דומה Decellularization של רקמת הלב העוברי ומבוגרים Explants כמו פלטפורמות דמויי תלת-ממד עבור לימודי חוץ גופית

Summary

מטריצה חוץ-תאית הלב (ECM) היא רשת מורכבת של מולקולות שננהל את מפתח בתהליכי רקמות ואיברים שתישא את שיפוץ פיזיולוגיים לאורך החיים. Decellularization מתוקננת לב העובר, למבוגרים היתרי השוואתי ניסיוני של שתי רקמות בהקשר תלת-ממד על-ידי לכידתו ארכיטקטורה מקורית ומאפיינים ביו-מכני.

Abstract

הידע הנוכחי של מטריצה חוץ-תאית (ECM)-תקשורת התא מתרגמת ללימודים רב מימדי תרבות במבחנה (2D) שבו רכיבי ה-ECM מוצגות כחלק משטח ציפוי. מערכות התרבות אלו מהווים של פישוט של האופי המורכב של הרקמה ECM שמקיף את ההרכב הביוכימי, מבנה, תכונות מכניות. לחקות טוב יותר של תקשורת ECM בעיצוב של microenvironment לב, פיתחנו פרוטוקול המאפשר decellularization של הלב העוברי לגמרי, החדר השמאלי למבוגרים רקמת explants במקביל ללימודי השוואתי. הפרוטוקול משלב את השימוש מאגר היפוטוניק, חומר ניקוי של מאפיינים anionic חומרים פעילי שטח, וטיפול DNase ללא כל דרישת כישורים מיוחדים או ציוד. היישום של האסטרטגיה decellularization אותו על פני דגימות רקמה מן הנבדקים של גיל שונות היא גישה אלטרנטיבית לביצוע מחקרים השוואתיים. בפרוטוקול הנוכחי מאפשר זיהוי הבדלים מבניים ייחודי על פני העובר למבוגרים לב ECM עם רשת שינוי, ביולוגיים הסלולר תגובות ו. יתר על כן, בזאת מתודולוגיה מדגים יישום רחבה יותר בהצלחה ליישם רקמות ומינים אחרים עם התאמות קלות, כגון ביופסיות במעי האדם, הריאות העכבר.

Introduction

מטריצות (ECM) היא רשת דינמית של מולקולות המסדירים חשוב תהליכים תאיים, כלומר הגורל-החלטה, התפשטות ובידול^1,2. החקירה של התא-ECM אינטראקציות בוצעו בעיקר דו מימדי (2D) בתרבויות חוץ גופית מצופה עם רכיבים ECM, אשר מהווים של פישוט של מאפייני ECM יליד נמצאו vivo. Decellularization יוצר acellular bioscaffolds ECM תלת ממד זה בעיקר לשמר את אדריכלות חוץ-תאית קומפוזיציה של יליד רקמות, איברים^3,4. בנוסף להיותם פיגומים ביואקטיביות עבור הנדסת רקמות, decellularized 3D ECM biomaterials מתגלים כמו פלטפורמות הרומן להעריך ביולוגיה של התא-ECM העוברים במקביל הסביבה ויוו.

הערכה של תפקיד דיפרנציאלית של רכיבי ה-ECM של רקמות שונות, איברים, גיל ייהנו עם השימוש של פרוטוקולים דומה של יצירת bioscaffolds מקורי. בלב, פיתחנו פרוטוקול רב-תכליתי עבור decellularization של העובר, מבוגר-derived דגימות, כגישה חלופית לביצוע מחקרים השוואתיים של microenvironment איברים. באמצעות מתודולוגיה זו, אנו כבשו את microenvironment לב מקורית, הראה כי העובר ECM מקדמת את תשואות גבוהות איכלוס של תאי לב⁵. Decellularization הוסיפה זיהוי של תושב מבניים ההבדלים בין ECM עוברית ומבוגרים ברמה של סידור רשת מטריקס פרופריה המרתף, pericellular סיבים הרכב⁵. לפני שזה יעבוד, עפות. השוואה של רקמות בשלבים אונטוגנית שונים, באמצעות גישה decellularization אותו רק דווח על הכליות קוף רזוס ולבבות מכרסמים. בנוסף, מספר מצומצם של מחקרים מדווחים רקמות/איבר בעובר decellularization כשלעצמה^5,6,7. זו הושגה באמצעות מרחביות כסוכן decellularization ייחודי; עם זאת, ריכוז מרחביות שונות שימשו את decellularization של רקמת הלב העוברי ומבוגרים^7,8. למען חברה דמוקרטית היא לאחד חומרי ניקוי יוניים היעיל ביותר לאישור של חומר cytoplasmic וגרעיני, בשימוש נרחב decellularization שונים רקמות, דגימות^9,10. פתרונות המכילה ריכוז גבוה מרחביות, ממושכות של חשיפה יש היה בקורלציה עם דנטורציה של חלבונים, ואובדן גליקוזאמינוגליקן (GAGs) שיבוש קולגן הסיבים^10,11, ולכן האיזון בין שימור ECM והסרת תאים הכרחי. כדי להחיל את ההליך על רקמת הלב העוברי, למבוגרים, פרוטוקול המתוארים בזאת מחולקת לשלושה שלבים רציפים: תא פירוק על ידי שוק אוסמוטי (מאגר היפוטוניק); solubilization של אינטראקציות חלבון השומנים, חלבון-דנ א, חלבון (0.2% מרחביות); הסרת חומרים גרעיניים (טיפול DNase).

פרוטוקול שלנו מראה מספר יתרונות: אני) האפשרות של decellularization המקביל של רקמות הלב גיל ספציפי על-ידי היישום של האסטרטגיה decellularization אותו; ii) שאין דרישות שיטות מיוחדות או ציוד; iii) שמוכן ההסתגלות רקמות ו מינים אחרים כמו זה יושם בהצלחה עם שינוי קטן ביופסיות במעי האדם¹² ו העכבר ריאות¹³; ו, וחשוב, הרביעי) יכול לפנות מאפיינים biomechanical ECM תוך מתן אפשרות ההרכבה של תרבויות דמויי תלת-ממד organotypic יותר מקרוב לחקות התכונות מולקולרית של microenvironment הרקמה הטבעית.

Protocol

כל למתודולוגיות תיאר אושרו על-ידי i3S ועדת האתיקה חיה ואני מחפשת Geral דה Veterinária (DGAV) והן על פי אירופה הפרלמנט דירקטיבה 2010/63/האיחוד האירופי.

1. הכנת הפתרונות decellularization

הערה: כל decellularization פתרונות צריך להיות מסונן דרך פילטר ממברנה μm 0.22 ומאוחסנת לתקופה מקסימלית של 3 חודשים, למעט צוין אחרת.

1. עבור 1 x PBS: לערבב 8 גרם של NaCl, 1.01 גר' נה₂HPO₄ 200 מ ג אשלגן כלורי, ו- 200 מ ג₂פו ח'₄ עם 900 מ ל מים יונים (DI מים). התאם פתרון pH 7.5, האחסון הפתרון הסופי את מסנן ל' 1, החיטוי של החנות הפתרון בטמפרטורת החדר (RT).
2. עבור מאגר היפוטוניק (10 מ"מ. טריס, 0.1% EDTA): להמיס 1.21 g של TrisBASE ו- 1g של EDTA ב 900 מ ל מים יונים. להתאים את פתרון ה-pH ל 7.8 עם NaOH/HCl ונפח הפתרון הסופי למסנן ל' 1 לחטא על ידי תא לחץ, לאחסן ב- RT.
3. לפתרון מרחביות 0.2% (0.2% מרחביות, 10 מ מ טריס): להוסיף 0.6 גרם של TrisBASE ו- 1 גר' נתרן גופרתי dodecyl (מרחביות) ב- 400 מ ל מים DI ומערבבים ב 60 מעלות צלזיוס עד פירוק מלא ממס. תן פתרון להתקרר RT. התאם פתרון ה-pH ל 7.8, האחסון הפתרון הסופי עד 500 מ"ל. לעקר את הפתרון על-ידי סינון.
   הערה: הפתרון מרחביות צריך להיות מוכן לפני השימוש. פתרון סינון להשלים רק לאחר פירוק מרחביות, אחרת החלקיקים לא מסיסים מרחביות להרוות את המסנן, שינוי הריכוז מרחביות הסופי, כתוצאה מכך המשפיעים על יעילות decellularization רקמות.
4. בשביל לשטוף היפוטוניק מאגר (10 מ מ טריס): מערבבים 1.21 גר' TrisBASE ב 900 מל של די מים. להתאים את פתרון ה-pH ל 7.8 ואת אמצעי האחסון הסופי למסנן ל' 1, לחטא על ידי תא לחץ ולאחסן ב RT.
5. לטיפול DNase (20 מ"מ טריס, 2 מ מ MgCl₂, 50 DNase U/mL): להמיס 2.42 g של TrisBASE ו- 2 מ של 1 מ' MgCl₂ 900 מ ל מים DI. להתאים את ה-pH ל 7.8 ונפח הפתרון הסופי למסנן ל' 1, לעקר את הפתרון על ידי תא לחץ. לאחסן פתרון RT. להוסיף DNase אני (50 U/mL) לפני השימוש.
6. עבור DNase אני מדמין פתרון: להכין מאגר DNase המכיל 50% גליצרול, 20 מ מ טריס-HCl pH 7.5, 1 מ MgCl₂, ולהתאים את נפח הפתרון הסופי של 10 מ"ל מים DI. תא למינארי, הוסף את DNase אני לפדר את המאגר DNase ומערבבים בעדינות עד התפרקות מוחלטת. לחטא פתרון דרך מסנן μm 0.22. להכין 1 מ"ל aliquots ולאחסן ב-20 ° C.

2. רקמת קציר, הקפאה קריוגנית

1. המתת חסד הבוגרת בהריון-18 ימים של ההיריון (E18 העוברים) באמצעות חנק₂ CO. לבצע ניתוח קיסרי על הנקבות עם מספריים כירורגיים ולאסוף את הקרניים הרחם הנושאת עוברי עכברים צלחת פטרי עם PBS קר כקרח 1 x באמצעות מלקחיים משוננות שני עם טיפים מעוקל (פינצטה אחד בכל צד של קרן).
   1. פתח את הקרניים הרחם ואת שק שפיר לבודד את העוברים. העברת העוברים צלחת פטרי חדש עם PBS קר כקרח 1 x עזים ומתנגד להם, לכרות עם מספריים.
   2. המתת חסד עכברים C57BL/6 זכר בן 7-8 שבועות באמצעות חנק₂ CO. לבצע חתך על כל החזה העכבר ולאסוף את הלב.
   3. לשטוף בקצרה ליבם עוברי ומבוגרים עם PBS קר 1 x קרח.
2. הסר אטריה לב למבוגרים בעזרת אזמל. לבצע חתך על החדר הימני, להסיר אותו באמצעות מספריים קטנות ישר. לחשוף את הדופן הפנימית של החדר השמאלי על-ידי הסרת מחצה. בצלוחית חדש, לחלק את החדר השמאלי חינם-הקיר רצועות האורך בעובי 2 מ מ ולהסיר את השריר papillary באמצעות אזמל פינצטה משונן עם טיפים מעוקל.
   1. בלו explants רקמה קטנה בעזרת אזמל באמצעות רשת 2 מ"מ x 2 מ"מ (תיאור מפורט איור 1משלים⁵). לשטוף בקצרה רקמת explants עם 1 x PBS.
3. להוסיף ~ 250 µL של חיתוך אופטימאליים הטמפרטורה (אוקטובר) מתחם mL 1.5 בלוק microcentrifuge צינורות. להעביר הצינורות עם 250 µL של OCT לבבות כל עוברית, explants לב למבוגרים ומקפיאים עם קרח יבש מקורר איזופנטאן וחנות ב-80 מעלות צלזיוס (עד למקסימום של 6 חודשים).
   הערה: השימוש ברקמת הלב explants cryopreserved במשך יותר מ-6 חודשים תפחית באופן משמעותי את יעילות decellularization, ובמיוחד explants רקמות הלב למבוגרים.

3. רקמת decellularization

הערה: decellularization רקמות הלב מבוצעת בצלחת תרביות רקמה 24-ובכן עם דוגמא אחת לכל טוב. 1 מ"ל של כל פתרון decellularization נוסף לכל אדם טוב. כל השלבים decellularization צריכה להתבצע עם עצבנות 165 סל ד (שייקר אינקובטור בקוטר אורביטל של 20 מ מ) וכן ב- 25 ° C, אלא אם צוין אחרת. לקבלת פרטים נוספים, נא עיין להחיל את הערכה על איור 1A. B שהוא גוסס (למשל fungizone) ו גנטמיצין טרי יתווספו כל הפתרונות decellularization לפני השימוש כדי ריכוז סופי של 2.5 μg/mL ו- 0.01 μg/mL, בהתאמה. כדי לכמת את כמות ה-DNA נשמר בתוך רקמות decellularized, לצרכי המוני מדגם נקבע לפני תחילת פרוטוקול decellularization. פרוטוקול כימות הדנ א הוא יותר מפורט ב סעיף 5.1.

1. יום 1
   1. להסיר דגימות רקמה מהמקפיא-80 ° C. יוצאים 1.5 mL microcentrifuge צינורות RT עד אוקטובר הופך להיות מותך. להעביר את הבלוק ברקמת הלב של ה-OCT עדיין קפוא צלחת פטרי עם 1 x PBS.
   2. לאחר OCT נמס, להעביר את רקמת הלב צלחת פטרי חדש עם 1 x PBS. שטיפת דגימות 1 x PBS ו- 60 סל ד עם מטרף במשך 10-15 דקות לחזור לפחות פעמיים.
   3. להוסיף 1 מ"ל של עובד היפוטוניק מאגר לכל טוב של צלחת סטרילי תרביות רקמה 24-. טוב. העברת דוגמא אחת לכל טוב בעזרת מלקחיים.
   4. להעביר לצלחת תרביות רקמה 24-ובכן עם הדגימות שייקר אינקובטור 25 ° c ולהתחיל הדגירה 18 h עם מאגר היפוטוניק.
2. יום 2
   1. הכינו את הפתרון מרחביות 0.2% כמתואר בסעיף 1.3.
   2. תשאף המאגר היפוטוניק ולשטוף את הדגימות עם PBS 1 x 1 ה' חוזר 3 פעמים.
      הערה: השהה נקודה: רקמות מתחת decellularization ניתן לשמור ב- 1 x PBS ב 4 ° C עבור 18 h בתנאים סטטי.
   3. הסר את PBS 1 x, להוסיף 1 מ"ל של פתרון מרחביות טרי (שלב 1.3) לכל טוב, דגירה בדגימות במשך 24 שעות ביממה.
      הערה: (סמן את נקודת) פוסט מרחביות דגירה, להבטיח כי דגימות תערוכת לבן מראה שקוף. בשלב זה, התייחסו מרחביות דגימות הן שטוף ב- DNA, מראה עקביות דמוי ג'לטין. הסרת פתרון מרחביות לאט כדי להימנע מדגם אדהזיה לקצה פיפטה.
3. יום 3
   1. לשטוף את הדגימות עם מאגר לשטוף היפוטוניק (1 מ"ל לכל טוב) במשך 20 דקות חוזר 3 פעמים.
      הערה: בשלב זה, זה נורמלי לצפות לירידה גודל המדגם הודות להסרת שאריות תאים. נקודת PAUSE: רקמות מתחת decellularization יכול להישמר במאגר לשטוף היפוטוניק ב 4 ° C עבור 18 h בתנאים סטטי.
   2. להוסיף 1 מ"ל של טיפול DNase פתרון לכל טוב, דגירה בדגימות עבור h 3-37 מעלות צלזיוס.
   3. וארוקן את הפתרון לטיפול DNase ולשטוף את הדגימות עם 1 x PBS (1 מ"ל לכל טוב) במשך 20 דקות חוזר 3 פעמים. לבצע שטיפה סופית עם 1 x PBS (1 מ"ל לכל טוב) בן לילה-RT, ומנענע ב 60 סל ד.
   4. (צ'ק פוינט) לאחר הטיפול DNase, ודא כי הדגימות decellularized איבדו את עקביות דמוי ג'לטין.
      הערה: לאחר טיפול DNase, להסיר ולהוסיף 1 x PBS בעדינות מאז יכול להיות בקלות לכודים ודוגמאות המחוברות לקצות פיפטה.

4. הערכה של הסרת רקמות decellularized תא

1. לתקן את הדגימות לתוך צלחת תרביות רקמה 24-ובכן, לדוגמה 1 לכל טוב, על-ידי הוספת 1 מ"ל טרי 10% פורמלין מאגר ניטרליים עם אאוזין מימית 0.03% עבור 2.5-3 h-RT.
   הערה: אאוזין מתווסף מקבע כתם הרקמה decellularized וכדי להקל על מדגם להדמיה במהלך חלוקתה, צביעת היסטולוגית. התוספת של eosin שאף אחד לא מתערב עם שהכתמים היסטולוגית, ולא עם טכניקות immunofluorescence. לחלופין, הקיבעון יכול להתבצע בין לילה על 4 מעלות צלזיוס.
2. להסיר את הפתרון מקבע ולהוסיף 1 מ"ל של PBS 1 x לשטוף את הדגימה.
3. לתמצת את bioscaffolds קבוע בג'ל היסטולוגיה עיבוד באמצעות תבנית הדגימה ויניל חד פעמיות בהתאם להוראות היצרן.
4. להסיר את הג'ל היסטולוגיה עם הדגימה מוטבע עובש, העברה ל קלטות עיבוד/Embedding ביופסיה עם מכסה.
   הערה: אלטרנטיבה רקמות הטמעה במסמכי היסטולוגיה ועיבוד ג'ל הוא כדי לעבד כל דגימה של שני ספוגים ביופסיה עם נקבוביות קטנות. צריך להיות מקומי הדגימות למרכז הספוגים ביופסיה כדי לאפשר זיהוי. ראוי לציין, דגימות יכול להיות קשה להתאים לשפה שימוש בגישה זו.
5. לעבד את הדגימות פרפין הטמעה דרך incubations רצופים (30 דקות לכל פתרון) בסדרה של ריכוז אלכוהול (70%, 80%, 90%, 100%, 100%), isoparaffinic פחמימן אליפטיות פתרון (דגירה-2 תחנות), פרפין (2 דגירה תחנות) ב 56 ° C.
6. הר הדגימות בבלוק פרפין.
7. לחתוך 3 סעיפים פרפין μm-עבה על מיקרוטום ולאסוף את המקטעים בשקופיות זכוכית מיקרוסקופ.
8. פרפין יבש מקטעים לילה ב 37 º C.
   הערה: (PAUSE נקודה) פרפין והמקטעים נשמרים ב 4 ° C עד שימוש נוסף.
9. כדי לוודא את יעילות פרוטוקול, לבצע Hematoxilin ואת אאוזין (H & E) Trichrome של מאסון מכתים (MT) של הסעיפים מדגם decellularized, למקטעים של רקמות ללא מניפולציות על פי הוראות היצרן.
   הערה: H & E צביעת כתמי תא גרעינים כחול/סגול, הציטופלסמה ורוד/אדום כהה, ורוד חיוור קולגן ו- MT כתמי גרעינים שחורים, הציטופלסמה אדום, ואת קולגן mucin כחול. Decellularization יעיל מושגת כאשר ורוד בהיר נקבובי (H & E, MT), כחול רשת (MT) הוא ציין, בהיעדרו של כתם גרעינית.

5. הערכה של הסרת חומרים גרעינית decellularized רקמה

הערה: כימות של תוכן ה-DNA על רקמות decellularized חייב להתבצע בהשוואה הרקמה הלא-מניפולציות בהתאמה.

1. לפני decellularization, שוקל צינור microcentrifuge 1.5 mL בסולם דיגיטלית ברמת דיוק גבוהה. להעביר את רקמת הלב הצינור, להסיר את הסכום הנוסף של PBS 1 x ולשקול את הצינור עם הדגימות. לחשב את המשקל הרטוב של הדגימות:
   לטעום_{משקל רטוב} = משקל _{צינור עם דוגמאות} – משקל _{שפופרת ריק}
2. Decellularize את הדגימות כמתואר בשלב 3.
3. לאחר decellularization, לאסוף את הרקמות decellularized לתוך צינור microcentrifuge.
   1. עקב מידות קטנות בנפח גדול של דוגמאות בודדות הלב ואת ערכת מפרטים, בריכה רקמות decellularized של כל תנאי לדוגמה (פעימות לב העובר: 5 כל ליבם; explants LV למבוגרים: 15 explants). בצע את ההליך אותו עם הרקמות ללא מניפולציה.
      הערה: (PAUSE הצבע) הדגימות יכולה להיות מאוחסנים ב-20 ° C עד מיצוי הדנ א, כימות מבוצעות.
4. לחתוך את הלא-מניפולציות ו decellularized רקמות explants קטן עם עזרה של אזמל בצלוחית נקי.
   הערה: להשתמש באזמל בודדים פטרי עבור כל דגימה. הפרעה מכנית של הדגימות עם איזמל מקלה על עיכול אנזימטי האחורי שלהם, מיצוי DNA הבאים.
5. להפקת DNA, להשתמש בשיטה מיצוי DNA ספין-עמודה מבוסס על פי הוראות היצרן.
   1. לאסוף דגימות dissociated באופן מכני צלחת פטרי עם המאגר עיכול מאסטר (מאגר עיכול, proteinase K) על פי הוראות היצרן באמצעות טיפ פיפטה דיזה רחב.
      הערה: פירוק רקמת Proteinase K עיכול הוא מהר יותר דגימות decellularized. כדי לעבד דוגמאות שונות באותו הזמן, שמור דוגמאות lysed על הקרח, עד lysed הם כל דוגמאות כדי למזער את השפלה. פירוק דגימות מלאה מושגת בין 4-6 שעות.
   2. להמשיך עם הפרוטוקול לפי ההוראות היצרן.
   3. כדי להגדיל את התשואות של DNA שחולץ של דגימות רקמה decellularized ו- decellularized, elute ה-DNA על μL 25-50 ו- 100 μL • תנאי מאגר, בהתאמה. לאסוף את ה-DNA eluted וטען הספין-העמודה. תקופת דגירה של 1 דקות ב- RT. צנטריפוגה הדגימות בהתאם להוראות היצרן.
      הערה: (PAUSE נקודה) הדנ א שחולצו מן הדגימות ניתן לחנות ב-20 ° C עד שימוש נוסף.
6. לכמת את הדנ א שחולצו מן הדגימות עם ערכת זיהוי dsDNA פלורסנט ההוראות של היצרן.
7. לנרמל את התוכן DNA כמו ננוגרם של ה-DNA לכל מיליגרם של משקל רטוב הדגימה הראשונית (לפני decellularization).

6. פיגומים decellularized תא זריעה

הערה: כל פתרונות/ריאגנטים צריך להיות סטרילי, כל ההליך בנטילת בתנאים סטריליים.

1. להכין x DPBS 1 עם 2.5 μg/mL ב' שהוא גוסס, 1% P/S (פניצילין, 100 I.U.; סטרפטומיצין 100 µg/mL).
2. להסיר את 1 x PBS פתרון לשלב הכביסה decellularization האחרון (שלב 3.3.3) ולהוסיף μL 500 לכל טוב 1 שזה עתה הוכנו x DPBS/2.5 μg/mL של פתרון B/1% P/S שהוא גוסס. חנות דגימות ב 4 ° C 1-7 ימים.
   הערה: דגימות אחסון ב 4 ° C חשוב לשמור על עקרות.
3. הוסף P/S לתא מדיה הבזליים (ללא FBS ותוספי מזון) ריכוז סופי של 1%.
4. האחות 1 x DPBS/2.5 μg/mL בפתרון B/1% P/S שהוא גוסס בין דגימות decellularized. להוסיף 500 μL לכל טוב של התאים הבזליים media/1% P/S ותנו דוגמאות equilibrate עבור h 1 ב 37 מעלות צלזיוס, או 4 ° C עבור יותר מ 1 h.
5. לפצל את התאים עניין ולהכין aliquots קטן של תאים על צפיפות התא הרצוי.
   הערה: הרקמה decellularized זריעה חייב להתבצע תחת מיקרוסקופ סטריאוסקופי, בתנאים סטריליים. תא תרבות המדיה להכיל 1% P/S.
6. Pipette μL 3-4 של DPBS למרכז טוב של צלחת 96-ובכן. באמצעות פינצטה דק וישר, העברת פיגומים decellularized לירידה DPBS להסיר את DPBS הנוסף על-ידי שאיפה, ודא כי המדגם אינו מקופל או מקומט. . תן לזה להיות יבש בקצוות לדבוק פני השטח היטב.
   הערה: פיגומים מנותקת יש יעילות זריעה נמוכה יותר.
7. הוסף תאים לגרדום מאת pipetting הפתרון תא בודד לאט כנגד קצוות הבאר.
   הערה: לדוגמה, עכברוש neonatal cardiomyocytes הם נזרע עם-צפיפות של תאים/מ מ² 7,500 ועכבר מונצחים לין⁻ Sca-1⁺ לב ובתאים (iCPC^Sca-1)-צפיפות של תאים/מ מ 60-1,500². להתאים את צפיפות התאים לפי הרציונל ניסיוני.
8. להוסיף DPBS הבארות הסמוכים כדי למנוע אידוי מהיר מדיה.
9. 24 שעות לכתוב תא זריעה, אם סוג התא המשמש דבקה הלוחות פוליסטירן תרביות רקמה (TCPS), להעביר bioscaffolds באר חדשה. אחרת, החלף את המדיום כדי להסיר תאים שאינם מחסידי.
10. לשנות בקפידה התקשורת על פי דרישות ספציפיות של סוג התא.

תוצאות

וצריך להעריך את יעילות decellularization דרך שלוש טכניקות הראשי: תצפית מאקרוסקופית, היסטולוגיה, כימות הדנ א. המראה מאקרוסקופית של דגימות פוסט-מרחביות הטיפול משפיע בעקיפין את היעילות של הסרת תאים. לאחר דגירה מרחביות, דגימות אמור להופיע גם שקוף כדי לבנבן (איור 1C). עו...

Discussion

מטריצות (ECM) הוא meshwork דינמיות ומורכבות מאוד של glycoproteins סיבי, דביק, המכיל מאגר של פפטידים ביו הרבות כלואה גורמי גדילה. כמו אפנן העיקריים של התא אדהזיה, שלד התא dynamics, תנועתיות/הגירה, התפשטות, התמיינות אפופטוזיס, ECM מסדיר באופן פעיל תפקוד התאים והתנהגות. בידיעה כי התנהגות הסלולר שונה בתרבויות מי?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Equipment
Incubated Benchtop Shaker	Orbital Shakers	IKA:3510001	Recommended
Fluorimeter	-	-	Equipment available
Digital weight scale	-	-	Equipment available
Inverted Microscope	-	-	Equipment available
Cell culture incubator	-	-	Equipment available
Fridge (4ºC)	-	-	Equipment available
Deep freezer (-80ºC)	-	-	Equipment available
Microtome	-	-	Equipment available
Cirurgical Instruments
Vannas Spring Scissors - 2.5mm Cutting Edge	Fine Science Tools	5000-08	Recommended
Dumont 5 Fine Forceps - Biologie/Inox	Fine Science Tools	11254-20	Recommended
Dumont 7 forceps	Fine Science Tools	11272-30	Recommended
Dissecting Scissors, straight	-	-	Tool available
Forceps, serrated, curved	-	-	Tool available
Materials
24 well plates, individually wrapped	VWR	29442-044	-
96 well plates, individually wrapped	VWR	71000-078	-
Steriflip-GV, 0.22µm, PVDF, Radio-Sterilized	Millipore	SE1M179M6	-
Eppendorff	-	-	Material available
15 mL Falcon tubes	Fisher Scientific	430791	-
50 mL Falcon tubes	Fisher Scientific	430829	-
Four-Compartment Biopsy Processing/Embedding Cassettes with Lid	Electron Microscopy Science	70075-B	-
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides	Thermo Fisher Scientific	22-037-246	-
Tissue cryopreservation
Shandon Cryomatrix embedding resin	Thermo Scientific	6769006	-
2-METHYLBUTANE ANHYDROUS 99+% (isopentane)	Sigma-Aldrich	277258-1L	-
Dry ice	-	-	-
Decellularization
NaCl	BDH Prolabo	27810.364	-
Na2HPO4	Sigma-Aldrich	S-31264	-
KH2PO4	Sigma-Aldrich	P5379-100g	-
KCl	Sigma-Aldrich	P8041-1KG	-
TrisBASE	Sigma-Aldrich	T6066-500G	-
Sodium dodecyl sulfate	Sigma-Aldrich	L-4390	-
MgCl2	MERCK	1.05833.1000	-
DNAse I	AplliChem	A3778,0050	-
Gentamicin	Gibco	15710-049	-
Fungizone	Gibco BRL	15290-026	-
Deionized water (DI water)	-	-	-
Histology
10 % formalin neutral buffer	Prolabo	361387P	-
Eosin Y AQUEOUS	Surgipath	01592E	Can be replaced by alcoholic eosin
Richard-Allan Scientific HistoGel Specimen Processing Gel	Thermo Fisher Scientific	HG-4000-012	-
Ethanol ethilic alcohol 99,5% anydrous	Aga	4,006,02,02,00	-
Deionized water (DI water)	-	-	-
Clear Rite 3	Richard-Allan Scientific	6915	-
Shandon Histoplast	Thermo Fisher Scientific	RAS.6774006	-
Kits
PureLink Genomic DNA Mini Kit	Thermo Fisher Scientific	K182001	-
Quant-iT PicoGreen dsDNA kit	Invitrogen	P11496	-
Cell culture
DPBS	VWR	45000-434	-
Penicillin-Streptomycin Solution 100X	Labclinics	L0022-100	-
Fungizone	Gibco BRL	15290-026	-
Cell culture media of the cell of interest	-	-	-