Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מתואר מודל רחם חזירים מפורט וניתן לשחזור, החל מרכש כירורגי ועד להתחלת זלוף מכונה, המאפשר לחקור את שימור הרחם בהשתלה.

Abstract

נכון להיום, השתלת רחם היא האפשרות היחידה עבור נשים עם אי פוריות רחם מוחלטת, כמו אלו עם תסמונת רוקיטנסקי, לחוות הריון וללדת. למרות העניין הגובר בהשתלת רחם בשנים האחרונות, מספר נושאים עדיין דורשים מחקר נוסף, כולל פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה והשפעתה על איכות השתל ודחייתו. ספרות עדכנית הדגישה שיעור סיבוכים טרומבוטיים של עד 20% לאחר השתלת רחם. סוג זה של סיבוך עלול לנבוע מנזק לתאי אנדותל הנגרם על ידי היפוקסיה, מה שמוביל לעתים קרובות לדחיית שתל הרחם. היפוקסיה נגרמת במהלך אחסון קר סטטי, שנשאר תקן הזהב לשימור השתלים בהשתלת איברים מוצקים. לאחרונה, הוכח כי שימור דינמי באמצעות זלוף מכונה משפר את האחסון לטווח ארוך של איברים קונבנציונליים ושוליים על ידי הפחתת פגיעה איסכמית והיפוקסית. בפרוטוקול זה, אנו שואפים לתאר כל שלב כירורגי הכרוך ברכש רחם חזירי ושימור דינמי, המבוסס על שני פדיקלים ברחם, כדי לאפשר חיבור והתחלה של פרוטוקול זלוף המכונה.

Introduction

השתלת רחם (UTx) התפתחה משמעותית בעשר השנים האחרונות, כאשר מספר צוותים החלו בתוכניות מחקר קליניות. נכון להיום, האינדיקציה העיקרית ל-UTx היא אי פוריות רחמית מוחלטת עקב אגנזה של הרחם, כולל תסמונת מאייר-רוקיטנסקי-קיסטר-האוזר (MRKH). תסמונת MRKH היא הפרעה מולדת עם שכיחות של אחת מכל 5,000 לידות חי נקבות1. UTx יכול לטפל בגורמים נוספים לאי פוריות, כולל אלה הנובעים מכריתת רחם עקב מחלה ממארת, דימום לאחר לידה, שרירנים ברחם, השלכות זיהומיות ומומים מולדים שונים. זה מצביע על כך שכ-1 מכל 500 נשים עשויה להיות זכאית ל-UTx.

ה-UTx הקליני הראשון אי פעם התרחש בשנת 2000 בערב הסעודית2, אך סיבוכים בכלי הדם הובילו לכריתת רחם שלושה חודשים לאחר מכן. מאז, בוצעו מספר מקרים של UTx, המבוססים על תורמים חיים ומתים כאחד, וכתוצאה מכך יותר מ-80 לידות חי 3,4. בדומה לתחום השתלת איברים מוצקים והשתלות אלוקולריות מרוכבות (VCA), דחייה חיסונית היא אתגר משמעותי ב-UTx. 5 מספר גורמים יכולים להוביל לדחיית השתל, כולל כשל מיקרו-סירקולטורי וקיפאון ורידי, שניהם עלולים להוביל לסיבוך פקקתי. בסקירה שנערכה לאחרונה בחקר כלי דם ברחם בהשתלה, קריסטק ועמיתיו דיווחו על עד 15% פקקת עורקים ו-5% פקקת ורידים6. בנוסף, איסכמיה קרה וחמה הם גורמים קריטיים שיש לטפל בהם להשתלה מוצלחת, שכן פגיעה באיסכמיה-רפרפוזיה (IRI) עלולה להוביל לתפקוד לקוי של השתל ולדחייה חריפה 7,8. מיוציטים מגיבים ללחץ איסכמי על ידי ייצור לקטט עד 6 שעות9, ולאחר מכן נזק לתאי השריר הוא בלתי הפיך. ההשפעה של איסכמיה קרה על השריר תועדה במחקרים קליניים, והוכח כי השימוש בתמיסה תוך-תאית דמוית אוניברסיטת ויסקונסין במהלך אחסון קר סטטי (SCS) משפר את השימור עם תגובה התכווצות טובה יותר לפרוסטגלנדין וריכוזי ATP גבוהים יותר בהשוואה לתמיסת אצטט של רינגר10. עם זאת, ההשפעה של איסכמיה חמה וקרה נותרה נחקרת בצורה גרועה ב-UTx.

SCS נותר תקן הזהב לשימור VCA, כולל הרחם, ולרוב השתלות האיברים המוצקים. עם זאת, בשנים האחרונות, התקדמות משמעותית במערכות זלוף מכונות ופתרונות שימור הובילו לשינוי פרדיגמה. ישנן כיום ראיות חזקות התומכות בכך שזלוף מכונה דינמי יכול לשפר ולהאריך את השימור של איברים מוצקים בריאים ושוליים 11,12,13,14,15. טכניקה זו משמשת כיום בדרך כלל בפרקטיקה הקלינית להשתלת ריאות, לב, כבד וכליות 14,16,17,18. שימור איברים דינמי הוכיח יתרונות מרובים, כולל מזעור איסכמיה קרה ופגיעות היפוקסיה על ידי אספקת חמצן רציפה ואספקת חומרים מזינים, פינוי מטבוליטים רעילים ושיפור איכות השתל ופרמטרי הכדאיות12,19. פותחו מספר אופנים, החל מהיפותרמיה ועד זלוף מכונה נורמותרמית (עם או בלי נושאי חמצן), עם מספר פרפוזטים זמינים, אך רק מעטים נבדקו על הרחם20. כדי להבטיח את התרומה המשמעותית של נקודות מבט מחקריות כאלה, יש חשיבות מכרעת למודלים כירורגיים פרה-קליניים רלוונטיים.

בעבודה זו, זלוף מכונה תת-נורמותרמית (SNMP) משמש כשיטת שימור איברים דינמיים מחומצנים בטמפרטורת החדר (בסביבות 20 מעלות צלזיוס) על ידי זרימת פרפוזה דרך משאבת רולר ומחמצן. נעשה שימוש במודל חזירי הרלוונטי למחקרים על UTx ושימור בשל הדמיון שלו למערכת הרבייה האנושית מבחינת אנטומיה, פיזיולוגיה וגודל כלי דם21,22. הרחם נרכש לאחר מוות במחזור הדם, מה שמספק רלוונטיות לתרומה לאחר מוות לבבי ומרמז על אפשרות לעיכוב ברכישה לאחר כל שאר האיברים המוצקים הרלוונטיים23,24. בנוסף, מודל זה מקל על פיתוח מחקרי שימור רחם במעבדות השתלות מבוססות המתמקדות באיברים אחרים, תוך יישום עקרונות "3Rs"25. המטרה היא לבסס מודל שימור חדש המבוסס על פדיקל רחמי ולהעריך את אמינותו לשימור דינמי. כל שלבי ההליך מפורטים, מכריתת הרחם ועד לשימור, ומקיפים נקודות מפתח מודגשות בשימוש ב-SNMP.

הפרוטוקול המתואר להלן קדם לניסוי מקדים המבוסס על משאבה בודדת ומערכת זרימה "צינורית Y" לשני עורקי הרחם (איור משלים 1). לאחר 4 שעות-SNMP, האיבר עלה ביותר מ-50% ממשקלו ההתחלתי. זרימה, לחץ, התנגדות ושונות במשקל מוצגים באיור משלים 2. מערכת זלוף אחת שהופרדה לשתי זרימות לא אפשרה אפנון של כל קצב זרימה ללחץ של כל צד. במקרה זה, SNMP הוביל לבצקת משמעותית במחצית האיבר (איור משלים 3). מערכת זו התגלתה כלא מתאימה למודל הרחם, בין היתר מכיוון שאין להתייחס אליה כמודל סימטרי לחלוטין. לכן, נעשה שימוש בשתי מערכות של זלוף מכונה בפרוטוקול זה, אחת לכל עורק רחם.

Protocol

כל בעלי החיים קיבלו טיפול הומני בהתאם למדריך המכון הלאומי לבריאות לטיפול ושימוש בחיות מעבדה, והפרוטוקולים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של בית החולים הכללי של מסצ'וסטס (IACUC). בסך הכל, 6 נקבות מיני-חזירות יוקטן במשקל 30-40 ק"ג שימשו לרכש רחם, כאשר ארבע רחם עברו SNMP. כל בעלי החיים עברו הפרין במינון מלא אחד (100 יחב"ל/ק"ג) לפני המתת חסד. רכישת איברים התרחשה לאחר המוות עם פחות מ-60 דקות של איסכמיה חמה. ניתן היה לקצור איברים אחרים מאותו תורם למחקרים שונים, על פי עקרונות "3Rs"25. עיין בטבלת החומרים לפרטים על כל הריאגנטים והציוד המשמשים בפרוטוקול.

1. הכנה טרום ניתוחית (יום לפני הניתוח)

  1. הכן את תמיסת הפרפוזה. עבור זלוף מכונה תת-נורמותרמית, נעשה שימוש בפתרון Steen+ המותאם ל-VCA26,27. נעשה שימוש בליטר אחד של תמיסה לרחם, וההרכב מפורט בטבלה 1.
    הערה: כמות גדולה של נתרן הידרוקסיד מתווספת לפרפוזה במטרה להשיג pH של סביב 7.5-7.6. ערך זה גבוה במפורש אך הכרחי מכיוון שה-pH נוטה לרדת כאשר המכונה מופצת ומחומצנת בתערובת קרבוגן (95% חמצן; 5% פחמן דו חמצני).
  2. הגדר את מערכת הזלוף של המכונה (איור 1). בדוק אם יש נזילות ובועות כאשר מופץ פרפוזה.

2. רכש רחם לאחר המוות

הערה: כדי לדמות תרומה לאחר מוות לבבי ו/או רכש לאחר המוות, יש להמית את בעל החיים בהתאם להנחיות המקומיות של IACUC. יש להעדיף הזרקה תוך ורידית של פנטוברביטל על מנת למנוע רעילות שעלולה להפריע למחקר.

  1. הנח את החיה המורדמת במצב שכיבה. שפשפו את אזור הבטן והניחו וילונות סטריליים.
  2. בצע חתך אינפרא טבורי חציוני של 10 ס"מ עם להב #20.
  3. פתח את הרקמה התת עורית ואת האפונורוזיס בעזרת אזמל חשמלי חד קוטבי.
    הערה: יש לשים לב שלא לפגוע במעיים על ידי פתיחת חלל הבטן.
  4. הניחו בצד את המעי הדק עם גזה כירורגית וחשפו את הרחם.
    הערה: אנטומיית הרחם של המודל בו נעשה שימוש מוצגת באיור 2A.
  5. המשך באופן דומה לצד שמאל וימין כדלקמן:
    1. זהה את כלי הרחם.
      הערה: וריד הרחם ממוקם לרוחב עורק הרחם (איור 3).
    2. צור פתח לרצועה הרחבה לרוחב לווריד הרחם בעזרת מלקחיים בזווית ישרה.
    3. דרך פתח זה, הכנס 2-0 תפרי קשירת משי כדי לקשור את כלי השחלה ולשחרר את הרחם מרקמת החיבור שמסביב ברצועה הרחבה באמצעות צריבה.
    4. קשרו את כלי הרחם-שחלות עם 2-0 תפרי קשירת משי והוציאו את השחלה והצינור.
    5. שלד כלי רחם וחלק אותם קרוב ככל האפשר לכלי הכסל הפנימיים.
      הערה: יש לשים לב לשמירה על הפדיקל זמן רב ככל האפשר כדי להקל על הקנולציה ולצפות לנסיגת פדיקל לאחר ניתוקו.
    6. חזור על שלבים 2.5.1-2.5.5 בצד הנגדי.
  6. הסר את הרחם על ידי חיתוך צוואר הרחם בעזרת אזמל חשמלי חד קוטבי.
    הערה: השתמש בזמן מגע ארוך כדי להבטיח קרישה תקינה של כלי צוואר הרחם, ולמנוע דליפה במהלך הזלוף.

3. הכנה לזלוף

  1. על שולחן צד יש להרחיב את שני עורקי הרחם באמצעות מרחיב מיקרו-כירורגי ולהכניס אנגיוקטטר. אבטח את הקנולציה עם קשרי משי 3-0 (איור 2B).
    הערה: כאן, אנגיוקטטר 18 G שימש לכל העורקים. יש להקפיד לא להכניס את הקטטר רחוק מדי כדי למנוע קנולציה סלקטיבית, מכיוון שההסתעפות קרובה יחסית. ורידי הרחם אינם קנולרים, מכיוון שזרימה ורידית מספיקה כדי לשמור על לומן של כלי דם אלה פתוח, מה שמאפשר איסוף קל. בנוסף לחיסכון בזמן, קנולציה טראומטית עלולה להוביל לנזק לכלי הדם ועשויה להשפיע על זרימת הוורידים.
  2. יש לשטוף לאט ידנית את שני עורקי הרחם עם 20 מ"ל תמיסת הפרין מכל צד עד שכל הכלים נשטפים החוצה והזרימות היוצאות נקיות.
    הערה: יש לשים לב לא לשטוף בלחץ גבוה, מה שעלול להוביל לפציעות מיקרו-וסקולריות ולכישלון זלוף.
  3. שקלו את הרחם.

4. זלוף מכונה תת-נורמותרמית

הערה: עבור הרחם, נדרשות שתי מערכות עצמאיות של זלוף מכונה. כל עורק רחם מחובר למערכת זלוף המורכבת ממשאבת רולר, מחמצן, מלכודת בועות וחיישן לחץ. הפרפוזה במאגר מסתובבת דרך צינורות סיליקון המחוברים לאלמנטים המפורטים לעיל לפני שהיא עוברת דרך האיבר דרך עורק הרחם לווריד הרחם בכל צד, שם הפרפוזה יוצאת ומשתחררת באותו מאגר.

  1. חבר את הרחם למערכות הזלוף של המכונה על ידי חיבור צינוריות עורק הרחם לתוך צינור הזרימה (איור 1).
  2. בעזרת משאבת הגליל, כוונן את קצב הזרימה לנמוך (2.5-4.0 מ"ל/דקה) כדי לשמור על לחץ עורקי קבוע בין 25-35 מ"מ כספית.
  3. להעריך פרמטרי כדאיות בכל נקודת זמן מוגדרת מראש הן בזרימה והן ביציאה באמצעות מזרק של 1 מ"ל וניתוח דגימות עם מכונת מערכת גזי הדם [למשל, מדדי גזי דם (pH, pCO2, pO2, לקטט, עודף בסיס, ביקרבונט), גלוקוז, נתרן, אשלגן, סידן, כלוריד].
    הערה: בפרוטוקול זה, הזלוף נמשך 4 שעות, ודגימות מהזרימה הנכנסת והיוצאת נלקחות כל 30 דקות.
  4. שקלו את הרחם בסוף הזלוף.

תוצאות

במהלך הזילוף, המערכת חוברה לחיישן לחץ שרשם את הלחץ במהלך הניסוי. הלחץ נרשם בתחילה עבור מערכת נטולת רחם, שהופחתה מרישומי הלחץ במהלך זלוף הרחם כדי להשיג את לחץ האיברים האמיתי. קצב הזרימה הותאם לשמירה על הלחץ בטווח הרצוי ונשלט על ידי משאבת הגליל. ההתנגדות חושבה באמצעות הנוס?...

Discussion

השתלת רחם, הנחשבת לעתים קרובות לחלק מ-VCA, התפתחה במהירות בשנים האחרונות. במקביל, החלו לחקור זלוף מכונה ב-VCA מכיוון שהוא הראה ראיות חזקות בשיפור שימור איברים מוצקים. זלוף מכונה היפותרמי ותת-נורמותרמי איפשר שימור של עד 24 שעות בדגמי חזירים של VCA 26,27,28

Disclosures

לכל המחברים אין אינטרס כלכלי להצהיר עליו.

Acknowledgements

עבודה זו מומנה בחלקה על ידי המכון הלאומי לבריאות תחת פרס מס' R01AR082825 (BEU) ו-Shriners Children's 84308 (YB). HO ו-YB קיבלו מימון מ-Fondation des Gueules Cassées. התמיכה של Société Française de Chirurgie Plastique, Reconstructrice et Esthétique (SOFCPRE, צרפת) ו-CHU de Rennes (צרפת) ל-YB זוכה להכרה רבה.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Affinity Pixie Oxygenation SystemMedtronicBBP241Oxygenator
Bovin serum albuminSigma-AldrichA9647Perfusate component
Calcium chloride dihydrateSigma-Aldrich223506Perfusate component
Carbon Dioxide OxygenAirgasUN3156Carbon Dioxide Oxygen mix gas 
D-(+)-Glucose monohydrateSigma-Aldrich49159Perfusate component
DexamethasoneSigma-AldrichD2915Perfusate component
DextranThermo scientific406271000Perfusate component
Heparin sodium injectionEugia Pharma63739-953-25Perfusate component
Humulin Regular Insulin humanLilly0002-8215-01Perfusate component
Hydrocortisone sodium succinatePfizer0009-0011-03Perfusate component
Magnesium chloride hexa-hydrateSigma-AldrichM9272Perfusate component
MasterFlex L/SCole-Parmer77200-32Roller pump
Polyethylene glycol 35000Sigma-Aldrich25322-68-3Perfusate component
Potassium chlorideSigma-Aldrich7447-40-7Perfusate component
Pressure Monitor, Portable, PM-P-1Living Systems InstrumentationPM-P-1Pressure sensor
Radnoti Bubble Trap Compliance ChamberRadnoti130149Bubble trap
RAPIDPoint500Siemens500Blood Gas System
Sodium bicarbonateSigma-AldrichS5761Perfusate component
Sodium chlorideSigma-AldrichS9888Perfusate component
Sodium hydroxideSigma-Aldrich72068Perfusate component
Sodium phosphate monobasique dihydrate Sigma-Aldrich71505Perfusate component
Syringe 1 mLBD309659Sample procurement
Vancomycine hydrochlorideSlate run pharmaceuticals70436-021-82Perfusate component

References

  1. Ejzenberg, D., et al. Livebirth after uterus transplantation from a deceased donor in a recipient with uterine infertility. Lancet. 392 (10165), 2697-2704 (2019).
  2. Fageeh, W., Raffa, H., Jabbad, H., Marzouki, A. Transplantation of the human uterus. Int J Gynaecol Obstet. 76 (3), 245-251 (2002).
  3. Lavoue, V., et al. Which donor for uterus transplants: brain-dead donor or living donor? A systematic review. Transplantation. 101 (2), 267-277 (2017).
  4. Brännström, M., et al. Registry of the International Society of Uterus Transplantation: First report. Transplantation. 107 (1), 172-181 (2023).
  5. Van Dieren, V., et al. Acute rejection rates in vascularized composite allografts: A systematic review of case reports. J Surg Res. 298, 33-44 (2024).
  6. Kristek, J., et al. Human uterine vasculature with respect to uterus transplantation: A comprehensive review. J Obs Gynaecol Res. 46 (11), 1999-2007 (2020).
  7. He, J., Khan, U. Z., Qing, L., Wu, P., Tang, J. Improving the ischemia-reperfusion injury in vascularized composite allotransplantation: Clinical experience and experimental implications. Front Immunol. 13, 998952 (2022).
  8. Ponticelli, C. Ischaemia-reperfusion injury: A major protagonist in kidney transplantation. Nephrol Dial Transplant. 29 (6), 1134-1140 (2014).
  9. Harris, K., et al. Metabolic response of skeletal muscle to ischemia. Am J Physiol. 250 (2 Pt 2), H213-H220 (1986).
  10. Wranning Almen, C., et al. Short-term ischaemic storage of human uterine myometrium--basic studies towards uterine transplantation. Hum Reprod. 20 (10), 2736-2743 (2005).
  11. Bodewes, S. B., et al. Oxygen transport during ex situ machine perfusion of donor livers using red blood cells or artificial oxygen carriers. Int J Mol Sci. 22 (1), 235 (2020).
  12. Boncompagni, E., et al. Decreased apoptosis in fatty livers submitted to subnormothermic machine-perfusion respect to cold storage. Eur J Histochem. 55 (4), e40 (2011).
  13. Czigany, Z., et al. Hypothermic oxygenated machine perfusion reduces early allograft injury and improves post-transplant outcomes in extended criteria donation liver transplantation from donation after brain death: Results from a Multicenter Randomized Controlled Trial (HOPE ECD-DBD). Ann Surg. 274 (5), 705-712 (2021).
  14. Markmann, J. F., et al. Impact of portable normothermic blood-based machine perfusion on outcomes of liver transplant: The OCS Liver PROTECT randomized clinical trial. JAMA Surg. 157 (3), 189-198 (2022).
  15. Cypel, M., et al. Normothermic ex vivo lung perfusion in clinical lung transplantation. New Eng J Med. 364 (15), 1431-1440 (2011).
  16. Roesel, M. J., Ius, F., Knosalla, C., Iske, J. The role of ex-situ perfusion for thoracic organs. Curr Opin Organ Transplant. 27 (5), 466-473 (2022).
  17. Michel, S. G., et al. Twelve-hour hypothermic machine perfusion for donor heart preservation leads to improved ultrastructural characteristics compared to conventional cold storage. Ann Transplant. 20, 461-468 (2015).
  18. Ghoneima, A. S., Sousa Da Silva, R. X., Gosteli, M. A., Barlow, A. D., Kron, P. Outcomes of kidney perfusion techniques in transplantation from deceased donors: A systematic review and meta-analysis. J Clin Med. 12 (12), 3221 (2023).
  19. Charlès, L., et al. Effect of subnormothermic machine perfusion on the preservation of vascularized composite allografts after prolonged warm ischemia. Transplantation. 108 (5), e280-e290 (2024).
  20. Duru, &. #. 1. 9. 9. ;., et al. Review of machine perfusion studies in vascularized composite allotransplant preservation. Front Transplantation. 2, 103-111 (2023).
  21. Brännström, M., Diaz-Garcia, C., Hanafy, A., Olausson, M., Tzakis, A. Uterus transplantation: Animal research and human possibilities. Fertil Steril. 97 (6), 1269-1276 (2012).
  22. Wranning, C. A., et al. Auto-transplantation of the uterus in the domestic pig (Sus scrofa): Surgical technique and early reperfusion events. J Obstet Gynaecol Res. 32 (4), 358-367 (2006).
  23. Croome, K. P., et al. American Society of Transplant Surgeons recommendations on best practices in donation after circulatory death organ procurement. Am J Transplant. 23 (2), 171-179 (2023).
  24. Dickens, B. M. Legal and ethical issues of uterus transplantation. Int J Gynaecol Obstet. 133 (1), 125-128 (2016).
  25. Díaz, L., et al. Ethical considerations in animal research: The Principle of 3R's. Rev Invest Clin. 73 (4), 199-209 (2020).
  26. Goutard, M., et al. Machine perfusion enables 24-h preservation of vascularized composite allografts in a swine model of allotransplantation. Transpl Int. 37 (1), 102-111 (2024).
  27. Berkane, Y., et al. Towards optimizing sub-normothermic machine perfusion in fasciocutaneous flaps: A large animal study. Bioengineering (Basel). 10 (12), 1545 (2023).
  28. Brouwers, K., et al. 24-hour perfusion of porcine myocutaneous flaps mitigates reperfusion injury: a 7-day follow-up study. Plast Reconstr Surg Glob Open. 10 (2), e4123 (2022).
  29. Richter, O., et al. Extracorporeal perfusion of the human uterus as an experimental model in gynaecology and reproductive medicine. Human Reprod. 15 (6), 1235-1240 (2000).
  30. O'Neill, K., et al. Availability of deceased donors for uterus transplantation in the United States: Perception vs Reality. Transplantology. 5 (1), 27-36 (2024).
  31. Chan, J. K., Morrow, J., Manetta, A. Prevention of ureteral injuries in gynecologic surgery. Am J Obstet Gynecol. 188 (5), 1273-1277 (2003).
  32. Rocca, W. A., et al. Accelerated accumulation of multimorbidity after bilateral oophorectomy: A population-based cohort study. Mayo Clin Proc. 91 (11), 1577-1589 (2016).
  33. Dion, L., et al. Procurement of uterus in a deceased donor multi-organ donation National Program in France: A scarce resource for uterus transplantation. J Clin Med. 11 (3), 730 (2022).
  34. Agarwal, A., et al. Clinicopathological analysis of uterine allografts including proposed scoring of ischemia reperfusion injury and t-cell-mediated rejection-dallas uterus transplant study: A pilot study. Transplantation. 106 (1), e10-e20 (2022).
  35. Díaz-García, L., et al. Pregnancy in transplanted mouse uterus after long-term cold ischaemic preservation. Hum Reprod. 18 (10), 2142-2150 (2003).
  36. Tricard, J., et al. Uterus tolerance to extended cold ischemic storage after auto-transplantation in ewes. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 214, 162-167 (2017).
  37. Dion, L., et al. Hypothermic machine perfusion for uterus transplantation. Fertil Steril. 120 (6), 1259-1261 (2023).
  38. Brännström, M., et al. Experimental uterus transplantation. Hum Reprod Update. 16 (3), 329-340 (2010).
  39. Ozkan, O., Ozkan, O., Dogan, N. U. The Ozkan technique in current use in uterus transplantation: from the first ever successful attempt to clinical reality. J Clin Med. 12 (8), 2812 (2023).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved