JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

דלקת במשטח העין פוגעת ברקמות פני השטח של העין ופוגעת בתפקודים חיוניים של העין. הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטה להשראת דלקת עיניים ולאיסוף רקמות פגועות במודל עכברי של תפקוד לקוי של בלוטת Meibomian (MGD).

Abstract

מחלות פני השטח של העין כוללות מגוון של הפרעות המפריעות לתפקודים ולמבנים של הקרנית, הלחמית ורשת בלוטת פני השטח של העין הקשורה. בלוטות Meibomian (MG) מפרישות שומנים היוצרים שכבת כיסוי המונעת אידוי של החלק המימי של סרט הדמעות. נויטרופילים ומלכודות דנ"א חוץ-תאיות מאכלסים את MG ואת משטח העין במודל עכברי של מחלת עיניים אלרגית. מלכודות חוץ-תאיות של נויטרופילים מצטברים (aggNETs) מנסחות מטריצה דמוית רשת המורכבת מכרומטין חוץ-תאי החופה את שקעי MG וממתנת תפקוד לקוי של MG. כאן, שיטה לגרימת דלקת פני השטח של העין ותפקוד לקוי של MG מוצגת. ההליכים לאיסוף איברים הקשורים למשטח העין, כגון הקרנית, הלחמית והעפעפיים, מתוארים בפירוט. באמצעות טכניקות מבוססות לעיבוד כל איבר, מוצגות גם התכונות המורפולוגיות וההיסטופתולוגיות העיקריות של תפקוד לקוי של MG. הפרשות עיניים מציעות את ההזדמנות להעריך את המצב הדלקתי של משטח העין. נהלים אלה מאפשרים לחקור התערבויות אנטי דלקתיות אקטואליות ומערכתיות ברמה הפרה-קלינית.

Introduction

כל הרף עין מחדש את שכבת הדמעות החלקה המפוזרת על הקרנית. אפיתליה של פני השטח של העין מקלה על ההתפלגות והכיוון הנכון של סרט הדמעות על משטח העין. מוצינים מסופקים על ידי תאי אפיתל הקרנית והלחמית כדי לסייע במיקום החלק המימי של סרט הדמעות המגיע מבלוטות הדמעות על פני העיניים. לבסוף, MG מפרישה שומנים היוצרים שכבת כיסוי המונעת אידוי של החלק מימי של סרט הדמעות 1,2,3. באופן זה, הפונקציות המתואמות של כל איברי העין מגינות על משטח העין מפני פלישה לפתוגנים או פציעה ותומכות בראייה צלולה ללא כל כאב או אי נוחות.

במשטח עיניים בריא, הפרשות העיניים הזורמות או ריאה העין מסלקות אבק, תאי אפיתל מתים, חיידקים, ריר ותאי מערכת החיסון. מלכודות חוץ-תאיות של נויטרופילים מצטברים (aggNETs) מנסחות מטריצה דמוית רשת המורכבת מכרומטין חוץ-תאי ומשלבות רכיבים אלה בראום העין. AggNETs פותרים דלקת על ידי פירוק פרוטאוליטי של ציטוקינים מעודדי דלקת וכימוקינים4. עם זאת, כאשר הם הופכים לא מתפקדים, aggNETs אלה aggNETs מניעים את הפתוגנזה של מחלות כגון חסימות כלי דם ב- COVID-195, אבני מרה6, ו sialolithiasis7. באופן דומה, aggNETs על משטח העין ממלאים תפקיד מגן ותורמים לפתרון דלקת של משטח8 החשוף מאוד. היווצרות מוגזמת או היעדר aggNETs במשטח העין עלולים לפגוע ביציבות סרט הדמעות ו/או לגרום לפצעים בקרנית, דלקת הלחמית ומחלת העין היבשה. לדוגמה, חסימת MG היא גורם מוביל למחלת העין היבשה9. AggNETs ידועים גם לחבר את זרימת הפרשת השומנים מן הצינורות של MG ולגרום לתפקוד לקוי של בלוטת Meibomian (MGD). הגודש של MG orifices על ידי aggNETs גורם למחסור בנוזל שומני העוטף את משטח העין ונוזל מבוקבק מדרדר, וכתוצאה מכך תפקוד לקוי של בלוטת הבלוטה ונזק אקסינארי. תפקוד לקוי זה עלול לגרום לאידוי סרט מדמיע, פיברוזיס של שולי העפעפיים, דלקת עיניים ונזק מזיק ל- MG10,11.

מספר מודלים של בעלי חיים פותחו במהלך השנים כדי לחקות את התהליך הפתולוגי של MGD בבני אדם. לדוגמה, C57BL/6 עכברים בני שנה סייעו לחקור השפעות הקשורות לגיל על מחלות עיניים יבשות (DED) ו- MGD, המשקפות את הפתולוגיה של מחלות עיניים בחולים בני 50 ומעלה12,13,14. יתר על כן, ארנבות הן מודלים מתאימים לחקר ההשפעות של התערבויות פרמקולוגיות. לכן, גרימת MGD בארנבות דווחה על ידי מתן מקומי של אפינפרין או הכנסה מערכתית של 13-cis-retinoic חומצה (isotretinoin)15,16,17,18,19.

אף על פי שמודלים אלה של בעלי חיים היו מספיקים לקביעת הגורמים השונים שתרמו לפתופיזיולוגיה של MGD, הם היו מוגבלים בשימוש בהם. לדוגמה, מודל מורין של MGD תלוי גיל היה אידיאלי לפענוח אלמנטים במבוגרים בלבד, ולכן, ארנבות נראו כמודל החי המתאים ביותר לחקר מחלות פני השטח של העין, מכיוון שהן מאפשרות לחקור מנגנונים פתופיזיולוגיים מרובים. עם זאת, בשל היעדר כלים אנליטיים מקיפים לאיתור חלבונים על פני העין ומכיוון שחלקים רבים בגנום הארנב אינם מוזכרים, הם מוגבלים לחקירות20,21.

בנוסף, מודלים אלה של בעלי חיים המשמשים לחקור את הפתוגנזה של מחלת העין היבשה לא סיפקו פרטים נאותים כדי לנתח את הזרוע החיסונית של ההפרעה הגורמת דלקת של פני העין. בהתאם לכך, מודל המורין של MGD שפותח על ידי Reyes et al. הראה קשר בין מחלת עיניים אלרגית בעכברים לבין MGD בבני אדם והדגיש את האטיולוגיה החיסונית האחראית ל-MGD21 חסימתי. מודל זה מקשר בין מחלת עיניים אלרגית לתגובת TH17 המגייסת נויטרופילים ללחמית ולעפעף, וגורמת ל-MGD ולדלקת עיניים כרונית21. האינדוקציה של MGD ודלקת עיניים במודל מורין זה היא כלי רב ערך לחקר אירועים במעלה הזרם במהלך התפתחות של דלקת מקומית המונעת על ידי תגובה חיסונית מתמשכת21. הפרוטוקול הנוכחי מתאר את דלקת פני השטח של העין המלווה ב- MGD חסימתי. בשיטה זו, עכברים מחוסנים, ולאחר שבועיים, מאותגרים על פני השטח של העין עם האימונוגן במשך 7 ימים. יתר על כן, מתוארים הצעדים לבידוד הפרשת העיניים ואיברי העין הקשורים אליהם במהלך דלקת חריפה וכריתת הקרנית, הלחמית והעפעפיים.

Protocol

כל ההליכים המערבים בעלי חיים נערכו על פי ההנחיות המוסדיות לרווחת בעלי חיים ואושרו על ידי הוועדה לרווחת בעלי חיים של אוניברסיטת פרידריך-אלכסנדר-ארלנגן-נירנברג (FAU) (מספר היתר: 55.2.2-2532-2-1217). נקבות C57Bl/6 עכברים, בגילאי 7-9 שבועות שימשו למחקר הנוכחי. העכברים התקבלו ממקורות מסחריים (ראו טבלת חומרים) והוחזקו בתנאים ספציפיים נטולי פתוגנים עם מחזורים של 12 שעות ביום/לילה.

1. אינדוקציה של דלקת משטח העין murine

  1. בצע הכנה אימונוגן לחיסון.
    1. הכינו את האימונוגן טרי ביום החיסון, ערבבו אובאלבומין (OVA, 50 מ"ג/מ"ל) ורעלן שעלת (100 מיקרוגרם/מ"ל) במי מלח ואת האלומיניום האדג'ובנטי הידרוקסיד (40 מ"ג/מ"ל) (ראו טבלת חומרים) ביחס של 1:1.
      אזהרה: בצע את הפתיחה, שחזור והכנת האימונוגן של רעלן שעלת בארון בטיחות למינרי. יש ללבוש ביגוד מגן ולהימנע מכל מגע עם העור.
    2. לדגום את תערובת האימונוגן והאדג'ובנט בטמפרטורת החדר למשך 30 דקות ולהעמיס 100 μL לתוך מזרק 1 מ"ל.
    3. בצע הזרקה תוך צפקית של פתרון האימונוגן בעכבר לא מורדם.
      1. החזיקו את העכבר ברכות ליד הזנב תוך כדי אחיזה ברשת הכלובים. החזיקו בחוזקה את עור הגב ואת אזור הצוואר בין האגודל לאצבע המורה וקיבעו את הזנב והגפיים התחתונות בין הטבעת לאצבע הקטנה כנגד כף היד.
      2. השאר את העכבר הקבוע עם ראשו כלפי מטה.
      3. הזרקת 100 μL של תמיסת האימונוגן המוכנה ברביע הימני או השמאלי של חלל הבטן התחתונה.
  2. יש לבצע את אתגר פני השטח של העיניים שבועיים לאחר החיסון.
    1. הרדמת העכבר עם איזופלורן (2.5%).
    2. יש למרוח 5 μL של OVA (50 מ"ג/מ"ל) או מי מלח (0.9% NaCl) על שתי העיניים ולהמתין עד שהטיפה תיספג בעין. זה לוקח ~ 5 דקות.
    3. חזור על ההליך 1 פעמים ביום במשך 7 ימים.
      הערה: ניהול מקומי של תרופות יכול להיעשות באותו אופן.

2. אוסף של הפרשת עיניים

  1. שחזר את ההפרשות העיניות שנוצרו במהלך שלב האתגר על ידי מריחת 50 μL של מלח סטרילי על העין מיד לאחר האתגר.
  2. כדי לקבל תרחיף חד-תאי, טפל בהפרשות העיניים שנאספו באמצעות MNase רקומביננטי (2 x 106 ג'ל U/mL, ראה טבלת חומרים) המכיל את סידן קופקטור (5 mM) ב 37 °C למשך 20 דקות.
  3. צנטריפוגה ב 400 x גרם במשך 7 דקות בטמפרטורת החדר.
  4. לבודד את הסופר-נטנט ולמדוד את הציטוקינים והכימוקינים באמצעות ELISA מרובב על פי הוראות היצרן (ראו טבלת חומרים).
    הערה: הסופרנטנט המתקבל יכול לשמש לניתוח חלבונים ולגלולה לבדיקות פונקציונליות כגון אימונופנוטיפינג, פאגוציטוזה, דה-גרנולציה וביטוי גנים.

3. כריתה של רקמות פני השטח של העין

  1. נתחו את העפעפיים ואת כדור העין בהתאם לשלבים הבאים.
    1. המתת העכבר על ידי חנק CO2 ונקע צוואר הרחם.
    2. הנח את העכבר על משטח אחיד.
    3. לחטא את האזור האורביטלי סביב העין עם ספוגית ספוגה עם 70% אתנול.
    4. בצע חתך בין האוזן לסינוס הרטרו-אורביטלי ולאורך המשטח מעל עצם הקשקש אנכית, תוך הרחבת החתך אופקית מתחת לעפעף התחתון לאורך העצם המקסילרית ומעל העפעף העליון לאורך העצם הקדמית. זה יוצר חתך סביב העין (איור 1).
    5. החזיקו בזהירות את הרקמה המנותקת סביב העין באמצעות מלקחיים מעוקלים ומשכו את הרקמה ואת גלגל העין החוצה.
    6. מניחים את האיברים שנכרתו ב- PBS סטרילי.
    7. יש לחתוך את רקמת שריר הפנים העודפת סביב העפעפיים העליונים שנכרתו באמצעות אזמל ומתחת לסטריאומיקרוסקופ.
  2. אסוף את הלחמית לפי השלבים הבאים.
    1. הניחו את העפעף העליון על צלחת פטרי יבשה מתחת לסטריאומיקרוסקופ.
    2. בעזרת פינצטה עדינה ואזמל, מקלפים בעדינות רבה את השכבה הרירית-לבנה מתוך המשטח הפנימי של העפעף.
  3. לאחר מכן, לנתח את הקרנית בעקבות השלבים הבאים.
    1. הניחו את גלובוס העיניים על צלחת פטרי יבשה חדשה על גבי קרח יבש למשך 3 דקות.
    2. קח את צלחת פטרי על משטח הספסל במצב יציב.
    3. בצע חתך קטן בגבול הקרנית ליד הלימבוס באמצעות מספריים חדים עדינים.
    4. מאריכים את החתך עם האזמל סביב כדור הארץ, ומפרידים בין הסקלרה לקרנית.
    5. הסירו את שאריות הקשתית והעדשה מהחלק האחורי של הקרנית על ידי שטיפה נדיבה בתמיסת מלח.

4. תיעוד של חסימת בלוטת Meibomian (MG)

  1. כדי להעריך את ה-MG ואת הפתחים שלו, הניחו את העפעפיים הכרותים במצב זקוף מתחת לסטריאומיקרוסקופ (איור 2).
  2. צלם תמונות עם תאורה אפי-תאורה של אור לבן בהתאם לזמן החשיפה של המצלמה ולהגדרות ה-ISO.
    הערה: ניתוח מורפומטרי של תמונות אלה מספק כימות אמין של גודל התקע בשקע הבלוטות. ניתן לבצע את הכימות על ידי התוויית כלי השרביט של תקעי העין וביצוע הפקודה "נתח חלקיקים" של תוכנת Image J (ראו טבלת חומרים).

5. טרנסילומינציה של עפעפיים (מורפולוגיה של בלוטת Meibomian)

  1. כדי להעריך את אזור ה-MG, מקמו את העפעפיים הכרותים במצב אופקי והפעילו את התאורה האחורית של הסטריאומיקרוסקופ המצויד במצלמת אינפרה-אדום (איור 3).
  2. צלם תמונות על-ידי התאמת זמן החשיפה בהתאם ל-ISO של המצלמה (ראו טבלת חומרים).
    הערה: הדמיית אינפרא-אדום של עפעפיים טרנס-מוארים אלה מתחת לסטריאומיקרוסקופ יכולה לסייע במדידת הצורה והגודל של כל אצ'יני. ניתוח מורפומטרי של תמונות אלה מספק כימות אמין של גודל ומספר MG. ניתן לבצע את הכימות על ידי התוויית ה- MG עם כלי השרביט וביצוע הפקודה "נתח חלקיקים" של תוכנת Image J.

תוצאות

הפרוטוקול הנוכחי מתאר את השלבים הרציפים לביסוס מודל מורין של דלקת פני השטח של העין. מטרת הפרוטוקולים היא להראות כיצד ליישם טיפולים באופן מקומי, להשיג הפרשת עיניים ולהוציא איברים נלווים כגון עפעפיים בריאים ודלקתיים (איור 2), הקרנית והלחמית. יש לשים לב כאשר העפעפיים העליונים...

Discussion

ההפרשה השומנית של בלוטות Meibomian היא בעלת חשיבות רבה לעין בריאה22. עם זאת, החסימה של בלוטות החלב הללו על ידי מלכודות נויטרופיליות חוץ-תאיות מצטברות (aggNETs) המיישרות קו כגדילים מקבילים הממוקמים על הלוחות הטרסליים של שני העפעפיים יכולה לשבש את סרט הדמעות23. הפרעה זו גורמ?...

Disclosures

למחברים אין ניגודי עניינים לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה חלקית על ידי קרן המחקר הגרמנית (DFG) 2886 פרויקט PANDORA No.B3; SCHA 2040/1-1; MU 4240/2-1; CRC1181(C03); TRR241(B04), פרויקט H2020-FETOPEN-2018-2020 861878, ועל ידי קרן פולקסווגן (מענק 97744) ל- MH.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
1x PBSGibco
Aluminium HydroxideImject alum Adjuvant7716140 mg/ mL
Final Concentration: in vivo: 1 mg/ 100 µL
C57Bl/6 mice, aged 7–9 weeksCharles River Laboratories 
CalciumCarl rothCN93.11 M
Final Concentration: 5 mM
Curved forcepsFST by Dumont SWITZERLAND5/45 11251-35
Fine sharp scissorFST Stainless steel, Germany15001-08
Laminar safety cabinetHerasafe
Macrophotography CameraCanonEOS6D
Macrophotography Camera (without IR filter)NikonD5300
MnaseNew England biolabsM0247S2 x 106 gel U/mL
Multi-analyte flow assay kit (Custom mouse 13-plex panel)BiolegendCLPX-200421AM-UERLAN
NaCl 0,9% (Saline)B.Braun
Ovalbumin (OVA)Endofit, Invivogen9006-59-110 mg/200 µL in saline
Pertussis toxin ThermoFisher Scientific PHZ117450 µg/ 500 µL in saline
Final Concentration: in vivo: 100 µg/ 100 µL
PetridishGreiner bio-one628160
ScalpelFeather disposable scalpelNo. 21 Final Concentration: in vivo:  300 ng/ 100 µL
StereomicroscopeZeissStemi508
Syringe (corneal/iris washing)BD Microlane27 G x 3/4 - Nr.20 0,4 x 19 mm
Syringe (i.p immunization)BD Microlane24 G1"-Nr 17, 055* 25 mm

References

  1. Gilbard, J. P., Rossi, S. R., Heyda, K. G. Tear film and ocular surface changes after closure of the meibomian gland orifices in the rabbit. Ophthalmology. 96 (8), 1180-1186 (1989).
  2. Mishima, S., Maurice, D. M. The oily layer of the tear film and evaporation from the corneal surface. Experimental Eye Research. 1, 39-45 (1961).
  3. Gipson, I. K. The ocular surface: The challenge to enable and protect vision: The Friedenwald lecture. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 48 (10), 4391-4398 (2007).
  4. Hahn, J., et al. Aggregated neutrophil extracellular traps resolve inflammation by proteolysis of cytokines and chemokines and protection from antiproteases. The FASEB Journal. 33 (1), 1401-1414 (2019).
  5. Leppkes, M., et al. Vascular occlusion by neutrophil extracellular traps in COVID-19. EBioMedicine. 58, 102925 (2020).
  6. Munoz, L. E., et al. Neutrophil extracellular traps initiate gallstone formation. Immunity. 51 (3), 443-450 (2019).
  7. Schapher, M., et al. Neutrophil extracellular traps promote the development and growth of human salivary stones. Cells. 9 (9), 2139 (2020).
  8. Mahajan, A., et al. Frontline science: Aggregated neutrophil extracellular traps prevent inflammation on the neutrophil-rich ocular surface. Journal of Leukocyte Biology. 105 (6), 1087-1098 (2019).
  9. DEWS Definition and Classification Subcommittee. The definition and classification of dry eye disease: Report of the Definition and Classification Subcommittee of the International Dry Eye Workshop. The Ocular Surface. 5 (2), 75-92 (2007).
  10. Nichols, K. K., et al. The international workshop on meibomian gland dysfunction: Executive summary. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (4), 1922-1929 (2011).
  11. Mahajan, A., et al. Aggregated neutrophil extracellular traps occlude Meibomian glands during ocular surface inflammation. The Ocular Surface. 20, 1-12 (2021).
  12. Jester, B. E., Nien, C. J., Winkler, M., Brown, D. J., Jester, J. V. Volumetric reconstruction of the mouse meibomian gland using high-resolution nonlinear optical imaging. The Anatomical Record. 294 (2), 185-192 (2011).
  13. Nien, C. J., et al. Age-related changes in the meibomian gland. Experimental Eye Research. 89 (6), 1021-1027 (2009).
  14. Parfitt, G. J., Xie, Y., Geyfman, M., Brown, D. J., Jester, J. V. Absence of ductal hyper-keratinization in mouse age-related meibomian gland dysfunction (ARMGD). Aging. 5 (11), 825-834 (2013).
  15. Lambert, R. W., Smith, R. E. Pathogenesis of blepharoconjunctivitis complicating 13-cis-retinoic acid (isotretinoin) therapy in a laboratory model. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 29 (10), 1559-1564 (1988).
  16. Jester, J. V., Nicolaides, N., Kiss-Palvolgyi, I., Smith, R. E. Meibomian gland dysfunction. II. The role of keratinization in a rabbit model of MGD. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 30 (5), 936-945 (1989).
  17. Jester, J. V., et al. In vivo biomicroscopy and photography of meibomian glands in a rabbit model of meibomian gland dysfunction. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 22 (5), 660-667 (1982).
  18. Lambert, R., Smith, R. E. Hyperkeratinization in a rabbit model of meibomian gland dysfunction. American Journal of Ophthalmology. 105 (6), 703-705 (1988).
  19. Knop, E., Knop, N., Millar, T., Obata, H., Sullivan, D. A. The international workshop on meibomian gland dysfunction: Report of the subcommittee on anatomy, physiology, and pathophysiology of the meibomian gland. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (4), 1938-1978 (2011).
  20. Huang, W., Tourmouzis, K., Perry, H., Honkanen, R. A., Rigas, B. Animal models of dry eye disease: Useful, varied and evolving (Review). Experimental and Therapeutic Medicine. 22 (6), 1394 (2021).
  21. Reyes, N. J., et al. Neutrophils cause obstruction of eyelid sebaceous glands in inflammatory eye disease in mice. Science Translational Medicine. 10 (451), (2018).
  22. Knop, E., Korb, D. R., Blackie, C. A., Knop, N. The lid margin is an underestimated structure for preservation of ocular surface health and development of dry eye disease. Developments in Ophthalmology. 45, 108-122 (2010).
  23. Knop, N., Knop, E. Meibomian glands. Part I: anatomy, embryology and histology of the Meibomian glands. Ophthalmologe. 106 (10), 872-883 (2009).
  24. Nien, C. J., et al. Effects of age and dysfunction on human meibomian glands. Archives of Ophthalmology. 129 (4), 462-469 (2011).
  25. Lio, C. T., Dhanda, S. K., Bose, T. Cluster analysis of dry eye disease models based on immune cell parameters - New insight into therapeutic perspective. Frontiers in Immunology. 11, 1930 (2020).
  26. Nguyen, D. D., Luo, L. J., Lai, J. Y. Thermogels containing sulfated hyaluronan as novel topical therapeutics for treatment of ocular surface inflammation. Materials Today Bio. 13, 100183 (2022).
  27. Lin, P. H., et al. Alleviation of dry eye syndrome with one dose of antioxidant, anti-inflammatory, and mucoadhesive lysine-carbonized nanogels. Acta Biomaterialia. 141, 140-150 (2022).
  28. Yu, D., et al. Loss of beta epithelial sodium channel function in meibomian glands produces pseudohypoaldosteronism 1-like ocular disease in mice. American Journal of Pathology. 188 (1), 95-110 (2018).
  29. Mauris, J., et al. Loss of CD147 results in impaired epithelial cell differentiation and malformation of the meibomian gland. Cell Death & Disease. 6 (4), 1726 (2015).
  30. Ibrahim, O. M., et al. Oxidative stress induced age dependent meibomian gland dysfunction in Cu, Zn-superoxide dismutase-1 (Sod1) knockout mice. PloS One. 9 (7), 99328 (2014).
  31. McMahon, A., Lu, H., Butovich, I. A. A role for ELOVL4 in the mouse meibomian gland and sebocyte cell biology. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 55 (5), 2832-2840 (2014).
  32. Miyake, H., Oda, T., Katsuta, O., Seno, M., Nakamura, M. Meibomian gland dysfunction model in hairless mice fed a special diet with limited lipid content. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 57 (7), 3268-3275 (2016).
  33. Schaumberg, D. A., et al. The international workshop on meibomian gland dysfunction: Report of the subcommittee on the epidemiology of, and associated risk factors for, MGD. Investigative Ophthalmology and Visual Science. 52 (4), 1994-2005 (2011).
  34. Lee, S. Y., et al. Analysis of tear cytokines and clinical correlations in Sjogren syndrome dry eye patients and non-Sjogren syndrome dry eye patients. American Journal of Ophthalmology. 156 (2), 247-253 (2013).
  35. Nakae, S., et al. Antigen-specific T cell sensitization is impaired in IL-17-deficient mice, causing suppression of allergic cellular and humoral responses. Immunity. 17 (3), 375-387 (2002).
  36. von Vietinghoff, S., Ley, K. IL-17A controls IL-17F production and maintains blood neutrophil counts in mice. Journal of Immunology. 183 (2), 865-873 (2009).
  37. Langrish, C. L., et al. IL-23 drives a pathogenic T cell population that induces autoimmune inflammation. Journal of Experimental Medicine. 201 (2), 233-240 (2005).
  38. Chen, Y., et al. Anti-IL-23 therapy inhibits multiple inflammatory pathways and ameliorates autoimmune encephalomyelitis. Journal of Clinical Investigation. 116 (5), 1317-1326 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

186

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved