מקורות המימון: HL084087, HL089885, HL091475, S10RR027946, T32 GM07356

1. הכנה הדמיה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בגין ידי הבטחת עכבר הרדים isoflurane לפלטפורמה בעלי חיים טיפול במצב שכיבה. מניחים קונוס האף מעל האף והפה של החיה כדי לספק 0.5-1% isoflurane לשמור על הרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אבטח את הכפות של העכבר על כריות ג&#39;ל האלקטרודה עם ניצוח. ודא א.ק.ג. המתאים, טמפרטורת הגוף על 37 מעלות צלזיוס, לבדוק קצב הנשימה להערכה פיזיולוגיים במהלך ההדמיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל קרם מקריח בבטן ובחזה העליון של העכבר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחרי 2 דקות, השימוש גזה רטוב להסיר את הקרם. </li></ol> 2. ציר שמאל parasternal ארוך להציג <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר עכבר הוכן עבור הדמיה, להטות את הצד השמאלי של הבמה כדי לסובב את הפלטפורמה טיפול בבעלי חיים 30 מעלות על ציר anterioposterior. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המזרח מתמר בעמדה אנכית וסיבוב 10 מעלות נגד כיוון השעון עם החריץ הצביע האחורי של העכבר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בשלב הבא, בעוד דו מימדי הצפייה / וידאו &quot;במצב-B&quot;, להוריד את מתמר מעל לקו parasternal שמאל עד ללב נגלה לעין. לאחר עורק הריאה מגיע לשדה הראייה, לאסוף תמונות ולאחסן אותם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עדיין במצב-B, לנוע שמאלה או ימינה מתמר עד לשיא יצוא אבי העורקים נכנסים אל הנוף. כמה הסיבוב של החללית עשוי להיות נחוץ כדי להבטיח יישור נכון עם ציר האורך של הלב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש לכידת וידאו כדי לקבל נתונים לניתוח שלאחר מכן. מזער את שדה הראיה על מנת להבטיח את המסגרת הדולר הגבוה ביותר האפשרי עבור במורד הזרם מנתח זן האזורי. בכל פעם וידאו בשבי, לפני 100 מסגרות נשמרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבר למצב דופלר צבע על ידי בחירת &quot;דופלר צבע.&quot; למרות דופלר צבע כבר זמין במשך 30 שנים בבני אדם, טכנולוגיה זו כבר רק לאחרונה אפשרי אולטרסאונד מכרסמים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במהירות כדי לפקח על כיוון ומהירות זרימת הדם, את שכבת חלון דופלר digitizes את זרימת מאדום, המציין זרימה לכיוון החללית, כחול, המציין זרימה מן החללית. לרכוש תמונות הדרושים על ידי לכידת תמונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שכל הנתונים דופלר צבע שהושג, תפעיל את מכשיר Pulse-Wave דופלר מצב, הנוף חד ממדי המשמש דיגיטלית להעריך את זרימת הדם בכיוון ומהירות לאורך זמן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזיזו את החללית מעט לכיוון הראש של העכבר עד עורק הריאה נגלה לעין. בהקשר של אי ספיקת לב, PW / צבע מדידות דופלר של עורק הריאה יכול לשמש כתחליף תפקוד הלב הנכון. צלמו תמונות כרצונכם. </li></ol> 3. השמאל אמצע papillary קצר ציר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קצר ציר אקו מספק תצוגה של החדר השמאלי כולו הקבלנית באופן קונצנטריים, ומאפשר מדויק B-ו-M-mode הערכה מבוססת של הפונקציה morphometry לב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במצב-B, מתצוגת ציר parasternal הארוך, לסובב את מתמר אורתוגונליים כדי להציג את ציר parasternal שמאל ארוך ברמה של שריר פפילרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא המיקום הנכון לאורכו של החדר השמאלי. שני השרירים papillary צריך להיות לעין והפריד, נותן מבט אופקי חתך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם מצב-M, המקום נפח דגימה דרך מרכז החדר ולרכוש נתונים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם תרצה, לצרף, ליזום ולנצל את המנוע 3 מימדי להשיג את התמונות הדרושים לשיקום 3 מימדי מלא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרות פיזיולוגיה, לרבות קצב הנשימה א.ק.ג., נקבעים עבור לכידת תמונה 3D gating ב תרויח-end </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המנוע 3D הדמיה היא יזמה עבור לכידת תמונה ב תרויח-end. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר לכידת סוף דיאסטולה 3D תושלם, הגדרות הפיזיולוגיה של קצב הנשימה א.ק.ג. נקבעים gating לכידת תמונה 3D ב התכווצות-end </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המנוע 3D הדמיה היא יזמה עבור לכידת תמונה ב התכווצות-end. </li></ol> 4. Subcostal (ארבעה בחדר) להציג <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התצוגה subcostal היא הגישה הטובה ביותר למדידת הדרגתיים כשירות הלחץ על שסתום צניפי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הטה את הפינה השמאלית העליונה של פלטפורמת כל הדרך למטה. המזרח מתמר לכיוון כתף ימין של העכבר, שמירה על ציר סיבוב קצר של החללית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במצב-B, מנמיכים את מתמר מעל בבטן העליונה, כך מוטלת מתחת לסרעפת. דמיינו את שסתום מיטרלי באמצעות דופלר צבע כפי שתואר קודם. </li></ol> 5. אבי העורקים להציג <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סובב את פלטפורמת בעלי חיים טיפול למצב משכוב שמאלה לרוחב. הצד השמאלי של הבמה צריך להיות מוטה במידת האפשר. בשלב הבא, מוטה המזרח מתמר, עד מעלה ככל האפשר, לאורך של העכבר ברמה שלעצם השכמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מנמיכים את מתמר נחות בכתף ​​ימין לאורך קו בית השחי הקדמי. דמיינו את קשת אבי העורקים, וכן לרכוש תמונות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם את הראש של העכבר, ולהפחית את מתמר לתוך החריץ suprasternal של העכבר. דמיינו את זרימת הדם באמצעות דופלר צבע, ולרכוש תמונות. </li></ol> 6. נציג תוצאות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זוהי ראייה ארוכת ציר של הלב במצב-B הן מראה החדר השמאלי לבין חלק קטן של החדר הימני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנה, להציג ציר שמאלי קצר של הלב עוד צולמה M-mode. התמונה העליונה מראה את המיקום של הקו מדגם נפח בצהוב דרך מרכז החדר. התמונה התחתונה היא סימן חד ממדי של הקו הנ&quot;ל לאורך זמן, כמו גם חישובים של morphometry ב ציאן </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זוהי השקפה של קשת אבי העורקים במצב-B. שסתום אבי העורקים נסגר ניתן לראות בצד שמאל כלי דם המזין את הראש והגפיים העליונות של העכבר ניתן לראות בצד ימין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח הזנים מחוגי בוצעה על עכבר לקראת פיתוח תפקוד לב, בתמונה העליונה, עכבר עם hypokinesis העולמי dyssynchrony האזורי, בתמונה התחתונה. פנוטיפים שניהם היו המושרה דרך התכווצות העורקים רוחבי, במודל עכבר של afterload מוגברת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באיור, זמן מוצגת על ציר ה-x לבין זן רדיאלי, כאחוז, מוצג על ציר ה-Y. ניתוח הזנים מאפשר הערכה האזורי של תפקוד הלב שעלולות אחרת נעלמו מעיניו של טכניקות קונבנציונאלי כגון מצב-M, אשר רק ישירות אמצעים פונקציה של הקיר הקדמי החופשי לבין הקיר האחורי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הקיר הקדמי חינם מוצג ירוק. קו ורוד מראה את הקיר לרוחב מוצג ורוד. הקיר האחורי מוצג ציאן. הקיר חינם נחות מוצג בכחול. הקיר האחורי במחיצה מוצג בצהוב. מחצה הקדמי מוצג מגנטה, לבין הממוצע מוצג שחור. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig1.jpg" alt="איור 1" /> באיור 1. לשמאל ציר parasternal להציג ארוך במצב-B. <img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig2.jpg" alt="איור 2" /> איור 2. ציר השמאל להציג קצר במצב-M. <img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig3.jpg" alt="איור 3" /> איור 3. בפרופיל של קשת אבי העורקים במצב-B. <img src="/files/ftp_upload/2100/2100fig4.jpg" alt="איור 4" /> איור 4. ניתוח הזנים רדיאלי של שני עכברים 12 שבועות לאחר TAC. ירוק = נמלה. חינם הקיר. ורוד = לרוחב הקיר. כחול = הקיר האחורי. כחול = inf. חינם הקיר. צהוב = לכתוב. במחיצה בין הקיר. מגנטה = הקדמי מחצה. שחור = ממוצע) עם פונקציית עכבר נשמר. ב) עם עכבר hypokinesis העולמי dyssynchrony האזורי.

<ol>
	<li>Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+animal+models+of+heart+failure:+development+of+novel+therapies,+past+and+present.">Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present.</a> Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).</li><li>Li, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantification+and+MRI+Validation+of+Regional+Contractile+Dysfunction+in+Mice+Post+Myocardial+Infarction+Using+High+Resolution+Ultrasound.">Quantification and MRI Validation of Regional Contractile Dysfunction in Mice Post Myocardial Infarction Using High Resolution Ultrasound.</a> Ultrasound in Medicine &#38; Biology. 33, 894-904 (2007).</li><li>Gardin, J. M., Siri, F. M., Kitsis, R. N., Edwards, J. G., Leinwand, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Echocardiographic+Assessment+of+Left+Ventricular+Mass+and+Systolic+Function+in+Mice.">Echocardiographic Assessment of Left Ventricular Mass and Systolic Function in Mice.</a> Circ Res. 76, 907-914 (1995).</li><li>JG, S. t. e. v. e. n. s. o. n., Weiler, T. B. M., EA, H. o. w. a. r. d., Eyer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Digital+multigate+Doppler+with+color+echo+and+Doppler+display+-+Diagnosis+of+atrial+and+ventricular+septal+defects.">Digital multigate Doppler with color echo and Doppler display - Diagnosis of atrial and ventricular septal defects.</a> Circulation. 60, (1979).</li><li>Patten, R. D., Aronovitz, M. J., Bridgman, P., Pandian, N. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+pulse+wave+and+color+flow+Doppler+echocardiography+in+mouse+models+of+human+disease.">Use of pulse wave and color flow Doppler echocardiography in mouse models of human disease.</a> J Am Soc Echocardiogr. 15, 708-714 (2002).</li><li>Hoit, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Echocardiographic+characterization+of+the+cardiovascular+phenotype+in+rodent+models.">Echocardiographic characterization of the cardiovascular phenotype in rodent models.</a> Toxicol Pathol. 34, 105-110 (2006).</li></ol>

Pistner, בלמונטה, Blaxall: שום דבר לא לחשוף Coulthard הוא עובד במשרה מלאה של Visualsonics.

תדירות גבוהה סידורי אקו התפתחה ככלי רב עוצמה עבור הערכה לא פולשנית ברזולוציה גבוהה, של המורפולוגיה פונקציה לב, במיוחד Murine מודלים של מחלות לב. שמירה על טמפרטורת הגוף הפיזיולוגי כמו גם קצב הלב להשוות בין עכברים על ידי התאמת רמת הרדמה לפני רכישת תמונות, הוא קריטי להצלחה ...

A correction was made to <a href="http://www.jove.com/index/details.stp?id=2100">Murine echocardiography and ultrasound imaging</a>. There was an error in the author, Burns Blaxalls', name and the article title. The authors name has been corrected to:
Burns C. Blaxall
instead of:
Burns Blaxall
The article title was changed to:
Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging
instead of:
Murine echocardiography and ultrasound imaging

A correction to an author's name and the article title has been made for the article Murine echocardiography and ultrasound imaging.

Erratum: Murine echocardiography and ultrasound imaging

<!DOCTYPE html PUBLIC "-//W3C//DTD XHTML 1.0 Transitional//EN" "http://www.w3.org/TR/xhtml1/DTD/xhtml1-transitional.dtd">
<html xmlns="http://www.w3.org/1999/xhtml" xml:lang="en" lang="en">	
		
		<div>
		<table border="1">
		<thead>
		<tr>
		<th>Material Name</th>
		<th>Type</th>
		<th>Company</th>
		<th>Catalogue Number</th>
		<th>Comment</th>
		</tr>
		</thead>
		<tbody>
		
<tr>
<td>Vevo 2100 Imaging System (120V)</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Visual Sonics</td>
<td>VS-11945</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Vevo 2100 Imaging Station 1</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Visual Sonics</td>
<td>SA-11982</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Ultrasound Gel</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Parker Laboratories</td>
<td>01-08</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Isoflurane</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Abbott Laboratories</td>
<td>05260-05</td>
<td>&nbsp;</td>
<tr>
<td>Vevo Compact Dual Anesthesia System</td>
<td>&nbsp;</td>
<td>Visual Sonics</td>
<td>SA-12055</td>
<td>&nbsp;</td>		</tbody>
		</table>
		</div>

murine echocardiography and ultrasound imaging

מודלים מכרסמים פתופיזיולוגיה של הלב מייצג כלי מחקר חשוב לחקור את המנגנון של המחלה, כמו גם הבדיקה החדשה הרפוי. אקו 1 מספק עוצמה, לא פולשנית בכלי סדרתי להעריך morphometry תפקוד הלב ועל החי. 2 עם זאת, באמצעות טכניקה זו על עכברים מציבה אתגרים ייחודיים עקב גודל קטן קצב לב מהיר של החיות האלה. 3 עד לאחרונה, היו כמה מערכות אולטראסאונד מסוגל לבצע אקו איכות על עכברים, ואלו בדרך כלל חסרה את רזולוציית התמונה ואת מסגרת הדולר הדרושים כדי להשיג מדידות כמותיות באמת . מערכות החדשות שפורסמו כגון Vevo2100 VisualSonics לספק כלים חדשים לחוקרים בזהירות הלא פולשני לחקור את תפקוד הלב אצל עכברים. מערכת זו מפיקה תמונות ברזולוציה גבוהה מספק יכולות ניתוח דומים לאלה המשמשים עם חולים אנושיים. למרות דופלר צבע כבר זמין במשך 30 שנים בבני אדם, הטכנולוגיה הזו כבר ערך רק לאחרונה אפשרי אולטרסאונד מכרסמים. 4,5 דופלר צבע יש יישומים רחב עבור אקו, כולל היכולת להעריך במהירות כיווניות זרימה בכלי ודרך שסתומים, כדי לזהות במהירות regurgitation שסתום. ניתוח הזנים הוא קריטי מראש כי הוא מנוצל כדי למדוד כמותית תפקוד שריר הלב באזור. 6 טכניקה זו יש פוטנציאל לזהות שינויים פתולוגיה, או החלטה של הפתולוגיה, מוקדם יותר מאשר טכניקות קונבנציונאלי. יחד עם תוספת של שחזור תלת ממדי התמונה, הערכה של נפח, איברים שלמים אפשרי, כולל ויזואליזציה והערכה של מבנים לב וכלי דם. Murine תואם הדמיה לעומת זאת יכול גם לאפשר מדידות נפח ו זלוף הערכה רקמות.

Watch this Scientific Journal Video about Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging at JoVE.com

Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging

וידאו זה מדגים שימוש רכבת רכוב בתדירות גבוהה בדיקה אולטרסאונד לבצע אקו על העכבר בהרדמה. שיטות מתארים הן מדידות דו מימדי ו-M-mode קונבנציונלי של תפקוד הלב בנוסף, הכלים החדשים חזקים יותר כגון צבע דופלר, ניתוח המתח, כמו גם בניגוד הדמיה בכלל ממוקדות.

אקו Murine והדמיה אולטראסאונד

Rodent models of cardiac pathophysiology represent a valuable research tool to investigate mechanism of disease as well as test new therapeutics.1  ...

murine-echocardiography-and-ultrasound-imaging

Research

JoVE Journal

Medicine

35.0K Views.  University of Rochester. וידאו זה מדגים שימוש רכבת רכוב בתדירות גבוהה בדיקה אולטרסאונד לבצע אקו על העכבר בהרדמה. שיטות מתארים הן מדידות דו מימדי ו-M-mode קונבנציונלי של תפקוד הלב בנוסף, הכלים החדשים חזקים יותר כגון צבע דופלר, ניתוח המתח, כמו גם בניגוד הדמיה בכלל ממוקדות.

Video: Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging

Transthoracic Echocardiography in Mice

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene expression. Transgenic and gene targeting methods can be used to generate mice with altered cardiac size and function,1-3 and as a result, in vivo techniques are needed to evaluate their cardiac phenotype. Transthoracic echocardiography, pulse wave Doppler (PWD), and tissue Doppler imaging (TDI) can be used to provide dimensional measurements of the mouse heart and to quantify the degree of cardiac systolic and diastolic performance. Two-dimensional imaging is used to detect abnormal anatomy or movements of the left ventricle, whereas M-mode echo is used for quantification of cardiac dimensions and contractility.4,5 In addition, PWD is used to quantify localized velocity of turbulent flow,6 whereas TDI is used to measure the velocity of myocardial motion.7 Thus, transthoracic echocardiography offers a comprehensive method for the noninvasive evaluation of cardiac function in mice.

Transthoracic echocardiography offers a noninvasive method for the evaluation of cardiac function in mice. A combination of ultrasound and Doppler imaging modalities can be used to obtain dimensional measurements of the heart and intracardiac blood flow, which together provide an assessment of cardiac systolic and diastolic performance.

אקו Transthoracic ב עכברים

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene ...

Murine Fetal Echocardiography

Transgenic mice displaying abnormalities in cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding the molecular mechanisms underlying both normal cardiovascular function and the pathophysiological basis of human cardiovascular disease. Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development 1-3. In order to study the role of genetic or pharmacologic alterations in the early development of cardiac function, ultrasound imaging of the live fetus has become an important tool for early recognition of abnormalities and longitudinal follow-up. Noninvasive ultrasound imaging is an ideal method for detecting and studying congenital malformations and the impact on cardiac function prior to death 4. It allows early recognition of abnormalities in the living fetus and the progression of disease can be followed in utero with longitudinal studies 5,6. Until recently, imaging of fetal mouse hearts frequently involved invasive methods. The fetus had to be sacrificed to perform magnetic resonance microscopy and electron microscopy or surgically delivered for transillumination microscopy. An application of high-frequency probes with conventional 2-D and pulsed-wave Doppler imaging has been shown to provide measurements of cardiac contraction and heart rates during embryonic development with databases of normal developmental changes now available 6-10. M-mode imaging further provides important functional data, although, the proper imaging planes are often difficult to obtain. High-frequency ultrasound imaging of the fetus has improved 2-D resolution and can provide excellent information on the early development of cardiac structures 11.

Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development. High-frequency ultrasound imaging has improved 2-D resolution and can provide excellent information on early cardiac development and is an ideal method to detect the impact on cardiac structure and function prior to death.

אקו העוברי Murine

Transgenic mice displaying abnormalities in  cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding  the molecular mechanisms ...

Fetal Echocardiography and Pulsed-wave Doppler Ultrasound in a Rabbit Model of Intrauterine Growth Restriction

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ultrasound and fetal echocardiography. Increasingly, these imaging modalities are being employed clinically to examine cardiac function and assess wellbeing in utero, thereby guiding timing of birth decisions. Here, we used a rabbit model of IUGR that allows analysis of cardiac function in a clinically relevant way. Using isoflurane induced anesthesia, IUGR is surgically created at gestational age day 25 by performing a laparotomy, exposing the bicornuate uterus and then ligating 40-50% of uteroplacental vessels supplying each gestational sac in a single uterine horn. The other horn in the rabbit bicornuate uterus serves as internal control fetuses. Then, after recovery at gestational age day 30 (full term), the same rabbit undergoes examination of fetal cardiac function. Anesthesia is induced with ketamine and xylazine intramuscularly, then maintained by a continuous intravenous infusion of ketamine and xylazine to minimize iatrogenic effects on fetal cardiac function. A repeat laparotomy is performed to expose each gestational sac and a microultrasound examination (VisualSonics VEVO 2100) of fetal cardiac function is performed. Placental insufficiency is evident by a raised pulsatility index or an absent or reversed end diastolic flow of the umbilical artery Doppler waveform. The ductus venosus and middle cerebral artery Doppler is then examined. Fetal echocardiography is performed by recording B mode, M mode and flow velocity waveforms in lateral and apical views. Offline calculations determine standard M-mode cardiac variables, tricuspid and mitral annular plane systolic excursion, speckle tracking and strain analysis, modified myocardial performance index and vascular flow velocity waveforms of interest. This small animal model of IUGR therefore affords examination of in utero cardiac function that is consistent with current clinical practice and is therefore useful in a translational research setting.

We describe examination of fetal cardiac function with contemporary functional fetal echocardiography and fetoplacental Doppler ultrasound using the VisualSonics VEVO 2100 microultrasound in a surgically induced model of intrauterine fetal growth restriction in a rabbit.

אקו העוברי ואולטראסאונד דופלר פעמו גל בדגם ארנב של הגבלת גדילה תוך רחמית

Fetal intrauterine growth restriction (IUGR) results in abnormal cardiac function that is apparent antenatally due to advances in fetoplacental Doppler ...

A Novel Application of Musculoskeletal Ultrasound Imaging

Ultrasound is an attractive modality for imaging muscle and tendon motion during dynamic tasks and can provide a complementary methodological approach for biomechanical studies in a clinical or laboratory setting. Towards this goal, methods for quantification of muscle kinematics from ultrasound imagery are being developed based on image processing. The temporal resolution of these methods is typically not sufficient for highly dynamic tasks, such as drop-landing. We propose a new approach that utilizes a Doppler method for quantifying muscle kinematics. We have developed a novel vector tissue Doppler imaging (vTDI) technique that can be used to measure musculoskeletal contraction velocity, strain and strain rate with sub-millisecond temporal resolution during dynamic activities using ultrasound. The goal of this preliminary study was to investigate the repeatability and potential applicability of the vTDI technique in measuring musculoskeletal velocities during a drop-landing task, in healthy subjects. The vTDI measurements can be performed concurrently with other biomechanical techniques, such as 3D motion capture for joint kinematics and kinetics, electromyography for timing of muscle activation and force plates for ground reaction force. Integration of these complementary techniques could lead to a better understanding of dynamic muscle function and dysfunction underlying the pathogenesis and pathophysiology of musculoskeletal disorders.

We describe a new ultrasound-based vector tissue Doppler imaging technique to measure muscle contraction velocity, strain and strain rate with sub-millisecond temporal resolution during dynamic activities. This approach provides complementary measurements of dynamic muscle function and could lead to a better understanding of mechanisms underlying musculoskeletal disorders.

יישום רומן של השלד והשרירים אולטראסאונד הדמיה

Ultrasound is an attractive modality for imaging muscle and tendon  motion during dynamic tasks and can provide a complementary methodological  approach ...

Diagnostic Ultrasound Imaging of Mouse Diaphragm Function

Function analysis of rodent respiratory skeletal muscles, particularly the diaphragm, is commonly performed by isolating muscle strips using invasive surgical procedures. Although this is an effective method of assessing in vitro diaphragm activity, it involves non-survival surgery. The application of non-invasive ultrasound imaging as an in vivo procedure is beneficial since it not only reduces the number of animals sacrificed, but is also suitable for monitoring disease progression in live mice. Thus, our ultrasound imaging method may likely assist in the development of novel therapies that alleviate muscle injury induced by various respiratory diseases. Particularly, in clinical diagnoses of obstructive lung diseases, ultrasound imaging has the potential to be used in conjunction with other standard tests to detect the early onset of diaphragm muscle fatigue. In the current protocol, we describe how to accurately evaluate diaphragm contractility in a mouse model using a diagnostic ultrasound imaging technique.

Diagnostic ultrasound imaging has proven to be effective in diagnosing various respiratory diseases in human and animal subjects. We demonstrate a comprehensive ultrasound protocol utilized by Dr. Zuo's lab to analyze diaphragm kinetics specifically in mouse models. This is also a non-invasive research technique which can provide quantitative information on mouse respiratory muscle function.

אולטראסאונד הדמיה לאבחון של תפקוד העכבר דיאפרגמה

Function analysis of rodent respiratory skeletal muscles, particularly the diaphragm, is commonly performed by isolating muscle strips using invasive ...

High-frequency Ultrasound Imaging of Mouse Cervical Lymph Nodes

High-frequency ultrasound (HFUS) is widely employed as a non-invasive method for imaging internal anatomic structures in experimental small animal systems. HFUS has the ability to detect structures as small as 30 &#181;m, a property that has been utilized for visualizing superficial lymph nodes in rodents in brightness (B)-mode. Combining power Doppler with B-mode imaging allows for measuring circulatory blood flow within lymph nodes and other organs. While HFUS has been utilized for lymph node imaging in a number of mouse&#160; model systems, a detailed protocol describing HFUS imaging and characterization of the cervical lymph nodes in mice has not been reported. Here, we show that HFUS can be adapted to detect and characterize cervical lymph nodes in mice. Combined B-mode and power Doppler imaging can be used to detect increases in blood flow in immunologically-enlarged cervical nodes. We also describe the use of B-mode imaging to conduct fine needle biopsies of cervical lymph nodes to retrieve lymph tissue for histological&#160; analysis. Finally, software-aided steps are described to calculate changes in lymph node volume and to visualize changes in lymph node morphology following image reconstruction. The ability to visually monitor changes in cervical lymph node biology over time provides a simple and powerful technique for the non-invasive monitoring of cervical lymph node alterations in preclinical mouse models of oral cavity disease.

This protocol describes the application of high-frequency ultrasound (HFUS) for imaging mouse cervical lymph nodes. This technique optimizes visualization and quantification of cervical lymph node morphology, volume and blood flow. Image-guided biopsy of cervical lymph nodes and processing of lymph tissue for histological evaluation is also demonstrated.

בתדירות גבוהה אולטראסאונד הדמיה של בלוטות לימפה עכבר צוואר הרחם

High-frequency ultrasound (HFUS) is widely employed as a non-invasive method for imaging internal anatomic structures in experimental small animal ...

Murine Echocardiography of Left Atrium, Aorta, and Pulmonary Artery

The present methodology teaches the investigator how to measure and use the LAV as a surrogate of chronic elevations in Left Ventricular diastolic pressure through echocardiography, as well as to obtain measurements of the Aorta and PA diameter in mice.
Mice older than 10 d of age can be analyzed using the present technique. The technique is composed of 3 main steps: set-up, image acquisition, and image analysis. The set-up step consists of getting the mouse anesthetized with 1% isoflurane, shaving it, and taping it in a supine position to a heated EKG board where the image acquisition will take place. The image acquisition step consists of learning to identify the cardiac structures and obtaining all the required images with its correspondent probe and axis in order to be able to calculate volumes and diameters. The image analysis step consists of measuring the previously acquired images with the aid of computer software.
Advantages of the proposed technique include a fast (15 min) procedure that would allow the researcher to evaluate interventions in a non-invasive, non-terminal approach and therefore follow the same mouse over time; each mouse can be used as its own control. This fact plus having the same operator perform all the acquisition and analysis for the entire experiment minimizes the limitation of operator-dependency. The present methodology is useful for mouse researchers in cardiovascular and pulmonary medicine.

The following protocol describes the methodology for the acquisition and analysis of echocardiographic images used to obtain the Left Atrial Volume (LAV), Aorta (Ao) diameter, and Pulmonary Artery (PA) diameter in mice. This technique is a non-invasive, non-terminal procedure that allows assessment of the cardiopulmonary function.

אקו Murine של השמאל אטריום, אבי העורקים, ו עורק הריאה

The present methodology teaches the investigator how to measure and use the LAV as a surrogate of chronic elevations in Left Ventricular diastolic ...

Quantitative Visualization of Leukocyte Infiltrate in a Murine Model of Fulminant Myocarditis by Light Sheet Microscopy

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently labelled structures in large biological specimens, and is down to cellular resolution. Meanwhile, the constant refinement of underlying protocols and the enhanced availability of specialized commercial systems enable us to investigate the microstructure of whole mouse organs and even allow for the characterization of cellular behavior in various live-cell imaging approaches. Here, we describe a protocol for the spatial whole-mount visualization and quantification of the CD45+ leukocyte population in inflamed mouse hearts. The method employs a transgenic mouse strain (CD11c.DTR)that has recently been shown to serve as a robust, inducible model for the study of the development of fulminant fatal myocarditis, characterized by lethal cardiac arrhythmias. This protocol includes myocarditis induction, intravital antibody-mediated cell staining, organ preparation, and LSFM with subsequent computer-assisted image post-processing. Although presented as a highly-adapted method for our particular scientific question, the protocol represents the blueprint of an easily adjustable system that can also target completely different fluorescent structures in other organs and even in other species.

Here, we describe a light-sheet microscopy approach to visualize the cardiac CD45+ leukocyte infiltrate in a murine model of aseptic fulminant myocarditis, which is induced by the intratracheal diphtheria toxin treatment of CD11c.DTR mice.

ויזואליזציה כמותית של ליקוציטים לחדור במודל Murine של שריר הלב הדוקרני על ידי מיקרוסקופית גיליון אור

Light-sheet fluorescence microscopy (LSFM), in combination with chemical clearing protocols, has become the gold standard for analyzing fluorescently ...

Providing Visual Biofeedback Using Brightness Mode Ultrasound During a Golf Swing

Using ultrasound biofeedback in conjunction with verbal cueing can increase muscle thickness more than verbal cueing alone and may augment traditional rehabilitation techniques in an athletic, physically active population. Brightness mode (B-mode) ultrasound can be applied using frame-by-frame analysis synchronized with video to understand muscle thickness changes during these dynamic tasks. Visual biofeedback with ultrasound has been established in static positions for the muscles of the lateral abdominal wall. However, by securing the transducer to the abdomen using an elastic belt and foam block, biofeedback can be applied during more specific tasks prevalent in lifetime sports, such as golf. To analyze muscle activity during a golf swing, muscle thickness changes can be compared. The thickness must increase throughout the task, indicating that the muscle is more active. This methodology allows clinicians to immediately replay ultrasound videos for patients as a visual tool to instruct proper activity of the muscles of interest. For example, ultrasound can be used to target the external and internal obliques, which play an important role in swinging a golf club or any other rotational sport or activity. This methodology aims to increase oblique muscle thickness during the golf swing. Additionally, the timing of muscle contraction can be targeted by instructing the patient to contract the abdominal muscles at specific time points, such as the beginning of the downswing, with the goal of improving muscle firing patterns during tasks.

Brightness mode ultrasound can be used to provide visual biofeedback of the muscles of the lateral abdominal wall during a golf swing. Post-swing visual and verbal instruction can increase the muscle activation and timing of the external and internal obliques.

מתן ביופידבק חזותי באמצעות אולטרסאונד במצב בהירות במהלך חבטת גולף

Using ultrasound biofeedback in conjunction with verbal cueing can increase muscle thickness more than verbal cueing alone and may augment traditional ...

Muscle Function Obtained with Motion Mode Ultrasound and Surface Electromyography during Core Endurance Exercise

Motion mode (M-mode) ultrasound allows researchers and clinicians to measure the change of muscle thickness across time. Muscle thickness can be measured between fascial borders at a given time point during an exercise. This selected time point produces a one-dimensional image resulting in real-time, live observation of anatomy. Ultrasound used during functional movement can be referred to as dynamic ultrasound; this is feasible and reliable with the use of a linear transducer, elastic belt, and foam block to secure consistent transducer placement. The lateral abdominal wall is commonly investigated using ultrasound due to the overlapping nature of the muscles. Surface electromyography (sEMG) can complement M-mode ultrasound imaging because it measures the electrical representation of muscle activation. There is minimal evidence using M-mode ultrasound and sEMG simultaneously during core exercise. Exercises that challenge the core musculature involve both isometric holds (e.g., side plank), as well as oscillatory extremity movements (e.g., dead bug). In this study, both instruments will be used simultaneously to measure core muscle function during exercise. Ultrasound measurements will be obtained using a linear transducer and ultrasound unit, and sEMG measurements will be acquired from a wireless sEMG system. To make comparisons between participants and exercises, normalization methods using static, exercise starting positions for both instruments will be used. An activation ratio will be used for ultrasound and calculated by dividing the contracted thickness (thickness during a time point of exercise) by the rested (starting position) thickness. Muscle thickness will be measured in centimeters from the superior inferior fascial border to inferior superior fascial border. These methods aim to offer an innovative and practical measurement of muscle function with M-mode ultrasound and sEMG during core endurance exercises.

This protocol uses motion mode ultrasound and surface electromyography simultaneously to measure muscle function of the core. Muscle thickness and activation of the local stabilizers (e.g., transverse abdominis, internal oblique) and global movers (e.g., external oblique) is achievable during specific time points of the side plank and dead bug exercises.

תפקוד השרירים מתקבל באמצעות אולטרסאונד של מצב תנועה ואלקטרומיוגרפיה של פני השטח במהלך תרגיל סיבולת הליבה

Motion mode (M-mode) ultrasound allows researchers and clinicians to measure the change of muscle thickness across time. Muscle thickness can be measured ...