דלדול פעילי שטח בשילוב עם אוורור מזיק גורם למודל רבייה של תסמונת מצוקה נשימתית חריפה (ARDS)

Summary

שילוב של שטיפה פעילי שטח באמצעות 0.9% מלוחים (35 מ"ל / קילוגרם משקל גוף, 37 °C) ואוורור נפח גאות ושפל גבוה עם מציצה נמוכה כדי לגרום לפגיעה ריאות הנגרמת על ידי מכונת הנשמה בינונית (VILI) תוצאות תסמונת מצוקה נשימתית חריפה ניסיונית (ARDS). שיטה זו מספקת מודל של פגיעה בריאות עם יכולת גיוס נמוכה /מוגבלת ללמוד את ההשפעה של אסטרטגיות אוורור שונות לתקופות ממושכות.

Abstract

מודלים שונים של בעלי חיים קיימים כדי לחקור את הפתומיצ'ניות המורכבות של תסמונת המצוקה הנשימתית החריפה (ARDS). מודלים אלה כוללים עירוי פולמו-עורקים של חומצה אולאית, עירוי של אנדוטוקסינים או חיידקים, קשירת cecal ונקב, מודלים שונים של דלקת ריאות, מודלים איסכמיה ריאות / רפרפוזיה, וכמובן, מודלים דלדול פעילי שטח, בין היתר. דלדול פעילי שטח מייצר הידרדרות מהירה, לשחזור של חילופי גז ריאתי והמודינמיקה וניתן לגרום לה בחזירים מרדים באמצעות שטיפת ריאות חוזרת ונשנית עם 0.9% תמיסת מלח (35 מ"ל / קילוגרם משקל גוף, 37 מעלות צלזיוס). מודל דלדול פעילי השטח תומך בחקירות עם ניטור נשימתי והמודינמי סטנדרטי עם מכשירים מיושמים קלינית. אבל המודל סובל מגיוס גבוה יחסית ואוורור עם לחצים גבוהים דרכי הנשימה יכול להפחית באופן מיידי את חומרת הפציעה על ידי פתיחה מחדש של אזורי ריאות atelectatic. לכן, מודל זה אינו מתאים לחקירות של משטרי הנשמה המשתמשים בלחצים גבוהים דרכי הנשימה. שילוב של דלדול פעילי שטח ואוורור מזיק עם נפח גאות ושפל גבוה / לחץ תפוגה חיובי נמוך (טלוויזיה גבוהה / מציצה נמוכה) כדי לגרום לפגיעה ריאות הנגרמת על ידי מכונת הנשמה (VILI) יפחית את יכולת הגיוס של פגיעת הריאות כתוצאה מכך. היתרונות של אינדוקציה בזמן והאפשרות לבצע מחקר ניסיוני בסביבה הדומה ליחידה לטיפול נמרץ נשמרים.

Introduction

התמותה מתסמונת המצוקה הנשימתית החריפה (ARDS) נותרה גבוהה עם ערכים מעל 40%¹ למרות מחקר אינטנסיבי מאז התיאור הראשון שלה על ידי אשבו ופטי בשנת 1967². מטבע הדברים, חקירת גישות טיפוליות חדשניות מוגבלת במרפאה בשל חששות אתיים והיעדר תקינה של הפתולוגיות הבסיסיות, תנאי הסביבה ותרופות משותפות, בעוד שמודלים של בעלי חיים מאפשרים מחקר שיטתי בתנאים סטנדרטיים.

לכן, ARDS ניסיוני הושרה בבעלי חיים גדולים (למשל, חזירים) או בעלי חיים קטנים (למשל, מכרסמים) באמצעות שיטות שונות כגון עירוי פולמו עורקים של חומצה אולאית, עירוי תוך ורידי (כלומר) של חיידקים אנדוטוקסינים, או מודלים קשירה cecal ונקב (CLP) גרימת ARDS המושרה אלח דם. בנוסף, פציעות ריאות ישירות הנגרמות על ידי כוויות ושאיפת עשן או איסכמיה /רפרפוזיה ריאות (I/R) משמשים³. מודל אחד בשימוש תכוף של פגיעה ישירה בריאה הוא דלדול פעילי שטח עם שטיפת ריאות כפי שתואר לראשונה על ידי לכמן ואח 'ב שרקנים⁴.

דלדול פעילי שטח היא שיטה רבת לשחזור, המביאה במהירות לפשרות בחילופי גזים ובמודינמיקה⁵. יתרון מרכזי הוא האפשרות להחיל דלדול פעילי שטח במינים גדולים המאפשרים מחקר תמיכה עם מכונות הנשמה מכניות, צנתרים וצגים בשימוש קליני. עם זאת, חיסרון מרכזי במודל דלדול פעילי השטח הוא גיוס מיידי של אזורי ריאות א-רקטיים בכל פעם שמופעלים לחצים גבוהים של דרכי הנשימה או תמרוני גיוס, כגון מיצוב נוטה. לכן, המודל אינו מתאים לחקור, למשל, אוורור אוטומטי עם רמות PEEP גבוהות עבור פעמים ממושכות⁶. Yoshida ואח ' תיאר שילוב של דלדול פעילי שטח ואוורור עם לחצים גבוהים השראה דרכי הנשימה כדי לגרום ניסיוני ARDS⁷, אבל המודל שלהם דורש תחזוקה משוכללת של לחץ חלקי של חמצן (P_aO 2 ) במסדרון מוגדר מראש באמצעות דגימת גז דם חוזרת ונשנית והתאמה של לחץ הנהיגה על פי שולחן הזזה של לחץ מעורר_השראהו- PEEP.

בסך הכל, מודל עם אוורור פוגעני מדי או התאמה חוזרת ומייגעת של משטר האוורור יכול לגרום נזק מבני של הריאות, שהוא חמור מדי וכתוצאה מכך כשל איברים מרובים לאחר מכן. לכן, מאמר זה מספק תיאור מפורט של מודל אפשרי בקלות של דלדול פעילי שטח בתוספת אוורור מזיק עם טלוויזיה גבוהה / ציוץ נמוך עבור אינדוקציה של ARDS ניסיוני, אשר תומך במחקר עם פרמטרי אוורור בשימוש קליני לתקופות ממושכות.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

הניסויים נערכו במחלקה לרפואה ניסיונית, Charité - אוניברסיטת רפואה, ברלין, גרמניה (אושרו על פי EN DIN ISO 9001:2000) ואושרו על ידי הרשויות הפדרליות לחקר בעלי חיים בברלין, גרמניה, לפני הניסויים (G0229/18). עקרונות הטיפול בבעלי חיים במעבדה שימשו בכל הניסויים והם בהתאם להנחיות האגודה האירופית והגרמנית למדעי בעלי החיים במעבדה.

1. חיות מעבדה ורווחת בעלי חיים

1. לערוך את כל הניסויים חזירים זכרים מרדים עמוק (Landrace גרמני × לבן גדול) של 3-4 חודשים של גיל עם משקל גוף (bw) של 30-40 ק"ג.

2. הרדמה, צנרור ואוורור מכני

1. אין לספק מזון יבש במשך 12 שעות לפני ההרדמה, כדי למנוע בטן מלאה של החזירים. אפשר גישה חופשית למים וקש/חציר כדי למזער את הלחץ.
2. פרמדיקאט עם הזרקה תוך שרירית של שילוב של אזפרון (3 מ"ג/ק"ג bw), אטרופין (0.03 מ"ג/ק"ג bw), קטמין (25 מ"ג/ק"ג bw) וקסילאסין (3.5 מ"ג/ק"ג bw) לתוך שרירי הצוואר של החזיר, בעוד בעלי החיים עדיין נשמרים במתקן הדיור שלהם כדי למזער את הלחץ.
   הערה: אימון יומי של ליטוף צוואר החיה תוך האכלת כמה קוביות סוכר לפני הניסוי והחלת ההזרקה תוך האכלת קוביות סוכר בצורה מאומנת יקלו על פרמדיקה חלקה ויפחיתו עוד יותר את הלחץ.
   1. מניחים את החיה על אלונקה ומכסים את העיניים במטלית להובלה ברגע שמגיעים לרמה נאותה של הרדמה.
   2. מעבירים את החזיר לתיאטרון הכירורגי ותמיד מבטיחים נשימה ספונטנית מספקת.
   3. קח בלון חמצן, צינורות מתאימים ומסכה כדי לספק חמצן משלים בעת הובלת החזירים, אם מתקני הדיור אינם סמוכים למעבדה.
   4. מניחים את החזיר בתנוחה נוטה preoxygenate עם מסכה שמתאימה חוטם של החיה באמצעות זרימה גבוהה של חמצן (למשל, 10 L / min).
3. השתמש צנתר וריד היקפי (בדרך כלל 18 או 20 גרם) כדי לקבל גישה ורידים. מניחים את צנתר הווריד ההיקפי לתוך אחד ורידי האוזן לאחר הליך ניגוב עם החלפת אלכוהול.
   1. התחל עירוי עם פתרון גבישי מאוזן ולהבטיח את המיקום הנכון של הקטטר עבור עירוי הבא של הרדמה.
   2. להחדיר 500 מ"ל של פתרון גבישי מאוזן כמו עירוי בולוס ואחריו עירוי רציף של 4 מ"ל / קילוגרם / שעה לתמיכה בנוזלים.
   3. התחל ניטור רוויית החמצן ההיקפית (SpO₂) על ידי אבטחת SpO 2 -חיישן_באחתהאוזניים או הזנב.
4. לגרום להרדמה על ידי הזרקת פרופופול (כ 5-10 מ"ג/ק"ג - המינון המדויק תלוי בהשפעת רפואה שונה מבעל חיים לחיה) עבור צנרודציה orotracheal.
   הערה: הזרקה מוקדמת של אופיואידים תקל על צנרור נוסף אך דורשת ניסיון רב כדי למנוע דום נשימה מוקדם של החיה. זריקה של 100 מיקרוגרם של פנטניל (פנטניל סיטראט, 100 מיקרוגרם / מ"ל) עשויה לחזור על עצמה עד שקצב הנשימה הספונטני מאט לכ -20 /דקה לפני הזרקת פרופופול.
5. צנרר את החיה עם צינור אנדוטראצ'ל אזוק (7.5 - 8.0 מ"מ מזהה) ולרינגוסקופ המיועד לבעלי חיים גדולים (להב ישר באורך של כ -25 ס"מ).
   הערה: צנרוב הוא הקל ביותר בעמדה נוטה כפי שתואר בפירוט על ידי תייסן ואח^'8.
   1. לאמת את המיקום של צינור אנדוטראצ'אל על ידי התבוננות בצורת הגל הטיפוסית של CO₂ במהלך התפוגה על CO₂- צג (קנוגרף).
   2. השתמש auscultation כדי לבדוק קולות נשימה דו צדדית שווה.
      הערה: החזירים יכולים להיות מאווררים מכנית עם דחיסה ידנית של כלוב הצלעות משני הצדדים תוך אספקת חמצן עם זרימה גבוהה במקרה של צנרול נכשל או מתעכב.
6. הגדר את שבר החמצן מעורר ההשראה (F_IO₂) ל- 1.0, תדירות הנשימה ל- 15-20/דקה, נפח גאות ושפל ל- 8-9 מ"ל / קילוגרם bw, יחס השראה לתפוגה (I:E) ל- 1:1.5, והפעל לחץ חיובי של תפוגת קצה חיובית (PEEP) של 5 ס"מH₂O כדי להתחיל אוורור מכני. התאם את ההגדרות כדי למקד לחץ חלקי של פחמן דו חמצני (P_etCO₂₎של 35-40 מ"מ כ"ג ו SpO₂ מעל 95%.
   1. השתמש עירוי עירוי רציף של תיופנטלון (20 מ"ג / קילוגרם / שעה) ופנטניל (7 מיקרוגרם / קילוגרם / שעה) כדי לשמור על הרדמה.
      הערה: המינון הדרוש עשוי להשתנות מבעל חיים לבעלי חיים ובין הגדרות ניסיוניות. זה חיוני כדי לשמור על עומק מספיק של הרדמה במהלך הניסוי לרווחת בעלי חיים וסיבות מדעיות.
   2. לעקוב מקרוב אחר החיה לתגובות מתח/כאב (כגון עלייה בקצב הלב, לחץ הדם או קצב הנשימה) במהלך מכשור.
      הערה: מכשור צריך להיות אפשרי ללא מתן מרפה שרירים אם עומק ההרדמה מספיק.
   3. ניהול מרפה שרירים, למשל, pancuronium bromide (0.15 מ"ג/ קילוגרם bw i.v. בולוס, ואחריו עירוי רציף של 0.15 מ"ג / קילוגרם bw / h או זריקות בולוס חוזרות ונשנות), אם הרפיה בשרירים יש צורך בניסוי (למשל, לפני דלדול פעילי שטח, לפני מדידות ציות ריאות אוורור מזיק).
7. טכניקות מכשור
   1. להפוך את החיה לתנוחה על-ביתית.
   2. אבטחו את הצינור האנדוטראצ'אל ואת קו העירוי תוך כדי הפיכת החיה.
   3. לסגת הרגליים באמצעות תחבושות כדי למתוח את העור מעל אתרי החתך המתוכננים.
   4. לחטא את אזורי ההפעלה עם חיטוי עור מתאים כגון אלכוהול ויוד 1% פתרון.
8. קנוט את וריד הצוואר החיצוני עם קטטר ורידים מרכזי, בנוסף, להציג את נדן ההכנסה של קטטר עורקי ריאתי (PAC) לתוך אותו וריד.
   1. בצע 10 ס"מ גוון עור על הקו המחבר את הלסת התחתונה ואת ועצם החזה (צד שמאל או ימין אפשרי).
   2. תמיד מעריך מחדש את עומק ההרדמה ולהתאים את המינון, במידת הצורך.
   3. להפריד את הרקמה התת עורית ואת platysma עם מלקחיים רקמה ומספריים כירורגיים עד brachiocephalic ואת השרירים sternocephalic גלויים.
   4. המשך עם הליך חיתוך קהה כדי להפריד את fascia בין השרירים עד הווריד הצוואר החיצוני גלוי.
   5. השתמש בטכניקת סלדינגר⁹ כדי לנפח את וריד הצוואר החיצוני עם הצנתר הוורידי המרכזי ואת נדן ההחדרה מאוחר יותר של PAC.
      הערה: אין להרחיב את הווריד עם מרחיב כפי שהוא נעשה במקרה של גישה עורית. זה יקרע את הווריד. קרוב לתפרים סטנדרטיים. גדלי הנדן תלויים בגודל PAC שנבחר. נדן מציג 6F (אורך 10 ס"מ) ו PAC 5F של 75 ס"מ אורך חזירים של 30-40 ק"ג משקל גוף משמשים בדרך כלל.
9. ניתן לתמצת את עורק הירך לניטור לחץ דם פולשני.
   1. זהה את הקיפול בין שריר הגרסיליס ושריר סרטוריוס של הרגל האחורית (שמאל או ימין אפשרי) כדי למקם קו עורקי.
      הערה: הפעימה של עורק הירך צריכה להיות מוחשית בקלות.
   2. קנו את העורק באופן עורי עם טכניקת סלדינגר⁹.
   3. השתמש בגישה ישירה אם העורק אינו מישוש בקלות.
      1. חותכים דרך העור עם חתך באורך 5 ס"מ ומפרידים את הרקמה התת עורית עם מלקחיים רקמה ומספריים כירורגיים.
      2. השתמש בהליך חיתוך קהה המפריד בין fascia בין השרירים לרמה של עורק הירך.
         שים לב :D או לא לפצוע את כלי הספניוס על ידי ביצוע גולגולת ההליך לחתוך מהם.
      3. לולאה קשירה סביב עורק הירך, כך כלי יכול להיות סגור במקרה של דימום באתר של ניקוב. הימנע צעד זה במידת האפשר, כפי שהוא פוגע זרימת הדם לרגל האחורית.
      4. קנו את העורק בטכניקת סלדינגר⁹.
10. כייל את המתמרים כנגד האטמוספירה (אפס) ו 200 מ"מ כ"ג (קו עורקי) או 50 מ"מ כ"ג (קו ורידים מרכזי) וחבר אותם לקטטר העורקים ולקו הוורידים המרכזי כדי להתחיל בניטור.
    1. מניחים את מתמרי הלחץ כמחצית מגובה בית החזה במיקום המשוער של האטריום הימני.
11. בצע חתך קטן (4-5 ס"מ) חיתוך דרך העור מעל שלפוחית השתן עבור catherization של שלפוחית השתן.
    1. הפרד את הרקמה התת עורית באמצעות מכשירים קהים.
    2. מניחים תפר חוט ארנק (בקוטר 1-2 ס"מ) בקיר שלפוחית השתן.
       הערה: התפרים לא צריכים לחדור דרך כל השכבות של דופן שלפוחית השתן, אשר יגרום לאובדן שתן דרך הדקירות.
    3. בצע חותך קטן באמצע התפר ולהציג את קטטר השתן.
    4. מיד, לחסום את הבלון עם 10 מ"ל של מים מזוקקים ולמשוך את הצנתר לכיוון דופן שלפוחית השתן עד התנגדות אור מורגש.
    5. סגור את תיל הארנק סביב הקטטר. סגור את העור באמצעות תפרים סטנדרטיים.

3. הקדמת קטטר עורק הריאות (PAC)

1. בדוק את patency של הבלון של PAC עם 0.5-1 מ"ל של אוויר בהתאם לגודל של הקטטר ולנפח את הבלון שוב.
2. חבר את PAC למערכת מתמר הלחץ וכייל את המתמר נגד האטמוספירה (אפס) ו 100 מ"מ כ"ג.
3. הציגו את PAC דרך נדן ההגרמה עם בלון מנוטרל ל-10-15 ס"מ (בהתאם לאורך הנדן).
   1. לנפח את הבלון לאחר שעזב את הנדן ולקדם את PAC עוד יותר תוך ניטור הלחץ ואת צורות הגל הטיפוסי על צג הלחץ.
   2. לדחוף את PAC קדימה בעוד צורות הגל האופייניות של האטריום הימני, החדר הימני, ואת עורק הריאות מופיעים ולהפסיק לקדם את PAC כאשר לחץ טריז נימי ריאתי (PCWP) גל צורה נראית.
   3. הקלט את ה-PCWP בתפוגת הקצה ונפח את הבלון (ראו איור 1 עבור העקומות המתאימות).
      הערה: לאחר דפלציה של הבלון, צורת גל PCWP חייבת להיעלם, ואת צורת גל הלחץ העורקי ריאתי חייב להיות גלוי. אם לא ניתן לראות את צורת גל הלחץ העורקי הריאתי, הצנתר ככל הנראה מוכנס רחוק מדי לתוך עורק ריאות והגיע לתנוחת טריז אוטומטית. התוצאה היא חסימה קבועה של כלי ריאתי ויש לתקן על ידי משיכת הקטטר בחזרה עד שצורת גל הלחץ העורקי הריאתי מופיעה מחדש ובכך נמנעת מסיבוכים, למשל, קרע של כלי הריאות¹⁰. צנתרי PAC מתקדמים לעתים קרובות בטעות לתוך ורידים בכבד באמצעות וריד הפרשים הנחות בחזירים. לכן, אם אות לחץ החדר הימני לא מגיע לאחר כ 30 - 50 ס"מ, למשוך את הקטטר בחזרה ולהתחיל הכל מחדש.

4. טכניקת תרמודילולציה לעורק הריאות למדידות המומינמיניות

1. למדוד את תפוקת הלב (CO) עם טכניקת thermodilution¹¹.
   1. חבר את התרמיסטור וזרימה דרך דיור לאומן המתאים של PAC.
   2. לאחר מכן, חבר את הצג המודינמי עם יציאת הטמפרטורה הדיסטלית של PAC (כובע אדום).
   3. התאם את הצג המודינמי למצב הדרוש כדי לפצות על גודל הצנתר, אורך הצנתר, נפח מוזרק וטמפרטורת תמיסת המלח המוזרקת.
   4. הזריק את הנפח המתאים של 0.9% מלוחים מהר ככל האפשר (בדרך כלל 5 או 10 מ"ל של 0.9% מלוחים עם טמפרטורה של 4 °C (4 °F).
   5. המתן עד להשלמת המדידה.
2. אקראי חמש מדידות ברצף מהיר על מחזור הנשימה של מכונת ההנשמה.
   1. מחק את הערכים הגבוהים ביותר ואת הערכים הנמוכים ביותר והשתמש בשלושת הערכים הנותרים כדי לחשב את הממוצע.
   2. שים לב לערך ממוצע זה כתפוקת הלב.
   3. למדוד את PCWP לאחר מכן על ידי ניפוח בלון הקטטר, ולנפח אותו לאחר המדידה.
   4. השתמש בלחץ העורקי הממוצע (MAP), לחץ עורקי ריאתי (PAP), לחץ ורידים מרכזי (CVP), PCWP, ו CO עבור כל חישובים המודינמיים נוספים.
      הערה: יש להזין את נפח המלח כמו גם את הטמפרטורה לצג לפני המדידות. תמיסת מלח רגילה יש לשמור באותה טמפרטורה (בדרך כלל <5 °C (5 °F) למדידות נכונות. יש להזין גם את גודלו ואורך הקטטר. צגים מסוימים דורשים ערך של גורם תיקון.
   5. עבור מחקרים הכוללים מדידות מדויקות של איזון אלקטרוליטים, השתמש בתמיסת גלוקוז 5% במקום 0.9% מלוחים.
3. ודא להקליט את כל הפרמטרים. יש ליטול בו זמנית דגימות דם עורקיות ורידיות מעורבות זמן קצר לפני או אחרי מדידות CO כדי לאפשר חישוב של הדלף התוך-ריאתי מימין לשמאל.
   1. תעד את כל ההגדרות והמדידות הדרושות לנשימה כדי להשלים את ערכת הנתונים, למשל שיא, רמה ולחץ תפוגה.
      הערה: אינדוקציה של הרדמה, צנרר, ומכשור מלא עשוי לדרוש 1.5 h בהתאם לניסיון ולמספר החוקרים.

5. דלדול פעילי שטח

1. לאוורר את החיה עם F_IO₂ של 1.0.
   1. נתק את החיה ממכונת ההנשמה.
2. מלא את הריאות עם 0.9% מלוחים 0.9% (37 °C (37 °C,35 מ"ל/ ק"ג) עם משפך המחובר לצינור אנדוטרשל.
   1. בשביל זה, להעלות את המשפך על 1 מ 'מעל החיה.
      הערה: הלחץ ההידרסטטי יקצה את המלח לכל חלקי הריאות.
   2. יש להפסיק מיד את המילוי כאשר המפה יורדת מתחת <50 מ"מ ליש"גרת.
3. מנמיכים את המשפך לגובה הקרקע כדי לנקז את נוזל השטיפה. תחבר מחדש את החיה למכונת ההנשמה לחמצן.
4. המתן עד שבעל החיים מחלים וחוזר על השטיפה בהקדם האפשרי, במידת הצורך.
   הערה: הצורך במזרה נוספת מוגדר על ידי יחס P_aO₂/ F_{I O2.}
   1. קח דגימת גז דם עורקי לאחר 5 דקות בעקבות כל שטיפה.
   2. שטיפה_חוזרתעד יחס P a O₂/ F_{I O2} (מדד הורוביץ) יורד מתחת ל 100 מ"מ כ"ג לפחות 5 דקות ב F_IO₂ 1.0 ו- PEEP > 5 ס"מ₂O.
      הערה: יש להתאים את קצב הנשימה במהלך תקופת השטיפה כדי לשמור על רמת ה- pH העורקית מעל 7.25 על מנת למנוע פירוק המודינמי.
5. שים לב כי מודל בעלי חיים זה מבוסס על שילוב של דלדול פעילי שטח ו VILI.
   הערה: שטיפה תיעצר לאחר יחס P_aO₂/ F_{I O2} נשאר מתחת 100 במשך 5 דקות לא לאחר 60 דקות כפי שפורסם בעבר עבור דגם של שטיפה פעילי שטח ללא VILI^5.
   1. התחל עם אוורור טלוויזיה גבוהה / אוורור מציצה נמוך לאחר_Pממוקד O₂/ F_IO₂ כבר הגיע.
      הערה: אחרת, דלדול פעילי שטח אגרסיבי מדי בשילוב עם VILI יגרום לכשל איברים מרובים ולפשר על הניסוי. משך דלדול פעילי השטח משתנה בין בעלי חיים, שכן P_aO מוגדר₂/ F_IO₂ הוא ממוקד. זה יכול לקחת 45 דקות עד 1.5 שעות.

6. אוורור פוגעני עם נפח גאות ושפל גבוה / מציצה נמוכה (טלוויזיה גבוהה / ציוץ נמוך)

1. שמור F_IO₂ של 1.0.
2. הגדר את מכונת ההנשמה על אמצעי אחסון מובטח, מצב אוורור מבוקר בלחץ.
3. הגדל את סף האזעקה ללחץ מעורר השראה לשיא ל-60 מ"ר.
   הערה: מכונת ההנשמה צריכה להפעיל לחץ מעורר השראה עד 60 מ"ר, אך לא גבוה יותר.
4. הורידו את קצב הנשימה ל-12/דקה והגדירו את יחס התפוגה (I:E) ל-1:1.5 (וכתוצאה מכך זמן השראה של 2 s וזמן תפוגה של 3 s).
5. הגדל את נפח הגאות והשפל לאט עד 17 מ"ל / קילוגרם bw מעל לפחות 2 דקות.
   1. אין להגדיל עוד יותר את נפח הגאות והשפל אם מגיעים ללחץ מעורר השראה של 60 מ"ר.
      הערה: הלחץ מעורר ההשראה המוגבל יכול לגרום נפח גאות ושפל מתחת ל 17 מ"ל / קילוגרם משקל גוף בהתאם לפגיעה בריאה לאחר שטיפה פעילי שטח. עלייה פתאומית בנפח הגאות והשפל עלולה לגרום לפירוק באוטרומה או המודינמי. לכן, יש חשיבות עליונה להגדיל את נפחי הגאות והשפל לאט על פני מספר דקות.
6. הפחת את ה- PEEP ל-2 מ"ר.
7. מאוורר את החיה עד 2 שעות (ראו איור 2 להגדרות מכונת ההנשמה ועקומת הזרימה).
   הערה: אוורור עם נפחי גאות ושפל גבוהים יגרום חמצון טוב של החיה, אבל האינפלציה הכמעט מלאה מחזורית ותוצאות דפלציה גורמות לפגיעה מבנית של הריאות. נזק מבני לא ניתן להפוך עם תמרוני גיוס, מיצוב נוטה, PEEP גבוה, וכו '. הפציעה המתקבלת צריכה להיות נסבלת לאורך כל החקירה. ייתכן שיידרש זמן אוורור קצר יותר של טלוויזיה גבוהה/PEEP נמוך בהתאם לניסוי ולמשך החקירה הבאים.

7. סוף הניסוי והמתת חסד

1. ודא כי כל המדידות של הפרוטוקול הניסיוני, אשר יעקוב אחר אינדוקציה של פגיעה ריאות, מבוצעות.
2. הזריקו פנטניל (לפחות 0.5 מ"ג) בנוסף להרדמה המתמשכת והמתינו לפחות 5 דקות. הזרק thiopental (לפחות 1000 מ"ג) במהירות ואחריו לפחות 60 mmol של אשלגן באמצעות הקו המרכזי.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

יחס P_aO₂/ F_IO₂ירד במהלך שטיפה פעילי שטח בכל בעלי החיים(איור 3). היפוקסמיה וכתוצאה מכך, היפרקפניה, ו atelectasis גרם לעלייה בלחץ עורק הריאות. הפרטים של שטיפת הריאות כבר מתוארים במקום אחר⁶.

דלדול פעילי השטח חזר על עצמו עד שיחס P_a

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

מאמר זה מתאר את האינדוקציה של ARDS ניסיוני בחזירים המשלבים דלדול פעילי שטח על ידי שטיפת ריאות חוזרת ונשנית ואוורור עם נפחי גאות ושפל גבוהים, PEEP נמוך, ואינפלציה / דפלציה מלאה של הריאות. שילוב זה גורם להידרדרות הניתנת לשחזור ודומה בחילופי הגז ולפשרה המודינמית הנובעת מכך, אך מגביל את יכולת הגיו?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Eve	Fritz Stephan GmbH		emergency ventilator
Flow through chamber thermistor	Baxter	93-505	for measuring cardiac output
Leader Cath Set	Vygon	1,15,805	arterial catheter
Mallinckrodt Tracheal Tube Cuffed	Covidien	107-80	8.0 mm ID
MultiCath3	Vygon	1,57,300	3 lumen central venous catheter, 20 cm length
Percutaneus Sheath Introducer Set	Arrow	SI-09600	introducer sheath for pulmonary artery catheter of 4-6 Fr., 10 cm length
Swan-Ganz True Size Thermodilution Catheter	Edwards	132F5	pulmonary artery catheter, 75 cm length
urinary catheter			no specific model requiered
Vasofix Braunüle 20G	B Braun	4268113B	peripheral vein catheter
Vigilance I	Edwards		monitor