JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

סרטון זה מדגים שיטה, באמצעות סורק T קליני 3, לMR הדמיה משופר לעומת זאת, של ההשלכה החזותית העכבר הנאיבית ובמחקרי vivo חוזר על עצמו ואורך של ניוון עצב ראייה קשור עם פציעה למחוץ עצב ראייה חריפה וניוון עצב ראייה כרוני ב עכברים עקום החוצה (p50 KO).

Abstract

מערכת הראייה של המכרסמים כוללת תאי רשתית גנגליון והאקסונים שלהם היוצרים את עצב הראייה להיכנס למרכזי thalamic והמוח התיכונים, ותחזיות postsynaptic לקליפת המוח הראייתית. בהתבסס על המבנה שלה שונה אנטומיים ונגישות נוחה, זה הפך את המבנה המועדף ללימודים על הישרדות עצבית, התחדשות אקסון ופלסטיות הסינפטית. הפיתוחים אחרונים בתחום ההדמיה MR אפשרו להדמיה vivo של חלק retino-tectal של היטל זה באמצעות שיפור מנגן בתיווך ניגוד (ממר"י). כאן, אנו מציגים פרוטוקול ממר"י להמחשה של ההשלכה החזותית בעכברים, שבו החלטות (200 מיקרומטר) 3 יכולות להיות מושגות באמצעות 3 סורקי טסלה משותפים. אנו מדגימים כיצד הזרקת זגוגית של מינון יחיד של 15 nmol MnCl 2 מובילה לשיפור רווי של ההקרנה ללא פגע בתוך 24 שעות. עם יוצא מן הכלל של הרשתית, שינויים בעוצמת אות הם באופן עצמאישקע של גירוי חזותי בקנה אחד או הזדקנות פיזיולוגית. בנוסף, אנו ליישם את טכניקה לאורכים לפקח ניוון אקסון בתגובה לפציעת עצב ראייה חריפה, הפרדיגמה שבי Mn 2 + תחבורת מעצרים לחלוטין באתר הנגע. לעומת זאת, תחבורה + פעילה Mn 2 היא כמותית יחסי לקיומה, המספר, ופעילות חשמלית של סיבי האקסון. לניתוח מסוג זה, אנו מדגימים Mn 2 + קינטיקה תחבורה בדרך החזותית במודל של עכברים הטרנסגניים (p50 NF-κB KO) בו מוצגות ניוון ספונטני של חושי, כולל חזותיות, תחזיות. בעכברים אלו, ממר"י מציין מופחת אך לא עיכב Mn 2 + הובלה בהשוואה לעכברי סוג בר, ובכך חושפים את הסימנים של ליקויים מבניים ו / או תפקודיים על ידי מוטציות NF-κB.

לסיכום, ממר"י מגשר בנוחות במבחני vivo ולפרסם היסטולוגיה מורטם לcharacterizatiעל יושרה סיבי עצב והפעילות. זה שימושי מאוד עבור מחקרים ארוכי טווח על ניוון אקסון והתחדשות, וחקירות של עכברים שעברו מוטציה לפנוטיפים אמיתיים או מושרה.

Introduction

בהתבסס על מבנה נוירו אנטומיים החיובי שלה מערכת הראייה המכרסם מציעה אפשרויות ייחודיות כדי להעריך תרכובות תרופתי ויכולתם לתווך neuroprotection 1 או השפעות פרו משובי 2,3. יתר על כן, היא מאפשרת מחקרים על המאפיינים הפונקציונליים ונוירו האנטומי של מוטנטים עכבר, כפי שהודגם לאחרונה לעכברים חסרים את חלבון פיגומי presynaptic 4 בסון. יתר על כן, מגוון רחב של כלים משלימים מקנה נוסף שמציעה של תאים ברשתית גנגליון (RGC) ומספרי האקסון RGC, כמו גם פעילות RGC, למשל, על ידי electroretinography ובדיקות התנהגותיות, והנחישות של שחלופים בקליפת המוח על ידי הדמיה אופטית של אותות פנימיים. ההתפתחויות טכניות האחרונות במיקרוסקופ לייזר תאפשר בהדמיה באתרו של התחדשות RGC ידי דימות פלואורסצנטי רקמות העמוקה בדגימות הר שלמות של עצב ראייה (ON) ומוח. בhistolog זהגישת iCal, סליקת רקמת tetrahydrofuran מבוססת בשילוב עם מיקרוסקופ פלואורסצנטי גיליון האור מאפשרת רזולוציה של סיבים יחיד שמחדש להיכנס לON deafferented והדרכים אופטיות 5. בעוד טכניקות כזה עשויות להיות מעולה ברזולוציה וקביעת דפוסי צמיחה, הם לא יאפשר לניתוחים חוזרים ואורכים של אירועי צמיחה בודדים, שבעיקר הם רצויים להעריך את התהליך של התחדשות לטווח ארוך.

MRI ניגודיות משופרת כבר מועסק להדמיה פולשנית המינימלית של הקרנת retino-tectal בעכברים ובחולדות 6,7. זו יכולה להיות מושגת על ידי משלוח תוך עיני ישיר של יוני פאראמגנטיים (למשל, Mn 2 +) לתאי רשתית. כאנלוגי סידן, Mn 2 + הוא שולב somata RGC דרך ערוצי סידן תלוי מתח ומועברים באופן פעיל לאורך שלד תא אקסון של ON שלם ומערכת ראייה. בזמן שהוא מצטבר בגרעין המוחשל ההשלכה החזותית, כלומר הגרעין לרוחב הברכיתיים (LGN) וcolliculus מעולה (SC), התפשטות transsynaptic לקליפת הראייה העיקרית מופיעה זניחה 8,9, למרות שהיא עשויה להתרחש 10,11. תחת רצף MR, פאראמגנטיים Mn 2 + מרחיב ניגוד MR בעיקר על ידי קיצור T ספין סריג זמן רגיעה 1 12. כגון Mn 2 + משופר MRI (ממר"י) כבר מיושם בהצלחה במחקרים שונים נוירו אנטומיות ותפקודיים של חולדות, כוללים ההערכה של התחדשות אקסון והתנוונות לאחר פציעת ON 13,14, המיפוי האנטומי המדויק של 15 הקרנת retino-tectal , כמו גם קביעת מאפייני תחבורת אקסון לאחר טיפול תרופתי 16. החידודים אחרונים במינון, רעיל, וקינטיקה של פרוטוקולי MRI עצביים Mn 2 ספיגות והובלה +, כמו גם שיפור בהרחיבו את היישום שלה ללימודים במהונדסיםעכברים 9 באמצעות 3 סורקי טסלה בשימוש נפוץ בפרקטיקה קלינית 17.

כאן, אנו מציגים פרוטוקול ממר"י מתאים לאורכים בתחום ההדמיה vivo של הקרנת retino-tectal העכבר ומדגימים את תחולתה על ידי הערכת Mn 2 + שיפור אות תלוי בתנאי ניוון מוחיים נאיביים ושונים. הפרוטוקול שלנו שם דגש ספציפי על רכישת נתונים MR בשדה מתון 3 T מגנטי שהוא בדרך כלל נגיש יותר מסורקי חיה ייעודיים. בעכברים נאיביים, אנו ממחישים כיצד עוצמת אות בדרכי ספציפיות יכולה להיות משמעותי וreproducibly להיות מוגבר לאחר הזגוגית (ivit) Mn 2 + יישום. כמותית, Mn 2 + התפשטות לאורך ההקרנה החזותית מתרחשת באופן עצמאי של התהליך הנורמלי ההזדקנות (נמדד בין עכברים בן 3 ו26 חודש) וההגדלה היא עקשן לגירוי ויזואלי והסתגלות לחשכה. לעומת זאת, Mn 2 + העשרה במרכזי thalamic והמוח התיכונים היא פחתה הבא חריף על פגיעה למחוץ 18 כמו גם בעכברים עקום החוצה nfkb1 (p50 KO) הסובל ממות RGC אפופטוטיים ספונטני ועל ניוון 19. כך, בהרחבה לניתוח היסטולוגית קונבנציונלי, ניתוח ממר"י אורך של בעלי חיים בודדים מאפשר אפיון של קינטיקה הייחודית של תהליכי ניוון עצבי. זה צריך להיות שימושי עבור מחקרים על neuroprotection והתחדשות אקסון קשורים התערבויות תרופתיים או גנטיות.

Protocol

כל ההתערבויות בבעלי החיים בוצעו בהתאם לאמנה האירופית לטיפול בבעלי חיים ושימוש בחי מעבדה והצהרת ארוו לשימוש בבעלים חיים ברפואת עיניים וחזון מחקר. כל הניסויים אושרו על ידי ועדת האתיקה המקומית. ההליך של פגיעה בעכברים מתואר במקומות אחרים 9.

הזרקת 1. מנגן הזגוגית

  1. בצע HR Mn 2 + הזרקת 24 לפני MR לסרוק בעזרת עוזרו. להרדים את בעלי החיים על ידי זריקת intraperitoneal של פתרון 5% זקוקים לסם (420-450 מ"ג / קילוגרם משקל גוף בסטרילי PBS). להרדמה מקומית נוספת, להחיל טיפה אחת של conjuncain הנוזלי (0.4% hydrochloride oxybuprocaine) לקרנית לפני ניקור עיניים. להזריק 15 nmol Mn 2 + לכל עין להכין פתרון 2 מ"מ MnCl 7.5, למשל, על ידי דילול 1 ליטר של 1 פתרון 2 מניות M MnCl ב132 LH 2 </ Sub> O. טען 5 μl של הפתרון הסופי לתוך מזרק 5 μl המילטון מחובר למחט 34 G רכזת קטנה נשלפת (מחט RN).
  2. כאשר מתחיל עם עין ימין, מקם את העכבר צדדי עזב תחת מיקרוסקופ משקפת ועדינות פתוחה ולתקן את עין ימין בין האגודל והאצבע של יד שמאל. להרים את המזרק עם יד הימין שלך ולאחוז במחט הקרובה לקצה. ללנקב atraumatic של הנורה העין, הכנס בזהירות את המחט לתוך הגוף הזגוגי בהיקף infero-זמני כ 1 מ"מ דיסטלי לימבוס, ובכך חוסכים כלי scleral.
  3. בשלב בא, העוזר חל לאט הנפח הכולל של 2 μl תוך שליטה על הסולם של מזרק המילטון. במהלך הליך זה, לעקוב אחר מיקום מחט אופטימלי מתחת למיקרוסקופ ולמנוע ניקור של העדשה או שפיכה של הנוזל. שמור את המחט באופן סטטי מוכנסת ל30 שניות נוספות, ואז למשוך את זה לאט כדי למזער את הנוזלדליפה מאתר ההזרקה.
  4. לאורך כל ההליך, יש לנקוט באמצעי זהירות מיוחדת כדי למנוע לחץ בעין. כמו כן, להימנע מניסיונות קשים או רבים כדי לנקב את הנורה העין. מאז Mn 2 ספיגים לRGCs והובלה לאורך ON + כבר רווי ב15 nmol MnCl 2, זה ממזער וריאציות אות על ידי כרכי הזרקה מעט לא מדויקים. להגברת אות דו צדדית של ההשלכה החזותית, לחזור על הליך ההזרקה לעין השמאל.
  5. החל המכיל ofloxacin (3 מ"ג / מיליליטר) טיפות עיניים ומשחה המכיל פנטנול פעם אחת לאחר ההליך כדי למנוע זיהומים וייבוש של העין עיניות. להחזיר את העכברים לכלובים שלהם בתנאי דיור רגילים עד לתחילת סריקת MR.

2. הכנת בעלי החיים לבדיקת MRI

  1. להרדים את העכבר על ידי ממשל של תערובת גז isoflurane / חמצן 2% / 98%. הר את העכבר על בעל עכבר בעמדה כמעט אופקית, untwisted. InsERT אותו לסליל MR, אשר לאחר מכן מותאם בתוך סורק MRI. לפקח על נשימה וקצב לב על ידי מערכות מתאימות. לפרטים טכניים, ראה הרמן ואח' 20.
  2. במהלך בדיקת MRI, הרדמה אספקה ​​על ידי ניפוח מתמשך של תחילה 1.5% / 98.5% תערובת גז isoflurane / חמצן באמצעות מאייד מחובר למחזיק ראש העכבר על ידי צינור משולב. במהלך הסריקה, להתאים את העומק של הרדמה על פי הפרמטרים החיוניים שנרשמו (כלומר לכוון לקצב נשימה יציב של כ -40 נשימות לדקה). שימוש במכשיר חימום לשמור על טמפרטורת פני השטח הגוף היציבה בין 35 ו37 מעלות צלזיוס, כפי שהיא נמדדת על ידי חיישן תרמי מוצב באתר הבטן של העכבר. לפרטים טכניים, ראה הרמן ואח' 17.
  3. לאחר הסריקה, לשחרר את העכבר מהבעל ולספק לך חמצן טהור כדי להאיץ את ההתאוששות מן ההרדמה. בנוסף, לשמור על טמפרטורת הגוף יציב על ידי שימושמקור חימום אור אדום.

3. MRI פרוטוקול

  1. פרוטוקול תוקף לסורק טסלה 3 מצוידים בסליל ייעודי, יחס אות לרעש יעיל, קטן בבעלי חיים (סליל יץ מקוטב ליניארי) בתחום יעיל מבט של 35 מ"מ × 38 קוטר מ"מ. להפעיל את הסליל במצב שידור-מקבל.
  2. עם בעלי החיים במצב הסופי שלו, להתאים את המנגינה והתאמה של הסליל בעזרת מנתח תדר. באופן ידני להתאים את מתח ייחוס משדר וזרמי הפחית כדי לייעל את ההומוגניות תמונה ואיכות.
  3. רכישת T 1 תמונות 2D TSE משוקללות עם רזולוציה של 0.5 מ"מ × 0.5 מ"מ × 2 מ"מ בתצוגת sagittal ורוחבי לתכנון. שימוש בסריקות MR מתכננת, לרכוש את תמונות MEMR בכיוון מדידת העטרה, לסובב כדי להיות מקביל לראש של החיה עם קידוד שלב לאורך הכיוון של השמאל וימין. כדי למזער את זמן רכישה, להשתמש בשדה מלבני של תצוגה מותאמת לממדי ראש בפועל. מעסיק רצף מפונק FLASH 3D (VIBE 3D) באמצעות הפרמטרים הבאים: מטריצת בסיס 256, שדה הראייה 54 מ"מ × 50.65 מ"מ × 14.08 מ"מ, באמצעות 93.8% שדה מלבני של נוף בכיוון לקודד שלב, ו128 פרוסות 0.11 מ"מ עובי פרוס עם רזולוציה הפרוסה מוגדר 61%.
  4. הפעל את אינטרפולציה במטוס כדי ליצור תמונות סופיות עם 512 × 480 × 128, מתן ברזולוציה אפקטיבית של 0.21 מ"מ × 0.21 מ"מ × 0.18 מ"מ (0.1 מ"מ × 0.1 מ"מ × 0.09 מ"מ אינטרפולציה), זמן הד T E = 6.51 אלפיות שנייה, R T זמן החזרה = 16 אלפיות = זווית, רוחב פס 160 הרץ / px, להעיף = 22 °. תחול שני ממוצעים ושלוש חזרות כדי להשיג זמן רכישה כולל (T) של כ 30 דקות.

4. MRI ניתוח נתונים

  1. לנתח את הנתונים באמצעות fastView syngo תוכנה. להגברת אות כמותיים, בחר אזורים מוגדרים oעניין F בהקלטות MRI מישוריים 2D ולקבוע עוצמות אות (SI) של המבנה המשופר (SI ממר"י), רקע רקמה (backgr SI), וסטיית התקן של הרעש (N-SD). במידת צורך, השתמש באטלס מוח עכבר כדי להקל על התמצאות נוירו אנטומי לLGN ומבני SC. לחשב את יחס ניגודיות לרעש (CNR) באמצעות הנוסחה:
  2. CNR = (SI ממר"י - backgr SI) / SD N
  3. לכמת שלוש תמונות רצופות לחישוב CNR ממוצע עבור כל דגימה. בחיות שהוחדרו בילטרלי, לנתח כל חצי הכדור באופן עצמאי.
  4. לתיאור של תמונות אופקיים, העטרה ועל sagittal, לחשב שחזורי multiplanar מערכת נתוני 3D MRI המקורית. עיבוד תמונות אלה אינן מומלצים לניתוח כמוני. כדי ליצור שחזורי אנימציה 3D (תחזיות בעוצמה מקסימלית, MIPS) של retino-Tectal הקרנה, להשתמש במודול תוכנה שלאחר עיבוד אנגיוגרפיה.

5. Mn 2 + Autometallography (TIMM מכתים)

  1. עבור מכתים TIMM של 2 מבנים במוח + לייחס Mn הבא ממר"י, להזריק מינון של 15-150 nmol Mn 2 + ivit 24 שעות לפני הדמיה.
  2. לאחר MR סריקה, ינקב חיות עם 30 מיליליטר 0.325% קרים כקרח S Na 2 ב PBS (pH 7.4). לנתח רשתיות ודגימות הקפאה בסעיף קפוא.
  3. לחתוך קטעים רציפים, קו המשווה של 15 עובי מיקרומטר על cryotome.
  4. לבצע מכתים TIMM 21 בהעדר מקבע וcryoprotection פי Angenstein et 22 אל.

6. ניתוח סטטיסטי

ביצוע ניתוחים סטטיסטיים באמצעות מבחן t של הסטודנט להשוואות אחד, ואחריו post hoc ANOVA. הנתונים מוצגים כשגיאה ממוצעת ± סטנדרטי. מספרי N בודדיםניתנו בנפרד לכל ניסוי. תוצאות להגיע P ≤ 0.05 נחשבות משמעותיות מבחינה סטטיסטית (P ≤ 0.05, *, P ≤ 0.01, **, P ≤ 0.001, ***).

תוצאות

היכולת של טכניקת הדמיה זה להעריך את החיוניות ואת הפונקציונליות של ההשלכה החזותית מדויק מסתמכת על יישום מדויק של Mn 2 + במינון רעיל לגוף הזגוגי וספיגתו על ידי RGCs. הנחה גדולה זה נבדק בתרשים 1, שבו Mn 2 + ספיגה ספציפית שכבה מודגמת על ידי autometallography (מכתים TIM...

Discussion

ממר"י של מערכת הראייה משתרע טכניקות הנוירוביולוגי קונבנציונליות להערכה פונקציונליות בתנאים נאיביים ופתולוגיים. מלבד לספק תובנה ייחודית על היושרה של מערכת סיבים של מערכת העצבים המרכזית מבודדת, ממר"י ניתן להשלים בקלות עם בדיקות התנהגותיות, למשל, אופטומטרי?...

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgements

AK נתמך על ידי קרן אופנהיים וRH נתמך על ידי קרן Velux. אנו מודים אני Krumbein לBuder טכני וק לתמיכה היסטולוגית, וג' גולדשמידט (לייבניץ מכון לנוירוביולוגיה, מגדבורג, גרמניה) עבור ייעוץ טכני על מכתים TIMM.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Manganese (II) chloride solution 1 MSigma Aldrich, Taufkirchen, GermanyM1787MEMRI contrast reagent
ConjuncainDr. Mann Pharma, Berlin, GermanyPZN 76176660.4% oxybuprocaine hydrochloride
Floxal eye dropsDr. Mann Pharma, Berlin, GermanyPZN 38209273 mg/ml ofloxacin
Ointment panthenolJenapharm, Jena, GermanyPZN 3524531
Chloral hydrate Sigma Aldrich, Taufkirchen, GermanyC8383420-450 mg/kg body weight
Hamilton syringe Hamilton Company, Reno, NV, USA7634-01SYR 5 µl, 75 RN, no NDL
34 G needle (34/35/pst4/tapN)Hamilton Company, Reno, NV, USA207434/00removable needle RN, 34 G, length 38.1 mm, point style 4
Binocular Stemi-2000Zeiss, Oberkochen, Germany
3 T MRI scanner Magnetom TIM TrioSiemens Medical Solutions, Erlangen, Germany
Rat head coilDoty Scientific Inc., Columbia, SC, USA
Mouse holdercustom made
Red light lamp
Frozen section medium NEG-50Thermo Fisher Scientific, Schwerte, Germany6502tissue embedding for cryo-sections
Sodium dihydrogen phosphate monohydrate (NaH2PO4·H2O)Merck, Darmstadt, Germany106346for sulfide perfusion
Sodium sulfide nonahydrate (Na2S·9H2O)Sigma Aldrich, Taufkirchen, Germany208043
Gum arabicRoth, Arlesheim, Switzerland4159for TIMM staining
Hydroquinone (C6H6O2)Roth, Arlesheim, Switzerland3586
Citric acid (C6H8O7)Roth, Arlesheim, Switzerland6490
Tri-sodium citrate dihydrate (C6H5Na3O7·2H2O)Merck, Darmstadt, Germany106448
Silver nitrate (AgNO3)Roth, Arlesheim, Switzerland7908

References

  1. Kretz, A., et al. Simvastatin promotes heat shock protein 27 expression and Akt activation in the rat retina and protects axotomized retinal ganglion cells in vivo. Neurobiol Dis. 21, 421-430 (2006).
  2. Lima, S., et al. Combinatorial therapy stimulates long-distance regeneration, target reinnervation, and partial recovery of vision after optic nerve injury in mice. Int Rev Neurobiol. 106, 153-172 (2012).
  3. Lima, S., et al. Full-length axon regeneration in the adult mouse optic nerve and partial recovery of simple visual behaviors. Proc Natl Acad Sci U S A. 109, 9149-9154 (2012).
  4. Goetze, B., et al. Vision and visual cortical maps in mice with a photoreceptor synaptopathy: reduced but robust visual capabilities in the absence of synaptic ribbons. Neuroimage. 49, 1622-1631 (2010).
  5. Luo, X., et al. Three-dimensional evaluation of retinal ganglion cell axon regeneration and pathfinding in whole mouse tissue after injury. Exp Neurol. 247, 653-662 (2013).
  6. Pautler, R. G., et al. In vivo neuronal tract tracing using manganese-enhanced magnetic resonance imaging. Magn Reson Med. 40, 740-748 (1998).
  7. Watanabe, T., et al. Mapping of retinal projections in the living rat using high-resolution 3D gradient-echo MRI with Mn2+-induced contrast. Magn Reson Med. 46, 424-429 (2001).
  8. Pautler, R. G. In vivo, trans-synaptic tract-tracing utilizing manganese-enhanced magnetic resonance imaging (MEMRI). NMR biomed. 17, 595-601 (2004).
  9. Haenold, R., et al. Magnetic resonance imaging of the mouse visual pathway for in vivo studies of degeneration and regeneration in the CNS. Neuroimage. 59, 363-376 (2012).
  10. Lindsey, J. D., et al. Magnetic resonance imaging of the visual system in vivo: transsynaptic illumination of V1 and V2 visual cortex. Neuroimage. 34, 1619-1626 (2007).
  11. Bearer, E. L., et al. Role of neuronal activity and kinesin on tract tracing by manganese-enhanced MRI (MEMRI). Neuroimage. 37, S37-S46 (2007).
  12. Mendonca-Dias, M. H., et al. Paramagnetic contrast agents in nuclear magnetic resonance medical imaging. Semin Nucl Med. 13, 364-376 (1983).
  13. Thuen, M., et al. Manganese-enhanced MRI of the optic visual pathway and optic nerve injury in adult rats. J Magn Reson Imaging. 22, 492-500 (2005).
  14. Sandvig, I., et al. In vivo MRI of olfactory ensheathing cell grafts and regenerating axons in transplant mediated repair of the adult rat optic nerve. NMR biomed. 25, 620-631 (2012).
  15. Chan, K. C., et al. In vivo retinotopic mapping of superior colliculus using manganese-enhanced magnetic resonance imaging. Neuroimage. 54, 389-395 (2011).
  16. Chan, K. C., et al. In vivo chromium-enhanced MRI of the retina. Magn Reson Med. 68, 1202-1210 (2012).
  17. Herrmann, K. H., et al. Possibilities and limitations for high resolution small animal MRI on a clinical whole-body 3T scanner. Magma. 25, 233-244 (2012).
  18. Villegas-Perez, M. P., et al. Rapid and protracted phases of retinal ganglion cell loss follow axotomy in the optic nerve of adult rats. J Neurobiol. 24, 23-36 (1993).
  19. Takahashi, Y., et al. Development of spontaneous optic neuropathy in NF-κΒ50-deficient mice: requirement for NF-κΒp50 in ganglion cell survival. Neuropathol Appl Neurobiol. 33, 692-705 (2007).
  20. Herrmann, K. H. P., et al. MRI compatible small animal monitoring and triggering system for whole body scanners. Z Med Phys. 24, 55-64 (2013).
  21. Danscher, G., Zimmer, J. An improved Timm sulphide silver method for light and electron microscopic localization of heavy metals in biological tissues. Histochemistry. 55, 27-40 (1978).
  22. Angenstein, F., et al. Manganese-enhanced MRI reveals structural and functional changes in the cortex of Bassoon mutant mice. Cereb cortex. 17, 28-36 (2007).
  23. Thuen, M., et al. Manganese-enhanced MRI of the rat visual pathway: acute neural toxicity, contrast enhancement, axon resolution, axonal transport, and clearance of Mn(2). J Magn Reson Imaging. 28, 855-865 (2008).
  24. Lehmann, K., et al. Vision and visual plasticity in ageing mice. Restor Neurol Neurosci. 30, 161-178 (2012).
  25. Takeda, A., et al. Manganese transport in the neural circuit of rat CNS. Brain Res Bull. 45, 149-152 (1998).
  26. Nairismagi, J., et al. Manganese-enhanced magnetic resonance imaging of mossy fiber plasticity in vivo. Neuroimage. 30, 130-135 (2006).
  27. Smith, K. D., et al. In vivo axonal transport rates decrease in a mouse model of Alzheimer's disease. Neuroimage. 35, 1401-1408 (2007).
  28. Berkowitz, B. A., et al. Noninvasive and simultaneous imaging of layer-specific retinal functional adaptation by manganese-enhanced MRI. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 2668-2674 (2006).
  29. Schnapf, J. L. B. D. A. How photoreceptor cells respond to light. Sci. Am. 256 (8), (1987).
  30. Yu, X., et al. In vivo auditory brain mapping in mice with Mn-enhanced MRI. Nat Neurosci. 8, 961-968 (2005).
  31. Sun, S. W., et al. Noninvasive topical loading for manganese-enhanced MRI of the mouse visual system. Invest Ophthalmol Vis Sci. 52, 3914-3920 (2011).
  32. Sun, S. W., et al. Impact of repeated topical-loaded manganese-enhanced MRI on the mouse visual system. Invest Ophthalmol Vis Sci. 53, 4699-4709 (2012).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience89MRIretino tectalNF B

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved