JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי לתאר טכניקה מינימלית פולשנית לקראת מפרק הברך במודל חולדה. פרוטוקול זה, המהווה מבסס על הפרדה בין השריר לבין מודוס ומיומנות החתך המיני, מתאים ללימוד המנגנון המולקולרי הבסיסי של החוזה המשותף שנרכש.

Abstract

חוזה משותף, הנובע מהשתק משותף ממושך, הוא סיבוך נפוץ באורטופדיה. כיום, ניצול הקיבעון הפנימי כדי להגביל ניידות משותפת בברך הוא מודל מקובל נרחב ליצור החוזה הניסיוני. עם זאת, היישום השתלת באופן בלתי נמנע יגרום טראומה כירורגית לבעלי חיים. במטרה לפתח גישה פולשנית פחות, אנו שילבו הפרדה הפער שרירים מודוס עם מיומנות מיני דיווחו בעבר במהלך ההליך כירורגי: שני חתכים מיני עור נעשו על הירך לרוחב והרגל, ואחריו ביצוע מרווח שרירים פירוד. כדי לחשוף את משטח העצם המפרק בברך עכברוש היה מאוסס בהדרגה על ידי קיבעון פנימי שנבנה מראש בקירוב בגובה 135 ° בברך מבלי להפריע העצבים החיוניים או כלי הדם. כצפוי, הטכניקה הפשוטה הזאת מאפשרת שיקום מהיר של הניתוח בבעלי חיים. המיקום הנכון של הקיבעון הפנימי אושר על ידי ניתוח רנטגן או סריקת מיקרו-CT. מגוון התנועה היה מוגבל באופן משמעותי במפרק הברך קיבוע מאשר שנצפתה במפרק הברך משותפת הממחיש את האפקטיביות של מודל זה. חוץ מזה, ניתוח היסטולוגית חשף את ההתפתחות של התצהיר הסיבי והדבקה של הקפסולה מפרק הברך האחורי העליון לאורך זמן. כך, זה מודל פולשני מיני עשוי להיות מתאים לחקות את הפיתוח של קיבוע חוזה משותף בברך.

Introduction

שיתופי פעולה מוגדרים כהגבלה בטווח פסיבי של תנועה (ROM) של מפרק דיארדייל1,2. הטיפולים הנוכחיים שמטרתה למנוע ולטפל בחוזה משותף השיגו כמה הצלחות3,4. עם זאת, המנגנון המולקולרי הבסיסי של החוזה המשותף שנותר ברובו אינו ידוע5. האטיולוגיה של משותף בקהילות חברתיות שונות מגוונת מאוד וכוללת גורמים גנטיים, מצבים פוסט-טראומטיים, מחלות כרוניות, וחוסר ניידות ממושך6. מקובל לעשות שהניידות היא סוגיה קריטית בפיתוח חוזה משותף נרכש7. אנשים הסובלים מחוזה משותף מרכזי עשוי בסופו של דבר לגרום נכות פיזית8. לפיכך, מודל בעלי חיים יציב ומלא הכרחי לחקירת מנגנוני הפתופסולוגית הפוטנציאליים של מנגנונים משותפים שנרכשו.

מודלים משותפים בעלי הברך בנויים המושרה כיום מושגת בעיקר על ידי ניצול הגבס לא פולשני, תיקונים חיצוניים, תיקונים פנימיים. וואטאנאבה ואח ' דיווחו על האפשרות לשימוש ביציקת גבס על מפרקים בברך חולדה9. על ידי לבישת ז'קט מיוחד, צד אחד של המפרק הגפיים התחתון של החולדה הוא מקיבוע על ידי גבס. מפרק הברך העכברוש יכול להישאר מלא. ללא טראומה כירורגית10,11 עם זאת, הן תנועות מפרקים הירך והקרסול מושפעים גם על ידי צורה זו של השתק, אשר עשוי להגביר את מידת ניוון שרירים בתוך המותניים הארבע- ארבע או הגקינממיוס 12. בנוסף, יש להימנע מהבצקת והגודש של הגפיים האחוריות על-ידי החלפת הגבס בנקודות זמן, העשויות להשפיע על המשכיות התנועה. שיטה מקובלת נוספת להקמת מודל חוזה משותף לברך משתמשת בקיבעון כירורגי חיצוני. נגאי et al. משולב תיל קירשner וחוטי פלדה לתוך fixator חיצוני, אשר מקיבוע מפרק הברך כדי כ 140 ° כיפוף של13. בשיטה זו, שרף משמש כדי לכסות את פני השטח כדי למנוע שריטות בעור. למרות קיבוע הקיבעון החיצוני הוא חזק ואמין14,15, לעורית החוט התיל המסילה מסלולים עשוי להגביר את הסיכון של זיהום16. בניסיון שלנו, באמצעות טכניקת הקיבעון החיצוני עשוי להפחית את הפעילות היומית של חולדות עקב עלייה בהתנהגות ללקק ממוזג.

לחילופין, Trudel et al תיאר מודל מקובל היטב של חוזה משותף המפרק בברך חולדה מבוסס על קיבוע פנימי כירורגי17 (שיטה זו שונתה מן האחד בשימוש על ידי אוונס ועמיתים18). בעיקר, שיטה זו מדגיש את החשיבות של ניצול טכניקה מיני החתך כדי למזער את הפצעים כירורגית. התפתחות יעילה של חוזה משותף הוכיחה במודל זה19. עם זאת, הפרוטוקול כיצד לבצע ניתוח מינימלי כדי לחשוף את משטח העצם עדיין לא ברור20. כמו כן, המיקום המדויק שבו הבורג הוא קידוח לא מובן במלואו. השרשה של הקיבעון הפנימי דרך דרך תת עורית או תת-שרירית הוא עדיין21שנוי במחלוקת. כדי לפתור בעיות אלה, שינו את השיטה הזאת על ידי כלילת הפרדה מתאימה של פער השריר, אשר מאפשר חשיפה מיני פולשנית של משטח העצם ומיקום ההשתלה דרך ערוץ תת שרירי. פרוטוקול זה הוביל לשיקום הפוסט-מהיר. בחולדות לאחר הניתוח בעלי חיים פיתחו מגוון משותף מוגבל של תנועה לאחר השתק, אשר היה עקבי עם שינויים מורפולוגיים של קופסית הדבקה שהתקבלו מהניתוח היסטולוגית. כמו כן, אנו מתארים מיקום אפשרי מדויק של בורגי הקדח כפי שאושר על ידי ניתוח רנטגן או ניתוח מיקרו-CT. כך, מחקר זה נועד לתאר בפרוטרוט טכניקה מינימלית פולשנית במודל הברך משותפת חוזה שהוקמה על ידי הפרדה השריר הפער מודוס בשילוב עם שיטת החתך מיני. אנו מאמינים כי טכניקות פולשני מינימלית יכול להפחית את הטראומה בעלי חיים ולחקות ביעילות את התהליך הפתולוגי של כיפוף משותף של החוזה.

Protocol

כל ההליכים בוצעו בהתאם למדריך לטיפול ולשימוש בבעלי חיים מעבדתיים ואושרו על ידי בית החולים המסונף השלישי של אוניברסיטת סון יאט-סן מוסדיים ועדת השימוש בבעלי חיים (מספר הרשאה: 02-165-01). כל הניסויים בבעלי חיים נערכו על פי הנחיות הגעה.

1. הכנה לפני הניתוח

הערה: איור 1 מציג את העיצוב של ההליך הכירורגי.

  1. משתק בצורה נוקשה את מפרק הברך עם צלחת פלסטיק ושני ברגים ממתכת בקירוב של 135 °.
    הערה: בצע את הניתוח בעצם הירך האבובית ובשוקה המרוחק מבלי להפר את המרכיב המשותף.
  2. הכינו חומרים וכלים לקיבוע פנימי.
    1. בניית צלחות פלסטיק פוליפרופילן כיתה על ידי גזירה של 5 מ"ל מזרק (איור 2a) באמצעות מספריים כירורגית כדי להתאים את הממדים הבאים: אורך, 25 מ"מ; רוחב, 10 מ"מ; עובי, 1 מ"מ (איור 2b). החלק את ההיקף של הצלחת עם אזמל אנכית. לשטוף את הצלחת עם תמיסת מלח סטרילי לשטוף את הפסולת על ידי שלוש פעמים.
      1. חטא עם 75% אתנול עבור 4 h ואחריו הקרנת אור אולטרה סגול עבור 3 שעות.
    2. לפני קידוח חורים בלוח הפלסטיק: להכין מקדחה במהירות נמוכה מהירות החשמל עם מהירות של כ 0-4000 rpm (איור 2 ג). מקדחה שני חורים בשני קצות הצלחת, קטרים הם 1 מ"מ ו 0.9 מ"מ, בהתאמה (איור 2d). התאמה שני הקצוות של הצלחת עם M 1.4 mm x 8 מ"מ ו-M 1.2 mm x 6 מ"מ ברגים פלדה, בהתאמה (איור 2e).
      1. לנגב עם 75% אתנול לחטא עם אור UV עבור 3 h לפני השימוש.
  3. הכנת כלים כירורגיים: 1 מלחציים ישר מסוג יתוש-הומוסטטי, 1 מלקחיים מעוקלים חלקה, 2 משני העפעפיים, 1 מחזיק מחט, 1 מלקחיים רקמה, 1 תפר מספריים, 1 מספריים מיקרו רקמה 1 אזמל (איור 2f). לחטא את כלי הניתוח על ידי אוטוקלינג ב 121.3 ° c עבור 20 דקות וייבוש.
  4. בעלי חיים ניסיוניים
    1. השימוש מסוימים הפתוגן חינם (SPF) כיתה skeletally בוגרים זכר ספראג-דאולי (או Wistar) חולדות, במשקל בין 250-350 g בניסוי.
      הערה: בחרו עכברושים נקביים או זכרים לניסוי.
    2. מניחים את החולדות בכלובים ולשמור בחדר 12 h אור/12 h כהה מחזור מעבדה מבוקרת. מספקים מזון ומים נאותים.

2. כירורגיה

  1. . כוונן את הטמפרטורה שים משטח מחמם על מצע כירורגי. בחדר ניתוח תרמוסטטי
  2. הרדמה והכנה לעור
    1. שוקלים את העכברוש בקנה מידה אלקטרוני ולהקליט.
    2. לרסן את העכברוש ולבצע הזרקה תוך הצפק של נתרן פנטוברביטל (30 מ"ג/ק"ג) כדי הרדמה מושרה. הערכה כי בעל החיים מורדם מספיק באמצעות קמצוץ הבוהן22. העיניים עם חומר סיכה כדי להגן על הקרנית מפני ייבוש במהלך הניתוח.
    3. לגלח את הגוף התחתון של החולדה כולל שני הגפיים האחוריות עם קוצץ חשמלי לחטא עם תמיסת povidone יוד פעמיים ו 75% אתנול שלוש פעמים.
    4. מניחים את העכברוש מהצד, ומכסים עם הכיסוי הכירורגי חושף רגל אחת האחוריות והירך.
    5. לחטא את האזור כירורגי שוב עם יוד povidone.
  3. משתק את מפרק הברך עם קיבוע פנימי בטכניקה מיני פולשנית.
    הערה: לשמור את החתך לח כראוי עם תמיסת מלח סטרילי במהלך הפעולה. הניתוח דורש בדרך כלל. שני מנתחים
    1. לסמן את הכיוון של חיתוך העור. בקצה המרוחק של עצם הירך הגדול יותר, למתוח קו לאורך ההקרנה פני השטח של הפער שריר בין הווסטוס שריר הזרוע שרירים (איור 3a). לאחר העור האפידרמיס לאורך קו הציור משוער 1.5 ס מ (איור 3b).
    2. במיומנות לנתח את הפער שריר בין ולוטם ושרירי הזרוע עם מלקחיים רקמות עד פיר הירך נחשף כ 1 ס מ אורך (איור 3 ג). השתמש במפסק כדי להקל על הפרדה רציפה של פער השריר.
    3. במהלך העור האפידרמיס משוער 1 ס מ לאורך ההקרנה פני השטח הגוף של פער השריר בין הקדמית הפרושורי ו fibularis הארוך על הגפיים התחתון המרוחק (איור 3d). במיומנות לנתח את הפער שריר עד השוקה נחשף כ 1 ס מ אורך (איור 3e).
    4. הפרד את הרקמות הרך על ידי המדחק ואת מלקחיים חלק, לשמור על הניצב ולקדוח אחד 1.0 מ"מ חור קוטר לתוך פיר הירך במהירות של 1,500 rpm באמצעות מקדחה חשמלית (איור 3f). מיקום הקידוח הנכון הוא 8 מ"מ מתחת לקצה התחתון של trochanter גדול. לחץ לחיצה מהירה על הפצע כדי להפסיק את הדימום.
      הערה: בקוטר הקידוח התקין ניתן למנוע שברים בניתוח.
    5. תרגיל אחד 0.9 mm חור קוטר לתוך השוקה משוער 4 מ"מ מתחת לקצה של היתוך tibiofibular (איור 4a). בצע את הקידוח בזהירות כדי למנוע את הריסוק של השרירים או הגידים.
    6. השתמש בתפס מסוג יתוש ישר ליצירת מסלול תת-שרירי מחור השוקה ועד לחור הירך. מנהרת השרירים עוברת מתחת לגקינממיוס בקצה השוקה ומעל העכוזהשרירי, מתחת לשרירי השריר בסוף עצם הירך.
    7. השתמש אחד M 1.4 mm x 8 מילימטר בורג פלדה כדי לאבטח קצה אחד של צלחת הפלסטיק (עם חור בקוטר 1.0 מ"מ) בעצם הירך האבובת (איור 4b). השתמש אחד M 1.2 מ"מ x 6 מ"מ בורג פלדה כדי לאבטח קצה אחר של צלחת פלסטיק (עם חור בקוטר 0.9 מ"מ) בתוך השוקה (איור 4c). להבטיח את מפרק הברך ללא עיוות וארוס.
  4. לסגור את הפצע: תפר myofascia, עמוק fasciae, ורקמות תת עורית באמצעות 4-0 תפרים נספגים (איור 4 ד). סגרו את העור בעזרת תפרים פוליאמיד (איור 4f).

3. ניהול פוסט-פעיל

  1. החלת כאבים בדואר האלקטרוני באמצעות הזרקה תת עורית של Buprenorphine (0.03 mg/mL) ב 0.05 מ"ג/ק"ג. הוסף 5 מ"ג/mL Neomycin לתוך מי שתייה 5 ימים לאחר הניתוח.
  2. הכנס את תערובת כאבים (בופראורפין ו Carprofen) בהתאמה ב 0.05 mg/ק"ג ו 5 מ"ג/ק"ג תת-עורי פעמיים ביום לפחות 72 שעות לאחר הפעולה.
  3. בדוק אם האיבר האחוריות היה מעל בצקת במקרה של פציעה בכלי דם. וודא כי החולדות יכול ללכת כרגיל במקרה של פציעה בעצבים במהלך הניתוח.

4. בדיקה פוסט-אופרטיבית

  1. שימו לב לריפוי החתך הכירורגי ובדיקה גופנית של מפרק הברך כדי להעריך סימנים מוקדמים של זיהום בכל יום אחר. בדקו את מידת הנפיחות של הקרסול והמפרק במקרה של בצקת רציפה.
    הערה: זיהום מוקדם הניתוח יכול לגרום לפגיעה בפצע, הרגליים נפיחות, ומתעכב הפצע ריפוי.
  2. לבצע הדמיה רנטגן של האיבר הקודם כדי להבטיח כי באופן נכון להציב את הברגים ביום לאחר הראשון.
    הערה: ניתוח סריקת מיקרו-CT הוא אפשרות חלופית נוספת להצגת המיקום המתאים ולכיוון בורגי הפלדה.
  3. למדוד את טווח פסיבי של תנועה (ROM) כדי להעריך את התפתחות החוזה. לקחת מדידה משותפת ROM הברך בקבוצות זמן שונות, כמתואר בעבר20.
    1. בקיצור, המתת החסד את החולדות ואת העור הגפיים. הסר את אימובילייזר ולמדוד את זווית המפרק בברך באמצעות מדידת מכונות בשני torques (667 או 1,060 g/cm)23.
    2. חשב את ROM כתוצאה של החוזה הכולל, החוזה היוגני, והחוזה הארגניים בנפרד על בסיס יעדי החקירה24.
      הערה: הגדר קבוצות זמן שונות (כלומר, 1, 2, 4, 8, 16, ו 32 שבועות) בהתאם ליעדי המחקר. מפרק הברך הצלעות (לא פעיל או מופעל ברמאות) יכול לשמש כפקד2.
  4. ניתוח היסטולוגית של קפסולות. הברך האחוריים
    1. . הכן את הרקמה המשותפת לנתח את רקמת הברך משותף לתקן את זה עם 4% פאראמפורמלדהיד. Decalcify ולהטביע אותו ב פרפין כפי שדווח בעבר25. חותכים את הסעיפים (5 μm) ברמת המיקונדילאר המדיאלי במישור המשונן.
      הערה: בחר לבצע הערכה שונה להערכת כולל הוא, אלדהיד-fuchsin-מאסנה גולדנר (AFMG), Elastica – Masson, או אימונוהיסטוככימיה כתמים למחקר היסטולוגית בקפסולה משותף המבוסס על יעדי המחקר שלך15, . עשרים ושש
    2. . בקפסולות הברך האחוריים לצלם את האזור האחורי של מפרק הברך. שימו לב להצהרה ושינויי הדבקה מסיבי בין מערכת הדיאפהיזיס-סינוביאום לבין מניסקוס6.
      הערה: שינויים פתולוגיים של כמוסה משותפת נחשבים לגורם פתוגניים לחוזה משותף בברך. למדוד את אורך, את עובי, ואת האזורים הקופסית של הקפסולה האחורי כפי שתוארו בעבר על פי תוכן המחקר27.

תוצאות

הבחנו כי חולדות קיבלו ניתוח מינימלית פולשנית יכול לחזור לדיאטה הרגילה רק יום אחד באופן שוטף. בפרט, החתך הכירורגי מצולק ללא התפקות (איור 5a). הנפיחות של הקרסול המפרקים המפרק בתוך הגפיים הפעיל הגוף נעלם כמעט לחלוטין שני ימים הדו (איור 5b) בהשוו?...

Discussion

מחקר זה נועד להבהיר צעד אחר צעד בברך משותפת שיטת השתק באמצעות טכניקה מיני פולשנית המאפשר שיקום מהיר של הניתוח בבעלי חיים לאחר הניתוחים. מקובל, שריר הפער הגישה ההפרדה נחשבת לטכניקה מינימלית פולשנית בכירורגיה אורתופדית. כצפוי, מצאנו כי חולדות יכול לחזור לתזונה נורמלית ופעילויות רק יום אחד ?...

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgements

עבודה זו היתה נתמכת על ידי מענקים של הארגון הלאומי למדעי הטבע של סין (No. 81772368), קרן המדע הטבעי של פרובינצית גואנג-דונג (No. 2017A030313496), ו-גואנג-דונג מחוזי מדע תוכנית טכנולוגיה פרוייקט (No. 2016A020215225; No 2017B090912007). המחברים מודים לד ר פיי ג'אנג, md מהמחלקה לכירורגיה אורתופדיים, בית החולים המזוהה השמיני של אוניברסיטת סון יאט-סן על הסיוע הטכני שלו במהלך השינוי.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
AnerdianShanghai Likang Ltd.310173antibacterial
Buprenorphine Shanghai Shyndec Pharmaceutical Ltd./analgesia 
CarprofenMCEHY-B1227analgesia 
Cross screwdriverSTANLEYPH0*125mmtighten the screws
Electric drillWEGO185drill hole(with stainless steel drill 0.9mm;1.0mm)
Microsurgical instrumentsRWD/Orthopaedic surgical instruments for animals
NeomycinSigmaN6386antibacterial
Sodium pentobarbitalSigmaP3761 anaesthetize
Stainless Steel screwsWEGOm1.4*8; m1.2*6screw(part of internal fixation) 
Syringe WEGO3151474use for plastic plate(part of internal fixation) 
μ-CT ALOKALatheta LCT-200in vivo CT scan

References

  1. Akeson, W. H., Amiel, D., Woo, S. L. Immobility effects on synovial joints the pathomechanics of joint contracture. Biorheology. 17 (1-2), 95-110 (1980).
  2. Trudel, G., Uhthoff, H. K., Brown, M. Extent and direction of joint motion limitation after prolonged immobility: an experimental study in the rat. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 80 (12), 1542-1547 (1999).
  3. Arsoy, D., et al. Joint contracture is reduced by intra-articular implantation of rosiglitazone-loaded hydrogels in a rabbit model of arthrofibrosis. Journal of Orthopaedic Research. , (2018).
  4. Glaeser, J. D., et al. Anti-Inflammatory Peptide Attenuates Edema and Promotes BMP-2-Induced Bone Formation in Spine Fusion. Tissue Engineering. Part A. , (2018).
  5. Fergusson, D., Hutton, B., Drodge, A. The epidemiology of major joint contractures: a systematic review of the literature. Clinical Orthopaedics and Related Research. 456, 22-29 (2007).
  6. Wong, K., Trudel, G., Laneuville, O. Noninflammatory Joint Contractures Arising from Immobility: Animal Models to Future Treatments. BioMed Research International. 2015, 848290 (2015).
  7. Clavet, H., Hebert, P. C., Fergusson, D., Doucette, S., Trudel, G. Joint contracture following prolonged stay in the intensive care unit. CMAJ : Canadian Medical Association Journal. 178 (6), 691-697 (2008).
  8. Dehail, P., et al. Joint contractures and acquired deforming hypertonia in older people: Which determinants?. Annals of Physical and Rehabilitation Medicine. , (2018).
  9. Watanabe, M., Kojima, S., Hoso, M. Effect of low-intensity pulsed ultrasound therapy on a rat knee joint contracture model. Journal of Physical Therapy Science. 29 (9), 1567-1572 (2017).
  10. Goto, K., et al. Development and progression of immobilization-induced skin fibrosis through overexpression of transforming growth factor-ss1 and hypoxic conditions in a rat knee joint contracture model. Connective Tissue Research. 58 (6), 586-596 (2017).
  11. Sasabe, R., et al. Effects of joint immobilization on changes in myofibroblasts and collagen in the rat knee contracture model. Journal of Orthopaedic Research. 35 (9), 1998-2006 (2017).
  12. Sakakima, H., Yoshida, Y., Sakae, K., Morimoto, N. Different frequency treadmill running in immobilization-induced muscle atrophy and ankle joint contracture of rats. Scandinavian Journal of Medicine & Science in Sports. 14 (3), 186-192 (2004).
  13. Nagai, M., et al. Contributions of biarticular myogenic components to the limitation of the range of motion after immobilization of rat knee joint. BMC Musculoskeletal Disorders. 15, 224 (2014).
  14. Matsuzaki, T., Yoshida, S., Kojima, S., Watanabe, M., Hoso, M. Influence of ROM Exercise on the Joint Components during Immobilization. Journal of Physical Therapy Science. 25 (12), 1547-1551 (2013).
  15. Kaneguchi, A., Ozawa, J., Kawamata, S., Yamaoka, K. Development of arthrogenic joint contracture as a result of pathological changes in remobilized rat knees. Journal of Orthopaedic Research. 35 (7), 1414-1423 (2017).
  16. Hargreaves, D. G., Drew, S. J., Eckersley, R. Kirschner wire pin tract infection rates: a randomized controlled trial between percutaneous and buried wires. Journal of Hand Surgery. 29 (4), 374-376 (2004).
  17. Trudel, G. Differentiating the myogenic and arthrogenic components of joint contractures. An experimental study on the rat knee joint. International Journal of Rehabilitation Research. 20 (4), 397-404 (1997).
  18. Evans, E. B., Eggers, G. W. N., Butler, J. K., Blumel, J. Experimental Immobilization and Remobilization of Rat Knee Joints. Journal of Bone and Joint Surgery. 42 (5), 737-758 (1960).
  19. Hagiwara, Y., et al. Expression patterns of collagen types I and III in the capsule of a rat knee contracture model. Journal of Orthopaedic Research. 28 (3), 315-321 (2010).
  20. Trudel, G., Uhthoff, H. K. Contractures secondary to immobility: is the restriction articular or muscular? An experimental longitudinal study in the rat knee. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 81 (1), 6-13 (2000).
  21. Hagiwara, Y., et al. Increased elasticity of capsule after immobilization in a rat knee experimental model assessed by scanning acoustic microscopy. Upsala Journal of Medical Sciences. 111 (3), 303-313 (2006).
  22. Adelsperger, A. R., Bigiarelli-Nogas, K. J., Toore, I., Goergen, C. J. Use of a Low-flow Digital Anesthesia System for Mice and Rats. Journal of Visualized Experiments. (115), (2016).
  23. Trudel, G., O'Neill, P. A., Goudreau, L. A. A mechanical arthrometer to measure knee joint contracture in rats. IEEE Transactions On Rehabilitation Engineering. 8 (1), 149-155 (2000).
  24. Campbell, T. M., et al. Using a Knee Arthrometer to Evaluate Tissue-specific Contributions to Knee Flexion Contracture in the Rat. Journal of Visualized Experiments. (141), (2018).
  25. Moriyama, H., et al. Alteration of knee joint connective tissues during contracture formation in spastic rats after an experimentally induced spinal cord injury. Connective Tissue Research. 48 (4), 180-187 (2007).
  26. Onoda, Y., et al. Joint haemorrhage partly accelerated immobilization-induced synovial adhesions and capsular shortening in rats. Knee Surgery, Sports Traumatology, & Arthroscopy. 22 (11), 2874-2883 (2014).
  27. Trudel, G., Jabi, M., Uhthoff, H. K. Localized and adaptive synoviocyte proliferation characteristics in rat knee joint contractures secondary to immobility. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 84 (9), 1350-1356 (2003).
  28. Jiang, S., et al. Endoplasmic reticulum stress-dependent ROS production mediates synovial myofibroblastic differentiation in the immobilization-induced rat knee joint contracture model. Experimental Cell Research. 369 (2), 325-334 (2018).
  29. Pithioux, M., et al. An Efficient and Reproducible Protocol for Distraction Osteogenesis in a Rat Model Leading to a Functional Regenerated Femur. Journal of Visualized Experiments. (128), (2017).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

147

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved