Longa Orta Serebral Arter Oklüzyon Yönteminin Tam Reperfüzyon için Optimizasyonu

Özet

Bu protokol, araştırmacıların modifiye Longa eksternal karotis arter yöntemini kullanarak fareler üzerinde orta serebral arter oklüzyon prosedürünü gerçekleştirmeleri için adım adım bir kılavuz sunar. Bu makalede sunulan modifikasyonlar orta serebral arter oklüzyonunun doğruluğunu arttırmayı ve tam reperfüzyonu sağlamayı amaçlamaktadır.

Özet

Orta serebral arter oklüzyon modeli, iskemik inmeyi incelemek için birincil hayvan modeli olarak hizmet eder. Otuz yılı aşkın bir süredir araştırmalarda kullanılmasına rağmen, standardizasyonu yetersiz kalmaktadır. Ağırlıklı olarak sıçanlar ve fareler üzerinde gerçekleştirilen prosedür, farelerin daha küçük ve daha kırılgan doğası nedeniyle zorluklar doğurmaktadır. Koizumi ortak karotis arter yönteminden farklı olarak, Longa eksternal karotis arter, iskemi sonrası tam reperfüzyon sağlayan tek intraluminal filament inme modelidir. Bu husus, reperfüzyon fenomenini araştıran çalışmalar için kritik öneme sahiptir. Bu makalede gösterilen cerrahi modifikasyonlar, iskemik faz boyunca ve reperfüzyon başlangıcından sonra ana karotis arterden sürekli kan akışını sağlar. Bu modifikasyonların amacı, iskemi döneminde orta serebral arterin proksimalindeki dallarda perfüzyonu kesintisiz tutarak orta serebral arteri seçici olarak tıkamaktır. Ayrıca, reperfüzyonun başlangıcı anidir ve hassas bir şekilde kontrol edilebilir, böylece insan tıbbında endovasküler trombektomi daha doğru bir şekilde modellenir. Bu kapsamlı video makalesini sunmadaki amacımız, yeni cerrahların eğitimini kolaylaştırmak ve bilim camiasında cerrahi prosedürlerin standardizasyonunu teşvik etmektir.

Giriş

İnme, ikinci önde gelen ölüm nedeni ve üçüncü önde gelen ölüm ve sakatlık nedeni olarak yer almaktadır¹. Nedeni olarak, inme iskemik veya hemorajik olabilir, iskemik inme klinik uygulamada önemli ölçüde daha yaygındır. İskemik inme, beyin dokusuna kan sağlayan bir arterdeki tıkanıklıktan kaynaklanır ve iskemi, hücre ölümü ve iltihaplanmaya yol açar. Tromboliz ve mekanik trombektomi gibi reperfüzyon tedavilerinin ortaya çıkmasından bu yana, inme tedavisinde büyük ilerlemeler kaydedilmiştir. Bununla birlikte, tüm reperfüzyon tedavileri, yaygın olarak reperfüzyon hasarı² olarak adlandırılan duruma neden olarak hastanın durumunu daha da kötüleştirme riski taşır. Reperfüzyon hasarının kesin mekanizması belirsizliğini korumaktadır ve olası nedenleri ve önleyici tedbirleri belirlemek klinik öncesi çalışmalara bağlıdır. Bu amaçla, iskemik inmeyi takip eden reperfüzyon hasarı için uygun bir hayvan modeli geliştirmek çok önemlidir.

Orta serebral arter tıkanıklığı (MCAO), iskemik inmeyi incelemek için en sık kullanılan hayvan modelidir. Ağırlıklı olarak kemirgenlerde yapılır ve şu ana kadar bilimsel literatürde açıklanan birçok farklı varyanta sahiptir ^3,4. Ortak karotis arter (CCA) ve eksternal karotis arter (ECA) varyantları olarak bilinen iki ana tip, Koizumi ve Longa, filament yerleştirilmesi için arteriyotomi bölgesine göre teknik olarak farklılık gösterir ^5,6. Son makalemizde, vasküler perfüzyonun in vivo izlenmesiyle, yalnızca Longa yönteminin gerçekten bir beyin iskemisi/reperfüzyon modeli⁷ olarak kabul edilebileceğini gösterdik. Prosedür, filamentin ECA'ya yerleştirilmesini, ICA boyunca ilerletilmesini ve beyin dokusu iskemisini indüklemek için orta serebral arterin (MCA) dallanma noktasında sabitlenmesini içerir. Önceden belirlenmiş bir iskemi dönemini takiben, filamentin geri çekilmesi, geçici beyin iskemisini simüle ederek reperfüzyona izin verir. İnme başlangıcından sonra, araştırmada kullanılan birincil sonuç değişkeni, çoğunlukla ex vivo histoloji veya in vivo beyin taramaları kullanılarak ölçülebilen enfarktüslü lezyonun hacmidir. MCAO modellerindeki zorluklar, varyantlar arası, operatörler arası ve denekler arası varyanslara atfedilen düşük tekrarlanabilirlik etrafında dönmektedir ve ikincisi klinik öncesi inme araştırmalarında önemli bir sınırlama oluşturmaktadır⁴.

Ayrıca, kemirgenlerde MCAO'yu takip eden enfarktüslü bölgeler, kemirgen beyninin boyutuna göre çok büyüktür. Ek olarak, beynin hipokampal arka bölgeleri, bu bölgeler esas olarak MCA^8'den değil, posterior serebral arterden (PCA) gelen kan akışına bağlı olmasına rağmen, sıklıkla enfarktüs hacmine alınır. Literatürde anlatılan hem Koizumi hem de Longa yöntemlerinde olduğu gibi, farelerde Willis çemberinin tam olmayan açıklığı nedeniyle CCA iskemi döneminde bağlı tutulur ve bu da amaçlanandan çok daha geniş bir bölgede iskemi indüksiyonuna yol açar ^5,6,9. İskemi döneminden sonra CCA'nın tekrar açıldığı veya onarıldığı yöntemlerde bile, olağan 30-60 dakikalık iskemi MCA olmayan bölgelerde geri dönüşümsüz doku hasarı ile sonuçlanır¹⁰. Ayrıca, beklentilerin aksine, önceki araştırmalar, bir filamentin silikon kaplamasının uzunluğunun lezyon boyutu¹¹ üzerinde hiçbir etkisi olmadığını göstermiştir. Bununla birlikte, filamentin silikon kaplama uzunluğunun seçimi, oklüzyon periyodu sırasında yalnızca bağlı CCA'ya sahip modellerde ele alındı.

Bu yöntemin amacı, iskemi döneminde CCA'dan kesintisiz kan akışını sağlamak için farelerde Longa MCAO yöntemini değiştirmek, böylece MCAO'nun seçiciliğini arttırmak ve işlemden sonra enfarktüslü bölgenin tam reperfüzyonunu sağlamaktı. Bu modifikasyonlar, mortalite oranını düşürerek ve denekler arası varyansı azaltarak farelerde iskemi-reperfüzyon hasarını araştıran uzunlamasına çalışmalara büyük fayda sağlayacaktır.

Protokol

Tüm hayvan işleme ve prosedürleri, Zagreb Üniversitesi Tıp Fakültesi Etik Lisans Komitesi ve Hırvatistan Cumhuriyeti Tarım Bakanlığı'nın bilimsel amaçlarla kullanılan hayvanların korunması için Etik Kurulu tarafından onaylanmıştır. Deneysel prosedürler, Avrupa Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi (Direktif 2010/63/EU) ile uyumlu olan Hırvatistan Hayvanları Koruma Yasası (NN 102/17, 32/19), Hayvanları Koruma Yasası Değişiklikleri (NN 37/13) ve Bilimsel Amaçlarla Kullanılan Hayvanların Korunmasına İlişkin Kılavuz İlkelerine (NN 55/13) göre gerçekleştirilmiştir.

1. Hayvanın ve cerrahi alanın hazırlanması

1. Hayvanı bir nakavt kutusuna yerleştirin ve bir oksijen / nitrojen karışımında (1: 2 oranında) %5 hacimde izofluran kullanarak anestezi uygulayın.
2. Hayvanın bilinç durumunu ve solunum frekansını görsel olarak inceledikten sonra, onu bir laboratuvar terazisine getirin ve tartın.
3. Uygun anestezi derinliğini sağlamak için alt ekstremitenin interdigital derisini sıkıştırarak refleksi kontrol edin.
4. Hayvanı ısıtılmış ameliyat masasına yerleştirin ve burnunu anestezi maskesine getirin. İlk ameliyat masası sıcaklığını 36 °C'ye ayarlayın ve hayvanın vücut sıcaklığını 37 °C'de tutacak şekilde ayarlayın (sonraki adımlarda tanıtılan bir rektal prob ile ölçülür). Diğer tüm adımlar boyunca, hayvanın solunum hızını 100 nefes / dk'da tutmak için izofluranın hacim fraksiyonunu ayarlayın.
   NOT: Hayvanla doğrudan temas eden tüm yüzeyler ve malzemeler işlemden önce iyice dezenfekte edilmelidir.
5. Dehidrasyondan ve izofluran gazından korumak için hayvanın gözlerine göz merhemi sürün.
6. Hayvanı sırt üstü çevirin ve altına cerrahi banttan yapılmış küçük bir yastık koyarak boynunu uzatın.
7. Cerrahi bant kullanarak hayvanın uzuvlarını yerine sabitleyin. Yanlışlıkla omuz eklemi çıkığına neden olmamak için ön ayakları çok fazla uzatmamaya özen gösterin.
8. Rektal probu petrol beyazı jöle kullanarak yağlayın ve sürekli vücut ısısı ölçümü için rektuma yerleştirin. Cerrahi bant kullanarak probu kuyrukla birlikte yerine sabitleyin.
9. İşlem sırasında hayvanı iyi nemlendirmek ve analjezi altında tutmak için intraperitoneal olarak ameliyat öncesi salin ve buprenorfin enjeksiyonu (0.5 mg / kg) uygulayın.
10. Kablosuz bir hayvan kesme makinesi kullanarak hayvanın boyun bölgesindeki kürkünü tıraş edin. Cerrahi bant parçaları kullanarak tüm traşlı kürkleri toplayın. Ek olarak, bölgeyi kürkten tamamen arındırmak için bir usturayla tıraş edin.
11. Ölçülen hayvanın ağırlığına ve/veya yaşına göre bir MCAO filamenti seçin. Kabından çıkarın ve görünür bir yerde bir Petri kabına koyun. Filamentin silikon kısmını temiz ve tozsuz tutmak için üzerine bir damla tuzlu su sürün.
    NOT: Filamentin silikon kaplamasının kalınlığı, 12-16 haftalık bir fare söz konusu olduğunda üreticinin resmi tavsiyelerine göre seçilmelidir. Ek olarak, silikon kaplamanın uzunluğu, tıkanacak sulama alanının boyutuna bağlı olarak önceden dikkatlice planlanmalıdır (bkz. Tartışma).
12. Ameliyat masasının üzerine temiz bir cerrahi örtü yerleştirin.
13. Hayvanın traşlı derisine bir damla Betadine uygulayın. Dezenfektanı içten dışa dairesel bir şekilde cilde sürmek için pamuklu çubuk kullanın. Daha sonra, etanole batırılmış bir pamuklu çubukla aynı şeyi yapın. Her tekrarlama için yeni bir çift steril pamuklu çubukla bu adımı 3 kez tekrarlayın.
14. Lokal yara analjezisi için gelecekteki insizyon bölgesinin dezenfekte edilmiş bölgesine bir miktar lidokain jeli uygulayın.

2. İskemi indüksiyon cerrahisi

1. Bir neşter kullanarak dezenfekte edilmiş cilt üzerinde ilk kesi yapın. Cerrahi yaranın iyileşmesini kolaylaştırmak için cilt kesi vuruşlarının sayısını minimumda tutun.
   NOT: Tüm aletler daha önce sterilize edilmiş olmalıdır. Okuyucu, steril veya cerrahi eldiven kullanımı için kurumsal yönergelerine başvurmalıdır.
2. Tip 7 ve 5 forseps kullanarak yüzeysel fasyayı yırtın ve tükürük bezlerini alttaki dokudan ayırın.
   NOT: Her zaman kapalı forsepslerle ilerleyin ve dokuyu uzaklaştırmak için hareket ederken uzatın. Bu sayede anatomik boşluklar minimal doku travması ile geçilebilmektedir.
3. Tükürük bezlerinin sonraki adımlara müdahale etmediğinden emin olurken tel toplayıcıyı başlangıç konumuna yerleştirin.
4. Tip 7 forseps kullanarak derin boyun fasyasını çıkarın ve ekartörü yeniden konumlandırmak için sternokleidomastoid kasları karotis bölgesinden ayırın.
5. Karotis bölgesine erişim sağlamak için ekartörü sternokleidomastoid kasların altına ulaşacak şekilde yeniden konumlandırın.
6. Karotis bölgesine net bir görsel ve daha kolay bir yaklaşım sağlamak için omohyoid kasını rezeke edin.
7. Karotis arteri ve dallarını, karotis fasyasında bir arada tutulan karotis ven ve vagus sinirinden kurtarın.
   NOT: Vagus sinirine zarar vermemek veya önemli bir kanamaya neden olmamak için bu fasyanın dikkatlice çıkarılması gerekir.
   1. Karotis fasyasını karotis triadının yan tarafında sıkıştırın ve arteri, siniri, damarı ve çevresindeki tüm kan damarı dallarını görsel olarak tanımlamak için hafifçe yanal olarak çekin.
   2. Fasyayı yanlamasına çekerken, Tip 5 forseps kullanarak, CCA'yı komşu sinir ve toplardamardan dallanma noktasına ve CCA'nın üzerinden geçen üst tiroid toplardamarına kadar ayırın.
   3. CCA'nın alt kısmını, kavisli Tip 7 forseps kullanarak alttaki doku ve fasyadan tamamen ayırın ve sonraki adımlarda klemplemeye hazır olduğundan emin olun.
   4. CCA dallanma noktasının üzerindeki bölgede kraniyal olarak ilerleyerek, iki forseps kullanarak karotis fasyasını yırtın.
   5. Benzer şekilde, ECA ve iç karotis arteri (ICA) sırasıyla fasya ve çevresindeki dokudan hassas bir şekilde ayırmak için karotis fasyasının gevşek ucunu medial ve lateral olarak çekin.
   6. ECA ve ICA'yı kavisli Tip 7 forseps kullanarak alttaki dokudan serbest bırakın.
8. CCA, ilgili iki dalı ile dikkatlice hazırlanırken, ECA'yı kavisli tip 7 forseps kullanarak kaldırın ve N0 tipi kendiliğinden kapanan forseps ile sıkıştırın.
9. N0 tipi kendiliğinden kapanan forsepsleri ameliyat masasına dikkatlice indirin.
   NOT: ECA'nın sıkıştırma noktasını yeniden konumlandırmak için bazen tutamağı hafifçe serbest bırakmak ve ECA dallanma noktasını kaudal olarak itmek gerekir. Bu noktada, ECA kenetlemesi ile dallanma noktası arasında 1 mm'den fazla ECA kalmasını sağlamak önemlidir.
10. ECA, N0 tipi cımbızla kenetlenip güvenli bir şekilde tutulduğunda, ECA'nın arkasına iki örgülü ipek iplik yerleştirin.
    NOT: Kraniyal iplik, ligasyon düğümünü oluşturacaktır ve sıkıştırma bölgesinden kraniyal olarak yerleştirilmelidir.
11. Kalıcı olduğu için kraniyal ipliği tamamen bağlayın ve fazla ipliği makas kullanarak kesin.
12. Kuyruk ipliğini gevşek bir sabitleme düğümüne bağlayın.
    NOT: MCAO filamentinin geçmesi için ECA dallanma noktasına yakın konulmalı ve gevşek tutulmalıdır.
13. Vasküler mikroklipler kullanarak, arteriyotomiden sonra kanamayı önlemek için CCA ve ICA'yı kapatın.
    NOT: CCA'ya uygulanan mikroklipsin yeterince güçlü bir tutuşa sahip olduğundan emin olmak çok önemlidir, çünkü CCA titreşimli yüksek verimli bir arterdir ve bunun yapılmaması, sonraki adımlarda hayvanın bol miktarda kanamasına ve ölümüne neden olabilir.
14. Mikro yaylı makas kullanarak, ECA sıkıştırma bölgesinin hemen altında küçük bir arteriyotomi yapın.
    NOT: Arteriyotominin, filamentin silikon kısmının içeri girmesi için yeterince büyük olması, ancak N0 tipi forsepslerin tuttuğu gerilimi tehlikeye atmamak için ECA çevresinin yarısından daha büyük olmaması gerekir.
15. ECA'nınkiyle eşleşen bir açıyla, filamenti CCA'ya proksimal yönde arteriyotomi bölgesine yerleştirin, ECA'nın dallanma bölgesindeki gevşek sabitleme düğümünden geçin ve filament ile CCA'nın lümenine yapışın.
16. Filamentin silikon kısmının etrafındaki sabitleme düğümünü sıkın.
    NOT: Filament son manevranın yarısında ECA'dan kayma eğiliminde olduğundan ve bu noktada tekrar yerine koymak çok zor olduğundan, bu noktada çok dikkatli olunması gerekir.
17. ICA mikro klipsini dikkatlice açın ve çıkarın.
18. Filament kısmen ECA'ya yerleştirilmiş ve sabitlenmiş durumdayken, tam bir arteriyotomi yapın, böylece ECA kütüğünü içindeki MCAO filamenti ile gevşetin. Bu noktada, N0 tipi kendiliğinden kapanan forsepsleri serbest bırakın ve çıkarın.
19. Bir set tip 5 cımbız ile ECA kütüğünü sıkıca sıkıştırın ve hafifçe kaldırın. Kısmen yerleştirilmiş filamenti başka bir forseps ile tutarken, filamentin iç ucunu ICA'ya doğru yönlendirmek için ECA kütüğünü indirin ve hafifçe çekin. Filamentin silikon kısmını asla sıkıştırmayın.
20. Forseps filamenti tutarak, filamenti ICA'dan İrade çemberine doğru yavaşça ilerletin.
    NOT: ICA'nın ilk dallanma noktası, aynı zamanda operatörün istenen MCA dallanma noktasını kaçırabileceği tek noktadır. Bu nedenle, filamenti MCA dallanma noktasına yönlendirmek için hafif bir yanal ilerleme açısı gereklidir. Hafif yanal ilerleme açısıyla, filament pterygopalatin arterden (PPA) uzağa doğru kıvrılır ve ilerleyen ucun Willis çemberine girme olasılığını artırır (Şekil 1).

Şekil 1: Orta serebral arter oklüzyonu filamentinin pterygopalatin arter dallanma noktasını geçerek ilerlemesinin bir çizimi. Uygun filament ilerlemesi (solda), MCAO filamentinin ICA'nın yan duvarına dayanacak ve PPA dallanma noktasından uzağa doğru kıvrılacak şekilde yönlendirilmesiyle elde edilir. Bunun yapılmaması (sağda), filamentin PPA'ya girmesine ve darbeye neden olmamasına neden olabilir. İkinci durumda, filament gerektiği kadar ilerleyemeyecektir ve cerrah, ucu ICA dallanma noktasında görünür hale gelene kadar filamenti geri çekmeli ve filamenti tekrar ilerletmeye başlamalıdır. Yeşil renkli arterler, farelerde çoğunlukla patentsiz olan posterior komünikan arterleri (PcomA) temsil eder. BioRender.com ile oluşturuldu. Bu rakamın daha büyük bir sürümünü görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

21. Dirençte ani bir artış hissedilene kadar MCAO filamentini Willis çemberi boyunca yavaşça ilerletin.
    NOT: Bu noktada, filamentin kalan uzunluğunu gözlemlemek önemlidir. Filament, yetişkin bir farede ICA dallanma noktasından en az 7 mm uzakta zahmetsizce ilerlemelidir.
22. İskemi sırasında filamentin yer değiştirmediğinden emin olmak için sabitleme düğümünü sıkın.
23. CCA klibini çıkarın ve saati not edin.
    NOT: Bu, iskemi başlangıcının başlangıcını işaret eder.
24. MCAO filamentinin gevşek ucunu, karotis üçgeni ile ipsilateral sternokleidomastoid kas arasındaki oluğa paketleyin, böylece cerrahi yaradan dışarı çıkmaz.
25. Tel ekartörü çıkarın ve cerrahi yaranın kenarlarını birbirine yaklaştırın. Dokunun anatomik konumuna dönmesi için ameliyat bölgesinin birkaç saniye oturmasına izin verin.
26. İskemi döneminden sonra yaranın daha hızlı yeniden açılmasını kolaylaştırmak için cerrahi yarayı bant yara kapakları kullanarak kapatın.
    NOT: Bir araştırmacı iskemi döneminde hayvanın uyanmasına izin vermek isterse, yaranın zamansız bir şekilde yeniden açılmasını önlemek için yaranın dikilmesi önerilir.

3. İskemi dönemi

1. MRI veya başka bir kantitatif perfüzyon ölçüm yöntemi kullanarak ameliyatın başarısını doğrulayın.
   NOT: MRG taraması yapılması durumunda, perfüzyon ağırlıklı görüntüleme (PWI) geniş MCA bölgesinde kritik iskemi göstermeli ve difüzyon ağırlıklı görüntüleme (DWI) hücre ödemine bağlı azalmış görünür difüzyon katsayısı (ADC) bölgesini özetlemelidir.
2. İskemi dönemi sona erene kadar hayvanı temiz bir kafese koyun.

4. Filament çekme ameliyatı

1. Ayrılan iskemi süresi sona ermeden yaklaşık 5 dakika önce, hayvanı yerleştirin ve tekrar ameliyat masasına sabitleyin.
2. Bant yara kapaklarını çıkarın ve cerrahi yarayı tel ekartör ile tekrar açın.
3. MCAO filamentinin gevşek ucunu çevreleyen dokudan ve sabitleyici düğüm ipliğinin uçlarından kurtarın.
4. N0 tipi forsepslerle, üzerine gerginlik koymak için ECA kütüğünün kenarını ventral olarak sıkıştırın ve çekin. İlk cerrahi prosedüre benzer şekilde kıstırma forsepslerini dikkatlice aşağı indirin.
   NOT: Operatör, düğümün çözülememesine neden olacağından, sabitleme düğümünü sıkıştırmaktan kaçınmalıdır.
5. CCA'yı bir mikrovasküler klipsle tekrar sıkıştırın.
6. Tip 5 forseps kullanarak, filamentin çekilmesini sağlamak için sabitleme düğümünü gevşetin.
   NOT: Düğümü gevşetmeye başlamanın en iyi yolu, tek tek parçalara ayrılana kadar sıkıştırmaya devam etmek ve ardından iplik uçlarını düğüme doğru itmektir.
7. Silikon parça ECA kütüğünden dışarı çıkmaya başlayana kadar MCAO filamentini yavaşça geri çekin. Filamentin tamamen çekilmesine hazırlanmak için sabitleme düğümünü hafifçe sıkın.
8. Filamentin silikon ucuna yaklaştığında, sabitleme düğümünü MCAO filamentini dışarı itecek ve ECA kütüğünü tek bir manevrayla kapatacak şekilde sıkın. Filament dışarı çıktıktan sonra düğümü tamamen sıkın.
9. Sıkıştırma forsepslerini CCA klipsi ile birlikte açın ve çıkarın.
   NOT: Bu, iskemi döneminin sonunu ve reperfüzyon sürecinin başlangıcını işaret eder.
10. Tel ekartörü çıkarın ve cerrahi yaranın kenarlarını tekrar bir araya getirin.
11. Ameliyat yarasını periferden başlayarak aşağıya doğru dikin, altta yatan herhangi bir doku görünmeden yarayı tamamen kapatın.
    NOT: Gerekli dikiş sayısı cerrahi yaranın boyutuna bağlıdır.
12. Ameliyat bölgesini alkollü mendiller kullanarak temizleyin ve dezenfekte edin.

5. Ameliyat sonrası bakım

1. Hayvanı temiz bir kafese koyun ve anesteziden kendiliğinden uyanmasına izin verin.
2. Daha kolay ulaşılması için peletlenmiş yiyecekleri kafesin altına yerleştirin. İçme suyu kullanarak gıda peletlerini yumuşatın. Küçük bir Petri kabını içme suyuyla doldurun ve onu da kafesin tabanına getirin.
3. Sonraki 48 saat içinde, intraperitoneal olarak her 24 saatte bir buprenorfin (0.5 mg / kg) ile 0.25 mL salin enjekte edin.

Sonuçlar

İntraoperatif veya postoperatif MRI taramaları, özellikle perfüzyon ağırlıklı görüntüleme (PWI) ve/veya difüzyon ağırlıklı görüntüleme (DWI) taramaları (Şekil 2) başarılı bir prosedürün kesin kanıtını sunabilir. İntraoperatif PWI, ipsilateral MCA bölgesinde kritik iskemiyi gösterir ve böylece filament yerleşiminin tam oklüzyon ile sonuçlandığını doğrular. Başarılı bir prosedürün postoperatif PWI'si, lezyon çekir...

Tartışmalar

MCAO, operatör için oldukça zorlu bir prosedürdür ve hayvan için zayıflatıcı bir prosedürdür. Bu nedenle, araştırmacıların inme şiddetini en aza indiren, prosedürel başarısızlığı azaltan ve işlem sonrası hayvanın refahını iyileştiren standart bir ameliyat prosedürüne sahip olmaları son derece önemlidir. Bu MCAO protokolü, bu prosedürü bir fare üzerinde gerçekleştirirken göz önünde bulundurulması gereken bazı önemli hususları vurgulamaktadır....

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Betadine cutaneous solution 10g/100ml	Alkaloid Skopje	N/A
Braided silk suture	Fine Science Tools	18020-60
Dafilon suture 5/0 DS16	B. Braun	C0936154
Dolokain 20 mg/g gel	Jadran-Galenski Laboratorij	N/A
Dumont #5 forceps	Fine Science Tools	11251-20	2 pieces
Dumont #7 forceps	Fine Science Tools	11271-30
Dumont N0 self-closing forceps	Fine Science Tools	11480-11
Durapore Surgical Tape 1,25cm x 9,1m	3M	7100057169
Durapore Surgical Tape 2,5cm x 9,1m	3M	7100057168
External thermostat	Petnap	1012536
Halsey needle holders	Fine Science Tools	12500-12
Hot bead sterilizer	Fine Science Tools	18000-50
Iris scissors	Fine Science Tools	14060-10
Isoflurane USP	Piramal critical care	N/A
Laser Doppler Monitor	Moor	MOORVMS-LDF2
Metal Pet Heat Pad	Petnap	1012525
Micro Vannas spring scissors	Fine Science Tools	15000-00
Mini-colibri retractor	Fine Science Tools	17000-01
Recugel eye ointment	Bausch&Lomb	N/A
S&T B-1 vessel micro clamp	Fine Science Tools	00396-01	2 pieces
S&T micro clamp applying forceps	Fine Science Tools	00071-14
Schwartz micro serrefines	Fine Science Tools	18052-01
Stemi DV4 Spot stereo microscope	Zeiss	000000-1018-453
Steri-Strip Reinforced Adhesive Skin Closures 3 mm x 75 mm	3M	7100236545
Straight tissue forceps	Fine Science Tools	11023-10
SZX Stand Arm	Olympus	SZ2-STS
Tec III 300 series calibrated vaporizer	Vaporizer Sales and Service inc.	N/A
Universal Stand Type 2	Olympus	SZ2-STU2
VetFlo Six Channel Anesthesia Stand	Kent Scientific	VetFlo-1225	Modified for O2/N2 mixing