JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

We described a protocol for prevention of heat stress effects in rats by oral pre-treatment with beneficial bacteria. This protocol can be modified and used for various routes of administration and for analysis of different compounds.

Abstract

מחקר זה נועד להעריך את ההשפעה המגנה של זן subtilis Bacillus נגד סיבוכים הקשורים לחום מתח. שלושים ושתיים חולדות Sprague-Dawley שימשו במחקר זה. בעלי החיים טופלו דרך פה פעם ביום למשך ימים עם B. subtilis BSB3 זן או PBS. למחרת, לאחר הטיפול האחרון, כל קבוצה חולקה ושתי קבוצות ניסוי (אחד שטופל PBS ואחד שטופל ב subtilis) הוצבו 45 o צלזיוס למשך 25 דקות. שתי קבוצות בקרה נשאר במשך 25 דקות בטמפרטורת החדר. כל החולדות היו מורדמות ופרמטרים שונים נותחו בכל הקבוצות. השפעות שליליות של עומס חום רשומות על ידי הירידה של גובה villi ועובי רירי הכולל באפיתל המעי; טרנסלוקציה של חיידקים מן לומן; גדל vesiculation של אריתרוציטים והעלאה של lipopolysaccharides (LPS) רמה בדם. יעילות המגן של טיפול מוערכת על ידי מראשvention של תופעות לוואי אלה. הפרוטוקול הוקם לטיפול האוראלי של חולדות עם חיידקים למניעת סיבוכי עומס חום, אבל פרוטוקול זה יכול להיות משונה המשמש מסלולים אחרים של ממשל ועל ניתוח של תרכובות שונות.

Introduction

Different stressors affect human and animal health. Temperature is one of the most stressful factors, causing chronic, acute and even lethal illnesses1. Changes in intestinal morphology and a loss of gut barrier integrity after heat stress were documented in many cases2,3. This protective barrier is responsible for defense against translocation of gut bacteria and their toxins, in particular lipopolysaccharides (LPS), from the lumen to the internal circulation4,5. Stability of the gut microbiota significantly influences intestinal barrier function, the immune response of the host, and tolerance to stress conditions6. Thus, modulation of the intestinal microbiota can provide a novel approach for prevention of stress-related adverse effects.

Beneficial bacteria have been used as a promising strategy to modify the gut microbiota for successful management of various clinical conditions, such as diarrhea, inflammatory bowel disease, atopic dermatitis, metabolic disorders7-10. Probiotic effects of beneficial bacteria include production of essential metabolites to support intestinal health, stimulation of the immune system, promotion of lactose tolerance, restoration of epithelial dysfunction. Probiotics were effective in prevention of the stress-related complications in vitro and in animal models11,12.

Researchers have given more attention to Bacillus bacteria as probiotics because these bacteria support intestinal homeostasis13 and have beneficial effects on the host14. Our previous data demonstrated high efficacy of Bacillus probiotics against pathogens in vitro15,16 and in clinical trials17,18. Here, we aim to evaluate the preventive effect of B. subtilis BSB3 strain against complications after heat stress.

Protocol

כל הפרוצדורות אושרו על ידי IACUC של אוניברסיטת אובורן, אובורן, אלבמה.

1. הכנת תרבות מדיה, צלחות תרבית חיידקים

  1. לחסן 10 מ"ל של מרק מזין בבקבוק עם מושבה אחת של תרבות BSB3 subtilis Bacillus, גדל לילה על צלחת אגר מזין.
  2. הפוך 500 מ"ל של נביגה בינוני 19 (לליטר: מרק מזין Bacto, 8 גרם; 10% (w / v) KCl, 10 מ"ל; 1.2% (w / v) MgSO 4 x 7H 2 O, 10 מ"ל; אגר, 15 ז) ו חיטוי ב 121 מעלות צלסיוס למשך 20 דקות. אפשר לקרר 50 o C ולהוסיף הפתרונות סטרילי הבאים: 1 M Ca (NO 3) 2, 1 מ"ל; 0.01 M MnCl 2, 1 מ"ל; 1 מ"מ FeSO 4, 1 מ"ל.
  3. בינוני מוכן מצנן 40 o צלזיוס למשך 20 דקות בטמפרטורת חדר ויוצק 25 מיליליטר לתוך כל אחת 20 מנות סטרילי פטרי בקבינט סטרילי. בואו המדיום לחזק הלילה.
  4. מורחים 0.5 מ"ל של תרבות הלילה של Bacillus subtilis BSB3 על פני השטח של המדיום צלחות פטרי. דגירת התרבות ב 37 מעלות צלסיוס במשך 5 ימים עד נביגה 90%. לחשוף נבגים שלב בהיר על ידי מיקרוסקופ ברזולוציה גבוהה.
  5. חיידקים קציר על ידי הוספת 1 מ"ל של בופר פוספט סטרילית (PBS) לצלחת וחורקים חיידקים ממשטח באמצעות מפזר תא סטרילי. אחסן את ההשעיה במקרר עד הצורך.
  6. אשר הכדאיות של חיידקים על ידי ציפוי 0.1 מ"ל של דילול המתאים (10 -5 עד 10 -6) של השעיה חיידקים על צלחות בינוני נביגה ואחריו הדגירה של 18 - 24 שעות ב 37 מעלות צלסיוס
  7. הרוזן מושב חיידקים על הצלחות באמצעות מונה מושבה ולחשב את כייל של חיידקים בתרחיף הנבדק. כן השעיה חיידקי עם הריכוז הסופי 1 x 10 8 CFU / ml ב- PBS.

2. בעלי חיים

  1. השתמש 32 חולדות זכרים ספראג-Dawley (250 - 300 גרם). לשמור על חיות בתנאים הפתוגן ללא ספציפיים עם גישה חופשית צ'או ומים גלולים סטנדרטיות. להקים טמפרטורה ממוצע (21 ± 1 o C), לחות (50 ± 5%) ו מחזור אור כהה 12 שעות.

3. עיצוב ניסיוני

  1. התחל יחס לבעלי החיים על ידי gavage פי 11, אחרי 2 ימים של התאקלמות. השתמש מזרק עם מחט gavage הפה. פנקו 16 חולדות עם B. subtilis ההשעיה BSB3 (1 מ"ל לכל חולדה) פעמיים ביום למשך יומיים (קבוצת 'subtilis). פנקו 16 חולדות עם PBS (1 מ"ל לכל חולדה) פעמיים ביום למשך יומיים (קבוצת PBS) (איור 1).
  2. לאחר הטיפול, חלוקה משנית בכל קבוצה (8 חולדות לכל קבוצה): קבוצה 1- מלאה (PBS / לא מתח), קבוצה 2 ב ' subtilis (ב subtilis / לא מתח), מתח קבוצה 3- (מתח PBS / חום) וקבוצת 4- ב subtilis + מתח (סטרס B. subtilis / חום).
  3. מדדו את חום רקטלי של כל עכברוש באמצעות ELECTRONIC מדחום דיגיטלי. שמור חולדות של קבוצות 1 ו -2 בטמפרטורת החדר למשך 25 דקות. חיות של קבוצות מקום 3 ו -4 בתא האקלים ב 45 מעלות צלסיוס ולחות יחסית של 55% במשך 25 דקות.
  4. לאחר מכן, למדוד את החום רקטלי של כל עכברוש בכל הקבוצות באמצעות מדחום דיגיטלי אלקטרוני. מניחים את כל חיות בטמפרטורת החדר למשך 4 שעות.
  5. להרדים חולדות עם isoflurane (2 - 4%) בצנצנת הרדמה סגר ולבחון את החולדות עד מורדמים עמוק (בהעדר בתגובה קמצוץ הבוהן). להרדים חולדות על ידי עריפת ראש מהירה עם גיליוטינה.
  6. איסוף דם גזע מכל עכברוש 20 (15 - 16 מ"ל) עם טפטפות apyrogenic לתוך צינורות apyrogenic להשיג סרום ומיד לקחת דגימות דם (7 μl מכל עכברוש) עם טפטפת לבדיקה מיקרוסקופית.
  7. שים צינורות עם הדם במקרר לפחות 30 דקות כדי לאפשר קרישה. צינורות צנטריפוגה ב 20 מעלות צלסיוס, 7,000 XG במשך 10 דקות ובמהירותלהסיר בסרום עם טפטפת. סרום Aliquot המתקבל בכל עכברוש לתוך 50 כרכים μl ולאחסן ב -20 מעלות צלסיוס עד assay.

4. הליך כירורגי

  1. גזור / לקצץ את כל הפרווה מן הבטן ואת בית החזה של החלק התחתון של הפגר עם מספריים חשמליים. מניח את הפגר בתוך ארון סטרילי ולטפל השטח המגולח של הפגר עם אלכוהול 70%.
  2. השתמש אזמל סטרילי כדי ליצור חתך קו האמצע של הבטן. סר כבד, בלוטות לימפה mesenteric, טחול ומעי דק מכל עכברוש באמצעות פינצטה סטרילית.

5. ניתוח של טרנסלוקציה בקטריאלי

  1. מניחים כל דגימה של הכבד, בלוטות לימפה mesenteric והטחול לתוך צינורות סטרילי-שקל מראש ולשקול. חשב את המשקל של המדגם כהבדל בין המשקל של צינור עם מדגם והמשקל של שפופרת ריקה.
  2. הוסף PBS סטרילי כדי צינור להשיג דילול 1:10 (w / v) של המדגם homogenize כל דגימה עם homogenizer רקמות זכוכית סטרילית לקבל השעיה הומוגנית 21.
  3. הפוך את דילולים סדרתי (10 -1 עד 10 -4) של כל דגימה ב PBS סטרילית. פלייט 0.1 מ"ל של כל דילולים של כל רקמות על פני MacConkey ו -5% אגר דם Brucella דם אגר עם hemin (0.005 g / L) K1 ויטמין (0.01 גר '/ ל') צלחות.
  4. דגירת MacConkey של וצלחות אגרו דם 5% אירוביים ו צלחות אגרו דם Brucella בתנאים אנאירוביים ב 37 o C 22.
  5. רוזן מושבות של חיידקים אירוביים לאחר 24 שעות, ומושבות של חיידקים אנאירוביים לאחר 48 שעות של דגירה בעזרת מונה מושבה. לבטא את התוצאות על פי מספר יחידות-מושבה להרכיב (CFU) בתוך גרם של רקמה.

6. ניתוח היסטולוגית

  1. הסירו דגימות מעי דקות מכל עכברוש ידי ההליך כירורגי (צעדים 4.1 - 4.2). תקן דגימות של קבע Bouin, להטביע פרפין,להכין 6 מיקרומטר חלקים וחתכים הכתם עם באמצעות hematoxylin ו eosin נהלים קבועים 23.
  2. השתמש במערכת מיקרוסקופ ברזולוציה גבוהה למדידת גובה של villi מעי ועובי רירי סך כל דגימה (100X הגדלה) 24. לנתח 4 דגימות מכל עכברים ויגרמו לפחות עשרים מדידות במדגם אחד. אין מהיר תוצאות מיקרומטר.

7. Assay ציטוקין

  1. השתמש ערכות ELISA העכברוש מסחריות-1β IL; IL-6; TNF-α; INF-γ, ו- IL-10 כדי למדוד רמות ציטוקינים בסרום על פי פרוטוקול של היצרן.
  2. צור עקומות סטנדרטיות עבור כל קבוצה של דגימות assayed באמצעות סטנדרטים עבור הערכה הרלוונטית. הגדר את רמת ציטוקינים כל דגימה על ידי השוואה של נתוני ניסוי עם עקומת התקן המתאימה.

8. Assay lipopolysaccharide

  1. לנתח ברמה של LPS בסרום באמצעות ערכת עכברוש LPS ELISA פיהפרוטוקול של היצרן. הערכת ריכוז LPS בדגימות על ידי השוואה של הערכים שהתקבלו עם הערכים של עקומת סטנדרט.

9. מיקרוסקופי אור רזולוציה הגבוהה של דם

  1. השתמש במערכת מיקרוסקופ שתואר לעיל 25,26. השתמש פלטפורמת בידוד רעידות כבסיס למערכת מיקרוסקופ ומצלמת וידאו ומחשב 25 להקליט את התמונות בשידור החיות. לכייל תמונות בדיקה באמצעות שקופיות ריצ'רדסון כפי שתוארו לעיל 27.
  2. מניח 7 μl של דם טרי שנשאב בכל עכברוש בשקופית זכוכית, coverslip, לצלם ולהקליט עשר מסגרות תמונה של 72 × 53.3 מיקרומטר 2 בכל מדגם (הגדלה 1,700X).
  3. למדוד את ריכוז של שלפוחית ​​באמצעות תוכנה המספקת תמונות אופטיות-נוף ישיר ברזולוציה גבוהה בזמן אמת. בדוק מינימום של 20 מסגרות תמונה עבור כל תנאי הניסוי 28.

10. Statisטיקים

  1. אין מהיר כל הערכים כמו תוחלת וסטיית תקן. בביצוע ניתוחים סטטיסטיים והתוויית גרף. לנתח את התוצאות עם מבחן t שני מדגם, להגדיר את הרמה המובהקת 0.05 להגדיר מובהקות סטטיסטיות.

תוצאות

טמפרטורת הגוף הממוצעת של בעלי חיים לפני ומיד אחרי עומס החום היה 36.7 ± 0.07 מעלות צלסיוס ו -40.3 ± 0.17 מעלות צלסיוס, בהתאמה (P <0.05). חשיפה של חולדות לחום (קבוצה 3) הביאה עיכוב משמעותי של גובה villi ועובי רירי כולל (איורים 2, 3). אוראלי של זן BSB3 ל?...

Discussion

חשיפת תוצאות בטמפרטורה גבוהה בתנאים בריאותיים חמורים 29. מניעה וגילוי מוקדם של סיבוכים הקשורים עומס החום הם בעלי חשיבות חיונית 30. הפרוטוקול המובא יכול לשמש כדי להעריך את היעילות של גישות שונות למניעת תופעות לוואי עומס חום.

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgements

This work was supported by the Auburn University fund FOP 101002-139294-2050.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Phosphate buffered saline (PBS)Sigma-Aldrich, St. Louis, MOP4417
Ethyl Alcohol Pharmco products Inc. Brookfield, CT, USA 64-17-5
AgarVWR97064-334
MacConkey agar platesVWR470180-742
5% blood agar platesVWR89405-024
Brucella blood agar plate with Hemin, and Vitamin KVWR89405-032
Bouin’s FixativeElectron Microscopy Sciences, Hatfield, PA, USA15990
IL-10 Rat ELISA kitInvitrogen, Camarillo, CA, USAKRC0101
IL-1beta Rat ELISA KitInvitrogen, Camarillo, CA, USAKRC0011
IL-6 Rat ELISA KitInvitrogen, Camarillo, CA, USAKRC0061
INF-gamma Rat ELISA KitInvitrogen, Camarillo, CA, USAKRC4021
TNF-alpha Rat ELISA KitInvitrogen, Camarillo, CA, USAKRC3011
Rat LPS ELISA KitNeoBioLab, MA, USARL0275
Environmental Chamber 6020-1Caron, Marietta, OH, USA6020-1
Centrifuge Beckman Coulter, Indianapolis, IN, USAOptima L-90K
Ultra Centrifuge
Light microscope optical systemCitoViva Technology Inc., Auburn, AL
Colony counterFisher Scientific , Pittsburgh, PA, USARE-3325
FreezerHaier, Brooklyn, NY, USAHCMO50LA
Ultra microplate readerBio-Tek Instrument, Winooski, VT, USAELx 808
Auto Strip WasherBio-Tek Instrument, Winooski, VT, USAELx50
PipettesGilson, Pipetman, FranceP100, P200, P1000
C24 Incubator ShakerNew Brunswick Scientific, Enfield, CT, USAClassic C24
Rocking Shaker Reliable Scientific, Inc., Nesbit, MS, USA55
Petri dishesFisher Scientific, Pittsburgh, PA, USA875713100 mm x 15 mm
SterilGard III AdvanceThe Baker Company, Sanford, ME, USASG403
Culture Growing FlasksCorning Incorporated, Corning, NY, USA4995PYREX 250 ml Erlenmeyer flasks
Optical Spectrometer Genesys 20Thermo Scientific, Waltham, MA, USA.4001
Sony DXC-33 Video cameraSony
Richardson test slideElectron Microscopy Science, Hatfield, PA, USA80303
Millipore water purification systemMilliporeDirect-Q
Image-Pro Plus softwareMedia Cybernetics, MD, USA
Triple Beam BalanceOHAUS Corporation, Parsippany, NJ, USA
Tissue Homogenizer, DounceVWR71000-518

References

  1. Crandall, C. G., Gonzalez-Alonso, J. Cardiovascular function in the heat-stressed human. Acta Physiol. 199, 407-423 (2010).
  2. Lambert, G. P. Role of gastrointestinal permeability in exertional heatstroke. Exerc. Sport Sci. Rev. 32, 185-190 (2004).
  3. Yu, J., et al. Effect of heat stress on the porcine small intestine: A morphological and gene expression study. Comp. Biochem. Physiol. A-Mol. Integr. Physiol. 156, 119-128 (2010).
  4. Moseley, P. L., Gisolfi, C. V. New Frontiers in Thermoregulation and Exercise. Sports Med. 16, 163-167 (1993).
  5. Lambert, G. P. Stress-induced gastrointestinal barrier dysfunction and its inflammatory effects. J. Anim. Sci. 87, 101-108 (2009).
  6. Berg, A., Muller, H. M., Rathmann, S., Deibert, P. The gastrointestinal system - An essential target organ of the athlete's health and physical performance. Exerc. Immunol. Rev. 5, 78-95 (1999).
  7. Khan, M. W., et al. Microbes, intestinal inflammation and probiotics. Expert Rev Gastroent. 6, 81-94 (2012).
  8. Quigley, E. M. M. Prebiotics and Probiotics: Their Role in the Management of Gastrointestinal Disorders in Adults. Nutr Clin Pract. 27, 195-200 (2012).
  9. Gore, C., et al. Treatment and secondary prevention effects of the probiotics Lactobacillus paracasei or Bifidobacterium lactis on early infant eczema: randomized controlled trial with follow-up until age 3 years. Clin Exp Allergy. 42, 112-122 (2012).
  10. Gomes, A. C., Bueno, A. A., de Souza, R. G. M., Mota, J. F. Gut microbiota, probiotics and diabetes. Nutr. J. 13, (2014).
  11. Eutamene, H., et al. Synergy between Lactobacillus paracasei and its bacterial products to counteract stress-induced gut permeability and sensitivity increase in rats. J. Nutr. 137, 1901-1907 (2007).
  12. Ait-Belgnaoui, A., et al. Lactobacillus farciminis treatment attenuates stress-induced overexpression of Fos protein in spinal and supraspinal sites after colorectal distension in rats. Neurogastroenterol. Motil. 21, 585-593 (2009).
  13. Fujiya, M., et al. The Bacillus subtilis quorum-sensing molecule CSF contributes to intestinal Homeostasis via OCTN2, a host cell membrane transporter. Cell Host Microbe. 1, 299-308 (2007).
  14. Cutting, S. M. Bacillus probiotics. Food Microbiol. 28, 214-220 (2011).
  15. Pinchuk, I. V., et al. In vitro anti-Helicobacter pylori activity of the probiotic strain Bacillus subtilis 3 is due to secretion of antibiotics. Antimicrob Agents Ch. 45, 3156-3161 (2001).
  16. Sorokulova, I. B., Kirik, D. L., Pinchuk, I. V. Probiotics against Campylobacter pathogens. J. Travel Med. 4, 167-170 (1997).
  17. Gracheva, N. M., et al. The efficacy of the new bacterial preparation biosporin in treating acute intestinal infections. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. , 75-77 (1996).
  18. Horosheva, T. V., Vodyanoy, V., Sorokulova, I. Efficacy of Bacillus probiotics in prevention of antibiotic-associated diarrhoea: a randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial. JMM Case Report. 1, (2014).
  19. Sorokulova, I. B., Krumnow, A. A., Pathirana, S., Mandell, A. J., Vodyanoy, V. Novel Methods for Storage Stability and Release of Bacillus Spores. Biotechnol. Prog. 24, 1147-1153 (2008).
  20. Vogel, H. G., Vogel, W. H., Vogel, H. G., Vogel, W. H. Drug Discovery and Evaluation: Pharmacological Assays. eds H.G. Vogel & W.H. Vogel. , 658-659 (1997).
  21. Bailey, M. T., Engler, H., Sheridan, J. F. Stress induces the translocation of cutaneous and gastrointestinal microflora to secondary lymphoid organs of C57BL/6 mice. J. Neuroimmunol. 171, 29-37 (2006).
  22. Rakoff-Nahoum, S., Paglino, J., Eslami-Varzaneh, F., Edberg, S., Medzhitov, R. Recognition of commensal microflora by toll-like receptors is required for intestinal homeostasis. Cell. 118, 229-241 (2004).
  23. Leon, L. R., Blaha, M. D., DuBose, D. A. Time course of cytokine, corticosterone, and tissue injury responses in mice during heat strain recovery. J. Appl. Physiol. 100, 1400-1409 (2006).
  24. Ribeiro, S. R., et al. Weight loss and morphometric study of intestinal mucosa in rats after massive intestinal resection. Influence of a glutamine-enriched diet. Rev. Hosp. Clìn. Fac. Med. S. Paulo. 59, 349-356 (2004).
  25. Vainrub, A., Pustovyy, O., Vodyanoy, V. Resolution of 90 nm (lambda/5) in an optical transmission microscope with an annular condenser. Opt Lett. 31, 2855-2857 (2006).
  26. Moore, T., Globa, L., Pustovyy, O., Vodyanoy, V., Sorokulova, I. Oral administration of Bacillus subtilis strain BSB3 can prevent heat stress-related adverse effects in rats. J Appl Microbiol. 117, 1463-1471 (2014).
  27. Richardson, T. M. Test slides: Diatoms to divisions-What are you looking at. Proc Roy Microsc Soc. 22, 3-9 (1988).
  28. Moore, T., Sorokulova, I., Pustovyy, O., Globa, L., Vodyanoy, V. Microscopic evaluation of vesicles shed by rat erythrocytes at elevated temperatures. J Therm Biol. 38, 487-492 (2013).
  29. Leon, L. R., Helwig, B. G. Heat stroke: Role of the systemic inflammatory response. J. Appl. Physiol. 109, 1980-1988 (2010).
  30. Kumar, Y., Chawla, A., Tatu, U. Heat Shock Protein 70 as a Biomarker of Heat Stress in a Simulated Hot Cockpit. Aviat Space Env Med. 74 (7), 711-716 (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

113Subtilis Bacillusvesiculationlipopolysaccharides

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved