אופטימיזציה של שיטת חסימת עורק המוח התיכון לונגה עבור זילוח מלא

Summary

פרוטוקול זה מציג מדריך שלב אחר שלב לחוקרים לביצוע הליך חסימת עורק המוח האמצעי בעכברים באמצעות שיטת עורק התרדמה החיצוני Longa שונה. השינויים המוצגים במאמר זה נועדו להגביר את הדיוק של חסימת עורק המוח התיכון ולהבטיח זילוח מלא.

Abstract

מודל חסימת עורק המוח האמצעי משמש כמודל החייתי העיקרי לחקר שבץ איסכמי. למרות שנעשה בו שימוש במחקר במשך למעלה משלושה עשורים, הסטנדרטיזציה שלו נותרה בלתי מספקת. ההליך, שנערך בעיקר על חולדות ועכברים, מציב אתגרים בשל אופיים הקטן והשברירי יותר של עכברים. שלא כמו שיטת עורק התרדמה הנפוץ של קואיזומי, עורק התרדמה החיצוני של לונגה הוא מודל שבץ חוט הלהט התוך לומינלי היחיד המבטיח פרפוזיה מלאה לאחר איסכמיה. היבט זה הוא בעל משמעות קריטית עבור מחקרים החוקרים תופעות רפרפוזיה. השינויים הכירורגיים שהודגמו במאמר זה מבטיחים זרימת דם רציפה מעורק התרדמה המשותף לאורך השלב האיסכמי ולאחר הופעת הרפרפוזיה. מטרת שינויים אלה היא לחסום באופן סלקטיבי את עורק המוח האמצעי על ידי שמירה על זילוח ללא הפרעה בענפים קרובים לעורק המוח האמצעי במהלך תקופת האיסכמיה. יתר על כן, הופעת הרפרפוזיה היא פתאומית וניתנת לשליטה מדויקת, ובכך למדל טרומבקטומיה אנדווסקולרית ברפואה האנושית בצורה מדויקת יותר. מטרתנו בהצגת מאמר וידאו מקיף זה היא להקל על הכשרתם של מנתחים חדשים ולקדם סטנדרטיזציה של הליכים כירורגיים בקרב הקהילה המדעית.

Introduction

שבץ מדורג כגורם המוות השני המוביל והגורם השלישי המוביל למוות ונכות יחד¹. על פי הסיבה שלה, שבץ יכול להיות איסכמי או hemorrhagic, עם שבץ איסכמי להיות נפוץ יותר באופן משמעותי בפועל קליני. שבץ איסכמי נובע מחסימה בעורק המספק דם לרקמת המוח, מה שמוביל לאיסכמיה, מוות תאי ודלקת. מאז הופעתם של טיפולי רפרפוזיה כגון טרומבוליזה וטרומבקטומיה מכנית, חלה התקדמות רבה בטיפול בשבץ. עם זאת, כל טיפולי הרפרפוזיה נושאים את הסיכון להחמרת מצבו של המטופל על ידי גרימת מה שמכונה בדרך כלל פגיעה בזילוח². המנגנון המדויק של פגיעה ברפרפוזיה עדיין אינו ברור, ועל מחקרים פרה-קליניים לזהות גורמים פוטנציאליים ואמצעי מניעה. לשם כך, פיתוח מודל חייתי רלוונטי לפגיעה ברפרפוזיה בעקבות שבץ איסכמי הופך להיות חיוני.

חסימת עורק מוחי אמצעי (MCAO) היא המודל הנפוץ ביותר בבעלי חיים לחקר שבץ איסכמי. הוא נערך בעיקר במכרסמים ויש לו גרסאות רבות ושונות המתוארות בספרות המדעית עד כה ^3,4. שני הסוגים העיקריים, קואיזומי (Koizumi ) ולונגה (Longa), הידועים כגרסאות של עורק התרדמה המשותף (CCA) ועורק התרדמה החיצוני (ECA), נבדלים טכנית זה מזה באתר העורקים להחדרת חוטים ^5,6. במאמר האחרון שלנו, על ידי ניטור in vivo של זילוח כלי הדם, הראינו כי רק שיטת לונגה יכולה להיחשב באמת איסכמיה מוחית / מודל^{זילוח 7}. ההליך כולל החדרת חוט הלהט לתוך ECA, קידומו דרך האגודה למלחמה בסרטן, ואבטחתו בנקודת ההסתעפות של עורק המוח האמצעי (MCA) כדי לגרום לאיסכמיה של רקמת המוח. לאחר תקופה שנקבעה מראש של איסכמיה, נסיגה של חוט הלהט מאפשרת רפרפוזיה, המדמה איסכמיה מוחית חולפת. לאחר הופעת השבץ, משתנה התוצאה העיקרי המשמש במחקר הוא לרוב נפח הנגע האוטם, אשר ניתן למדוד באמצעות היסטולוגיה ex vivo או סריקות מוח in vivo. האתגרים במודלים של MCAO סובבים סביב יכולת שחזור נמוכה המיוחסת לשונות בין-משתנית, בין-אופרטורית ובין-נושאית, כאשר האחרונים מהווים מגבלה משמעותית במחקר שבץ פרה-קליני⁴.

יתר על כן, אזורים אוטמים בעקבות MCAO במכרסמים הם מסיביים יחסית לגודל המוח של מכרסמים. בנוסף, אזורים אחוריים בהיפוקמפוס במוח מגויסים לעתים קרובות לנפח האוטם, למרות שאזורים אלה תלויים בעיקר בזרימת הדם מעורק המוח האחורי (PCA), ולא MCA⁸. כמו בשיטות קואיזומי ולונגה המתוארות בספרות, ה-CCA נשמר קשור במהלך תקופת האיסכמיה בשל הפטנט הלא שלם של מעגל ויליס בעכברים, מה שמוביל להשראת איסכמיה באזור רחב בהרבה מהמתוכנן ^5,6,9. אפילו בשיטות שבהן CCA נפתח מחדש או מתוקן לאחר תקופת האיסכמיה, 30-60 הדקות הרגילות של איסכמיה גורמות לפגיעה בלתי הפיכה ברקמה באזורים שאינם MCA¹⁰. יתר על כן, בניגוד לציפיות, מחקרים קודמים הראו כי אורך ציפוי הסיליקון של חוט להט אינו משפיע על גודל הנגע¹¹. עם זאת, בחירת אורך ציפוי הסיליקון של חוט הלהט טופלה אך ורק בדגמים עם CCA קשור במהלך תקופת החסימה.

מטרת שיטה זו הייתה לשנות את שיטת Longa MCAO בעכברים כדי לאפשר זרימת דם רציפה מה- CCA במהלך תקופת האיסכמיה, ובכך להגביר את הסלקטיביות של MCAO, כמו גם להבטיח זילוח מלא של האזור האוטם לאחר ההליך. שינויים אלה יועילו מאוד למחקרי אורך החוקרים פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה בעכברים על ידי הורדת שיעור התמותה והפחתת השונות בין הנבדקים.

Protocol

כל הטיפול והנהלים בבעלי חיים אושרו על ידי ועדת רישוי האתיקה של בית הספר לרפואה של אוניברסיטת זאגרב וועדת האתיקה להגנה על בעלי חיים המשמשים למטרות מדעיות של משרד החקלאות של הרפובליקה של קרואטיה. הליכי הניסוי נערכו על פי החוק הקרואטי להגנה על בעלי חיים (NN 102/17, 32/19), תיקונים לחוק ההגנה על בעלי חיים (NN 37/13) וההנחיות להגנה על בעלי חיים המשמשים למטרות מדעיות (NN 55/13) העולים בקנה אחד עם המדריך האירופי לטיפול ושימוש בחיות מעבדה (הנחיה 2010/63/EU).

1. הכנת החיה ואתר הניתוח

1. הניחו את בעל החיים בקופסת נוק-אאוט והשר הרדמה באמצעות איזופלורן בנפח 5% בתערובת חמצן/חנקן (יחס של 1:2).
2. לאחר בדיקה ויזואלית של מצב התודעה ותדירות הנשימה של החיה, הביאו אותה לסולם מעבדה ושקלו אותה.
3. בדוק את הרפלקס על ידי צביטת העור הבין-דיגיטלי של הגפה התחתונה כדי להבטיח עומק הרדמה תקין.
4. הניחו את בעל החיים על שולחן הניתוחים המחומם והכניסו את אפו למסכת ההרדמה. כוונו את טמפרטורת שולחן הניתוחים הראשונית ל-36°C וכווננו אותה כך שתשמור על טמפרטורת הגוף של בעל החיים על 37°C (נמדדה באמצעות בדיקה רקטלית שהוכנסה בשלבים מאוחרים יותר). במהלך כל השלבים הנוספים, התאם את מקטע הנפח של איזופלורן כדי לשמור על קצב הנשימה של בעל החיים על 100 נשימות לדקה.
   הערה: יש לחטא ביסודיות את כל המשטחים והחומרים הבאים במגע ישיר עם בעל החיים לפני ההליך.
5. יש למרוח משחת עיניים על עיני בעל החיים כדי להגן עליהן מפני התייבשות וגז איזופלורן.
6. סובבו את בעל החיים על גבו והושיטו את צווארו על ידי הנחת כרית קטנה עשויה סרט כירורגי מתחתיו.
7. אבטחו את גפי בעל החיים במקומם באמצעות סרט ניתוח. יש להקפיד לא להאריך את הגפיים הקדמיות יותר מדי כדי לא לגרום לפריקת מפרק הכתף בשוגג.
8. לשמן את הבדיקה הרקטלית באמצעות ג'לי לבן פטרולאום ולהכניס אותו לתוך פי הטבעת למדידת טמפרטורת גוף רציפה. אבטחו את הבדיקה במקומה יחד עם הזנב באמצעות סרט כירורגי.
9. החל זריקה לפני הניתוח של מלוחים buprenorphine (0.5 מ"ג / ק"ג) intraperitoneally כדי לשמור על החיה hydrated היטב תחת שיכוך כאבים במהלך ההליך.
10. יש לגלח את פרוות בעל החיים באזור הצוואר באמצעות קוצץ חיות אלחוטי. לאסוף את כל הפרווה מגולחת באמצעות חתיכות של סרט כירורגי. בנוסף, לגלח את האזור עם סכין גילוח כדי להפוך אותו ללא פרווה לחלוטין.
11. בחרו חוט להט MCAO בהתבסס על משקל בעל החיים הנמדד ו/או גילו. הוציאו אותו מהמיכל שלו והניחו אותו בצלוחית פטרי במקום גלוי. שים טיפת מלח על חלק הסיליקון של חוט הלהט כדי לשמור עליו נקי וללא אבק.
    הערה: יש לבחור את עובי ציפוי הסיליקון של חוט הלהט על פי ההמלצות הרשמיות של היצרן במקרה של עכבר בן 12-16 שבועות. בנוסף, יש לתכנן מראש את אורך ציפוי הסיליקון, בהתאם לגודל שטח ההשקיה שיש לסתום (ראו דיון).
12. הניחו וילון כירורגי נקי מעל שולחן הניתוחים.
13. יש למרוח טיפת בטדין על עורה המגולח של החיה. השתמשו בצמר גפן כדי לשפשף את חומר החיטוי לתוך העור בצורה מעגלית מבפנים החוצה. לאחר מכן, עשו את אותו הדבר עם צמר גפן ספוג אתנול. חזור על שלב זה 3 פעמים עם זוג טרי של צמר גפן סטרילי עבור כל חזרה.
14. החל טפיחה של ג'ל לידוקאין על האזור המחוטא של אתר החתך העתידי לשיכוך כאבים פצע מקומי.

2. ניתוח אינדוקציה איסכמיה

1. בצע חתך ראשוני על העור מחוטא באמצעות אזמל. שמור על מספר שבץ חתך העור על מינימום כדי להפוך את הפצע הניתוחי לרפא קל יותר.
   הערה: כל המכשירים חייבים לעבור עיקור בעבר. על הקורא לעיין בהנחיות המוסדיות לשימוש בכפפות סטריליות או כירורגיות.
2. באמצעות מלקחיים מסוג 7 ו-5, קורעים את הפאשיה השטחית ומנתקים את בלוטות הרוק מהרקמה שמתחתיה.
   הערה: תמיד להתקדם עם מלקחיים סגורים ולהאריך אותו תוך כדי התרחקות כדי לדחוף את הרקמה משם. בדרך זו, ניתן לחצות חללים אנטומיים עם טראומה מינימלית לרקמות.
3. הניחו את משענת החוט במקומה הראשוני תוך הבטחה שבלוטות הרוק לא יפריעו לשלבים הבאים.
4. הסר את הפאשיה העמוקה של הצוואר באמצעות מלקחיים מסוג 7 ונתק את שרירי הסטרנוקלידומסטואיד מאזור התרדמה כדי למקם מחדש את המחזיר.
5. מקם מחדש את המשענת כך שתגיע מתחת לשרירי הסטרנוקלידומסטואיד כדי לאפשר גישה לאזור התרדמה.
6. כנסו את שריר האומוהיואיד כדי לאפשר ראייה ברורה וגישה קלה יותר לאזור התרדמה.
7. שחררו את עורק התרדמה וענפיו מווריד התרדמה ומהעצב התועה, המוחזקים יחד בפאשיית התרדמה.
   הערה: יש להסיר פאשיה זו בזהירות כדי למנוע פגיעה בעצב התועה או גרימת דימום משמעותי.
   1. צבטו את החיתולית הצידית בצד הצדדי של שלישיית התרדמה ומשכו אותה בעדינות לרוחב כדי לזהות חזותית את העורק, העצב, הווריד וכל ענפי כלי הדם שמסביב.
   2. תוך כדי משיכת הפאשיה לרוחב, באמצעות מלקחיים מסוג 5, מפרידים את ה-CCA מהעצב והווריד הסמוכים עד לנקודת ההסתעפות ולווריד בלוטת התריס העליון, החוצה את ה-CCA.
   3. נתקו לחלוטין את החלק התחתון של CCA מהרקמה הבסיסית ומהפאשיה, באמצעות מלקחיים מעוקלים מסוג 7, וודאו שהוא מוכן להידוק בשלבים הבאים.
   4. ממשיכים בגולגולת באזור שמעל נקודת ההסתעפות של CCA, קורעים את פאשיית התרדמה באמצעות שני מלקחיים.
   5. באופן דומה, משוך את הקצה הרופף של חיתולית התרדמה מדיאלית וצידית כדי לנתק במדויק את ECA ואת עורק התרדמה הפנימי (ICA) מהפאשיה ומהרקמה שמסביב, בהתאמה.
   6. שחררו את ECA ו-ICA מהרקמה הבסיסית באמצעות מלקחיים מעוקלים מסוג 7.
8. עם CCA מוכן בקפידה עם שני הענפים המתאימים שלה, להרים ECA באמצעות מלקחיים סוג 7 מעוקל ולהדק אותו עם סוג N0 סוגר עצמי מלקחיים.
9. הנמיכו בזהירות את המלקחיים מסוג N0 לסגירה עצמית על שולחן הניתוחים.
   הערה: כדי למקם מחדש את נקודת ההידוק של ECA, לפעמים יש צורך לשחרר מעט את האחיזה ולדחוף את נקודת ההסתעפות של ECA בצורה קאודלית. בשלב זה, חשוב לוודא כי יותר מ 1 מ"מ של ECA נשאר בין הידוק ECA לבין נקודת הסתעפות.
10. כאשר ECA מהודק ומוחזק היטב עם פינצטה מסוג N0, הציגו שני חוטי משי קלועים מאחורי ECA.
    הערה: חוט הגולגולת יתאים לקשר הקשירה ויש למקם אותו באופן גולגולתי מאתר ההידוק.
11. קשרו את חוט הגולגולת לחלוטין, שכן הוא קבוע, וגזרו את החוט העודף בעזרת מספריים.
12. קשרו את החוט הקאודלי לקשר אבטחה רופף.
    הערה: יש לשים אותו קרוב לנקודת ההסתעפות של ECA ולשמור אותו רופף כדי שחוט הלהט של MCAO יעבור.
13. באמצעות מיקרוקליפים של כלי הדם, הדקו את ה-CCA ואת ה-ICA כדי למנוע דימום לאחר העורקים.
    הערה: חיוני לוודא שלמיקרוקליפ המיושם על CCA יש אחיזה חזקה מספיק מכיוון שה- CCA הוא עורק פועם בעל תפוקה גבוהה, וכישלון לעשות זאת עלול לגרום לדימום רב ומוות של בעל החיים בשלבים מאוחרים יותר.
14. באמצעות מספריים micro-spring, לעשות arteriotomy קטן ממש מתחת לאתר הידוק ECA.
    הערה: הארטריוטומיה צריכה להיות גדולה מספיק כדי שחלק הסיליקון של חוט הלהט ייכנס פנימה, אך לא גדול ממחצית היקף ECA כדי לא לפגוע במתח המוחזק על ידי מלקחיים מסוג N0.
15. עם זווית התואמת את זו של ECA, הכנס את חוט הלהט לאתר arteriotomy בכיוון פרוקסימלי ל- CCA, עובר דרך קשר האבטחה הרופף באתר ההסתעפות של ECA ונדבק לתוך לומן של CCA עם חוט הלהט.
16. הדקו את קשר האבטחה סביב חלק הסיליקון של חוט הלהט.
    הערה: יש צורך בזהירות רבה בשלב זה מכיוון שחוט הלהט נוטה לחמוק החוצה מה- ECA באמצע התמרון האחרון, והכנסתו חזרה בנקודה זו קשה מאוד.
17. פתח בזהירות את המיקרו-קליפ של האגודה למלחמה בסרטן והסר אותו.
18. כאשר חוט הלהט מוכנס חלקית לתוך ECA ומאובטח כלפי מטה, בצע ארטריוטומיה שלמה ובכך שחרר את גדם ECA עם חוט הלהט MCAO בפנים. בשלב זה, שחרר את סוג N0 סוגר עצמי מלקחיים ולהסיר אותו.
19. עם קבוצה אחת של פינצטה מסוג 5, לצבוט היטב את גדם ECA ולהרים אותו מעט. תוך כדי אחיזה בחוט הלהט המוחדר חלקית עם מלקחיים נוסף, הורידו ומשכו בעדינות את גדם ECA כדי לכוון את הקצה הפנימי של חוט הלהט לכיוון האגודה למלחמה בסרטן. לעולם אל תצבוט את חלק הסיליקון של חוט הלהט.
20. בעזרת מלקחיים האוחזים בחוט הלהט, התקדמו לאט לאט דרך האגודה למלחמה בסרטן לעבר מעגל הצוואות.
    הערה: נקודת ההסתעפות הראשונה של האגודה למלחמה בסרטן היא גם היחידה שבה המפעיל יכול להחמיץ את נקודת ההסתעפות הרצויה של MCA. לכן, יש צורך בזווית צידית קלה של התקדמות כדי להנחות את חוט הלהט לנקודת ההסתעפות של MCA. עם זווית ההתקדמות הצידית הקלה, חוט הלהט מתעקל הרחק מעורק הפטריגופלטין (PPA) ומגדיל את הסיכוי שהקצה המתקדם ייכנס למעגל של ויליס (איור 1).

איור 1: המחשה של התקדמות חוט החסימה של עורק המוח האמצעי מעבר לנקודת ההסתעפות של עורק הפטריגופלטין. התקדמות נכונה של חוט הלהט (משמאל) מושגת על ידי כיוון חוט הלהט MCAO באופן כזה שהוא נשען לאחור על הקיר הצידי של האגודה למלחמה בסרטן ומתעקם מנקודת ההסתעפות של PPA. אי ביצוע פעולה זו (מימין) עלול לגרום לכך שחוט הלהט ייכנס ל-PPA ולא יגרום לשבץ מוחי. במקרה האחרון, חוט הלהט לא יוכל להתקדם ככל שצריך והמנתח צריך למשוך את חוט הלהט עד שקצהו יתגלה בנקודת ההסתעפות של האגודה למלחמה בסרטן ויתחיל לקדם את חוט הלהט שוב. עורקים בצבע ירוק מייצגים עורקים מתקשרים אחוריים (PcomA), לרוב ללא פטנט בעכברים. נוצר באמצעות BioRender.com. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של איור זה.

21. התקדמו לאט לאט את חוט הלהט MCAO דרך מעגל וויליס עד שתורגש עלייה פתאומית בהתנגדות.
    הערה: בשלב זה, חשוב להקפיד על האורך הנותר של חוט הלהט. חוט הלהט צריך להתקדם ללא מאמץ לפחות 7 מ"מ מנקודת ההסתעפות של ICA בעכבר בוגר.
22. הדקו את הקשר המאובטח כדי להבטיח שחוט הלהט לא יזוז במהלך איסכמיה.
23. הסר את קליפ CCA ושים לב לשעה.
    הערה: פעולה זו מסמנת את תחילת הופעת האיסכמיה.
24. ארוז את הקצה הרופף של חוט הלהט MCAO בחריץ שבין משולש התרדמה לבין שריר הסטרנוקלידומסטואיד האיפסילטרלי כדי שלא יבלוט החוצה מהפצע הניתוחי.
25. הסר את החוט האחורי וקרב את קצוות הפצע הניתוחי זה לזה. תן לאתר הניתוח להסתפק בכמה שניות כדי שהרקמה תחזור למקומה האנטומי.
26. סגור את פצע הניתוח באמצעות סגירת פצע סרט כדי להקל על פתיחה מהירה יותר של הפצע לאחר תקופת האיסכמיה.
    הערה: אם חוקר רוצה לתת לבעל החיים להתעורר במהלך תקופת האיסכמיה, מומלץ לתפור את הפצע כדי למנוע פתיחה מחדש בטרם עת של הפצע.

3. תקופת איסכמיה

1. לאמת את הצלחת הניתוח באמצעות MRI או שיטת מדידה כמותית אחרת של זילוח.
   הערה: במקרה של ביצוע סריקת MRI, הדמיה משוקללת זילוח (PWI) צריכה להראות איסכמיה קריטית באזור MCA הרחב והדמיה משוקללת דיפוזיה (DWI) צריכה לתאר את האתר של מקדם דיפוזיה נראה מופחת (ADC) עקב בצקת תאים.
2. הכניסו את בעל החיים לכלוב נקי עד לסיום תקופת האיסכמיה.

4. ניתוח נסיגה נימה

1. כ-5 דקות לפני תום זמן האיסכמיה המוקצב, הניחו את בעל החיים והדביקו אותו שוב על שולחן הניתוחים.
2. הסר את סגירות פצעי הסרט ופתח מחדש את פצע הניתוח באמצעות מסיר התיל.
3. שחררו את הקצה הרופף של חוט הלהט MCAO מהרקמה שמסביב ומהקצוות של חוט הקשר המבטיח.
4. עם סוג N0 מלקחיים, לצבוט ולמשוך את קצה גדם ECA הגחון כדי להפעיל מתח על זה. הורידו בזהירות את המלקחיים הצובטים כלפי מטה, בדומה להליך הכירורגי הראשון.
   הערה: על המפעיל להימנע מצביטה של הקשר המבטיח, מכיוון שהדבר יגרום לכך שהקשר לא יוכל להתיר.
5. הדקו שוב את ה-CCA בעזרת קליפס מיקרו-וסקולרי.
6. באמצעות מלקחיים מסוג 5, שחררו את קשר האבטחה כדי לאפשר נסיגה של חוט הלהט.
   הערה: הדרך הטובה ביותר להתחיל לשחרר את הקשר היא להמשיך לצבוט אותו עד שהוא נפרד לחלקים בודדים ואז לדחוף את קצוות החוט לכיוון הקשר.
7. משכו באיטיות את חוט הלהט MCAO עד שחלק הסיליקון מתחיל לבלוט החוצה מגדם ה-ECA. הדקו מעט את קשר האבטחה כדי להתכונן לנסיגה מלאה של חוט הלהט.
8. כאשר הוא קרוב לקצה הסיליקון של חוט הלהט, הדקו את קשר האבטחה כך שהוא ידחוף החוצה את חוט הלהט MCAO ויסגור את גדם ECA בתמרון יחיד. הדקו את הקשר לחלוטין לאחר שחוט הלהט מחליק החוצה.
9. פתח והסר את המלקחיים הצובטים יחד עם תפס CCA.
   הערה: זה מסמן את סוף תקופת האיסכמיה ואת תחילת תהליך הרפרפוזיה.
10. הסר את משענת החוט וקרב שוב את שולי הפצע הניתוחי.
11. יש לתפור את פצע הניתוח החל מהפריפריה, ולסגור את הפצע לחלוטין ללא כל רקמה תחתונה נראית לעין.
    הערה: מספר התפרים הנדרש תלוי בגודל הפצע הניתוחי.
12. יש לנקות ולחטא את אתר הניתוח באמצעות מגבוני אלכוהול.

5. טיפול לאחר ניתוח

1. הכניסו את בעל החיים לכלוב נקי ואפשרו לו להתעורר באופן ספונטני מהרדמה.
2. הניחו את המזון הכדורי בתחתית הכלוב להגעה קלה יותר. מרככים את כדורי המזון באמצעות מי שתייה. ממלאים צלחת פטרי קטנה במי שתייה ומביאים גם אותה לרצפת הכלוב.
3. ב 48 השעות הבאות, להזריק 0.25 מ"ל מלוחים עם buprenorphine (0.5 מ"ג / ק"ג) כל 24 שעות intraperitoneally.

תוצאות

סריקות MRI תוך ניתוחיות או לאחר ניתוח, במיוחד סריקות דימות משוקלל זילוח (PWI) ו/או דימות משוקלל דיפוזיה (DWI) (איור 2) יכולות להציע הוכחה סופית להליך מוצלח. PWI תוך ניתוחי מראה איסכמיה קריטית באזור MCA ipsilateral ובכך מאשר כי מיקום חוט הלהט הביא לחסימה מוחלטת. PWI לאחר הני...

Discussion

MCAO הוא הליך תובעני מאוד עבור המפעיל ומתיש עבור החיה. מסיבה זו, יש חשיבות עליונה לחוקרים שיהיה הליך ניתוח סטנדרטי שממזער את חומרת השבץ, מפחית כשל פרוצדורלי ומשפר את רווחת בעל החיים לאחר ההליך. פרוטוקול MCAO זה מדגיש כמה מהיבטי המפתח של שיקול בעת ביצוע הליך זה על עכבר.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Betadine cutaneous solution 10g/100ml	Alkaloid Skopje	N/A
Braided silk suture	Fine Science Tools	18020-60
Dafilon suture 5/0 DS16	B. Braun	C0936154
Dolokain 20 mg/g gel	Jadran-Galenski Laboratorij	N/A
Dumont #5 forceps	Fine Science Tools	11251-20	2 pieces
Dumont #7 forceps	Fine Science Tools	11271-30
Dumont N0 self-closing forceps	Fine Science Tools	11480-11
Durapore Surgical Tape 1,25cm x 9,1m	3M	7100057169
Durapore Surgical Tape 2,5cm x 9,1m	3M	7100057168
External thermostat	Petnap	1012536
Halsey needle holders	Fine Science Tools	12500-12
Hot bead sterilizer	Fine Science Tools	18000-50
Iris scissors	Fine Science Tools	14060-10
Isoflurane USP	Piramal critical care	N/A
Laser Doppler Monitor	Moor	MOORVMS-LDF2
Metal Pet Heat Pad	Petnap	1012525
Micro Vannas spring scissors	Fine Science Tools	15000-00
Mini-colibri retractor	Fine Science Tools	17000-01
Recugel eye ointment	Bausch&Lomb	N/A
S&T B-1 vessel micro clamp	Fine Science Tools	00396-01	2 pieces
S&T micro clamp applying forceps	Fine Science Tools	00071-14
Schwartz micro serrefines	Fine Science Tools	18052-01
Stemi DV4 Spot stereo microscope	Zeiss	000000-1018-453
Steri-Strip Reinforced Adhesive Skin Closures 3 mm x 75 mm	3M	7100236545
Straight tissue forceps	Fine Science Tools	11023-10
SZX Stand Arm	Olympus	SZ2-STS
Tec III 300 series calibrated vaporizer	Vaporizer Sales and Service inc.	N/A
Universal Stand Type 2	Olympus	SZ2-STU2
VetFlo Six Channel Anesthesia Stand	Kent Scientific	VetFlo-1225	Modified for O2/N2 mixing