JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Here, we describe the development and application of a gel contraction assay for evaluating contractile function in mesenchymal cells that underwent epithelial-mesenchymal transition.

Abstract

Fibrosis is often involved in the pathogenesis of various chronic progressive diseases such as interstitial pulmonary disease. Pathological hallmark is the formation of fibroblastic foci, which is associated with the disease severity. Mesenchymal cells consisting of the fibroblastic foci are proposed to be derived from several cell sources, including originally resident intrapulmonary fibroblasts and circulating fibrocytes from bone marrow. Recently, mesenchymal cells that underwent epithelial-mesenchymal transition (EMT) have been also supposed to contribute to the pathogenesis of fibrosis. In addition, EMT can be induced by transforming growth factor β, and EMT can be enhanced by pro-inflammatory cytokines like tumor necrosis factor α. The gel contraction assay is an ideal in vitro model for the evaluation of contractility, which is one of the characteristic functions of fibroblasts and contributes to wound repair and fibrosis. Here, the development of a gel contraction assay is demonstrated for evaluating contractile ability of mesenchymal cells that underwent EMT.

Introduction

פיברוזיס מעורב בפתוגנזה של מחלות פרוגרסיבי שונות כרוניות, כגון מחלת ריאות אינטרסטיציאלית, סיסטיק לב, שחמת כבד, אי ספיקת כליות סופנית, טרשת מערכתית, ומחלות אוטואימוניות מחלה 1. בין מחלות ריאה אינטרסטיציאלית פיברוזיס ריאתי אידיופתי (IPF) הוא מחלה מתקדמת כרונית ומראה פרוגנוזה גרועה. סימן היכר הפתולוגי של IPF הוא הפיתוח של מוקדי fibroblastic המורכבים פיברובלסטים מופעל myofibroblasts המשויכים הפרוגנוזה. מקורותיה של פיברובלסטים ריאתי כאלו מוצעות לנבוע מכמה תאים mesenchymal, כולל fibroblasts ריאות תושב במקור ומדחסים fibrocytes ממח העצם. לאחרונה, מעבר mesenchymal-אפיתל (EMT) הוצע להיות מזוהה עם ההיווצרות של תאי mesenchymal 2, ולתרום בפתוגנזה של פרעות fibrotic.

הוא חשב כי EMT משחק תפקידים חשובים בתהליך של התפתחות עוברת, ריפוי פצעים, והתקדמות של סרטן, כולל חדירת גידול וגרור 3. בעקבות התהליך של EMT, תאי אפיתל להשיג את היכולת של תאי mesenchymal ידי אובדן של סמנים אפיתל, כגון E-cadherin, ועל ידי ביטוי של סמני mesenchymal, כגון vimentin, יקטין שריר α-חלקה (SMA) 4,5. מחקרים קודמים הראו הראיות כי תהליך EMT כבר קשור להתפתחות של סיסטיק רקמות הכליה 6 וריאות 7. בנוסף, דלקת כרונית מקדמת fibrotic מחלת 8; יתר על כן, ציטוקינים דלקתיים כגון חבר superfamily גורם גידול נמק 14 (TNFSF14; LIGHT), tumor necrosis factor (TNF) -α, ו- interleukin-1β, הוכחו לשפר EMT 9-12.

assay התכווצות ג'ל קולגן, assay התכווצות תא מבוסס קולגן, אשר פיברובלסטים מוטבעים מהסוג Iקולגן ג'ל תלת ממדית, הוא אידיאל במודל חוץ גופית לצורך הערכה של התכווצות. התכווצות היא אחת הפונקציה האופיינית של פיברובלסטים ותורמת תיקון פצע נורמלי סיסטיק 13. ב assay זה, הוא חשב כי את הקובץ המצורף של פיברובלסטים Type I קולגן באמצעות מנגנוני integrin תלוי אמור לייצר מתח מכאני בתנאים מסוימים, וכתוצאה מכך להוביל להתכווצות רקמות.

כאן, בפיתוח של assay התכווצות ג'ל מדווח להיות מותאם על מנת להעריך את רכישת פונקצית התכווצות בתאים שעברו EMT. דו"ח זה מדגים כי assay שונה זו מתאימה להערכת contractility בתאי mesenchymal שעברו EMT.

Protocol

תכשירי 1. והתרבות של תאי אפיתל הריאות

  1. תאי אפיתל ריאה אנושית A549 תרבות (שורת תאים חסיד) ב בינוני הנשר שונה של Dulbecco (DMEM) בתוספת 10% בסרום שור העובר (FBS), 100 IU / פניצילין מ"ל, 100 מיקרוגרם / מ"ל ​​סטרפטומיצין.
  2. סר וזורק תקשורת תרבית תאים מן מנת התרבות, ולשטוף פעם עם 5 - 10 מיליליטר של בופר פוספט (PBS). לאחר הכביסה, מיד לשאוב PBS.
  3. הוסף 2 מ"ל טריפסין / חומצה ethylenediaminetetraacetic (EDTA) (0.05%) ו לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 דקות 3.
  4. אוסף את התא המנותק צינורות צנטריפוגה המכילים בינוני תרבית תאים, צנטריפוגה הצינורות ב RT במשך 4 דקות ב g 150 ×.
  5. Resuspend התאים גלולה ב 2 מ"ל של מדיום תרבית תאים ולהסיר מדגם עבור ספירת תאים. ספירת התאים באמצעות hemocytometer עם כתם כחול Trypan לבדוק כדאיות התא.
  6. תאי A549 זרע על10 ס"מ קלקר צלחות בצפיפות של 0.5 - 1.0 × 10 6 תאים / תבשיל עם 10 מ"ל של מדיום עבור assay התכווצות ג'ל. זרעים התאים על 6 צלחות קלקר גם בצפיפות של 0.5 - 1.0 × 10 5 תאים / היטב עם 2 מ"ל של מדיום לאישור EMT. דגירת התאים ב 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 למשך 24 שעות.

נוהל EMT 2.

  1. הוסף 10 μl של-β1 TGF (5 מיקרוגרם / מ"ל) ו -10 μl של-α TNF (10 מיקרוגרם / מ"ל) לצלחת עבור assay התכווצות ג'ל זורעים בשלב 1.6. הוסף 2 μl של-β1 TGF (5 מיקרוגרם / מ"ל) ו -2 μl של-α TNF (10 מיקרוגרם / מ"ל) לצלחת לאישור EMT זורעים בשלב 1.6. לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 למשך 48 שעות.

3. אישור של נוהל EMT ידי PCR ו המערבי סופג

  1. אשר שינוי במורפולוגיה (מאבן דמוי חלוק כדי ציר צורה) של תאים שטופלו באמצעות מיקרוסקופ לעומת שלב.
    הערה: נורםיש תאי A549 אל חלוק אבן דמוית ומראה בצורה משולש היא מאפיין של תאי אפיתל, אך לאחר גירוי עם-β1 TGF ו-α TNF, התאים להופיע ארוכים ציר בצורה דומה תאי mesenchymal 14,15.
  2. חישוב הביטוי של סמן אפיתל, כגון E-cadherin, וסמנים mesenchymal כגון N-cadherin, vimentin, אקטין שריר α-חלקה באמצעות PCR או המערבי סופג.
    1. חלץ RNA הכולל את התאים באמצעות ערכת חילוץ RNA 16 לסנתז cDNA באמצעות transcriptase הפוכה 17 על פי פרוטוקול של היצרן.
    2. למדוד ביטוי של רמות ה- mRNA באמצעות מערכת בזמן אמת PCR 18 וערכת PCR לצבוע cyanine monomeric פי הוראות היצרנים. פריימרים ספציפיים עבור GAPDH (glyceraldehyde dehydrogenase 3-פוספט), ACTA2 (אלפא-אקטין 2), CDH1 (cadherin-1; E-cadherin), ו VIM (vimentin) מוצגים בלוח 1 .
    3. Lyse את התאים באמצעות חיץ תמוגה (טבלה 2) תמיסה המכילה קוקטייל מעכב 1% פרוטאז. למדוד את כל ריכוזי חלבון מדגם באמצעות ערכת assay חלבון 19,20, ולהחיל אותן כמויות של חלבון ג'ל polyacrylamide.
      1. בצע-ג'ל אלקטרופורזה SDS והעביר חצי יבש של חלבוני קרום PVDF 21. דגירה הממברנה עם נוגדנים ראשוניים בחסימת המאגר עבור 1 - שעות 2. לאחר דגירה, לשטוף פעמים הממברנה עם חיץ לשטוף דגירת hr קרום 1 עם נוגדנים שניים.
        הערה: עיין חומרים / ציוד שולחן עבור נוגדנים דילולים שימוש במחקרים אלה. ראה טבלה 2 עבור רכיבי חסימת חיץ.
      2. לשטוף את הממברנה עם חיץ לשטוף פעמיים. צלם תמונות של הקרום עם ערכת זיהוי המערבית סופגת 22 באמצעות 11,23 מצלמת CCD קר.

4. Assay התכווצות ג'ל EMT הערכה

  1. לשאוב התקשורת מותנה מספינת תרבית תאים, ולשטוף היטב עם 5 - 10 מ"ל של PBS להסיר תאים מתים. לאחר הכביסה, מיד לשאוב PBS.
  2. הוסף 2 מ"ל של 0.05% טריפסין / EDTA ו לדגור על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 דקות 3.
  3. אוספים את התאים מנותקת צינורות צנטריפוגה המכיל DMEM בתוספת מעכב טריפסין (1 מ"ג / מ"ל), צנטריפוגה צינורות ב RT במשך 4 דקות ב 150 × גרם.
  4. מערבבים סוג 1 ג'ל קולגן עם מים מזוקקים, ו -4 × מרוכזים DMEM להתאים את הכרכים כדי להשיג ריכוז הקולגן של 1.75 מ"ג / מ"ל, 1 × ריכוז DMEM. הקפד לשמור המדיום ג'ל על הקרח במהלך שלב זה.
    הערה: כדי להפוך 6 מ"ל של מדיום ג'ל, ומערבבים היטב 3.5 מ"ל של ג'ל קולגן מסוג 1 (3 מ"ג / מ"ל), 1.5 מ"ל של 4 × מרוכזים DMEM, ו 1ml של מים מזוקקים.
  5. Resuspend התא גלולה ב 500 μl של PBS ולהסיר מדגם עבור ספירת תאים. לספורמספר התאים באמצעות hemocytometer עם כתם כחול trypan לבדוק כדאיות התא.
  6. הוסף בינוני ג'ל להתאים את הכרכים להשיג צפיפות התאים של 3.0 × 10 5 תאים / טוב (6.0 × 10 5 תאים / מ"ל) בעדינות אך במהירות לערבב אותו על ידי pipetting ללא gelation.
  7. לוותר 0.5 מיליליטר של התערובת לבאר כל צלחת 24 גם שאינם מטופלים במהירות ובזהירות לעשות בצורה גלילית מסודרת. היזהר שלא לאפשר כל בועות אוויר לזהם את הג'לים (איור 1 א).
    הערה: בינוני ג'ל המכיל את התאים הוא צמיג ויכול ג'ל טופס סהר צורה בקלות הבאר.
  8. דגירה את הצלחת במשך 15 דקות בתוך חממת תא ב 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 ולחות 95% להגליד לחלוטין.
  9. ניתוק ג'לים מהצלחת בלי לשבור על ידי הזזת מרית מעוקרת באופן לצייר היקף בכיוון אחד. בעזרת מרית, להעביר את הג'לים בעדינות תרבות מנות 60 מ"מ רקמההמכיל 5 מ"ל של FBS% DMEM / 1 עם או בלי-β1 TGF (5 ng / ml) ו-α TNF (10 ng / ml).
  10. נער בעדינות את הכלים כדי להבטיח ג'לים צף על המדיום. מדגירים את תא חממה על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2 ולחות 95%.

מדידת 5. ג'ל גודל

  1. מדוד את גודל ג'ל קולגן לאחר 0, 24, 48, ו -72 שעות באמצעות מערכת ניתוח תמונה.
    1. הפעל את מערכת תיעוד ג'ל (איור 2 א), ולשים מנות לתוך ארון מגן אור. ואז מסירים את המכסה של הצלחות בארון הכלים.
    2. פתח את התוכנה לניתוח ג'ל קשורה. לחץ על "כפתור רכישת תמונה" בבר-התפריט כדי להציג את התמונה של הג'לים בקבינט. לאחר מכן, לחץ "לרכוש" בשורת התפריטים כדי לצלם את ג'לים (איור 2 ב).
    3. לחץ על "כפתור זיהוי" בשורת התפריטים (איור 2 ג) ולהתאים באזור המדידה (i עיגול צהובn איור 2C) על ידי גרירת העכבר. לאחר מכן, לחץ על "איתור אוטומטי כפתור" בשורת התפריטים (ראה כפתור באיור 2D). התוכנה מזהה אוטומטית את הג'לים מראים מפת חום (איור 2 ד).
    4. לחץ "אישור" כדי לחלץ את קווי המתאר של ג'ל על ידי עיבוד תמונה ולחשב אזורים המוקפים המתאר (האיור 2E). אחרי השטח חושב, באזור המחושב מוצג חלון מוקפץ נפרד.
      הערה: אם את הג'לים חופפים זה לזה במהלך ההדמיה, להעביר ג'לים בעדינות בעזרת קצה פיפטה סטרילית.

תוצאות

במהלך EMT, תאי אפיתל לאבד סמנים אפיתל, כמו E-cadherin, ולהשיג ביטוי של סמנים mesenchymal, כגון vimentin ו α-שריר חלק אקטין 4,5. דגירה של תאי אפיתל ריאה האנושית A549 עם-β1 TGF ו- TNF-α גורמת EMT. הופעתו של תאי A549 נורמלים הם אבן חלוק כמו צורה וצורה משולשת היא מאפיין של תאי אפי...

Discussion

הפרוטוקול שפותח במחקר זה כולל שני שלבים. השלב הראשון מתבצע על מנת לגרום EMT, ואילו השלב השני הוא assay התכווצות ג'ל. מאז חשוב לאשר תאים עברו EMT, שלב 2 מספק השלמה מצוינת שינויי ביטוי מורפולוגיים גן. מחקרים קודמים הראו כי EMT של תאי A549 הושר על ידי TGF-β1 רק 24; עם זאת, כפי שכב?...

Disclosures

יש המחברים אין ניגודי אינטרסים לחשוף.

Acknowledgements

We thank Dr. Tadashi Koyama for technical help. This work was supported in part by JSPS KAKENHI Grant Numbers 23249045, 15K09211, 15K19172; a grant to the Respiratory Failure Research Group from the Ministry of Health, Labour and Welfare, Japan; a grant for research on allergic disease and immunology, Japan.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
DMEMsigma aldrich11965-092For A549 medium
FBSGIBCO10437
Transforming Growth Factor-β1, Human, recombinantWako Laboratory chemicals209-16544
Recombinant Human TNF-αR&D systems210-TA/CF
E-Cadherin (24E10) Rabbit mAbCell Signaling Technology#31951:3,000 dilution
Vimentin (D21H3) Rabbit mAbCell Signaling Technology#57411:3,000 dilution
Anti-α-Tubulin antibodysigma aldrichT90261:10,000 dilution
Monoclonal Anti-Actin, α-Smooth Muscle antibody sigma aldrichA52281:10,000 dilution
Anti-N-cadherin antibodyBD Transduction Laboratories#6109201:1,000 dilution
Anti-Mouse IgG, HRP-Linked Whole Ab Sheep (secondary antibody)GE HealthcareNA931-100UL1:20,000 dilution
Anti-Rabbit IgG, HRP-Linked Whole Ab Donkey (secondary antibody)GE HealthcareNA934-100UL1:20,000 dilution
Blocking reagentGE HealthcareRPN4182% in TBS-T
6 Well Clear Flat Bottom TC-Treated Multiwell Cell Culture Plate, with Lidcorning#353046
100 mm Cell culture dishTPP#93100
DMEM, powderlife technologies12100-046For 4× DMEM
Type 1 collagen gelNitta gelatinCellmatrix type I-A
24 Well cell culture plateAGC TECHNO GLASS1820-024
Gel Documentation System ATTOAE-6911FXNGel imager
Gel analyzing softwareATTODensitograph, ver. 3.00analysing software bundled with AE-6911FXN
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol redlife technologies25300054
24 Well Plates, Non-TreatedIWAKI1820-024
Trypan Blue Solution, 0.4%life technologies15250-061
RNA extraction kitQiagen74106
Reverse transcriptaselife technologies18080044
Real time PCR systemStratageneMx-3000P
SYBR green PCR kitQiagen204145
Protease Inhibitor Cocktail (100x)life technologies78429
PVDF membraneATTO2392390
Protein assay kitbio-rad5000006JA 
Polyacrylamide gelATTO2331810
Western blotting detection reagentGE HealthcareRPN2232
Cold CCD cameraATTOEz-Capture MG/ST
Trypsin inhibitorsigma aldrichT9003-100MG
Polyoxyethylene (20)Sorbitan MonolaurateWako Laboratory chemicals163-11512
Polyoxyethylene (9) octyiphenyl etherWako Laboratory chemicals141-08321

References

  1. Wynn, T. A. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. The Journal of pathology. 214, 199-214 (2008).
  2. Hardie, W. D., Glasser, S. W., Hagood, J. S. Emerging concepts in the pathogenesis of lung fibrosis. The American journal of pathology. 175, 3-16 (2009).
  3. Kovacic, J. C., Mercader, N., Torres, M., Boehm, M., Fuster, V. Epithelial-to-mesenchymal and endothelial-to-mesenchymal transition: from cardiovascular development to disease. Circulation. 125, 1795-1808 (2012).
  4. Thiery, J. P., Acloque, H., Huang, R. Y., Nieto, M. A. Epithelial-mesenchymal transitions in development and disease. Cell. 139, 871-890 (2009).
  5. Kalluri, R., Weinberg, R. A. The basics of epithelial-mesenchymal transition. The Journal of clinical investigation. 119, 1420-1428 (2009).
  6. Forino, M., et al. TGFbeta1 induces epithelial-mesenchymal transition, but not myofibroblast transdifferentiation of human kidney tubular epithelial cells in primary culture. International journal of experimental pathology. 87, 197-208 (2006).
  7. Yang, S., et al. Participation of miR-200 in pulmonary fibrosis. The American journal of pathology. 180, 484-493 (2012).
  8. Reynolds, H. Y. Lung inflammation and fibrosis: an alveolar macrophage-centered perspective from the 1970s to 1980s. American journal of respiratory and critical care medicine. 171, 98-102 (2005).
  9. Camara, J., Jarai, G. Epithelial-mesenchymal transition in primary human bronchial epithelial cells is Smad-dependent and enhanced by fibronectin and TNF-alpha. Fibrogenesis & tissue repair. 3, 2 (2010).
  10. Kamitani, S., et al. Simultaneous stimulation with TGF-beta1 and TNF-alpha induces epithelial mesenchymal transition in bronchial epithelial cells. International archives of allergy and immunology. 155, 119-128 (2011).
  11. Mikami, Y., et al. Lymphotoxin beta receptor signaling induces IL-8 production in human bronchial epithelial cells. PloS one. 9, e114791 (2014).
  12. Yamauchi, Y., et al. Tumor necrosis factor-alpha enhances both epithelial-mesenchymal transition and cell contraction induced in A549 human alveolar epithelial cells by transforming growth factor-beta1. Experimental lung research. 36, 12-24 (2010).
  13. Grinnell, F. Fibroblasts, myofibroblasts, and wound contraction. The Journal of cell biology. 124, 401-404 (1994).
  14. Ramos, C., et al. FGF-1 reverts epithelial-mesenchymal transition induced by TGF-{beta}1 through MAPK/ERK kinase pathway . American journal of physiology. Lung cellular and molecular physiology. 299, L222-L231 (2010).
  15. Ren, Z. X., Yu, H. B., Li, J. S., Shen, J. L., Du, W. S. Suitable parameter choice on quantitative morphology of A549 cell in epithelial-mesenchymal transition. Bioscience reports. 35, (2015).
  16. Brinkmann, V., Kinzel, B., Kristofic, C. TCR-independent activation of human CD4+ 45RO- T cells by anti-CD28 plus IL-2: Induction of clonal expansion and priming for a Th2 phenotype. Journal of immunology. 156, 4100-4106 (1996).
  17. Krug, M. S., Berger, S. L. First-strand cDNA synthesis primed with oligo(dT). Methods in enzymology. 152, 316-325 (1987).
  18. Morozumi, M., et al. Simultaneous detection of pathogens in clinical samples from patients with community-acquired pneumonia by real-time PCR with pathogen-specific molecular beacon probes. Journal of clinical microbiology. 44, 1440-1446 (2006).
  19. Smith, P. K., et al. Measurement of protein using bicinchoninic acid. Analytical biochemistry. 150, 76-85 (1985).
  20. Wiechelman, K. J., Braun, R. D., Fitzpatrick, J. D. Investigation of the bicinchoninic acid protein assay: identification of the groups responsible for color formation. Analytical biochemistry. 175, 231-237 (1988).
  21. Ursitti, J. A., Mozdzanowski, J., Speicher, D. W., et al. Electroblotting from polyacrylamide gels. Current protocols in protein science. Chapter 10, Unit 10.7 (2001).
  22. Kricka, L. J., Voyta, J. C., Bronstein, I. Chemiluminescent methods for detecting and quantitating enzyme activity. Methods in enzymology. 305, 370-390 (2000).
  23. Noguchi, S., et al. An integrative analysis of the tumorigenic role of TAZ in human non-small cell lung cancer. Clinical cancer research : an official journal of the American Association for Cancer Research. 20, 4660-4672 (2014).
  24. Kasai, H., Allen, J. T., Mason, R. M., Kamimura, T., Zhang, Z. TGF-beta1 induces human alveolar epithelial to mesenchymal cell transition (EMT). Respiratory research. 6, 56 (2005).
  25. Chen, X., et al. Integrin-mediated type II TGF-beta receptor tyrosine dephosphorylation controls SMAD-dependent profibrotic signaling. The Journal of clinical investigation. 124, 3295-3310 (2014).
  26. Saito, A., et al. An integrated expression profiling reveals target genes of TGF-beta and TNF-alpha possibly mediated by microRNAs in lung cancer cells. PloS one. 8, e56587 (2013).
  27. Dvashi, Z., et al. Protein phosphatase magnesium dependent 1A governs the wound healing-inflammation-angiogenesis cross talk on injury. The American journal of pathology. 184, 2936-2950 (2014).
  28. Hallgren, O., et al. Enhanced ROCK1 dependent contractility in fibroblast from chronic obstructive pulmonary disease patients. Journal of translational medicine. 10, 171 (2012).
  29. Kobayashi, T., et al. Matrix metalloproteinase-9 activates TGF-beta and stimulates fibroblast contraction of collagen gels. American journal of physiology. Lung cellular and molecular physiology. 306, L1006-L1015 (2014).
  30. Horie, M., et al. Histamine induces human lung fibroblast-mediated collagen gel contraction via histamine H1 receptor. Experimental lung research. 40, 222-236 (2014).
  31. Kohyama, T., et al. PGD(2) modulates fibroblast-mediated native collagen gel contraction. American journal of respiratory cell and molecular biology. 27, 375-381 (2002).
  32. Muir, A. B., et al. Esophageal epithelial cells acquire functional characteristics of activated myofibroblasts after undergoing an epithelial to mesenchymal transition. Experimental cell research. 330, 102-110 (2015).
  33. Zhong, Q., et al. Role of endoplasmic reticulum stress in epithelial-mesenchymal transition of alveolar epithelial cells: effects of misfolded surfactant protein. American journal of respiratory cell and molecular biology. 45, 498-509 (2011).
  34. Liu, X. Inflammatory cytokines augments TGF-beta1-induced epithelial-mesenchymal transition in A549 cells by up-regulating TbetaR-I. Cell motility and the cytoskeleton. 65, 935-944 (2008).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

1121 TGF 1mesenchymal EMTassaytumor necrosis factor TNF

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved