אנו מודים לצוות של AniCan (CrCl, ליון) לקבלת הסיוע הטכני שלהם עם טיפול בבעלי חיים. עבודה זו נתמכה על ידי המכון הלאומי דה לה סנטה et de la Recherche Médicale (תכנית Avenir INSERM), Ligue Nationale Contre le הסרטן, על ידי אגודת pour la משוכלל ונדיר sur le הסרטן, על ידי המכון הלאומי לסרטן du, ועל ידי מלגות מ Ligue Nationale Contre le הסרטן (JG), מהמכון הלאומי לסרטן du (JG), ממיניסטר de l&#39;Enseignement Supérieur et de la Recherche של צרפת (RMP וDFV) ומאיגוד pour la משוכלל ונדיר sur le הסרטן ( DFV).

כל ההליכים אושרו על ידי ועדת אתיקה תחת רגולציה של רשות שלטונית (&quot;ד &#39;Comité הערכת Commun au מרכז לאון ראר, à l&#39;Animalerie דה מעבר de l&#39;ENS, au PBES et au Laboratoire P4&quot; (CECCAPP)). עכברים נשמרו במתקן בעלי חיים ללא הפתוגן ספציפי ב&quot; Plateforme AniCan, מרכז לאון ראר &quot;(ליון, צרפת) וטפלו בעמידה בהנחיות מוסדיות. ייצוג סכמטי של ההליך מוצג באיור 1. 1. Dissection הלבלב וDilaceration (יום 0) נתיחה מהירה מאוד היא קריטית לתשואה אופטימלית של חילוץ ולבטח את כדאיות טובה של תאים בתרבית. על מנת לצמצם את הזמן דרוש לבידוד לבלב, כל המכשירים וציוד חייבים להיות מוכנים לפני המתת חסד העכבר. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"><html> להרדים את העכבר על ידי CO 2 מחנק או נקע בצוואר רחם. </li></ol> מהשלב הזה, כל הנהלים צריכים להתבצע תחת אווירה סטרילית (ארון בטיחות מיקרוביולוגית, רמה השנייה) עם ציוד נתיחת סטרילי. <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקן את העכבר ולרסס את בטן העכבר עם 70% אתנול. עם כל מספריים ומלקחיים לנתח, לעשות חתך בצורת V באזור איברי המין ולהמשיך אותו עד לסרעפת כדי לפתוח לחלוטין את חלל הבטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקם את האונה של הכבד נגד הסרעפת, הם צריכים להישאר שם אם חלל הגוף פתוח מספיק רחוק. משוך את הבטן והמעי גס מחוץ לחלל הבטן לשמאלך, ולמצוא את הטבעת. עם זוג מלקחיים המעוקלים ולנתח מספריים, גזל וסעיף פי הטבעת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם אותו זוג מלקחיים, בזהירות לפרוש לחלוטין מהמעי פי הטבעת לקיבה על ידי משיכת המעי בצד שמאל. </li></ol>&gt; &quot;אף אוזן גרון בשלב זה, את הלבלב ניתן להבחין בפס קטן בין הקיבה ותחילת המעי. Ligations עם הטחול יישאר ללא שינוי. <ol start="5" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים נויס וזוג מלקחיים, לחתוך בזהירות את הלבלב לאורך המעי ולשחרר אותו עם טחול משאר מערכת העיכול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תפוס את הטחול ולבלב הסעיף קשור אליו (איור 2). </li></ol> בשלב זה, כדי להיות בטוח ששום רקמת mesenteric שומן ו / או רקמות סמוכות אחרות (טחול, מעי, וכו &#39;) יכולים להיות שנאספו בלבלב, כדי למנוע זיהום סלולרי. לשאר הליך, כל המאגרים חייבים להיות מוכנים ללא יון סידן Ca 2 + chelators כדי למנוע ניתוק של רקמת הלבלב אקסוקרינית בתאים בודדים acinar המלא. <ol start="7" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יש לשטוף את הלבלב פעמיים בתמיסת מלח מאוזן של האנק (HBSS) 1x. </li></ol> בשלב זה, כרקמת שומן תצוף בניגוד ללבלב שישקע, זה בקלות אפשר לדמיין ומהירות להסיר את רקמת השומן הלבנה המזהם עדיין מחוברת ללבלב. אם הלבלב צריך להיות מועבר למתקן תרבית התאים, הוא חייב להיות כל הזמן על קרח בHBSS 1x. <ol start="8" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הלבלב בצלחת פטרי סטרילית המכילה 5 מ&quot;ל של HBSS 1x. בעזרת מספריים ואזמל נויס, פורס את הלבלב בחתיכות קטנות של 1 עד 3 מ&quot;מ 3 (איור 3 א). </li></ol> 2. התכחשויות אנזימטיות ומכאניות של לבלב (יום 0) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר אותם לתוך צינור סטרילי 50 מ&quot;ל פוליפרופילן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה במשך 2 דקות ב 450 XG ו 4 ° C. לשאוב וזורקים supernatant כדי להסיר שברי תאים ותאי דם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 10 מ&quot;ל של תמיסת IA collagenase (HBSS 1x המכיל 10 HEPES מ&quot;מ, 200 U / מ&quot;ל ​​של collagenase IA, ו0.25 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​של מעכב טריפסין) לסעיפים לבלב. בעזרת פיפטה סרולוגיות 25 מ&quot;ל, להעביר אותם לבקבוק 25 ס&quot;מ 2. דגירה אותו במשך 20-30 דקות על 37 ° C. במהלך תקופה זו (כל 5 דקות), לבצע ניתוק מכאני על ידי אנרגטי נע קדימה ואחורה, שברי הלבלב כעשר פעמים, בpipettes סטריליים של גודל ירידה (25, 10, ו 5 pipettes סרולוגיות מ&quot;ל). </li></ol> בשלב זה, זה חיוני כדי לפקח על מידת הניתוק האנזימטית של סעיפי לבלב לעתים קרובות. <ol start="4" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כשנראה שרקמת הלבלב להיות מנותק היטב (בהתאם להיעלמותו של ברים ללבלב והעכירות המוגברת של הפתרון) (איור 3), לעצור את התגובה אנזימטית על ידי הוספת 10 מ&quot;ל של תמיסה קרה שנאגרו כביסה (HBSS 1x המכיל 5 % סרום שור עוברי (FBS) ו10 HEPES מ&quot;מ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר אותו לתוך צינור סטרילי 50 מ&quot;ל פוליפרופילן וcentrifuge למשך 2 דקות ב 450 XG ו 4 ° C. בזהירות לשאוב וזורקים supernatant כדי להסיר את פתרון IA collagenase. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend ושטוף את הכדור עם 10 מ&quot;ל של תמיסת שטיפה נאגרה. צנטריפוגה במשך 3 דקות ב 450 XG ו 4 ° C. בזהירות לשאוב וזורקים supernatant. חזור על פעולה זו עוד פעמיים. </li></ol> 3. סינון וזריעה של מפוזר acini (יום 0) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Resuspend התא גלולה ב7 מ&quot;ל של המדיום של Waymouth המכיל 2.5% FBS, 1% פניצילין, סטרפטומיצין תערובת (PS), 0.25 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​של מעכב טריפסין, ו25 ng / ml של רקומביננטי עוריות Growth Factor האנושי (EGF). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תסנין תערובת התא כך שהוא מאפשר לו לעבור ב100 מיקרומטר סינון כדי לשמר את שברים שאינם מתעכלים (צינורות, כלי דם, ואיים לנגרהנס). מבני acinar לבלב (acinus של 10-15 תאים) לעבור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יש לשטוף את המסנן עם 6 מ&quot;ל של FBS של Waymouth מדיום המכילים, PS, טריפסין INHibitor, וEGF. </li></ol> לאחר שלב זה, התאים צריכים להיות מטופלים בזהירות רבה, כדי למנוע כל acini דיסוציאציה. <ol start="4" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זרעי acini המבודד בצלחת תרבות 6 היטב (2 מ&quot;ל לכל טוב) (איור 3 ג). תרבותם על 37 מעלות צלזיוס מתחת 5% (V / V) אווירת CO 2. </li></ol> לאחר שלב זה, התאים בתרבית acinar בהשעיה. 4. תרבית תאי acinar (יום 1 עד 10) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עשרים וארבע שעות אחרי, להעביר את acini (בהשעיה) לתוך צלחת תרבות 6 גם חדשה, כדי לחסל את התאים מזהמים ושאריות תאיות שיש דבק בין לילה (איור 4). </li></ol> אם תרבית התאים צריכה להיות הוארכה במשך כמה ימים, או אם תנאי הניסוי דורשים תאים גדלו בmonolayer, מומלץ להעברה ולזרע acini על פיגומי מטריקס. <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> היום לפני לראותדינג על תמיכת מטריצה ​​(יום 0), מעיל צלחת תרבות 6 היטב עם סוג אני קולגן (5 מיקרוגרם / 2 ס&quot;מ). הוסף 1 מ&quot;ל שלי פתרון קולגן סוג (50 מיקרוגרם / מ&quot;ל ​​ב0.02 חומצה אצטית M, 0.2 מיקרומטר סונן) היטב כל אחד ולאפשר לו לספוג באופן פסיבי פלסטיק, בשעה 1 ב 37 ° C (או הלילה ב 4 מעלות צלזיוס ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב את סוג פתרון קולגן אני ולשטוף היטב מצופה פעמיים עם פוספט שנאגר מלוח 1x. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאפשר מצופה היטב לייבוש (מתחת לארון בטיחות מיקרוביולוגית) לפחות 12 שעות לפני השימוש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר acini העיקרי המבודד (המתקבל בשלב 4.1) לסוגי צלחת קולגן מצופה 6 גם תרבות והתרבות באותם תנאים כפי שתואר קודם לכן (ב 37 מעלות מתחת ל -5% (V / V) אווירת C-CO 2) . התאים לדבוק במצע קולגן אני הסוג למשך 2 ימים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום 3, לשנות את התרבות בינונית לחסל תאים שאינם בנות קיימא שאינו דבקים. עם זמן בתרבות, התאים בהדרגה SPלקרוא על התמיכה המכילה קולגן. לשנות את התרבות בינונית כל 3 ימים (איור 5). </li></ol> את התאים המתקבלים acinar המבודדים ניתן לספור, לאחר ניתוק מכאני מוחלט באמצעות תא ספירת תאי תומה. שימו לב שלא ניתן לשמור על תאי acinar מבודדים בתרבות אחר כך. איכות תרבות acinar הושגה יכולה להיות נשלטה על ידי בדיקת הביטוי של סמני acinar ספציפיים כגון Trypsinogen, אלפא 1 גורם שעתוק לבלב המקטע, או A1 Carboxypeptidase (על ידי immunocytochemistry או ניסויי immunofluorescence).

<ol>
	<li>Lardon, J., Bouwens, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metaplasia+in+the+pancreas.">Metaplasia in the pancreas.</a> Differentiation. 73, 278-286 (2005).</li><li>Sphyris, N., Logsdon, C. D., Harrison, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improved+retention+of+zymogen+granules+in+cultured+murine+pancreatic+acinar+cells+and+induction+of+acinar-ductal+transdifferentiation+in+vitro.">Improved retention of zymogen granules in cultured murine pancreatic acinar cells and induction of acinar-ductal transdifferentiation in vitro.</a> Pancreas. 30, 148-157 (2005).</li><li>Amsterdam, A., Jamieson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+and+functional+characterization+of+isolated+pancreatic+exocrine+cells.">Structural and functional characterization of isolated pancreatic exocrine cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 69, 3028-3032 (1972).</li><li>Amsterdam, A., Jamieson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+on+dispersed+pancreatic+exocrine+cells.+I.+Dissociation+technique+and+morphologic+characteristics+of+separated+cells.">Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. I. Dissociation technique and morphologic characteristics of separated cells.</a> J. Cell. Biol. 63, 1037-1056 (1974).</li><li>Amsterdam, A., Jamieson, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Studies+on+dispersed+pancreatic+exocrine+cells.+II.+Functional+characteristics+of+separated+cells.">Studies on dispersed pancreatic exocrine cells. II. Functional characteristics of separated cells.</a> J. Cell. Biol. 63, 1057-1073 (1974).</li><li>Schultz, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Guinea+pig+pancreatic+acini+prepared+with+purified+collagenase.">Guinea pig pancreatic acini prepared with purified collagenase.</a> Exp. Cell Res. 130, 49-62 (1980).</li><li>Williams, J. A., Korc, M., Dormer, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Action+of+secretagogues+on+a+new+preparation+of+functionally+intact,+isolated+pancreatic+acini.">Action of secretagogues on a new preparation of functionally intact, isolated pancreatic acini.</a> Am. J. Physiol. 235, 517-524 (1978).</li><li>Logsdon, C. D., Williams, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epidermal+growth+factor+binding+and+biologic+effects+on+mouse+pancreatic+acini.">Epidermal growth factor binding and biologic effects on mouse pancreatic acini.</a> Gastroenterology. 85, 339-345 (1983).</li><li>Han, B., Logsdon, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cholecystokinin+induction+of+mob-1+chemokine+expression+in+pancreatic+acinar+cells+requires+NF-kappaB+activation.">Cholecystokinin induction of mob-1 chemokine expression in pancreatic acinar cells requires NF-kappaB activation.</a> Am. J. Physiol. 277, 74-82 (1999).</li><li>Ji, B., Kopin, A. S., Logsdon, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Species+differences+between+rat+and+mouse+CCKA+receptors+determine+the+divergent+acinar+cell+response+to+the+cholecystokinin+analog+JMV-180.">Species differences between rat and mouse CCKA receptors determine the divergent acinar cell response to the cholecystokinin analog JMV-180.</a> J. Biol. Chem. 275, 19115-19120 (2000).</li><li>Ji, K. A., Yang, M. S., Jou, I., Shong, M. H., Joe, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thrombin+induces+expression+of+cytokine-induced+SH2+protein+(CIS)+in+rat+brain+astrocytes:+involvement+of+phospholipase+A2,+cyclooxygenase,+and+lipoxygenase.">Thrombin induces expression of cytokine-induced SH2 protein (CIS) in rat brain astrocytes: involvement of phospholipase A2, cyclooxygenase, and lipoxygenase.</a> Glia. 48, 102-111 (2004).</li><li>Gaiser, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracellular+activation+of+trypsinogen+in+transgenic+mice+induces+acute+but+not+chronic+pancreatitis.">Intracellular activation of trypsinogen in transgenic mice induces acute but not chronic pancreatitis.</a> Gut. 60, 1379-1388 (2011).</li><li>Logsdon, C. D., Williams, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreatic+acinar+cells+in+monolayer+culture:+direct+trophic+effects+of+caerulein+in+vitro.">Pancreatic acinar cells in monolayer culture: direct trophic effects of caerulein in vitro.</a> Am. J. Physiol. 250, 440-447 (1986).</li><li>Stanger, B. Z., Dor, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissecting+the+cellular+origins+of+pancreatic+cancer.">Dissecting the cellular origins of pancreatic cancer.</a> Cell Cycle. 5, 43-46 (2006).</li><li>Vincent, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tif1gamma+suppresses+murine+pancreatic+tumoral+transformation+by+a+smad4-independent+pathway.">Tif1gamma suppresses murine pancreatic tumoral transformation by a smad4-independent pathway.</a> Am. J. Pathol. 180, 2214-2221 (2012).</li><li>Vincent, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inactivation+of+TIF1gamma+cooperates+with+Kras+to+induce+cystic+tumors+of+the+pancreas.">Inactivation of TIF1gamma cooperates with Kras to induce cystic tumors of the pancreas.</a> PLoS Genet. 5, e1000575 (2009).</li><li>Dorrell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+mouse+pancreatic+alpha,+beta,+duct+and+acinar+populations+with+cell+surface+markers.">Isolation of mouse pancreatic alpha, beta, duct and acinar populations with cell surface markers.</a> Mol. Cell Endocrinol. 339, 144-150 (2011).</li><li>Case, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synthesis,+intracellular+transport+and+discharge+of+exportable+proteins+in+the+pancreatic+acinar+cell+and+other+cells.">Synthesis, intracellular transport and discharge of exportable proteins in the pancreatic acinar cell and other cells.</a> Biol. Rev. Camb. Philos. Soc. 53, 211-354 (1978).</li><li>Blauer, M., Nordback, I., Sand, J., Laukkarinen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+explant+outgrowth+culture+model+for+mouse+pancreatic+acinar+cells+with+long-term+maintenance+of+secretory+phenotype.">A novel explant outgrowth culture model for mouse pancreatic acinar cells with long-term maintenance of secretory phenotype.</a> Eur. J. Cell. Biol. 90, 1052-1060 (2011).</li></ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

בפרוטוקול זה, אנו מתארים הליך לבידוד תאי acinar לבלב. שיטה זו מאפשרת לבודד יותר מ 20 x 10 6 תאים לכל חיה acinar בשעה פחות מ 1. הודות ליישום המהיר ופשוט שלו (כמה שרק 10 לבלב יכול להיות מעובד באופן עצמאי לניסוי במקביל), פרוטוקול זה מופיע כפשרה טובה בין שיטות בידוד 3-5,9-12,17 ק?...

בעיה נתקל לעתים קרובות למעבדות מחקר עובדים על רקמת לבלב אקסוקרינית היא הקושי בטיפוח תאים במבחנה acinar לתקופת הזמן ארוך מספיק כדי לאפשר ניסוי לטווח ארוך. גורם אחד מונע פיתוח של מערכות תרבות כזו הוא הרגישות הפנימית של רקמת לבלב למניפולציה ניסויית בשל תכולה הגבוהה באנזימי glycolytic, פרוטאוליטי, וlipolytic, שפשוטו כמשמעו לעכל את רקמת הלבלב כאשר הם משתחררים בבידוד של תאי לבלב. גורם שני הוא יוצא דופן בפלסטיות במבחנה של תאי acinar, אשר נוטים לאבד את התכונות שלהם והפרשת transdifferentiate לתאים בוגרים אחרים, כגון תאי לבלב או תאי ductal דמויי hepatocyte 1. במבחנה, פלסטיות תא זה משתנה עם תנאי הניסוי (כמו הרכב בינוני תרבות) 2 </sup&gt; ומציג את מידת המורכבות לתוך העיצוב של תנאי התרבות מתאימים לתאי לבלב אקסוקרינית 1. כמה שיטות פותחו לבידוד ולתרבות של תאי acinar, ראשון מלבלב חזיר ים 3-5. בתחילה, פרוטוקולים אלה מעורבים עיכול של רקמת לבלב עם collagenase, chymotrypsin, וקוקטייל פרוטאז, עם בידוד אולטימטיבי על ידי ניתוק מכאני נמרץ. תאי הלבלב שבודדו בדרך זו מוצגים מאפיינים מבניים ותפקודיים תקינים, בעיקר אובדן של מבני apical ונזק משמעותי לקולטניים הקרום שלהם. תאים מבודדים נותרו מעשיים עבור רק 1 או 2 ימים. הכנת התפזרה acini שומר על אדריכלות הפנים ואינטר שלהם, שמירה על ממברנות תאים, הגבלת נזק לקולטנים על פני, ובכך לשפר את ההפרשה אקסוקרינית בתגובה לsecretagogues 6-8. כresuLT, שיטה זו מציעה יתרון הגדול של הארכת כדאיות תא acinar ל7-10 ימים במבחנה. יתר על כן, בשיטה זו היא כיום העדיפה בידוד תא acinar 9-12 בגלל התחזוקה של קשר אינטר, כולל תא צימוד על ידי צמתים פער, היא הקובע חיוני של פנוטיפ תא acinar הלבלב אקסוקרינית 13. כמו טשטוש ההבדלים של תאי acinar וtransdifferentiation לתאי ductal הוא אחד המנגנונים המוצעים לראשיתו של סרטן הלבלב אקסוקרינית אגרסיבי 14, התפזר acini המודל הוא גם מערכת נאותה ללמוד פלסטיות לבלב והמנגנונים המולקולריים הבאים שלה. יתר על כן, בשילוב עם שימוש בבעלי חיים מהונדסים גנטי 15,16 והפיתוח של טכניקות העברת גנים (2 adenoviral או התמרה lentiviral, שימוש של חלקיקים, וכו &#39;), זה במודל תא acinar העיקרי מבחנה יכוללהיות מאוד שימושי בקביעת אופן תפקוד גנטי שונים משפיע על הוויסות של התמיינות תאי acinar או טשטוש הבדלים, ואמור לספק הבנה טובה יותר של האירועים המולקולריים האחראים להתפרצות של דלקת בלבלב, נגעים טרום סרטניים, ושינויים בפלסטיות תא. בידוד של פזורים acini הוא הגישה שאנו משתמשים במעבדה שלנו לתאי לבלב acinar תרבות. אנחנו כאן לתאר ולדון בשיטה. זה כרוך בניתוק האנזימטית של רקמת לבלב (עם collagenase חיידקים) מצמידים את השיבוש מכאני ללא ניתוק של תאי acinar. בעוד שרוב הפרוטוקולים כרוכים culturing acini, או בהשעיה או במצעי פלסטיק שטופלו במיוחד, אנו לגדל אותם בהשעיה לזמן קצר בלבד (במשך 24 שעות), זריעתם אחר כך על גבי פיגומי מטריצה ​​אם נדרשת תרבית תאים ממושכת. פרוטוקול זה מאפשר בידוד מהיר (בשעה פחות מ 1) התפזר לבלב ACINI, בר קיימא ליותר משבוע אחד בתרבות. זה מאפשר בידוד של יותר מ 20 x 10 6 תאים לכל acinar לבלב עכבר. הפשטות שלו מאפשרת לעבד באופן עצמאי רבים כמו 10 לבלב במקביל. על ידי שמירה על אדריכלות הפנים ואינטר של acini ולכן הפנוטיפ acinar של תאים ראשוניים מבודדים, מודל זה מהווה מערכת של בחירה עבור המחקר של מנגנוני transdifferentiation, כמו כל דגמי הלבלב אקסוקרינית האחרים הזמינים כיום נגזרים מגידולים בלבלב מוצגות רבים גנטיים שינויים שהובילו להפיכה סלולרית.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="always">
		<tbody>
		 <tr>
			<td>Name of Reagent/Material</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalog Number</td>
			<td>Comments</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>0.2 &mu;m filter</td>
			<td>Dutscher</td>
			<td>146560</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>10 ml serological pipettes</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>357551</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>100 &mu;m filter</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>352360</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>100 mm Petri dish</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>353003</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>1000 &mu;l filter tips</td>
			<td>Starlab</td>
			<td>S1122-1830</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>20 &mu;l filter tips</td>
			<td>Starlab</td>
			<td>S1120-1810</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>200 &mu;l filter tips</td>
			<td>Starlab</td>
			<td>S1120-8810</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>25 ml serological pipettes</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>357535</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>5 ml serological pipettes</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>357543</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>50 ml polypropylene tube</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>352070</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>6-well plate</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>353046</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Acetic acid 100%</td>
			<td>VWR BDH Prolabo</td>
			<td>20104.298</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Collagenase IA</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>C2676</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Curved forceps, Dumont #7</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>14188</td>
			<td>To sterilize before use</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Dissecting scissors, straight</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>14393</td>
			<td>To sterilize before use</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Epidermal Growth Factor, human</td>
			<td>Promokine</td>
			<td>C-60180</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Ethanol absolute (AnalaR Normapur)</td>
			<td>VWR BDH Prolabo</td>
			<td>20821.310</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Fetal Bovine Serum</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>14-801F</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Forceps, Dumont #5</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>14098</td>
			<td>To sterilize before use</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Hank's Balanced Salt Solution 1x </td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14025050</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>HEPES 1 M (pH 6.98-7.30)</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-737F</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Incubator O2/CO2</td>
			<td>Sanyo</td>
			<td>MCO-19M</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Inverted microscope</td>
			<td>Nikon</td>
			<td>Eclipse TS100</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Matrigel</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>356234</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Microbiological Safety Cabinet, level II</td>
			<td>Faster</td>
			<td>SafeFast Elite 212 S</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Noyes scissors, sharp/sharp tips, German</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>500228-G</td>
			<td>To sterilize before use</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Penicillin-Streptomycin mixture</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15140122</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Phosphate Buffer Saline 10x </td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14200067</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pipet-Aid</td>
			<td>Drummond Scientific Company</td>
			<td>Pipet-Aid XP</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pipetman P1000</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F123602</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pipetman P20</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F123600</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Pipetman P200</td>
			<td>Gilson</td>
			<td>F123601</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Refrigerated centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810R</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Scalpel</td>
			<td>Paramount Surgimed Ltd.</td>
			<td>Disposable Scalpel Size 23</td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>T25 flask, 25 cm2</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Z707481</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Trypsin inhibitor, from Glycine Max</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T6522</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Type I collagen</td>
			<td>Beckton Dickinson</td>
			<td>354236</td>
			<td></td>
		 </tr>
		 <tr>
			<td>Waymouth's medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>31220-023</td>
			<td></td>
		 </tr>
		</tbody>
 </table>

isolation and culture of mouse primary pancreatic acinar cells

פרוטוקול זה מאפשר בידוד מהיר (בשעה פחות מ 1) לacini לבלב העכברי, כך שניתן לשמור אותם בתרבות ליותר משבוע אחד. ניתן לקבל יותר מ -20 10 6 תאי acinar x מלבלב עכברי אחת. פרוטוקול זה מציע את האפשרות לעבד באופן עצמאי רבים כמו 10 לבלב במקביל. משום שהיא משמרת את ארכיטקטורת acinar, מודל זה מתאים גם ללימוד הפיסיולוגיה של הלבלב אקסוקרינית במבחנה בניגוד לשורות תאים הוקמו מגידולים בלבלב, המציגים שינויים גנטיים רבים וכתוצאה מכך האובדן חלקי או מוחלט של בידול acinar שלהם.

איור 1 schematizes שיטת acini &quot;התפזרה&quot; לבידוד תאי acinar העיקרי. את השלבים הקריטיים, שבו יש לכבד בקפדנות במהלך הפרוטוקול, מתוארים בחלקו הדיון. כדי להקל על הסרתו, יש לו את הלבלב שייגבה מהבטן יחד עם הטחול המצורף (איור 2). שנ...

Watch this Scientific Journal Video about Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells at JoVE.com

Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells

בפרסום זה, אנו מתארים הליך מהיר ונוח לבידוד ותאי לבלב acinar העיקריים culturing מהלבלב העכברי. שיטה זו מהווה גישה רבת ערך כדי ללמוד את הפיסיולוגיה של תאי לבלב אקסוקרינית רגילים / untransformed העיקריים טריים.

בידוד והתרבות של תאי לבלב הראשיים acinar עכבר

This protocol permits rapid isolation (in less than 1 hr) of murine pancreatic acini, making it possible to maintain them in culture for more than one ...

isolation-and-culture-of-mouse-primary-pancreatic-acinar-cells

Research

JoVE Journal

Biology

35.5K Views.  Centre de Recherche en Cancérologie de Lyon.  בפרסום זה, אנו מתארים הליך מהיר ונוח לבידוד ותאי לבלב acinar העיקריים culturing מהלבלב העכברי. שיטה זו מהווה גישה רבת ערך כדי ללמוד את הפיסיולוגיה של תאי לבלב אקסוקרינית רגילים / untransformed העיקריים טריים. 

Video: Isolation and Culture of Mouse Primary Pancreatic Acinar Cells

Isolation of Primary Mouse Trophoblast Cells and Trophoblast Invasion Assay

The placenta is responsible for the transport of nutrients, gasses and growth factors to the fetus, as well as the elimination of wastes. 
Thus, defects in placental development have important consequences for the fetus and mother, and are a major cause of embryonic lethality. The major cell type of the 
fetal portion of the placenta is the trophoblast. Primary mouse placental trophoblast cells are a useful tool for studying normal and abnormal placental development, 
and unlike cell lines, may be isolated and used to study trophoblast at specific stages of pregnancy. In addition, primary cultures of trophoblast from transgenic
mice may be used to study the role of particular genes in placental cells. The protocol presented here is based on the description by Thordarson et al.1, in which a 
percoll gradient is used to obtain a relatively pure trophoblast cell population from isolated mouse placentas. It is similar to the more widely used methods for 
human trophoblast cell isolation2-3. Purity may be assessed by immunocytochemical staining of the isolated cells for cytokeratin 74. Here, the isolated cells are 
then analyzed using a matrigel invasion assay to assess trophoblast invasiveness in vitro5-6. The invaded cells are analyzed by immunocytochemistry and stained 
for counting.

In this protocol, we describe the dissection of placentae from the mouse on pregnancy d10.5, followed by isolation of trophoblast cells using a Percoll gradient. We then demonstrate use of the isolated cells in a matrigel invasion assay.

בידוד של תאים ראשוניים עכבר Trophoblast וAssay הפלישה Trophoblast

The placenta is responsible for the transport of nutrients, gasses and growth factors to the fetus, as well as the elimination of wastes.  
Thus, defects ...

Isolation and Primary Culture of Rat Hepatic Cells

Primary hepatocyte culture is a valuable tool that has been extensively used in basic research of liver function, disease, pathophysiology, pharmacology and other related subjects. The method based on two-step collagenase perfusion for isolation of intact hepatocytes was first introduced by Berry and Friend in 1969 1 and, since then, has undergone many modifications. The most commonly used technique was described by Seglenin 1976 2. Essentially, hepatocytes are dissociated from anesthetized adult rats by a non-recirculating collagenase perfusion through the portal vein. The isolated cells are then filtered through a 100 &mu;m pore size mesh nylon filter, and cultured onto plates. After 4-hour culture, the medium is replaced with serum-containing or serum-free medium, e.g. HepatoZYME-SFM, for additional time to culture. These procedures require surgical and sterile culture steps that can be better demonstrated by video than by text. Here, we document the detailed steps for these procedures by both video and written protocol, which allow consistently in the generation of viable hepatocytes in large numbers.

Primary hepatocytes provide a valuable tool to evaluate biochemical, molecular, and metabolic functions in a physiologically relevant experimental system. We describe a reliable protocol for rat in situ liver perfusion, which consistently generates viable hepatocytes up to 1.0 &times; 108 cells per preparation with cell viability between 88 ~ 96%.

בידוד תרבות ראשונית של תאים בכבד עכברוש

Primary hepatocyte culture is a valuable tool that has been extensively used in basic research of liver function, disease, pathophysiology, pharmacology ...

Preparation of Pancreatic Acinar Cells for the Purpose of Calcium Imaging, Cell Injury Measurements, and Adenoviral Infection

The pancreatic acinar cell is the main parenchymal cell of the exocrine pancreas and plays a primary role in the secretion of pancreatic enzymes into the pancreatic duct. It is also the site for the initiation of pancreatitis. Here we describe how acinar cells are isolated from whole pancreas tissue and intracellular calcium signals are measured. In addition, we describe the techniques of transfecting these cells with adenoviral constructs, and subsequently measuring the leakage of lactate dehydrogenase, a marker of cell injury, during conditions that induce acinar cell injury in vitro. These techniques provide a powerful tool to characterize acinar cell physiology and pathology.

We describe a reproducible method of preparing mouse pancreatic acinar cells from a mouse for the purpose of examining acinar cell calcium signals and cellular injury with physiologically and pathologically relevant stimuli. A method for adenoviral infection of these cells is also provided.

הכנת תאי לבלב acinar לצורך סידן ההדמיה, פגיעה בתא המדידות, וזיהום adenoviral

The pancreatic acinar  cell is the main parenchymal cell of the exocrine pancreas and plays a primary  role in the secretion of pancreatic enzymes into ...

Assessing the Secretory Capacity of Pancreatic Acinar Cells

Pancreatic acinar cells produce and secrete digestive enzymes. These cells are organized as a cluster which forms and shares a joint lumen. This work demonstrates how the secretory capacity of these cells can be assessed by culture of isolated acini. The setup is advantageous since isolated acini, which retain many characteristics of the intact exocrine pancreas can be manipulated and monitored more readily than in the whole animal. Proper isolation of pancreatic acini is a key requirement so that the ex&#160;vivo culture will represent the in&#160;vivo nature of the acini. The protocol demonstrates how to isolate intact acini from the mouse pancreas. Subsequently, two complementary methods for evaluating pancreatic secretion are presented. The amylase secretion assay serves as a global measure, while direct imaging of pancreatic secretion allows the characterization of secretion at a sub-cellular resolution. Collectively, the techniques presented here enable a broad spectrum of experiments to study exocrine secretion.

Isolated pancreatic acini retain their in&#160;vivo morphology and activity and offer powerful ways for monitoring and manipulating secretion. This work demonstrates how acini can be isolated from the mouse pancreas, and how their secretory capacities can be assessed.

הערכת יכולת ההפרשה של תאי הלבלב Acinar

Pancreatic acinar cells produce and secrete digestive enzymes. These cells are organized as a cluster which forms and shares a joint lumen. This work ...

Isolation and Primary Culture of Mouse Aortic Endothelial Cells

The vascular endothelium is essential to normal vascular homeostasis. Its dysfunction participates in various cardiovascular disorders. The mouse is an important model for cardiovascular disease research. This study demonstrates a simple method to isolate and culture endothelial cells from the mouse aorta without any special equipment. To isolate endothelial cells, the thoracic aorta is quickly removed from the mouse body, and the attached adipose tissue and connective tissue are removed from the aorta. The aorta is cut into 1 mm rings. Each aortic ring is opened and seeded onto a growth factor reduced matrix with the endothelium facing down. The segments are cultured in endothelial cell growth medium for about 4 days. The endothelial sprouting starts as early as day 2. The segments are then removed and the cells are cultured continually until they reach confluence. The endothelial cells are harvested using neutral proteinase and cultured in endothelial cell growth medium for another two passages before being used for experiments. Immunofluorescence staining indicated that after the second passage the majority of cells were double positive for Dil-ac-LDL uptake, Lectin binding, and CD31 staining, the typical characteristics of endothelial cells. It is suggested that cells at the second to third passages are suitable for in vitro and in vivo experiments to study the endothelial biology. Our protocol provides an effective means of identifying specific cellular and molecular mechanisms in endothelial cell physiopathology.

The vascular endothelial cells play a significant role in many important cardiovascular disorders. This article describes a simple method to isolate and expand endothelial cells from the mouse aorta without using any special equipment. Our protocol provides an effective means of identifying mechanisms in endothelial cell physiopathology.

בידוד והתרבות ראשית של לתאי אנדותל עכבר אב העורקים

The vascular endothelium is essential to normal vascular homeostasis. Its dysfunction participates in various cardiovascular disorders. The mouse is an ...

Isolation and Culture of Primary Mouse Keratinocytes from Neonatal and Adult Mouse Skin

The keratinocyte (KC) is the predominant cell type in the epidermis, the outermost layer of the skin. Epidermal KCs play a critical role in providing skin defense by forming an intact skin barrier against environmental insults, such as UVB irradiation or pathogens, and also by initiating an inflammatory response upon those insults. Here we describe methods to isolate KCs from neonatal mouse skin and from adult mouse tail skin. We also describe culturing conditions using defined growth supplements (dGS) in comparison to chelexed fetal bovine serum (cFBS). Functionally, we show that both neonatal and adult KCs are highly responsive to high calcium-induced terminal differentiation, tight junction formation and stratification. Additionally, cultured adult KCs are susceptible to UVB-triggered cell death and can release large amounts of TNF upon UVB irradiation. Together, the methods described here will be useful to researchers for the setup of in vitro models to study epidermal biology in the neonatal mouse and/or the adult mouse.

Epidermal keratinocytes form a functional skin barrier and are positioned at the front line of host defense against external environmental insults. Here we describe methods for isolation and primary culture of epidermal keratinocytes from neonatal and adult mouse skin, and induction of terminal differentiation and UVB-triggered inflammatory response from keratinocytes.

בידוד ותרבות של עכברים ראשיים Keratinocytes מ neonatal ומבוגרים עור עכבר

The keratinocyte (KC) is the predominant cell type in the epidermis, the outermost layer of the skin. Epidermal KCs play a critical role in providing skin ...

Isolation and Culture of Primary Aortic Endothelial Cells from Miniature Pigs

Xenotransplantation is a promising way to resolve the shortage of human organs for patients with end-stage organ failure, and the pig is considered as a suitable organ source. Immune rejection and coagulation are two major hurdles for the success of xenotransplantation. Vascular endothelial cell (EC) injury and dysfunction are important for the development of the inflammation and coagulation responses in xenotransplantation. Thus, isolation of porcine aortic endothelial cells (pAECs) is necessary for investigating the immune rejection and coagulation responses. Here, we have developed a simple enzymatic approach for the isolation, characterization, and expansion of highly purified pAECs from miniature pigs. First, the miniature pig was anaesthetized with ketamine, and a length of aorta was excised. Second, the endothelial surface of aorta was exposed to 0.005% collagenase IV digestive solution for 15 min. Third, the endothelial surface of the aorta was scraped in only one direction with a cell scraper (&#60;10 times), and was not compressed during the process of scraping. Finally, the isolated pAECs of Day 3, and after passage 1 and passage 2, were identified by flow cytometry with an anti-CD31 antibody. The percentages of CD31-positive cells were 97.4% &#177; 1.2%, 94.4% &#177; 1.1%, and 92.4% &#177; 1.7% (mean &#177; SD), respectively. The concentration of Collagenase IV, the digestive time, the direction, and frequency and intensity of scraping are critical for decreasing fibroblast contamination and obtaining high-purity and a large number of ECs. In conclusion, our enzymatic method is a highly-effctive method for isolating ECs from the miniature pig aorta, and the cells can be expanded in vitro to investigate the immune and coagulation responses in xenotransplantation.

An effective enzymatic method for isolation of primary porcine aortic endothelial cells (pAECs) from miniature pigs is described. The isolated primary pAECs can be used to investigate the immune and coagulation response in xenotransplantation.

בידוד ותרבות של בתאי אבי העורקים הראשוניים מחזירים זעירים

Xenotransplantation is a promising way to resolve the shortage of human organs for patients with end-stage organ failure, and the pig is considered as a ...

Efficient Dissection and Culture of Primary Mouse Retinal Pigment Epithelial Cells

Eye disorders affect millions of people worldwide, but the limited availability of human tissues hinders their study. Mouse models are powerful tools to understand the pathophysiology of ocular diseases because of their similarities with human anatomy and physiology. Alterations in the retinal pigment epithelium (RPE), including changes in morphology and function, are common features shared by many ocular disorders. However, successful isolation and culture of primary mouse RPE cells is very challenging. This paper is an updated audiovisual version of the protocol previously published by Fernandez-Godino et al. in 2016 to efficiently isolate and culture primary mouse RPE cells. This method is highly reproducible and results in robust cultures of highly polarized and pigmented RPE monolayers that can be maintained for several weeks on Transwells. This model opens new avenues for the study of the molecular and cellular mechanisms underlying eye diseases. Moreover, it provides a platform to test therapeutic approaches that can be used to treat important eye diseases with unmet medical needs, including inherited retinal disorders and macular degenerations.

This protocol, which was originally reported by Fernandez-Godino et al. in 20161, describes a method to efficiently isolate and culture mouse RPE cells, which form a functional and polarized RPE monolayer within one week on Transwell plates. The procedure takes approximately 3 hours.

ניתוח יעיל ותרבות של תאי אפיתל פיגמנט רשתית העכבר הראשי

Eye disorders affect millions of people worldwide, but the limited availability of human tissues hinders their study. Mouse models are powerful tools to ...

Isolation and Culture of Primary Oral Keratinocytes from the Adult Mouse Palate

For years, most studies involving keratinocytes have been conducted using human and mouse skin epidermal keratinocytes. Recently, oral keratinocytes have attracted attention because of their unique function and characteristics. They maintain the homeostasis of the oral epithelium and serve as resources for applications in regenerative therapies. However, in vitro studies that use oral primary keratinocytes from adult mice have been limited due to the lack of an efficient and well-established culture protocol. Here, oral primary keratinocytes were isolated from the palate tissues of adult mice and cultured in a commercial low-calcium medium supplemented with a chelexed-serum. Under these conditions, keratinocytes were maintained in a proliferative or stem cell-like state, and their differentiation was inhibited even after increased passages. Marker expression analysis showed that the cultured oral keratinocytes expressed the basal cell markers p63, K14, and &#945;6-integrin and were negative for the differentiation marker K13 and the fibroblast marker PDGFR&#945;. This method produced viable and culturable cells suitable for downstream applications in the study of oral epithelial stem cell functions in vitro.

The present protocol describes the isolation and culture of oral keratinocytes derived from the adult mouse palate. An evaluation method using immunostaining is also reported.

בידוד ותרבות של קרטינוציטים אוראליים ראשוניים מחך העכבר למבוגרים

For years, most studies involving keratinocytes have been conducted using human and mouse skin epidermal keratinocytes. Recently, oral keratinocytes have ...

Isolation and Characterization of Mouse Primary Liver Sinusoidal Endothelial Cells

Liver sinusoidal endothelial cells (LSECs) are specialized endothelial cells located at the interface between the circulation and the liver parenchyma. LSECs have a distinct morphology characterized by the presence of fenestrae and the absence of basement membrane. LSECs play essential roles in many pathological disorders in the liver, including metabolic dysregulation, inflammation, fibrosis, angiogenesis, and carcinogenesis. However, little has been published about the isolation and characterization of the LSECs. Here, this protocol discusses the isolation of LSEC from both healthy and nonalcoholic fatty liver disease (NAFLD) mice. The protocol is based on collagenase perfusion of the mouse liver and magnetic beads positive selection of nonparenchymal cells to purify LSECs. This study characterizes LSECs using specific markers by flow cytometry and identifies the characteristic phenotypic features by scanning electron microscopy. LSECs isolated following this protocol can be used for functional studies, including adhesion and permeability assays, as well as downstream studies for a particular pathway of interest. In addition, these LSECs can be pooled or used individually, allowing multi-omics data generation including RNA-seq bulk or single cell, proteomic or phospho-proteomics, and Assay for Transposase-Accessible Chromatin using sequencing (ATAC-seq), among others. This protocol will be useful for investigators studying LSECs&#39; communication with other liver cells in health and disease and allow an in-depth understanding of the role of LSECs in the pathogenic mechanisms of acute and chronic liver injury.

Here we outline and demonstrate a protocol for primary mouse liver sinusoidal endothelial cell (LSEC) isolation. The protocol is based on liver collagenase perfusion, nonparenchymal cell purification by low-speed centrifugation, and CD146 magnetic bead selection. We also phenotype and characterize these isolated LSECs using flow cytometry and scanning electron microscopy.

בידוד ואפיון של תאי אנדותל סינוסואידליים ראשוניים בכבד של עכבר

Liver sinusoidal endothelial cells (LSECs) are specialized endothelial cells located at the interface between the circulation and the liver parenchyma. ...