5-10 mm de la pointe du tube de retenue. Appuyez doucement sur le tube pour maintenir la solution d&#39;alimentation à l&#39;extrémité du tube microcapillaire. </li></ol></li><li> Après le bourdon consomme la gouttelette de saccharose, retirer immédiatement la seringue contenant la solution de saccharose 500 mM. </li><li> Commencez la phase de test de 2 min lorsque proboscis les contacts de l&#39;abeille bumble, la solution à l&#39;intérieur du tube microcapillaire. <ol><li> Afin de contrôler une éventuelle évaporation, remplir deux tubes microcapillaires supplémentaires avec du saccharose ou de l&#39;eau et de le manipuler exactement comme lors de la phase de test. </li></ol></li><li> Avant et après chaque essai balayer les niveaux de liquide dans le tube microcapillaire en utilisant un scanner à 600 dpi pour mesurer la quantité de nourriture consommée (figure 4A). </li></ol> 5. Analyses image <ol><li> Déterminer le volume de la consommation de solution en utilisant ImageJ (version 1.48), un proc d&#39;imageesser logiciel. <ol><li> Téléchargez le fichier image et zoomer dans l&#39;image (~ 400%). Pour définir l&#39;échelle de référence, sélectionnez l&#39;outil de ligne droite et tracer une ligne entre les deux extrémités du tube microcapillaire. Sélectionnez &#39;Analyser&#39; puis &#39;Échelle Set&#39;. Entrer la longueur totale du tube sous la «distance connue» et l&#39;unité correspondante sous la rubrique «Unité de longueur». </li><li> Sélectionnez l&#39;outil en ligne droite à nouveau et tracer une ligne entre les deux extrémités du niveau de liquide. Sélectionnez &#39;Analyser&#39; puis &#39;Mesure&#39;. Dans la fenêtre des résultats de la longueur du liquide est donnée dans la colonne «Longueur». </li></ol></li><li> Calculer le volume de la consommation de solution en utilisant la formule: <img alt="L&#39;équation 1" src="/files/ftp_upload/54233/54233eq1.jpg" /> où <img alt="équation 2" src="/files/ftp_upload/54233/54233eq2.jpg" /> est la longueur du tube microcapillaire et <img alt="l&#39;équation 3" src="/files/ftp_upload/54233/54233eq3.jpg" /> et <img alt= &quot;Equation 4&quot; src = &quot;/ files / ftp_upload / 54233 / 54233eq4.jpg&quot; /&gt; sont les longueurs mesurées de liquide à l&#39;intérieur du tube microcapillaire avant et après la phase de test, respectivement. </li></ol> 6. Analyses vidéo <ol><li> Note les comportements alimentaires au cours de la phase de test de 2 min de chaque vidéo à l&#39; aide d&#39; un logiciel d&#39;enregistrement des événements (voir le tableau Matériaux). <ol><li> Dans un premier temps , définir les comportements alimentaires (ie. Les éléments) dans le menu des classes de comportement du logiciel d&#39;enregistrement. Les comportements alimentaires sont comme suit: (1) rostre, en dehors / contact: le rostre prolonge et est en contact avec la solution à l&#39;intérieur du tube microcapillaire (2) rostre, en dehors / sans contact: l&#39;proboscide prolonge et n&#39;a pas en contact avec la solution à l&#39;intérieur du tube microcapillaire, (3) proboscis arrimés: la trompe ne sont pas prolongés mais rangés sous la tête et (4) hors de la vue: le bourdon est hors de l&#39;image vidéo. </li><li> Définissez chaque comportementcomme un «état» et «mutuellement exclusifs» dans le menu des propriétés et de faire des enregistrements continus pour un intervalle de 2 min. Rejouer les vidéos en mode ralenti (2 fois plus lent) pour plus de précision. </li></ol></li><li> Mesurer la vitesse de proboscis retrait de la solution d&#39;essai après le premier contact entre deux trames consécutives (séparés par 37.5 msec dans les enregistrements vidéo présentés ici) en utilisant un logiciel de suivi de mouvement vidéo (Voir tableau des matériaux). <ol><li> Téléchargez le fichier vidéo et passez à l&#39;image où les proboscis premiers contacts de la solution. </li><li> Pour définir l&#39;échelle de référence, sélectionnez l&#39;outil de ligne et tracer une ligne sur la largeur du tube microcapillaire dans l&#39;image vidéo. Faites un clic droit sur la ligne et sélectionnez «Calibrer mesure». La largeur d&#39;entrée du tube capillaire et l&#39;unité correspondante. </li><li> Sélectionnez &#39;Image&#39; puis &#39;Coordonner l&#39;origine du système ». Sur la nouvelle fenêtre cliquez sur le bout de la trompe et sélectionnez9; Appliquer &#39;. </li><li> Sélectionnez l&#39;outil de déplacement de la main, clic droit sur le bout de la trompe sur l&#39;image vidéo et sélectionnez &#39;Track Path&#39;. Déplacer vers l&#39;image suivante et réajuster le point de suivi à la pointe de la trompe. </li></ol></li><li> Faites un clic droit sur le point de suivi et sélectionnez &#39;Configuration&#39;. Sélectionnez &#39;Chemin complet&#39; et sélectionnez &#39;Speed&#39; dans la mesure. Sélectionnez &#39;Appliquer&#39;. La vitesse est alors affichée. </li></ol>

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Les auteurs ne déclarent aucun conflit d&#39;intérêt.

Avec ce test de comportement roman, la quinine est indiquée pour dissuader l&#39;alimentation de l&#39;bumble bee chamois à queue. Le temps de contact de proboscis réduite et l&#39;alimentation fréquence de combat avec l&#39;eau ou la solution de saccharose lacées avec de la quinine est interprétée ici comme un refus d&#39;engager l&#39;alimentation plus sur les solutions non-nutritives ou potentiellement toxiques. Lorsque la quinine est ajouté à une solution 1 M de saccharose, les bourdons non seulement de réduire le volume de la solution qu&#39;ils consomment, ils se rétractent également les proboscis plus rapide, réduisant ainsi le temps de contact entre les pièces buccales et la solution contenant une toxine. Ensemble, ces résultats suggèrent que la quinine est perçue par les cellules réceptrices gustatifs sur les pièces buccales du bourdon, comme déjà mentionné auparavant lors de l&#39;abeille 9. La quinine est une toxine pour les insectes qui induit un comportement de malaise semblable à l&#39;abeille 10 et effet de choc dans le moustique du paludisme (Anopheles gambiae) 23. Ce test pourrait bien conduire à l&#39;identification de certains composés de dissuasion et potentiellement toxiques qui sont perçus par les cellules réceptrices du goût sur les pièces buccales dans les bourdons. Il est essentiel pour le tube microcapillaire pour être rempli d&#39;un volume suffisant de solution d&#39;essai pour durer pendant toute la phase de test. Il est recommandé qu&#39;au moins les trois quarts environ du tube microcapillaire (par exemple 70-80 ul) est rempli. Cependant, il faut prendre soin de ne pas remplir complètement le tube microcapillaire pour réduire le risque de déversement au cours du processus de numérisation et de fixer le tube microcapillaire à l&#39;appareil expérimental. Des précautions doivent également être prises lors de la présentation de la gouttelette mM de saccharose 500 à l&#39;abeille bumble, de sorte que l&#39;expérimentateur évite les fuites de la gouttelette dans le tube de maintien. Le trou de 4 mm à l&#39;extrémité du tube de maintien est assez grand pour un adulte travailleur bumble bee d&#39;étendre naturellement sa trompe vers la solution de test. Cependant, il est possible quebourdons peuvent goûter la solution avec leurs antennes avant d&#39;étendre leurs trompes. Cela pourrait influer sur la probabilité de l&#39; extension du proboscis comme PER pouvait être obtenue chez les bourdons en stimulant leurs antennes avec une solution de sucre 15. En fait , les antennes des hyménoptères comme la guêpe parasitoïde (Trissolcus brochymenae) 24 ou le miel d&#39; abeille 13 sont équipés avec goût sensilla, leur permettant de goûter les sucres et les toxines comme la quinine. Par conséquent, les contacts antennaires initiaux avec des solutions contenant des composés hautement dissuasives comme la quinine pourrait également réduire la motivation d&#39;un bourdon d&#39;étendre sa trompe et donc influer sur le taux de succès expérimental. Bien que le contact antennaire avec la solution de test ne peut pas être contrôlée, dans la présente étude n&#39;a été trouvé aucun effet significatif contact antennaire sur l&#39;extension du proboscis vers la solution de test. Dans cet essai, la mise en place immédiatement le tube microcapillaire après la phase pré-test when les antennes des abeilles bourdons sont encore à l&#39;intérieur du tube de retenue peut réduire la possibilité pour les bourdons de goûter à la solution d&#39;essai avec leurs antennes. La principale limitation de ce test se pose lors de la poursuite de la rétraction du proboscis loin de la solution d&#39;essai après le premier contact du proboscis en utilisant le logiciel mouvement suivi vidéo. La vidéo affiche uniquement le mouvement 2D de la trompe, de sorte que la sortie donnée de la mesure de la vitesse peut être inférieure ou supérieure estimée. Cependant, avec certaines modifications, cet aspect de l&#39;essai pourrait être améliorée. Ce test peut être utilisé pour observer les réponses d&#39;alimentation naturelle vers des solutions contenant différents composés, y compris métabolites secondaires végétaux naturels qui se produisent. Observer les réponses alimentaires immédiates avec cet essai donne des informations détaillées sur la façon dont les bourdons détecter ces composés. Ceci est avantageux par rapport existant &#39;go-no go&#39; méthodes comme PER 18,19 </sup&gt; Et plus des essais de deux choix 7 parce que cette méthode produit plusieurs mesures d&#39;intervention de comportement , y compris la consommation alimentaire lors d&#39; un combat d&#39;alimentation discrète. Mesure de plusieurs paramètres permet simultanément une meilleure évaluation de la sapidité d&#39;un composé. Par exemple, dans notre analyse, les bourdons évitent l&#39;eau ou la solution de saccharose lacées avec de la quinine consommer. Rétractation de la trompe peut être causé par un changement dans les réponses des cellules réceptrices de sucre 12,13. Notre analyse montre que les bourdons se rétractent les proboscis plus rapidement après la mise en contact de la solution de saccharose, plus quinine que l&#39;eau seule; cela pourrait suggérer que la quinine affecte un ensemble distinct de neurones en plus d&#39;inhiber les neurones de détection du sucre 9,12,13,25. Notre test permet l&#39;analyse de la structure temporelle des réponses comportementales lors de l&#39;alimentation. Un protocole similaire où le temps de la consommation et le nombre de combats est mesurée a alprête été mis en œuvre pour évaluer la réponse de l&#39; alimentation de la drosophile aux sucres nutritifs et non nutritifs 26. Nous prévoyons que les abeilles présentent une réponse plus fiable à l&#39; alimentation des stimulants dans notre analyse que dans d&#39; autres méthodes telles que PER parce que les abeilles sont libres de se déplacer dans le tube de maintien 21. Cette technique permettra une analyse exhaustive des seuils de goût pour les nutriments et les toxines pour éclairer les mécanismes de l&#39;alimentation dans les bourdons et potentiellement d&#39;autres espèces d&#39;abeilles.

Interactions plantes-pollinisateurs sont complexes. Les pollinisateurs visitent les fleurs pour obtenir le nectar et le pollen comme aliment; à son tour, les pollinisateurs facilitent la reproduction sexuée chez les plantes. Bien que cette relation est surtout mutualisme, nectar de fleurs et de pollen contiennent parfois des toxines ou des composés autres plantes 1-5 qui peut nuire à pollinisateurs. La justification écologique pour la présence de ces composés dans le nectar et le pollen est pas clair dans tous les milieux. Une question en suspens dans ce domaine est de savoir comment les pollinisateurs tels que les abeilles peuvent détecter et éviter des fleurs avec nectar contenant des toxines. Les espèces de bourdons, Bombus terrestris (Linnaeus, 1758), est un pollinisateur généraliste qui visite les fleurs de nombreuses espèces de plantes , y compris celles produisant du nectar contenant des toxines 6. Bourdons On a montré que des solutions pour éviter de consommer contenant de fortes concentrations de toxines dans un essai de 24 heures à deux choix 7. ce dosagede la consommation alimentaire décrite par Tiedeken et al. 7 ont révélé que les abeilles peuvent détecter des composés amers dans les solutions. Cependant, ce test a été incapable de distinguer le goût des processus post-ingestifs tels que malaise qui pourrait également affecter le comportement alimentaire sur cet intervalle de temps 8-10. Les abeilles possèdent sensilla gustatifs sur leurs antennes, buccales et tarses pour détecter des composés 11-13. Le réflexe d&#39;extension du proboscis (PER) des expériences impliquent retenir les abeilles individuelles dans un harnais et stimulant sensilla antennaire de l&#39;abeille pour produire l&#39;alimentation réflexe 14-17. Les abeilles peuvent être immobilisés dans des faisceaux individuels, puis stimulés pour produire le réflexe d&#39;alimentation comme un test de leur capacité à goûter des composés 18,19. D&#39; autres ont modifié le test PER pour étudier la sensibilité des antennes ou buccales à des toxines 9,20. Cependant, les abeilles sont soumis à un stress pendant exploiter. Cela pourrait affecter la façon dontils répondent à des composés 21. Ici, un nouvel essai est décrit pour évaluer la réponse du goût comportemental librement déplacer les bourdons à saccharose et la quinine, un alcaloïde qui a déjà été rapporté pour être dissuasif 9 et toxique 10 pour les abeilles (Apis mellifera) et les bourdons (Bombus terrestris) 7, 22. Bien que la quinine n&#39;a pas été trouvé dans le nectar des plantes, cet alcaloïde est souvent utilisé comme un stimulus aversif dans des études comportementales et physiologiques chez les abeilles 7,9,12,13,22. La méthode consiste à enregistrer les pièces buccales des bourdons vidéo à grande résolution pendant le contact proboscis initial avec les solutions d&#39;essai. Plus précisément, la structure fine de la réponse d&#39;alimentation est examinée en marquant en continu le comportement sur un intervalle de 2 min. Le volume de solution consommé est mesurée pendant la période d&#39;alimentation, et donc la quantité de nourriture consommée peut être corrélée avec la microstructurele comportement alimentaire. En outre la vitesse de rétraction de la trompe est mesurée, comme indicateur d&#39;un évitement actif et, par conséquent la détection de pré-ingestion.

<table><tbody><tr><td>Bumblebee colonies</td><td>Koppert Biological Systems</td><td></td><td>NATUPOL Beehive</td></tr><tr><td>Digital microscopic camera&amp;nbsp;</td><td>Dino-lite Europe</td><td>AM4815ZT</td><td>Dino-Lite Edge&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>100 &amp;mu;l microcapillary tube&amp;nbsp;</td><td>Blaubrand IntraEND</td><td>709144</td><td></td></tr><tr><td>15 ml polypropylene centifuge tube&amp;nbsp;</td><td>Fisher Scientific</td><td>11849650</td><td></td></tr><tr><td>1 ml disposable plastic luer slip syringe</td><td>BD</td><td>300013</td><td></td></tr><tr><td>Dell Latitude 3550 laptop</td><td>Dell</td><td></td><td>Check for compatibility with video software&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Canon CanoScan LiDE 120</td><td>Canon</td><td></td><td>Check for compatibility with the computer/laptop</td></tr><tr><td>Observer software version 5.0.25</td><td>Noldus</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kinovea software version 0.8.15</td><td>Kinovea&amp;nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>silicone tubing</td><td></td><td></td><td>6&amp;nbsp;cm length, 1&amp;nbsp;mm inside &amp;Oslash; &amp;amp; 6&amp;nbsp;cm length, 4&amp;nbsp;mm inside &amp;Oslash;</td></tr><tr><td>Male luer x1/16&quot; standard hose barbed polypropylene adapter</td><td>Cole-Parmer</td><td>TW-45518-22</td><td></td></tr><tr><td>Female luer x 1/16&quot; standard hose barbed polypropylene adapter</td><td>Cole-Palmer</td><td>TW-45508-12</td><td></td></tr><tr><td>Steel mesh&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>0.5 mm mesh size</td></tr><tr><td>Sucrose (grade II)&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5391</td><td></td></tr><tr><td>Quinine hydrochloride dihydrate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Q1125</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ software version 1.48</td><td>ImageJ</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

a novel behavioral assay to investigate gustatory responses of individual, freely-moving bumble bees (bombus terrestris)

Pollinisateurs généralistes comme le bumble bee chamois à queue, Bombus terrestris, rencontrent les nutriments et les toxines dans le nectar floral qu&#39;ils recueillent de plantes à fleurs. Seules quelques études ont décrit les réponses gustatifs des abeilles vers les toxines dans les aliments, et ces expériences ont principalement utilisé la réponse d&#39;extension du proboscis sur les abeilles sobres. Ici, un nouveau test de comportement est présenté pour mesurer les réponses d&#39;alimentation de librement mobile, travailleur individuel bourdons des nutriments et des toxines. Ce test mesure la quantité de solution ingérée par chaque abeille bumble et identifie comment sapides dans les aliments influencent la microstructure du comportement alimentaire. Les solutions sont présentées dans un tube microcapillaire pour les bourdons individuels qui ont déjà été affamés pendant 2-4 heures. Le comportement est capturé sur vidéo numérique. La structure fine du comportement alimentaire est analysée en marquant en permanence la position du proboscis (pièces buccales) à partir des enregistrements vidéo en utilisant le logiciel d&#39;enregistrement des événements. La position du proboscis est définie par trois catégories comportementales différentes: (1) proboscis est étendue et en contact avec la solution, (2) proboscis est prolongée, mais pas en contact avec la solution et (3) proboscis est rangé sous la tête. En outre, la vitesse de la trompe rétractant loin de la solution est également estimée. Dans le présent essai le volume de solution consommé, le nombre de périodes d&#39;alimentation, la durée des épisodes d&#39;alimentation et la vitesse de rétraction de l&#39;appendice, après le premier contact est utilisé pour évaluer l&#39;phagostimulatory ou de l&#39;activité de dissuasion des composés testés. Ce nouveau test de goût permettra aux chercheurs de mesurer comment les composés trouvés dans le nectar influencent le comportement alimentaire des abeilles et seront également utiles aux biologistes de pollinisation, toxicologues et neuroethologists étudient le système de goût du bourdon.

Le nouveau test est utilisé pour tester les réponses d&#39;alimentation à 1 M de saccharose, 1 M de solution de saccharose ainsi que 1 mM de quinine et de l&#39;eau déminéralisée seule. Les réponses d&#39;alimentation immédiates pour chaque traitement sont déterminées par quantification de la durée des contacts proboscis avec la solution d&#39;essai, la fréquence des épisodes d&#39;alimentation et la vitesse de la trompe rétractant l&#39;écart de la solution d&#39;essai après le premier contact pendant la phase de test 2 min. Le volume de solution consommé est également mesurée après la phase de test. Dans cette étude, nous avons choisi un intervalle de 5 secondes critère de combat (Figure 1, voir fichier supplémentaire) sur la base des travaux antérieurs par le français et al. 25 qui a utilisé un seuil de 5 sec pour caractériser le comportement proboscis de rétraction par la drosophile en réponse à dissuasives composés 25. Ainsi, nous avons défini un combat d&#39;alimentation comme un contact entre les proboscis étendues et la solution net interrompu par l&#39;absence de contacts de 5 s ou plus. En comparaison avec le saccharose et de l&#39; eau déminéralisée seule, en ajoutant de la quinine à une solution de saccharose dissuade évidemment l&#39; alimentation par les bourdons comme ils vont rapidement se éloigner si elles détectent une substance aversif (vidéo Figure 1). Dans cette expérience, les traitements ont un effet significatif sur la durée cumulée des contacts proboscis pendant la phase de test (ANOVA sur les données transformées en log, F 2,31 = 41, p &lt;0,001). La durée cumulée de temps de contact avec le saccharose contenant de la quinine est significativement réduite par rapport au saccharose seul (p &lt;0,001) , mais pas à l&#39; eau déminéralisée seul (p = 0,219) (figure 2). De même, les traitements ont un effet significatif sur la durée cumulée des épisodes d&#39;alimentation (ANOVA sur les données transformées en log, F <sub&gt; 2,31 = 27,95; p &lt;0,001, figure 3A). La durée cumulée des épisodes d&#39;alimentation contenant du saccharose avec la quinine est significativement réduite par rapport au saccharose seul (p &lt;0,001), mais pas par rapport à l&#39;eau déminéralisée seule (p = 0,41). Les traitements ont également un effet significatif sur la fréquence des épisodes d&#39;alimentation (Poisson GLM avec une fonction de lien log, changement de déviance par rapport à la distribution c 2: p &lt;0,050), le nombre de combats avec du saccharose contenant de la quinine est significativement plus élevée dans comparaison au saccharose (p &lt;0,01) , mais légèrement significativement différent du traitement de l&#39; eau déminéralisée (p = 0,055, en raison d&#39;un bourdons affichant sept épisodes d&#39; alimentation sur l&#39; eau, la figure 3B). De même, la vitesse de rétraction proboscis diffère de manière significative entre les traitements (ANOVA sur les données transformées en log, F 2,31 = 5,12, p &lt;0,050). Les bourdons se rétractent la proboscis loin de la solution d&#39;essai beaucoup plus rapide après le premier contact avec le saccharose contenant de la quinine avec du saccharose ou de l&#39; eau déminéralisée seule (p &lt;0,050, figure 3C). Ces résultats suggèrent que la quinine déclenche un comportement d&#39;évitement actif dans les bourdons. Les traitements ont également un effet significatif sur le volume total de solution consommé (ANOVA sur les données transformées en log, F 2,32 = 62,5, p &lt;0,001), ce par quoi la consommation de saccharose contenant de la quinine est réduite par rapport au saccharose (p &lt;0,001) , mais pas à l&#39; eau déminéralisée (p = 0,457) (figure 4B). Le volume de solution a été évaporée à partir du capillaire pendant la période de test est négligeable. Dans des conditions de laboratoire (25 ± 2 ° C et 28 ± 2% d&#39;humidité relative), l&#39;évaporation varie entre 0,033 à 0,883 ul avec une moyenne de 0,276 et 0,171 ul ul d&#39;eau déminéralisée et 1 M de saccharose, respectivement. <p class="jove_content" fo:keep-together.within-page = &quot;1&quot;&gt; Dans cet essai, les contacts entre l&#39;antenne et la solution d&#39;essai ne peut pas être évitée. Néanmoins, le pourcentage de bourdons en utilisant leurs antennes pour goûter la solution d&#39;alimentation pendant la phase de test (saccharose: 46,1%, le saccharose, plus quinine: 60,0% et de l&#39;eau déminéralisée: 33,3%) ne sont pas significativement différents entre les traitements (binomiale GLM, changement dans la déviance par rapport à la distribution c 2: p = 0,450). Aucun effet des traitements se trouve sur le temps d&#39;attente entre les premiers contacts antennaires et la solution d&#39;essai et les premiers contacts du rostre (médiane: 2,67 s pour le saccharose; 1,10 s pour le saccharose ainsi que la quinine; 0,80 s pour l&#39;eau déminéralisée, ANOVA le les données log-transformées, F 2,13 = 0,620, p = 0,550). De plus, le pourcentage des bourdons étendant la trompe à goûter la solution d&#39;essai reste constante à travers les traitements (saccharose: 66,7%; teneur en saccharose plus quinine: 50,0%; eau déminéralisée: 52,2%; binomiale GLM, changement de déviance par rapport à la distribution c 2: p = 0,840). Ensemble, ces résultats suggèrent que les antennes jouent un rôle mineur dans la détection des toxines dans cet essai. Une expérience séparée examine s&#39;il est nécessaire de tester les abeilles pendant une période de temps de 2 min. La quantité de nourriture consommée par les abeilles est testée avec le saccharose 1 M ou 1 mM de quinine dans 1 M de saccharose dans des solutions de deux conditions: d&#39;une période d&#39;essai de 2 minutes et une période d&#39;essai de 10 min. Pour les deux traitements, la consommation alimentaire totale ne diffère pas pour les périodes d&#39;essai et aucune interaction significative se produit entre la période d&#39;essai et le traitement (N = 6-13, ANOVA sur les données de transformation logarithmique; effet des traitements: F 1,31 = 54,8, p &lt;0,001; effet de la période d&#39;essai: F 1,31 = 0, p = 0,979; effet de l&#39;interaction: F = 0,1, p = 0,457). En résumé, un2 période de test min est suffisante pour évaluer l&#39;effet de la solution sur la quantité totale de nourriture consommée par les bourdons et les effets dissuasifs de substances toxiques ou répulsives dans cet essai. Ainsi, en mesurant la consommation alimentaire et le dosage du comportement alimentaire, il est possible d&#39;établir une corrélation entre la consommation totale des produits alimentaires à la structure fine de l&#39;alimentation pendant l&#39;essai. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54233/54233fig1.jpg" /> Figure 1: Périodes Latence entre les Proboscis contacts pendant la Première 2 Min du dosage de l&#39; alimentation des parcelles de densité des périodes de latence de temps séparant chaque contact proboscis avec la solution 1 M de saccharose, la solution de quinine saccharose 1 M + 1 mM et de l&#39; eau.. Les données cumulatives de 13, 10 et 11 abeilles sont représentées respectivement. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/54233fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> &lt;/ P&gt; <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/54233/54233fig2.jpg" /> Figure 2: Proboscis Contacter Durées pendant la Première 2 Min du dosage de l&#39; alimentation des parcelles de densité des durées de contact proboscis par bourdons se nourrissant de 1 M de saccharose, 1 M de saccharose + 1 quinine mM ou de l&#39; eau.. Taille de l&#39; échantillon comme dans la figure 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/54233fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/54233/54233fig3.jpg" /> Figure 3: Activité Proboscis de bourdons Alimentation sur 1 M sucrose, 1 M sucrose + 1 mM quinine ou de l&#39; eau (A) La durée cumulée de périodes d&#39;alimentation pendant la phase de test (B) la fréquence de l&#39; alimentation combats et (C) la vitesse. de la re proboscistraction après le premier contact. Lettrage indique une différence significative: les traitements avec des lettres différentes indiquent P &lt;0,05. Box parcelles représentent la médiane (barres noires), le points de données les plus élevés le plus bas et encore moins de 1,5 de la gamme interquartile (moustaches) et les valeurs aberrantes (cercles). Taille de l&#39; échantillon comme dans la figure 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/54233fig3large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/54233/54233fig4.jpg" /> Figure 4:. Supresses Quinine alimentation par les bourdons (A) Les images numérisées des tubes microcapillaires montrant le niveau du saccharose 1 M ou de la solution de quinine 1 M de saccharose plus 1 mM (indiqué par une ligne noire) avant et après la phase de test respectivement. (B) La consommation de saccharose 1 M, 1 M de saccharose plus 1 mM de quinine ou de l&#39; eau déminéralisée<html> seul par les abeilles bourdons après la phase de test. Lettrage indique une différence significative: les traitements avec des lettres différentes indiquent P &lt;0,001. Box parcelles représentent la médiane (barres noires), le points de données les plus élevés le plus bas et encore moins de 1,5 de la gamme interquartile (moustaches) et les valeurs aberrantes (cercles). Taille de l&#39; échantillon comme dans la figure 1. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/54233fig4large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> Vidéo Figure 1: les enregistrements vidéo de l&#39;activité Proboscis vers (A) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/Video_figure_1A_1M_Sucrose.m4v" target="_blank">1 M sucrose</a> , (B) <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54233/Video_figure_1B_Quinine.m4v" target="_blank">1 M sucrose Plus 1 mM Quinine</a> et (C)d / 54233 / Video_figure_1C_Water.m4v &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Eau déminéralisée pendant la phase de test.

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A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris

A novel behavioral assay is described for investigating the short term gustatory responses of the mouthparts of freely-moving bumble bees (Bombus terrestris) toward nutrients and toxins in solution.

A Novel Behavioral Assay d&#39;enquêter sur les réponses gustatifs de l&#39;individu, Librement-mobiles Bumble Bees (<em&gt; Bombus terrestris</em&gt;)

Generalist pollinators like the buff-tailed bumble bee, Bombus terrestris, encounter both nutrients and toxins in the floral nectar they collect from ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees (Bombus terrestris)

8.7K vues.  Newcastle University. A novel behavioral assay is described for investigating the short term gustatory responses of the mouthparts of freely-moving bumble bees (Bombus terrestris) toward nutrients and toxins in solution. 

Vidéo: A Novel Behavioral Assay to Investigate Gustatory Responses of Individual, Freely-moving Bumble Bees Bombus terrestris

Proboscis Extension Response (PER) Assay in Drosophila

Proboscis extension response (PER) is a taste behavior assay that has been used in flies as well as in honeybees.
On the surface of the fly's mouth (labellum), there are hair-like structures called sensilla which houses taste neurons. When an attractive substance makes contact to the labellum, the fly extends its proboscis to consume the material. Proboscis Extension Response (PER) assay measures this taste behavior response, and it is a useful method to learn about food preferences in a single fly. Solutions of various sugars, such as sucrose, glucose and fructose, are very attractive to the fly. The effect of aversive substances can also be tested as reduction of PER when mixed in a sweet solution.Despite the simplicity of the basic procedure, there are many things that can prevent it from working. One of the factors that requires attention is the fly's responsive state. The required starvation time to bring the fly to the proper responsive state varies drastically from 36 to 72 hours. We established a series of controls to evaluate the fly's state and which allows screening out of non-responsive or hyper-responsive individual animals. Another important factor is the impact level and the position of the contact to the labellum, which would be difficult to describe by words. This video presentation demonstrates all these together with several other improvements that would increase the reproducibility of this method.

Proboscis Extension Response PER Assay in Drosophila

Proboscis extension response or PER is a taste behavior assay that has been used in flies as well as in honeybees. When the proboscis makes contact with an attractive substance, the fly extends its proboscis to consume the substance. Solutions of various sugars are very attractive to the fly.

Extension Proboscis Réponse (PER) Dosage de la drosophile

Proboscis extension response (PER) is a taste behavior assay that has been used in flies as well as in honeybees.
On the surface of the fly's mouth ...

Recherche

Biologie

Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees (Apis mellifera)

Honeybees (Apis mellifera) are well known for their communication and orientation skills and for their impressive learning capability1,2. Because the survival of a honeybee colony depends on the exploitation of food sources, forager bees learn and memorize variable flower sites as well as their profitability. Forager bees can be easily trained in natural settings where they forage at a feeding site and learn the related signals such as odor or color. Appetitive associative learning can also be studied under controlled conditions in the laboratory by conditioning the proboscis extension response (PER) of individually harnessed honeybees3,4. This learning paradigm enables the study of the neuronal and molecular mechanisms that underlie learning and memory formation in a simple and highly reliable way5-12. A behavioral pharmacology approach is used to study molecular mechanisms. Drugs are injected systemically to interfere with the function of specific molecules during or after learning and memory formation13-16.
Here we demonstrate how to train harnessed honeybees in PER conditioning and how to apply drugs systemically by injection into the bee flight muscle.

Behavioural Pharmacology in Classical Conditioning of the Proboscis Extension Response in Honeybees Apis mellifera

We demonstrate how to implement a behavioral pharmacology method in an appetitive olfactory conditioning paradigm in honeybees (Apis mellifera) by systemic application of drugs. This method allows investigation of the mechanisms underlying learning and memory formation in a simple and reliable way.

Pharmacologie comportementale dans le conditionnement classique de la réponse Extension Proboscis chez les abeilles ( Apis mellifera)

Honeybees (Apis mellifera) are well known for their communication and orientation skills and for their impressive learning capability1,2. Because the ...

Neurosciences

Tactile Conditioning And Movement Analysis Of Antennal Sampling Strategies In Honey Bees (Apis mellifera L.)

Honey bees (Apis mellifera L.) are eusocial insects and well known for their complex division of labor and associative learning capability1, 2. The worker bees spend the first half of their life inside the dark hive, where they are nursing the larvae or building the regular hexagonal combs for food (e.g. pollen or nectar) and brood3. The antennae are extraordinary multisensory feelers and play a pivotal role in various tactile mediated tasks4, including hive building5 and pattern recognition6. Later in life, each single bee leaves the hive to forage for food. Then a bee has to learn to discriminate profitable food sources, memorize their location, and communicate it to its nest mates7. Bees use different floral signals like colors or odors7, 8, but also tactile cues from the petal surface9 to form multisensory memories of the food source. Under laboratory conditions, bees can be trained in an appetitive learning paradigm to discriminate tactile object features, such as edges or grooves with their antennae10, 11, 12, 13. This learning paradigm is closely related to the classical olfactory conditioning of the proboscis extension response (PER) in harnessed bees14. The advantage of the tactile learning paradigm in the laboratory is the possibility of combining behavioral experiments on learning with various physiological measurements, including the analysis of the antennal movement pattern.

Tactile Conditioning And Movement Analysis Of Antennal Sampling Strategies In Honey Bees Apis mellifera L.

In this protocol we show how to condition harnessed honey bees to tactile stimuli and introduce a 2D motion capture technique for analyzing the kinematics of fine-scale antennal sampling pattern.

Conditionnement tactile et d&#39;analyse des mouvements des stratégies d&#39;échantillonnage antennaires chez les abeilles (<em&gt; Apis mellifera</em&gt; L.)

Honey bees (Apis mellifera L.) are eusocial insects and well known for their complex division of labor and associative learning capability1, 2. The worker ...

Vertical T-maze Choice Assay for Arthropod Response to Odorants

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, various technologies are being developed as control tools. A subset of these tools focuses on modifying the behavior of arthropods by attraction or repulsion. Therefore, arthropods are often the focus of behavioral investigations. Various tools have been developed to measure arthropod behavior, including wind tunnels, flight mills, servospheres, and various types of olfactometers. The purpose of these tools is to measure insect or arachnid response to visual or more often olfactory cues. The vertical T-maze oflactometer described here measures choices performed by insects in response to attractants or repellents. It is a high throughput assay device that takes advantage of the positive phototaxis (attraction to light) and negative geotaxis (tendency to walk or fly upward) exhibited by many arthropods. The olfactometer consists of a 30 cm glass tube that is divided in half with a Teflon strip forming a T-maze. Each half serves as an arm of the olfactometer enabling the test subjects to make a choice between two potential odor fields in assays involving attractants. In assays involving repellents, lack of normal response to known attractants can also be measured as a third variable.

A vertical, T-maze olfactometer is described for assaying the behavioral response of arthropods. The olfactometer allows the experimenter to measure choices performed by test subjects when subjected to two potential odor fields. Both attraction to and repulsion from odorants can be measured with this device.

Vertical Test Choix labyrinthe en T pour la réponse aux arthropodes odorants

Given the economic importance of insects and arachnids as pests of agricultural crops, urban environments or as vectors of plant and human diseases, ...

RNAi-mediated Double Gene Knockdown and Gustatory Perception Measurement in Honey Bees (Apis mellifera)

This video demonstrates novel techniques of RNA interference (RNAi) which downregulate two genes simultaneously in honey bees using double-stranded RNA (dsRNA) injections. It also presents a protocol of proboscis extension response (PER) assay for measuring gustatory perception.	
	RNAi-mediated gene knockdown is an effective technique downregulating target gene expression. This technique is usually used for single gene manipulation, but it has limitations to detect interactions and joint effects between genes. In the first part of this video, we present two strategies to simultaneously knock down two genes (called double gene knockdown). We show both strategies are able to effectively suppress two genes, vitellogenin (vg) and ultraspiracle (usp), which are in a regulatory feedback loop. This double gene knockdown approach can be used to dissect interrelationships between genes and can be readily applied in different insect species.	
	The second part of this video is a demonstration of proboscis extension response (PER) assay in honey bees after the treatment of double gene knockdown. The PER assay is a standard test for measuring gustatory perception in honey bees, which is a key predictor for how fast a honey bee's behavioral maturation is. Greater gustatory perception of nest bees indicates increased behavioral development which is often associated with an earlier age at onset of foraging and foraging specialization in pollen. In addition, PER assay can be applied to identify metabolic states of satiation or hunger in honey bees. Finally, PER assay combined with pairing different odor stimuli for conditioning the bees is also widely used for learning and memory studies in honey bees.

RNAi-mediated Double Gene Knockdown and Gustatory Perception Measurement in Honey Bees Apis mellifera

In this protocol, we describe two strategies that simultaneously suppress two genes (double gene knockdown) in honey bees. Then we present how to use the proboscis extension response (PER) assay to study the effect of double gene knockdown on honey bee gustatory perception.

ARNi médiée double inactivation génique et de mesure de la perception gustative chez les abeilles (<em&gt; Apis mellifera</em&gt;)

This video demonstrates novel techniques of RNA  interference (RNAi) which downregulate two genes simultaneously in honey bees  using double-stranded RNA ...

A Single-fly Assay for Foraging Behavior in Drosophila

For many animals, hunger promotes changes in the olfactory system in a manner that facilitates the search for appropriate food sources. In this video article, we describe an automated assay to measure the effect of hunger or satiety on olfactory dependent food search behavior in the adult fruit fly Drosophila melanogaster. In a light-tight box illuminated by red light that is invisible to fruit flies, a camera linked to custom data acquisition software monitors the position of six flies simultaneously. Each fly is confined to walk in individual arenas containing a food odor at the center. The testing arenas rest on a porous floor that functions to prevent odor accumulation. Latency to locate the odor source, a metric that reflects olfactory sensitivity under different physiological states, is determined by software analysis. Here, we discuss the critical mechanics of running this behavioral paradigm and cover specific issues regarding fly loading, odor contamination, assay temperature, data quality, and statistical analysis.

A Single-fly Assay for Foraging Behavior in Drosophila

In this video article, we describe an automated assay to measure the effect of hunger or satiety on olfactory dependent food search behavior in the adult fruit fly Drosophila melanogaster.

Une simple mouche Essai de comportement alimentaire dans<em&gt; Drosophila</em

For many animals, hunger promotes changes in the olfactory system in a manner that facilitates the search for appropriate food sources. In this video ...

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

Un Protocole d&#39;intervention en Trompe d&#39;extension pour les enquêtes plasticité comportementale chez les insectes: application à la base, biomédicale et la recherche agricole

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

Testing Drosophila Olfaction with a Y-maze Assay

Detecting signals from the environment is essential for animals to ensure their survival. To this aim, they use environmental cues such as vision, mechanoreception, hearing, and chemoperception through taste, via direct contact or through olfaction, which represents the response to a volatile molecule acting at longer range. Volatile chemical molecules are very important signals for most animals in the detection of danger, a source of food, or to communicate between individuals. Drosophila melanogaster is one of the most common biological models for scientists to explore the cellular and molecular basis of olfaction. In order to highlight olfactory abilities of this small insect, we describe a modified choice protocol based on the Y-maze test classically used with mice. Data obtained with Y-mazes give valuable information to better understand how animals deal with their perpetually changing environment. We introduce a step-by-step protocol to study the impact of odorants on fly exploratory response using this Y-maze assay.

Testing Drosophila Olfaction with a Y-maze Assay

We present a choice test to reveal the influence of odorants on Drosophila behavior using a Y-maze assay.

Expérimentation<em&gt; Drosophila</em&gt; Olfaction avec un dosage labyrinthe en Y

Detecting signals from the environment is essential for animals to ensure their survival. To this aim, they use environmental cues such as vision, ...

Taste Preference Assay for Adult Drosophila

Olfactory and gustatory perception of the environment is vital for animal survival. The most obvious application of these chemosenses is to be able to distinguish good food sources from potentially dangerous food sources. Gustation requires physical contact with a chemical compound which is able to signal through taste receptors that are expressed on the surface of neurons. In insects, these gustatory neurons can be located across the animal's body allowing taste to play an important role in many different behaviors. Insects typically prefer compounds containing sugars, while compounds that are considered bitter tasting are avoided. Given the basic biological importance of taste, there is intense interest in understanding the molecular mechanisms underlying this sensory modality. We describe an adult Drosophila taste assay which reflects the preference of the animals for a given tastant compound. This assay may be applied to animals of any genetic background to examine the taste preference for a desired soluble compound.

Taste Preference Assay for Adult Drosophila

Taste is an important sensory process which facilitates attraction to beneficial substances and avoidance of toxic substances. This protocol describes a simple ingestion assay for determining Drosophila gustatory preference for a given chemical compound.

Goût préférence Essai pour adultes<em&gt; Drosophila</em

Olfactory and gustatory perception of the environment is vital for animal survival.  The most obvious application of these chemosenses is to be able to ...

SwarmSight: Real-time Tracking of Insect Antenna Movements and Proboscis Extension Reflex Using a Common Preparation and Conventional Hardware

Many scientifically and agriculturally important insects use antennae to detect the presence of volatile chemical compounds and extend their proboscis during feeding. The ability to rapidly obtain high-resolution measurements of natural antenna and proboscis movements and assess how they change in response to chemical, developmental, and genetic manipulations can aid the understanding of insect behavior. By extending our previous work on assessing aggregate insect swarm or animal group movements from natural and laboratory videos using the video analysis software SwarmSight, we developed a novel, free, and open-source software module, SwarmSight Appendage Tracking (SwarmSight.org) for frame-by-frame tracking of insect antenna and proboscis positions from conventional web camera videos using conventional computers. The software processes frames about 120 times faster than humans, performs at better than human accuracy, and, using 30 frames per second (fps) videos, can capture antennal dynamics up to 15 Hz. The software was used to track the antennal response of honey bees to two odors and found significant mean antennal retractions away from the odor source about 1 s after odor presentation. We observed antenna position density heat map cluster formation and cluster and mean angle dependence on odor concentration.

This protocol describes steps for using the novel software, SwarmSight, for frame-by-frame tracking of insect antenna and proboscis positions from conventional web camera videos using conventional computers. The free, open-source software processes frames about 120 times faster than humans and performs at better than human accuracy.

SwarmSight : Suivi en temps réel des mouvements de l’antenne insectes et trompe Extension réflexe à l’aide d’une préparation commune et matériel conventionnel

Many scientifically and agriculturally important insects use antennae to detect the presence of volatile chemical compounds and extend their proboscis ...

A Novel Behavioral Assay d'enquêter sur les réponses gustatifs de l'individu, Librement-mobiles Bumble Bees (

Résumé

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Chapitres dans cette vidéo

Extension Proboscis Réponse (PER) Dosage de la drosophile

Pharmacologie comportementale dans le conditionnement classique de la réponse Extension Proboscis chez les abeilles ( Apis mellifera)

Conditionnement tactile et d'analyse des mouvements des stratégies d'échantillonnage antennaires chez les abeilles (

Vertical Test Choix labyrinthe en T pour la réponse aux arthropodes odorants

ARNi médiée double inactivation génique et de mesure de la perception gustative chez les abeilles (

Une simple mouche Essai de comportement alimentaire dans

Un Protocole d'intervention en Trompe d'extension pour les enquêtes plasticité comportementale chez les insectes: application à la base, biomédicale et la recherche agricole

Expérimentation

Goût préférence Essai pour adultes

SwarmSight : Suivi en temps réel des mouvements de l’antenne insectes et trompe Extension réflexe à l’aide d’une préparation commune et matériel conventionnel