Name: oral bacterial infection and shedding in drosophila melanogaster
Uploaded: 2018-05-31T14:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster at JoVE.com

עבודה זו נתמכה על ידי פרס אסטרטגי מטרסט למרכז חסינות, זיהום של אבולוציה (הפניה גרנט http://ciie.bio.ed.ac.uk; מס 095831). PFV נתמך על ידי מלגת ברנקו וייס (https://brancoweissfellowship.org/) ואחווה של הקנצלר (בית הספר למדעי הביולוגיה, אוניברסיטת אדינבורו); JASJ נתמכה על ידי studentship NERC E3 DTP PhD.

1. לשמור על זבובים
<ol><li>לשמור על זבובים 23 mL צלוחיות פלסטיק המכיל 7 מ של טרי בינוני לואיס (שונה מהפניה31; 1 ליטר triple מזוקקים H2O 6.1 g אגר, 93.6 גר' סוכר חום, תירס 68 g, 18.7 g מיידית שמרים, סוכן אנטי-פטרייתי Tegosept 15 mL) בחממות ב 25 ± 1 ° C, ב- h:12 12 מחזור אור h: כהה עם ~ 60% לחות. חבר את הבקבוקונים עם צמר גפן-בעל כושר ספיגה.</li>
	<li>אחרי כל 14 יום העברה 20 – 30 מבוגרים בקבוקון מזון חדש, עם שמרים מיידית, יבש הוסיף אל פני השטח, למשך 2-3 ימים כדי לאפשר להטלת ביצים להתרחש. לאחר פרק זמן זה, ודא כי הביצים הן על פני השטח של המזון. הסר את הזבוב הבוגר. הערה: פעולה זו שומרת זבובים על הבקבוקונים כמו דור אחד, אוכלוסיות גיל מתאימים.</li>
	<li>להשאיר את הביצים כדי לפתח. הערה: 25 ° c, הזבוב הבוגר להתחיל eclose מן הגלמים ביום 11 ולהמשיך בימים 12-14.</li>
</ol>2. מכינים זבובים ניסיוני
<ol><li>לאסוף את הביצים של הדור האב בכלוב אוסף אוכלוסייה/העובר על צלחת תפוח-אגר 75 מ ל (1 ליטר טריפל H מזוקקים2O, 30 גרם אגר, 33 גרם סוכרוז, 330 מ ל מיץ תפוחים, סוכן אנטי-פטרייתי Tegosept 7 mL) עם שמרים הדבקה כפולה (לערבב שמרים יבשים עם מים כדי עקביות כמו חמאת בוטנים.) להוסיף צמר גפן ספוג במים הכלוב כדי לספק לחות. הערה: כדי למנוע בלבול אפקטים הנגרמת על ידי הבדלים בצפיפות לגידול זחל, חשוב כי זבובים ניסיוני בקבוקונים שונים גדלים בצפיפויות דומה. הצעד הנ ל מבוצע כדי למנוע בלבול אפקטים.</li>
	<li>תקופת דגירה של 24 שעות 25 ° c ב- h 12 h:12 מחזור אור: כהה עד להטלת ביצים אירעה. אם יש גם כמה ביצים לאחר 24 שעות, מספקים habituation מרשו. להחליף צלחות אפל-אגר ולאפשר להטלת ביצים להתרחש עבור ה 24 שעות נוספות.</li>
	<li>סעו עמוסי ביצים אפל-אגר לוחות הכלוב האוכלוסייה. להסיר את העיסה שמרים הנותרים זבובים מתים ממשטח של אגר.</li>
	<li>להטביע את אגר ב- 20 מ של 1 x באגירה פוספט תמיסת מלח (PBS) ועוקרות בעדינות את הביצים של אפל-אגר עם מברשת משובחים. בעוד הושעה ב- PBS, להעביר את הביצים שפופרת צנטרפוגה 50 מ ל, להשאיר למשך 5 דקות אז שקעו הביצים. הערה: רוב הביצים נמצאים בקצה החיצוני אגר.</li>
	<li>להסיר על ידי חיתוך התחתון 4 מ מ של קצה פיפטה מסוננים p1000, שימוש בקצה פיפטה לצייר 1 מ"ל של פתרון, שנלקחו לתחתית הצינור צנטריפוגה 50 מ. להעביר זה צינור microcentrifuge 1.5 mL ולאפשר להתיישב. הערה: כאשר pipetting את ביצי, snap-שחרור הבוכנה הוא יעיל יותר שחרור עדין.</li>
	<li>להסיר על ידי חיתוך התחתון 4 מ מ של קצה פיפטה מסוננים p20. להגדיר את פיפטה לאמצעי הרצוי וצייר מהחלק התחתון של הצינור microcentrifuge. הערה: עם התרגול, נפח של 5 µL מכיל בערך 100 ביצים.</li>
	<li>לוותר על הביצים שנאספו על גבי המזון ולהשאיר אותם לפתח הכמות הנדרשת של הזמן.</li>
</ol>3. התרבות חיידקי
<ol><li>לגדול entomophila פ פ aeruginosa תרבויות, לחסן 10 מ ל מרק לוריא-Bertani (ליברות) עם 100 µL מניה חיידקי קפוא ב 30 ° C (entomophila פ) ו- ° 37 C (aeruginosa פ), בהתאמה. לנער בן לילה-150 סל ד. לוודא התרבות חיידקי יגיע השלב רוויה.</li>
	<li>כדי להבטיח החיידקים המשמשים מזריקים את הזבובים בשלב מעריכית, שכפול במהירות, לחסן את התרבות לילה. לתוך גלובלי חדש, של אמצעי אחסון הרצוי, למחרת בבוקר. ודא inoculum מראש 10% מהנפח הכולל של התרבות תת-תרבות. הערה: זיהום אוראלי מחייבת גבוהה. לכן הדרוש כדי לגדל נפח משמעותי של התרבות חיידקי כך מספיק תרבות חיסון יכול להיות מיוצר לפרטים המינון הרצוי ואת גודל ניסיוני. לחשב כמה תת-תרבות יש צורך לייצר במינונים זיהומיות נדרש שימוש את משוואת MsVs = MאניVאני, כאשר M מייצגת תרבות של צפיפות אופטית נמדד ב 600 nm (OD600) ערך ו- V מייצג שלה נפח. אותיות כתב תחתי להתייחס אם התרבות משמש גלובלי (s) או מנה זיהומיות (i).</li>
	<li>לגדול זו תת-תרבות בבקבוקון חרוט 2 ל' באמצעי אחסון כזה כי פני השטח של תת-תרבות נופל (לכל היותר) מעל תחילתו של המדרון של הבקבוק. המתבקשים לעיל הסימן כפי פעלולים זה יהיה את התפתחותם של חיידקים.</li>
	<li>ודא החיידקים בתוך תת-תרבות זו בשלב הגידול האקספוננציאלי על ידי מדידת OD כל 30 דקות. הערה: מצב זה מתרחש לאחר 3-5 h, איפה תת-תרבות מגיע עם יתר600 בין 0.6-0.8.</li>
	<li>יוצקים נפחים שווים של תת-תרבות זו על פני 50 מ ל צינורות צנטריפוגה ולסובב את תת-תרבות ב g x 2,500 למשך 15 דקות ב 4 ° C כדי הצניפה החיידקים. ברגע מגורען, הסר ולאחר מכן לסובב את תגובת שיקוע שוב בכל התנאים שלעיל כדי לאשר את ההסרה של הרוב המכריע של חיידקים. הערה: גלולה בגודל זניח (קטן מ- 1 מ מ גובה) מאשרת זאת.</li>
	<li>לשלב את כדורי חיידקי הצינורות נפרד על ידי השעיית אותם מחדש ב 5 מ של תת-תרבות supernatant שילוב מחדש פתרונות אלו צינור בודד 50 מ. ספין תרבות זו מרוכזים ב g x 2,500 למשך 15 דקות ב 4 ° C כדי הצניפה החיידקים.</li>
	<li>להסיר את תגובת שיקוע, מחדש להשעות בגדר חיידקים סופי בפתרון מים של 5% סוכרוז. בדוק OD ולהתאים את המינון הרצוי זיהומיות (OD600 = 100 עבור entomophila פ8 ו- OD600 = 25 עבור aeruginosa פ16,28), על ידי השעיית מחדש את כדורי ב- 5% סוכרוז מים לפתרון האחסון הנדרש. הערה: הסכום של 5% סוכרוז מים פתרון שיתווספו ניתן לחשב בעזרת המשוואה בשלב 3.2.1 (MsVs = MאניVאני).</li>
</ol>4. אורלית מדביק זבובים
<ol><li>כדי להבטיח זיהום אוראלי, ברעב הזבובים עבור 2-4 שעות לפני חשיפה חיידקים על ידי העברת הזבובים בקבוקונים אגר רגיל (1 ליטר triple מזוקקים H2O 20 גרם אגר, סוכר חום 84 g, סוכן אנטי-פטרייתי Tegosept 7 mL).</li>
	<li>מכינים צלוחיות זיהום בזמן זבובים הם הרעבה. להפוך בקבוקון Pseudomonas זיהום על-ידי pipetting µL 500 של סוכר רגיל אגר למכסה של שפופרת מדגם 7 mL ולהשאיר לו להתייבש. הכנס דיסק נייר סינון המכסה, פיפטה 100 µL של התרבות חיידקי ישירות על גבי הדיסק מסנן. עבור בקרת זיהומים, החלף את התרבות חיידקי באותו אמצעי אחסון של 5% סוכרוז פתרון מים על נייר הסינון.</li>
	<li>להוסיף זבובים בודדת ברכבת התחתית מדגם ולהשאיר עבור 18 – 24 שעות.</li>
	<li>כדי לאשר זיהום אוראלי, תחילה לעקר השטח של הזבובים מיד לאחר החשיפה חיידקי, על-ידי הצבתם 100 µL של 70% אתנול במשך 20-30 ס להסיר האתנול ולהוסיף 100 מים עבור 20 – 30 s מזוקקים µL של שלוש פעמים לפני הסרת את המים. להוסיף 100 µL ל- PBS 1 x, homogenize הזבוב.</li>
	<li>להעביר את homogenate בשורה העליונה של צלחת 96-ובכן ולהוסיף µL 90 ל- 1 x PBS כל טוב מתחת.</li>
	<li>באופן סדרתי לדלל את הדוגמית הזו. כדי להבחין בין ערכים של טווח של CFU. לקחת 10 µL של homogenate הבאר העליון ולהוסיף זה הבאר להלן. חזור על שלב זה בשנייה, העברת 10 µL השלישי, וכן הלאה, עבור רבים דילולים טורי כנדרש. הערה: זה חשוב כי עצות פיפטה חדשות משמשים עבור כל ערכה של דילולים.</li>
	<li>לוחית רישוי של דילולים טורית על צלחת אגר מזין ק ג ב- 5 טיפות µL, כדי להבטיח שכל טיפות יישארו דיסקרטית.</li>
	<li>דגירה הלוחות LB אגר בן לילה-30 ° C ו 37 ° C entomophila פ ו פ aeruginosa, בהתאמה, נחשב CFUs גלוי. הערה: בעוד החיידקים במעיים דרוזופילה דורשים תנאי הגידול אנאירובי מובהק, בינוני סלקטיבית, לדוגמה Pseudomonas בידוד בינוני (PIM), עשוי לשמש כדי לוודא שרק Pseudomonas CFUs נספרים.</li>
	<li>לחשב את מספר CFUs לכל זבוב על-ידי ספירת מספר מושבות נוכח דילול טורי לאן 10 – 60 CFUs הם נראים בבירור. אז תכפיל ב הגורם דילול הנוכחי כדי לחשב את מספר החיידקים לכל זבוב.</li>
	<li>לבצע ניתוח סטטיסטי. במקרה הצורך, המר את CFUs לכל טס בהתפלגות רגילה. לעשות זאת באמצעות יומן-טרנספורמציה. ברגע טרנספורמציה, השתמש מוכללת מודלים ליניאריים (GLMs)30,31,32 כדי לבדוק כמה קבוצות הטיפול נבדלים CFUs לכל זבוב (באמצעות חבילות תוכנה סטטיסטית זמין נפוץ כמו R33). הערה: homogenate לעוף הנותרים יכול לשמש למדידת ביטוי גנים דרך ניתוח כמותי שעתוק במהופך PCR (RT-qPCR). לתקן את homogenate 50 µL של RNA בידוד ריאגנט לחלץ RNA, לכמת titers גנים ספציפיים המערכת החיסונית על ידי RT-qPCR (ראה למשלגופטה ועוד Vale16 עבור פרוטוקול מפורט). הביטוי של גנים ספציפיים המערכת החיסונית הפרוטוקולים צריכה להיות מנורמל את רמות תעתיק של גנים משק בית (קרי, rp49) והביע כמו קיפול לשנות יחסי שליטה זבובים באמצעות שיטה 2−ΔΔCt 31, 32,33,34.</li>
</ol>5. הקלטה שאירים בעקבות זיהום
<ol><li>להדביק זבובים אורלית כפי שמתואר בשלב 4.2.</li>
	<li>להעביר את הנגועים או שליטה זבובים המבחנות זיהום בהתאמה לתוך תקן לואיס שבקבוקי ולשמור באינקובטור 25 ° c ב- h 12 h:12 בהירה-כהה מחזור (או הרצוי תנאים). שמור זבובים עד שהם ימותו.</li>
	<li>לספור את מספר זבובים חיים או מתים כל מבחנה מדי יום, או לעיתים קרובות כנדרש.</li>
	<li>להעביר את הזבובים בקבוקונים חדשים כל 5 ימים כדי למנוע את הזבובים להיתקע על האוכל.</li>
	<li>להציג נתונים אלה כמו עקומות הישרדות קפלן-מאייר (ק מ) או מתכוון ± SE ההישרדות ביחס לחלקות. כדי לנתח השפעת הגומלין המתאימים שלהם אחד עם השני עם מספר גורמים ו/או להשתמש חבילה סטטיסטי (לדוגמה, חבילת "הישרדות" ב R33) כדי להפעיל ניתוח הישרדות כגון דגם מפגעים פרופורציונלי קוקס35.</li>
</ol>6. מדידת עומס חיידקי
<ol><li>בנקודת הזמן הרצויים, להעביר זבוב נגוע אחד צינור microcentrifuge mL 1.5 סטרילי.</li>
	<li>משטח לעקר את הזבובים כפי שמתואר בשלב 4.4.</li>
	<li>Homogenize הזבוב ולכמת את העומס חיידקי באמצעות פרוטוקול המתואר צעדים 4.5 – 4.10.</li>
</ol>7. למדוד ששפך חיידקי
<ol><li>למדוד את שפיכת לצד עומס פנימי.</li>
	<li>לאחר ההדבקה, העברת הזבובים יחיד 1.5 mL microcentrifuge צינורות המכיל ~ 50 µL של לואיס בינונית במשך 24 שעות ביממה.</li>
	<li>הסר את הזבובים עבור המידה עומס פנימי (ראה שלב 6) ולשטוף את הצינורות עם µL 100 ל- PBS 1 x מאת vortexing בכבדות עבור 3 s.</li>
	<li>למדוד את CFUs בכביסה הזה על ידי ציפוי על אגר מזין LB שימוש באותו הפרוטוקול כמתואר בצעדים 4.6-4.8.</li>
	<li>לאחר ההדבקה, העברת הזבובים יחיד 1.5 mL microcentrifuge צינורות המכיל ~ 50 µL של לואיס בינונית במשך 24 שעות ביממה.</li>
	<li>להעביר הזבובים צינורות microcentrifuge חדש המכיל ~ 50 µL של לואיס בינונית עבור ה 24 נוספת לשטוף הצינורות מזוהמים עם µL 100 ל- PBS 1 x מאת vortexing בכבדות עבור 3 s.</li>
	<li>למדוד את CFUs בכביסה הזה על ידי ציפוי על אגר מזין LB באמצעות פרוטוקול אותו תיאר בשלבים 4.6-4.8.</li>
	<li>חזור על השלבים 7.2 ו- 7.3 ו שיא התמותה לעוף על כל העברה.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Hoffmann, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+immune+response+of+Drosophila.">The immune response of Drosophila.</a> Nature. 426 (6962), 33-38 (2003).</li><li>Buchon, N., Silverman, N., Cherry, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immunity+in+Drosophila+melanogaster+-+from+microbial+recognition+to+whole-organism+physiology.">Immunity in Drosophila melanogaster - from microbial recognition to whole-organism physiology.</a> Nat Rev Immunol. 14 (12), 796-810 (2014).</li><li>Bergman, P., Seyedoleslami Esfahani, S., Engstr&#246;m, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+as+a+Model+for+Human+Diseases-Focus+on+Innate+Immunity+in+Barrier+Epithelia.">Drosophila as a Model for Human Diseases-Focus on Innate Immunity in Barrier Epithelia.</a> Curr Top Dev Biol. 121, 29-81 (2017).</li><li>Apidianakis, Y., Rahme, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+melanogaster+as+a+model+host+for+studying+Pseudomonas+aeruginosa+infection.">Drosophila melanogaster as a model host for studying Pseudomonas aeruginosa infection.</a> Nat Protoc. 4 (9), 1285-1294 (2009).</li><li>Khalil, S., Jacobson, E., Chambers, M. C., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+Bacterial+Infection+and+Immune+Defense+Phenotypes+in+Drosophila+Melanogaster.">Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.</a> JoVE J Vis Exp. (99), e52613-e52613 (2015).</li><li>Neyen, C., Bretscher, A. J., Binggeli, O., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+to+study+Drosophila+immunity.">Methods to study Drosophila immunity.</a> Methods San Diego Calif. 68 (1), 116-128 (2014).</li><li>Nehme, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Model+of+Bacterial+Intestinal+Infections+in+Drosophila+melanogaster.">A Model of Bacterial Intestinal Infections in Drosophila melanogaster.</a> PLOS Pathog. 3 (11), e173 (2007).</li><li>Bou Sleiman, M. S., Osman, D., Massouras, A., Hoffmann, A. A., Lemaitre, B., Deplancke, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic,+molecular+and+physiological+basis+of+variation+in+Drosophila+gut+immunocompetence.">Genetic, molecular and physiological basis of variation in Drosophila gut immunocompetence.</a> Nat Commun. 6, 7829 (2015).</li><li>Buchon, N., Broderick, N. A., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gut+homeostasis+in+a+microbial+world:+insights+from+Drosophila+melanogaster.">Gut homeostasis in a microbial world: insights from Drosophila melanogaster.</a> Nat Rev Microbiol. 11 (9), 615-626 (2013).</li><li>Kuraishi, T., Hori, A., Kurata, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host-microbe+interactions+in+the+gut+of+Drosophila+melanogaster.">Host-microbe interactions in the gut of Drosophila melanogaster.</a> Front Physiol. 4, (2013).</li><li>Ha, E. -. M., Oh, C. -. T., Bae, Y. S., Lee, W. -. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Direct+Role+for+Dual+Oxidase+in+Drosophila+Gut+Immunity.">A Direct Role for Dual Oxidase in Drosophila Gut Immunity.</a> Science. 310 (5749), 847-850 (2005).</li><li>Limmer, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pseudomonas+aeruginosa+RhlR+is+required+to+neutralize+the+cellular+immune+response+in+a+Drosophila+melanogaster+oral+infection+model.">Pseudomonas aeruginosa RhlR is required to neutralize the cellular immune response in a Drosophila melanogaster oral infection model.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 108 (42), 17378-17383 (2011).</li><li>Apidianakis, Y., Pitsouli, C., Perrimon, N., Rahme, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synergy+between+bacterial+infection+and+genetic+predisposition+in+intestinal+dysplasia.">Synergy between bacterial infection and genetic predisposition in intestinal dysplasia.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 106 (49), 20883-20888 (2009).</li><li>Vodovar, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+host+defense+after+oral+infection+by+an+entomopathogenic+Pseudomonas+species.">Drosophila host defense after oral infection by an entomopathogenic Pseudomonas species.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (32), 11414-11419 (2005).</li><li>Chugani, S. A., Whiteley, M., Lee, K. M., D'Argenio, D., Manoil, C., Greenberg, E. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=QscR,+a+modulator+of+quorum-sensing+signal+synthesis+and+virulence+in+Pseudomonas+aeruginosa.">QscR, a modulator of quorum-sensing signal synthesis and virulence in Pseudomonas aeruginosa.</a> Proc Natl Acad Sci. 98 (5), 2752-2757 (2001).</li><li>Gupta, V., Vasanthakrishnan, R. B., Siva-Jothy, J., Monteith, K. M., Brown, S. P., Vale, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+route+of+infection+determines+Wolbachia+antibacterial+protection+in+Drosophila.">The route of infection determines Wolbachia antibacterial protection in Drosophila.</a> Proc R Soc B. 284 (1856), 20170809 (2017).</li><li>Martins, N. E., Faria, V. G., Teixeira, L., Magalh&#227;es, S., Sucena, &. #. 2. 0. 1. ;. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host+Adaptation+Is+Contingent+upon+the+Infection+Route+Taken+by+Pathogens.">Host Adaptation Is Contingent upon the Infection Route Taken by Pathogens.</a> PLoS Pathog. 9 (9), (2013).</li><li>Chambers, M. C., Jacobson, E., Khalil, S., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thorax+Injury+Lowers+Resistance+to+Infection+in+Drosophila+melanogaster.">Thorax Injury Lowers Resistance to Infection in Drosophila melanogaster.</a> Infect Immun. 82 (10), 4380-4389 (2014).</li><li>Gupta, V., Stewart, C., Rund, S. S., Monteith, K., Vale, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Costs+and+benefits+of+sublethal+Drosophila+C+virus+infection.">Costs and benefits of sublethal Drosophila C virus infection.</a> J Evol Biol. , (2017).</li><li>Ferreira, &. #. 1. 9. 3. ;. G., Naylor, H., Esteves, S. S., Pais, I. S., Martins, N. E., Teixeira, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Toll-Dorsal+Pathway+Is+Required+for+Resistance+to+Viral+Oral+Infection+in+Drosophila.">The Toll-Dorsal Pathway Is Required for Resistance to Viral Oral Infection in Drosophila.</a> PLoS Pathog. 10 (12), (2014).</li><li>Buchon, N., Broderick, N. A., Poidevin, M., Pradervand, S., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+Intestinal+Response+to+Bacterial+Infection:+Activation+of+Host+Defense+and+Stem+Cell+Proliferation.">Drosophila Intestinal Response to Bacterial Infection: Activation of Host Defense and Stem Cell Proliferation.</a> Cell Host Microbe. 5 (2), 200-211 (2009).</li><li>Wayland, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spotting+the+differences:+Probing+host/microbiota+interactions+with+a+dedicated+software+tool+for+the+analysis+of+faecal+outputs+in+Drosophila.">Spotting the differences: Probing host/microbiota interactions with a dedicated software tool for the analysis of faecal outputs in Drosophila.</a> J Insect Physiol. 69, 126-135 (2014).</li><li>Hori, A., Kurata, S., Kuraishi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unexpected+role+of+the+IMD+pathway+in+Drosophila+gut+defense+against+Staphylococcus+aureus.">Unexpected role of the IMD pathway in Drosophila gut defense against Staphylococcus aureus.</a> Biochem Biophys Res Commun. 495 (1), 395-400 (2018).</li><li>Ren, C., Webster, P., Finkel, S. E., Tower, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+Internal+and+External+Bacterial+Load+during+Drosophila+Aging+without+Life-Span+Trade-Off.">Increased Internal and External Bacterial Load during Drosophila Aging without Life-Span Trade-Off.</a> Cell Metab. 6 (2), 144-152 (2007).</li><li>Ezenwa, V. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host+behaviour-parasite+feedback:+an+essential+link+between+animal+behaviour+and+disease+ecology.">Host behaviour-parasite feedback: an essential link between animal behaviour and disease ecology.</a> Proc R Soc B. 283 (1828), 20153078 (2016).</li><li>McCallum, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Breaking+beta:+deconstructing+the+parasite+transmission+function.">Breaking beta: deconstructing the parasite transmission function.</a> Phil Trans R Soc B. 372 (1719), 20160084 (2017).</li><li>Vale, P. F., Choisy, M., Little, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host+nutrition+alters+the+variance+in+parasite+transmission+potential.">Host nutrition alters the variance in parasite transmission potential.</a> Biol Lett. 9 (2), 20121145 (2013).</li><li>Mulcahy, H., Sibley, C. D., Surette, M. G., Lewenza, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+melanogaster+as+an+Animal+Model+for+the+Study+of+Pseudomonas+aeruginosa+Biofilm+Infections+In+Vivo.">Drosophila melanogaster as an Animal Model for the Study of Pseudomonas aeruginosa Biofilm Infections In Vivo.</a> PLoS Pathog. 7 (10), e1002299 (2011).</li><li>Kuraishi, T., Binggeli, O., Opota, O., Buchon, N., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+evidence+for+a+protective+role+of+the+peritrophic+matrix+against+intestinal+bacterial+infection+in+Drosophila+melanogaster.">Genetic evidence for a protective role of the peritrophic matrix against intestinal bacterial infection in Drosophila melanogaster.</a> Proc Natl Acad Sci. 108 (38), 15966-15971 (2011).</li><li>Myllym&#228;ki, H., Valanne, S., R&#228;met, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Drosophila+Imd+Signaling+Pathway.">The Drosophila Imd Signaling Pathway.</a> J Immunol. 192 (8), 3455-3462 (2014).</li><li>Lewis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+standard+food+medium.">A new standard food medium.</a> Cold Spring Harb Protoc. 2014 (9), pdb.rec081414 (2014).</li><li>Bolker, B. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generalized+linear+mixed+models:+a+practical+guide+for+ecology+and+evolution.">Generalized linear mixed models: a practical guide for ecology and evolution.</a> Trends Ecol Evol. 24 (3), 127-135 (2009).</li><li>R Core Team. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> R: A Language and Environment for Statistical Computing. , (2015).</li><li>Schmittgen, T. D., Livak, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analyzing+real-time+PCR+data+by+the+comparative+CT+method.">Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method.</a> Nat Protoc. 3 (6), 1101-1108 (2008).</li><li>Kalbfleisch, J. D., Prentice, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Statistical Analysis of Failure Time Data. , (2002).</li><li>. Drosophila melanogaster, drawing.SVG Available from: <a target="_blank" href="https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Drosophila-drawing.svg">https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Drosophila-drawing.svg</a> (2007)</li><li>. Example of a survival curve estimated by Kaplan-Meier method including 95% confidence limits Available from: <a target="_blank" href="https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Kaplan-Meier-sample-plot.svg">https://commons.wikimedia.org/wiki/File:Kaplan-Meier-sample-plot.svg</a> (2011)</li><li>Susi, H., Vale, P. F., Laine, A. -. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host+Genotype+and+Coinfection+Modify+the+Relationship+of+within+and+between+Host+Transmission.">Host Genotype and Coinfection Modify the Relationship of within and between Host Transmission.</a> Am Nat. 186 (2), 252-263 (2015).</li><li>Fellous, S., Duncan, A. B., Quillery, E., Vale, P. F., Kaltz, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+influence+on+disease+spread+following+arrival+of+infected+carriers.">Genetic influence on disease spread following arrival of infected carriers.</a> Ecol Lett. 15 (3), 186-192 (2012).</li></ol>

אנו מציגים פרוטוקול אמין אורלית שמאחורי הדבקת melanogaster ד עם פתוגנים חיידקיים. אנו מתמקדים aeruginosa פ ו פ entomophila, אבל פרוטוקול זה בקלות ניתן להתאים כדי לאפשר לזיהום חיידקי מינים אחרים, למשל, בסרישיה marcescens7. היבטים מרכזיים של פרוטוקול זה משתנה בין המינים חיידקי. בהתאם לכך, המינון זיהומיות היעילה ביותר המתאימים התקפה אלימה, המארח גנוטיפ הרגישות צריך כל להיות נחשב, אידיאלי נבדק במחקרים טייס. חשיפת זבובים לתרבויות חיידקי של מגוון של צפיפות אופטית ומדידת במינון זיהומיות והישרדות שלהם מהווה נקודת המתאימה בעת עבודה עם חיידקי של זנים חדשים או קווים לעוף.
פרוטוקול צעדים כגון לטוס רעב לפני האכלה, השעיית מחדש את חיידקי כדורי בפתרון 5% סוכרוז הם דבר שבשגרה, זיהום אוראלי, להגביר את המהימנות של זיהום חיידקי במהלך החשיפה7,8, 9 , 10. עם זאת, חשוב לציין כי במהלך החשיפה, זבובים בעצם חיים על משטח של התרבות חיידקי. בתהליך של הליכה על תרבות זו, חיידקים להיות נעוץ על פני השטח של הזבוב, במיוחד את הקוטיקולה או סביבו את הזיפים24. חיידקים epicuticular אלו, אינן משקפות את זיהום המעית מוצלח אבל עדיין יתגלה על ידי זבוב המגון ציפוי. כדי להפחית את האפשרות לקבלת תוצאות חיוביות שגויות, זה חיוני כדי משטח לחטא זבובים באמצעות טבילה אתנול 70% בעד 1דקות.
כאשר בוחנים את המחירים שפיכת חיידקי, זיהום אוראלי הוא חיוני. המספר של פתוגנים שלפונדקאי משחרר לתוך הסביבה הוא לרוב קשה למדוד, המטען הפנימי הוא נלקח לעיתים קרובות כמדד עבור חומרת הזיהום ולכן השידור26,27. מדידת עומס חיידקי לצד חיידקי ששפך מאפשר בחינת היחסים בין שני המרכיבים החשובים של חומרת והתפשטות מחלות38. מגבלה אחת של השיטה המובאת היא כי assaying עומס חיידקי פנימי של זבובים דורש דגימה הרסני. זה מקשה לחקור מגמות האורך של פתוגן צמיחה סיווג באותו בן אדם. עם זאת, זה אפשרי על מנת להתגבר על מגבלה זו על-ידי פגיעה דגימה גדודים של אנשים בשלבים שונים של זיהום, תחת ההנחה כי המטען חיידק הממוצע במדגם כל משקף הדינמיקה האורך פתוגן בתוך כל נתון בודדים. שפיכת חיידקי לא סובל אותן מגבלות, אנו מציעים דוגמאות איך שפיכת ניתן לכמת במדגם חתך הרוחב, או longitudinally כדי לחקור כיצד ששפך משתנה בתוך הפרט לאורך זמן.
תכונות המחשב המארח ופתוגן רבים במשותף לקבוע הנטייה של הפרט להעברת המחלה25,26,39. ואילו המשמעות של תכונות אלה סביר משתנה בין מערכות פתוגן-פונדקאי, ששפך הוא כנראה דטרמיננטה העיקריים של שידור בצואה אורלי. היכולת למדוד ששפך חיידקי פותח את ההזדמנות כדי לבדוק הנחה זו. שיש מאופיין פתוגן-פונדקאי dynamics בלוח הרצוי של קווי לעוף, ניסויים יכול בעל פה להדביק אנשים, והציבו אותם לצד המארחים נגוע, רגישים בתקופות זיהומיות שלהם. זבוב "נמענים" ואז יכול להיות לבדיקה פנימית לטעון חיידקי בנקודות זמן שונות כדרך ישירות מדידה שידור.

זבוב הפירות (המכונה גם חומץ הזבוב), melanogaster ד, כבר בשימוש נרחב עבור זיהום, חסינות מפני מגוון רחב של פתוגנים1,2כאורגניזם מודל. עבודה זו הציעה תובנות יסוד ההשלכות הפיזיולוגיות של זיהום וחלוציות היה גם ב להתיר מסלולים מולקולריים שבבסיס התגובה החיסונית מארח נגד זיהומים חיידקים, פטריות, נגיפי צירעת האפידיוס. הידע הזה הוא לא רק שימושי להבין את התגובה החיסונית מולדת של חרקים, פרוקי רגליים אחרים, אבל מכיוון רבים של מנגנוני החיסון אבולוציונית נשמרים בין חרקים, יונקים, דרוזופילה יש גם התיישר גילוי מנגנוני החיסון הגדולות אצל יונקים, כולל בני אדם3.
רוב העבודה על זיהום דרוזופילה וחסינות התמקדה זיהומים מערכתית, תוך שימוש בשיטות חיסון לספק פתוגנים ישירות לתוך גופו של החרק על-ידי לדקור או הזרקה4,5,6. היתרון בשיטות אלה לאפשר המסירה של מנה זיהומיות מבוקר הוא נתמך על ידי גוף גדול של עבודה על זיהומים מערכתית וברורה. עם זאת, רבים פתוגנים חיידקיים טבעי של melanogaster ד נרכשים באמצעות האכלה על מפרקים את החומר האורגני שבו הבטן immunocompetence ממלאת תפקיד משמעותי מארח ההגנה7,8, 9 , 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15. ניסויים שמעסיקים זיהומים מערכתית לעקוף את ההגנות האלה, לכן, מספקים תמונה שונה לגמרי של מה חרקים לטעון כנגד פתוגנים טבעי. זה רלוונטי במיוחד אם מטרת העבודה היא לבחון את תחזיות לגבי האקולוגיה והאבולוציה של זיהום, השימוש של פתוגנים טבעי ומסלולי לזיהום איפה חשוב16,17. העבודה האחרונה הדגישה איך המסלול נלקחה על ידי פתוגנים באופן משמעותי משפיע על המחלה התוצאה18,19, מעורר המסלולים החיסונית ברורים20,21, ניתן לקבוע את ההשפעה המגנה של בירושה endosymbionts16, עשוי גם לשחק תפקיד חשוב באבולוציה של המארח ההגנה17.
עוד סיבה להעסיק. את נתיבי דרך הפה של זיהום הוא שזה מאפשר החקירה של וריאציה הפתוגן בשידור על ידי מדידת ששפך חיידקי במהלך הפרשה בצואה בעקבות זיהום אוראלי22,23, 24. הבנת המקורות של המארח הטרוגניות תוך העברת המחלה מאתגר אוכלוסיות טבעי25,26, אך מדידת רכיבים של שידור, כגון הפתוגן ששפך, תחת מעבדתית מבוקרת תנאים מציע גישה חלופית שימושי27. על ידי חיידקים זבובים האכלה, מדידה בקטריאלי ששפך תחת מגוון רחב של הקשרי גנטיים וסביבתיים בתנאים מבוקרים ניסיוני, זה ניתן לזהות מקורות של וריאציה של העברה בין מחשבים מארחים.
כאן, אנו מתארים את פרוטוקול אורלית שמאחורי הדבקת melanogaster ד עם פתוגנים חיידקיים, עבור לכימות את התפתחות חיידקים ושפך שעוקבת אחר (איור 1). אנו מתארים את פרוטוקול זה על שני החיידקים Pseudomonas : זן מדבק של המחלה הזדמנותית aeruginosa פ (PA14), זן פחות ארסית של הטבעי לטוס הפתוגן entomophila פ. Pseudomonads חיידקים גראם שליליים משותף עם מגוון המארחת רחב, להדביק חרקים, נמטודות, הצומח, בעלי חוליות, מצויים במרבית סביבות4,6. זיהום המעית של דרוזופילה aeruginosa פ ו entomophila פ תוצאות בפתולוגיה מעיים epithelia12,13,14,15, 28. בעוד אנו מתמקדים פתוגנים חיידקיים שני אלה, בשיטות המתוארות כאן באופן עקרוני ניתן להחיל על כל פתוגן חיידקי עניין עם שינויים מזעריים. בעקבות החשיפה אוראלי, אנו למדוד הישרדות לאחר הפגיעה, ולמדוד את העומס חיידק בתוך זבובים בודדים ושפך החיידקים קיימא לסביבה, הביע במושבה ויוצרים יחידות (CFUs). בסופו של דבר, כי הבטן immunocompetence היא תוצאה של שילוב של מחסום האפיתל ותגובות ההורמונאלית, אנו מודדים גם את ההישרדות של קווים לטוס לאן את ההגנות האלה הם שיבשו. באופן ספציפי, Drosocrystallin (Dcy) מוטציות בעבר הוכחו להיות רגישים יותר לזיהום חיידקי הפה עקב מטריצה peritrophic מדולדל הבטן29. אנחנו גם למדוד הישרדות מוטציה תבלינים (Rel) אשר מופרעת מיצירת פפטידים מיקרוביאלית כנגד חיידקים גראם שליליים באמצעות מסלול30IMD.

<table><tbody><tr><td>Vials</td><td>Sarstedt Ltd.</td><td>58.490</td><td>Polystyrene flat base tube 75mm x 23.5mm, 23ml</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7002</td><td>Agar, ash 2.0-4.5%</td></tr><tr><td>Brown sugar</td><td>Bidvest</td><td>66032</td><td>Light brown soft sugar</td></tr><tr><td>Maize</td><td>Dove&#039;s Farm</td><td></td><td>Organic maize flour</td></tr><tr><td>Fermipan yeast</td><td>Bidvest</td><td>96360</td><td>Dry, instant yeast</td></tr><tr><td>Methyl-4-hydroxybenzoate</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H5501</td><td>&gt;=99.0%, crystalline</td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>84097</td><td>Sucrose BioUltra, for molecular biology, &gt;=99.5% (HPLC)</td></tr><tr><td>Petri dishes</td><td>Fisher Scientific UK Ltd.</td><td>15788517</td><td>X600 Petri Dish 90 X 16.2MM Sterile Triple Vent</td></tr><tr><td>Falcon tubes (50ml)</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>210261</td><td>Centrifuge tube, 50ml, skirted, bagged, sterile</td></tr><tr><td>Eppendorf tube (0.5ml)</td><td>Sarstedt Ltd.</td><td>72.699</td><td>Sarstedt Micro Tube Conical Base Push Cap 0.5ml Standard Neutral</td></tr><tr><td>Eppendorf tube (1.5ml)</td><td>Sarstedt Ltd.</td><td>72.690.001</td><td>Sarstedt Micro Tube Conical Base Push Cap 1.5ml Standard Neutral</td></tr><tr><td>Ethanol</td><td>VWR International Ltd.</td><td>20821.33</td><td>ETHANOL ABSOLUTE ANALAR NP ACS/R.PE - Analytical Grade</td></tr><tr><td>2 L Conical Flask</td><td>VWR International Ltd.</td><td>214-0038</td><td>Narrow neck, 2 L Erlenmeyer flask</td></tr><tr><td>Sterile filter paper</td><td>Fisher Scientific UK Ltd.</td><td>1001-020</td><td>Plain circle and sheets; Particle Retention: greater than11um; Filtration speed: 150 herzberg; Air flow: 10.5s/100mL/in2; Medium porosity; Smooth surface; Grade 1; Type: circle; Dia: 20mm</td></tr><tr><td>Bijou sample container</td><td>Fisher Scientific UK Ltd.</td><td>129A</td><td>7ml polystyrene sample container</td></tr><tr><td>Pseudomonas isolation agar</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>17208</td><td>Contains agar 13.6 g/L, magnesium chloride 1.4 g/L, peptic digest of animal tissue 20g/L, potassium sulfate 10g/L, triclosan 0.025g/L</td></tr><tr><td>LB broth, Miller</td><td>Fisher Scientific UK Ltd.</td><td>BP1426</td><td>Contains 10g tryptone, 5g yeast extract, 10g sodium chloride per litre</td></tr><tr><td>Large Embryo Collection Cages</td><td>Scientific Laboratory Supplies Ltd.</td><td>59-101</td><td>Flystuff- fits 100mm petri dish</td></tr><tr><td>TRI reagent solution</td><td>Life Technologies</td><td>AM9738</td><td></td></tr><tr><td>96-well microplate</td><td>Scientific Laboratory Supplies Ltd.</td><td>353072</td><td>Falcon 96 Well Clear Flat Bottom TC-Treated Polystyrene Cell Culture Microplate with Lid Sterile</td></tr><tr><td>Pestle</td><td>Fisher Scientific UK Ltd</td><td>12649595</td><td>Pestle, Presterilized; Axygen; Tissue grinder; Blue; Inert polypropylene construction; Fits 1.5 and 2.0mL centrifuge tubes; Individually wrapped; 100/Pk</td></tr><tr><td>Glycerol</td><td>Scientific Laboratory Supplies Ltd.</td><td>CHE2068</td><td>Glycerol A.R. 99.5% 2.5 L</td></tr><tr><td>Cotton wool- non absorbent</td><td>Cowens Ltd</td><td>ABL</td><td>Non Absorbent Large quantity 20 bags x 500</td></tr><tr><td>Cotton wool- absorbent</td><td>Cowens Ltd</td><td>ABS</td><td>BP small quantity 20 bags x 500</td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Fisherbrand</td><td></td><td>Whirlimixer 75W 50-6-Hz 220-240V</td></tr><tr><td>Orbital incubator</td><td>Gallenkamp</td><td>INR-200-010V</td><td>220 V, 50 Hz, 5 A. Nominal temperature: 70&amp;ordm;C. Shaking frequency: 0...400 rpm.</td></tr><tr><td>Absorbance Microplate Reader</td><td>Biotek Instruments Ltd</td><td></td><td>ELx808&amp;trade; Absorbance Microplate Reader</td></tr><tr><td>Gen 5 Microplate Reader and Imager Software</td><td>Biotek Instruments Ltd</td><td></td><td>For Absorbance Microplate Reader</td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>Beckman Coulter</td><td>392304</td><td>Allegra X-12R Benchtop Centrifuge, refridgerated 50Hz 230V</td></tr><tr><td>Step One Plus Real Time qPCR System</td><td>Thermofisher Scientific</td><td>4376600</td><td>Applied biosystems Step One Plus real time qPCR system</td></tr><tr><td>Step One Software 2.3</td><td>Thermofisher Scientific</td><td></td><td>For Stepone and SteponePlus real time qPCR systems</td></tr><tr><td>R Statistical Software</td><td>https://cran.r-project.org/</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 &amp;micro;L pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>741015</td><td>Easlyload gilson-style. Graduated, clear, refill, 960 pcs</td></tr><tr><td>200 &amp;micro;L pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>741065</td><td>Easlyload gilson-style. Graduated, clear, refill, 960 pcs</td></tr><tr><td>1000 &amp;micro;L pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>741045</td><td>Easlyload gilson-style. Graduated, clear, refill, 960 pcs</td></tr><tr><td>20 &amp;micro;L filtered pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>774288</td><td>Filter tip gilson-style. Clear, rack blue, single packed, R/Dnase free, 10 racks of 96pcs</td></tr><tr><td>200 &amp;micro;L filtered pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>739288</td><td>Filter tip gilson-style. Clear, rack blue, single packed, R/Dnase free, 10 racks of 96pcs</td></tr><tr><td>1000 &amp;micro;L filtered pipette tips</td><td>Greiner Bio-one Inc</td><td>740288</td><td>Filter tip gilson-style. Clear, rack blue, single packed, R/Dnase free, 10 racks of 60pcs</td></tr></tbody></table>

oral bacterial infection and shedding in drosophila melanogaster

אחת המערכות המפותחות דגם הטוב ביותר של זיהום, מולדת חסינות זבוב הפירות melanogaster דרוזופילה . בעוד רוב העבודה התמקדה זיהומים מערכתית, חלה עלייה לאחרונה עניין בהמנגנון של immunocompetence בטן פתוגנים, אשר דורשים שיטות להדביק אורלית זבובים. כאן אנו מציגים פרוטוקול לחשוף אורלית זבובים בודדים של פתוגן חיידקי הזדמנותית (Pseudomonas aeruginosa), פתוגן חיידקי הטבעי של ד melanogaster (Pseudomonas entomophila). המטרה של פרוטוקול זה היא כדי לספק שיטה חזקה לחשוף זבובים זכרים ונקבות למחלות אלה. אנו מספקים תוצאות נציג מציג פנוטיפים הישרדות, חיידק המון ובקטריאלי ששפך, אשר רלוונטי לצורך המחקר של הטרוגניות הפתוגן בשידור. לבסוף, אנו מאשרים מוטציות Dcy (שחסר המטריקס peritrophic מגן בתוך האפיתל הבטן), התענגת על מוטציות (שחסר שביל פונקציונלי חיסוני (IMD)), להראות רגישות מוגברת לזיהומים אוראלי חיידקי. פרוטוקול זה, לכן, מתאר שיטה חזקה כדי להדביק זבובים באמצעות תוואי אוראלי של זיהום, אשר ניתן להרחיב את המחקר של מקורות גנטיים וסביבתיים מגוון של וריאציה של תוצאות זיהום מעיים ושידור חיידקי.

כאן, אנו מציגים המחשה תוצאות של ניסויים שבהם melanogaster ד בעל פה היה נגוע בווירוס aeruginosa פ או פ entomophila. איור 2 מדגים את הזיהום אוראלי מוצלחת של הזבובים בעקבות תקופת החשיפה של 12 שעות או 24 שעות לתרבויות חיידקי של יתר600 = 25 ו-100 עבור פ aeruginosa (איור 2 א) ו- entomophila פ (איור 2B ג), בהתאמה. איור 2B ממחיש את החשיבות של שימוש תרבות מרוכז יותר של entomophila פ, שמוצג על ידי הגידול חיידקי עומס כאשר זבובים חשופים לתרבויות חיידקי של צפיפות אופטית גדולה יותר. זכריים ונקביים זבובים אורגון R (OreR) לנקות את הזיהום aeruginosa פ באותו קצב (איור 3) ושפך מספר זהה של aeruginosa פ CFUs (איור 4A). כאשר נגוע entomophila פ אולם, זבובים OreR זכר ונקבה שונים במספר של המחסן חיידקים באופן משתנה לאורך זמן (איור 4B). זכרים ונקבות למות מ פ aeruginosa (איור 5A) ו entomophila פ (איור 5B) בקצב שונה. אנו רואים כי מוטציות Dcy (שחסרה המטריקס peritrophic מגן בתוך האפיתל הבטן), ומוטנטים תבלינים (שחסרה שביל תפקודית של מערכת החיסון IMD), מראים ירידה הישרדות בעקבות aeruginosa פ entomophila פ ו אוראלי זיהום (איור 5C).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57676/57676fig1.jpg"> איור 1: סקירה סכמטי של פרוטוקולים למדידת הישרדות ששפך, טען חיידקי פנימי בעקבות זיהום אוראלי melanogaster דרוזופילה. איור 3 הניסויים פוטנציאליים בעקבות זיהום אוראלי של melanogaster ד. למדוד את 'הישרדות' על-ידי העברת הזבובים יחיד בקבוקונים והקלטה על תוחלת החיים הנגוע שלהם. למדוד "שפיכת" על-ידי העברת הזבובים יחיד 1.5 mL צינורות microcentrifuge עם 50 µL של לואיס במדיום הכיפה. לאחר 24 שעות בצינור, להסיר את הזבוב מערבולת ברכבת התחתית עם µL 100 ל- 1 x PBS. הסר, צלחת פתרון זה על אגר מזין LB כדי לחשב את שפיכת חיידקי. למדוד את שפיכת בתוך הזבוב באותו longitudinally, על ידי העברת הזבובים צינורות טריים עם לואיס במדיום הכיפה לאחר 24 שעות ביממה, ואת שטיפת יופיצ הצינור עכשיו מזוהמים. ניתן למדוד 'עומס של זבוב פנימי' על-ידי לקיחת נגוע לטוס, משטח לחיטוי אותו, homogenizing אותו לפני סוף סוף ציפוי של homogenate על אגר מזין ליברות. זה יכול להתבצע לאחר ששפך לו היה נמדד כדי לחשב כמה 'עומס פנימי' ואת שפיכת לתאם. האיור לטוס בשימוש איור זה צוירה במקור על ידי B. Nuhanen36. המחברים ששינית אותו כדי ללוות את עקומת דוגמה קפלן-מאייר אשר נלקח מתוך ויקישיתוף37. כל האיורים אחרים הם המקוריים. <a href="/files/ftp_upload/57676/57676fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57676/57676fig2.jpg"> איור 2: זיהומיות במינון של חיידקים בעקבות זיהום אוראלי. (א) מנה זיהומיות של זכר ונקבה אורגון-R זבובים בעקבות חשיפה לתרבות aeruginosa פ (OD600 = 25) במשך 12 שעות. Mean ו SE חושבו 3 זכרים, 3 נקבות. (B) מנה זיהומיות של נקבות פראי-סוג outcrossed בעקבות חשיפה של ארבע תרבויות entomophila פ (OD600 = 100, 75, 50, ו-25) או לשלוט 5% סוכרוז פתרון עבור 24 שעות. הבדל סטטיסטי של (F3,76 = 18.567, p < 0.001) במינון זיהומיות בין הטיפולים חשיפה זה מסומן על ידי אותיות שונות מעל ברים. האמצעים היו המחושב מהזבובים 5 עבור ה OD600 = 0 במינון, ו- 18-20 עבור כל מנות אחרות. (ג) המינון זיהומיות של זכר ונקבה אורגון-R זבובים בעקבות חשיפה לתרבות entomophila פ (OD600 = 100) במשך 24 שעות ביממה. Mean ו SE חושבו מתוך 20 זכרים ונקבות 20. <a href="/files/ftp_upload/57676/57676fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57676/57676fig3.jpg"> איור 3: עומס פנימי aeruginosa פ בזבובים לאחר ההדבקה דרך הפה. זאת אומרת ± SE מטען חיידקי של זכר ונקבה אורגון-R זבובים בעקבות זיהום אוראלי עם פ aeruginosa (OD600 = 25) עד 168 שעות לאחר הפגיעה. Mean ו SE של כל נקודת זמן מחושבים מאנשים 3. עומס חיידקי פנימי של זבוב משתנה באופן משמעותי לאורך זמן (p < 0.001). <a href="/files/ftp_upload/57676/57676fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57676/57676fig4.jpg"> איור 4: בקטריאלי ששפך בעקבות זיהום אוראלי. (א) פ aeruginosa לשפוך על ידי הזבובים באותו שימוש באיור 3, עד כדי 120 h לאחר הפגיעה. Mean ו SE חושבו 3 זכרים, 3 נקבות. (B) entomophila פ לשפוך על ידי זכר ונקבה אורגון-R זבובים בעקבות זיהום אוראלי עם entomophila פ (OD600 = 100) עד 120 שעות לאחר הפגיעה. Mean ו SE חושבו מתוך 34 זכרים ונקבות 38. Aeruginosa פ וגם entomophila פ, מספר CFUs הצריף על ידי זבוב משתנה באופן משמעותי לאורך זמן (p < 0.001). <a href="/files/ftp_upload/57676/57676fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57676/57676fig5.jpg"> איור 5: הישרדות של הזבובים בעקבות זיהום חיידקי הפה. קפלן-מאייר (ק מ) עקומות הישרדות של אורגון-R (א) זכר ונקבה זבובים בעקבות זיהום אוראלי עם פ aeruginosa (OD600 = 25) או לשלוט 5% סוכרוז פתרון. עקומת הישרדות ק מחושב מתוך 4 בקבוקונים. של הזבובים 20 לכל קבוצה לטיפול. (B) OreR זכר ונקבה עפה אחרי זיהום אוראלי עם entomophila פ (OD600 = 100). עקומת הישרדות ק מחושב של זבובים שליטה יחידה 4 וזבובים נגוע 34 עבור זכרים ונקבות. (ג) מערכת החיסון מוטציות: Dcy (Drosocrystallin-peritrophic מטריקס מוטציה), Rel (התבלין-IMD מוטציה), חשופים entomophila פ (Pe), פ aeruginosa (Pa14) או פתרון שליטה 5% סוכרוז. כל הקבוצות נגוע למות באופן משמעותי יותר מהר מאשר הפקד זבובים (p < 0.001). <a href="/files/ftp_upload/57676/57676fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster at JoVE.com

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

פרוטוקול זה מתאר שיטות כדי לחשוף ולהדביק את זבוב הפירות הים דרוזופילה melanogaster עם פתוגנים חיידקיים אורלית, וכדי למדוד את מספר חיידקים זיהומיות המחסן בעקבות זיהום במעיים. בהמשך נתאר את ההשפעה של החיסון מוטציות על הישרדות לעוף בעקבות זיהום חיידקי הפה.

זיהום חיידקי הפה ו Shedding ב דרוזופילה melanogaster

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the best developed model systems of infection and innate immunity. While most work has focused on systemic ...

oral-bacterial-infection-and-shedding-in-drosophila-melanogaster

Research

JoVE Journal

Biology

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

11.5K Views.  University of Edinburgh. פרוטוקול זה מתאר שיטות כדי לחשוף ולהדביק את זבוב הפירות הים דרוזופילה melanogaster עם פתוגנים חיידקיים אורלית, וכדי למדוד את מספר חיידקים זיהומיות המחסן בעקבות זיהום במעיים. בהמשך נתאר את ההשפעה של החיסון מוטציות על הישרדות לעוף בעקבות זיהום חיידקי הפה.

Video: Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

Wolbachia Bacterial Infection in Drosophila

My name is Voia Friedman. I am associate researcher at Princeton University. And today I'm going to tell you about a few protocols that I developed to trans infect, to I initially to isolate, to go back from the heli of infected flies, and later on help to inject the heli feed to unaffected flights.So basically, this is a very simple protocol to isolate him oly for basics. And you will use this device from, from mepo that contains a filter that goes on top of an E.So you basically needs to put you, we start from around a hundred flies. You anize the flies, you put them into the filter device, you can just use a funnel and that will add our other fit very easily on this device and wash it with 70%ethanol.You just take the, take the future away, you can throw away the ethanol, and then after three times your last wash you do with molecule water because you don't want have the bacteria from the, with traces of ethanol. Well, and then you just go to a new weapon door and, and then you spin down on a micro, real micro for two minutes And later on how you can inject that. He only feed do unaffected flies.So basically take a double stick tape and usually these double stick tapes have two side, one side is a sticker than the other. So leave the sticker side up because that's the side that you're gonna glue that flies on top of it. And basically you'll, the gas apparatus, if you have this light on top of it, you'll be no gas flow and the flies you wake up if they're on top of the slide.So you can just direct the flow, making a little hood, a little chamber using tape. Then you direct the gas over the flies. So then you put your, this light here with the tape and you, you have your flies.Stick the flies on the top of the tape, all of them the same orientation, and put their head towards the direction that you'll be bringing the needle from. Because then you can just over the, the wing, you make sure since they fly, you don't want to fly. If they woke up during the procedure, don't want them to go away.So make sure that you take a little tip and pressure against the, the, the wings of the fly on the tail. And it's okay if they wings get damaged. And when you get rid, when you take the flies up the injection, most likely they'll lose their wings anyway, so they'll survive.That can, that can be useful because you're not gonna lose the flies that, so he puts a mineral oil on the micrometer for the back of the needle, then the needle injection polar, and then the, you can just adjust the pressure to bring the material up to the tip of the needle. I, I did to inject Somewhere between 10 to 15 nanoliters, but as, as long, as long as I'm consistents. Okay, so one important detail there is a cushion of this experiment is that the, the fly, once the apply is being injected when you saw the needle needs to come as far as you can through the upper part of the abdomen.Because here, basically when the needle penetrates, you have a, a, a, a, a bigger space to go up and down. And basically if it's close, closer to the cuticle, it's less likely they're gonna penetrate vital organs in the flight. You, it is very likely unlikely that you're gonna punch a hole in your gut, for instance, if that is gonna kill the flight that you are performing the surgery.My name is Voia Friedman. I am associate researcher at Princeton University in the lab of Eric Hels. And today I would like to tell you about this protocol that you just saw, the demonstration.So this protocol was done because we wanted to prove that UBA is capable of crossing tissues. So UBA is one of the most successful intracellular paras on the face of the earth. Infects from 20 to 70%of insects and many particles.And also is, is very important in terms of human diseases because also infect nematodes that transmit diseases like river blindness or s and ssis. And so, and CCA is our obligatory endo in, in these worms. And there's a great, a very big interest in using CCA also as means to control parasitic diseases transmitter by mosquito and Danny and this and by mosquito such as malaria and dengue.So this, this, this protocol basically was developed to show that once CCA inside the abdominal cavity of a fly, they can cross tissues and reach the germ. So basically what you can see here is the oph of the drosophila ovary and go back once present in the he leaf it, it can cross a pink peronial. She that is around the ovary.And then they cross a muscle layer. And actually one of the first places that they, they go inside the ovary is the somatic stem cell image. And then they can reach the germline.And this bacteria is transmitted the same way that mitochondria is transmitted is through, is through the mother transmitted, through the mother cyop plants present in the egg. So of course they needs to be present into the germline. So that's why this protocol is developed.And this protocol is, can be very useful to basically traditionally the way that people would try to trans infect wbaa basically take wbaa and introduce a new insect species. It would be through doing micro injections into the, into the embryo. But those are much more complicated.And basically here we are just taking advantage of the o biology since they are capable to cross tissues and moving into the stem cell tissues from, they can pass to the, through to the germline. So that's make easier taking UBA from certain, from, from certain species of insects that are infected and they can be transmitted to uninfected species. Prob I think it's the injection itself.Basically you need to be careful to mobilize the fly as well as you can. We are using double sided stick tape and you need to penetrate the needle basically as close to the, as parallel to the fly as possible so you don't go to deep. And it's less likely that we're gonna kill the fly after they're performing the surgery.

Wolbachia זיהום חיידקי ב תסיסנית

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is a model for understanding microbial interactions with animal hosts, facilitated by approaches to rear large sample sizes of Drosophila under microorganism-free (axenic) conditions, or with defined microbial communities (gnotobiotic). This work outlines a method for collection of Drosophila embryos, hypochlorite dechorionation and sterilization, and transfer to sterile diet. Sterilized embryos are transferred to sterile diet in 50 ml centrifuge tubes, and developing larvae and adults remain free of any exogenous microbes until the vials are opened. Alternatively, flies with a defined microbiota can be reared by inoculating sterile diet and embryos with microbial species of interest. We describe the introduction of 4 bacterial species to establish a representative gnotobiotic microbiota in Drosophila. Finally, we describe approaches for confirming bacterial community composition, including testing if axenic Drosophila remain bacteria-free into adulthood.

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

A method for rearing Drosophila melanogaster under axenic and gnotobiotic conditions is presented. Fly embryos are dechorionated in sodium hypochlorite, transferred aseptically to sterile diet, and reared in closed containers. Inoculating diet and embryos with bacteria leads to gnotobiotic associations, and bacterial presence is confirmed by plating whole-body Drosophila homogenates.

גידול זבוב הפירות<em&gt; תסיסנית</em&gt; בתנאי Axenic ו Gnotobiotic

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is ...

Developmental Biology

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the premier model organisms for studying the function and evolution of immune defense. Many aspects of innate immunity are conserved between insects and mammals, and since Drosophila can readily be genetically and experimentally manipulated, they are powerful for studying immune system function and the physiological consequences of disease. The procedure demonstrated here allows infection of flies by introduction of bacteria directly into the body cavity, bypassing epithelial barriers and more passive forms of defense and allowing focus on systemic infection. The procedure includes protocols for the measuring rates of host mortality, systemic pathogen load, and degree of induction of the host immune system. This infection procedure is inexpensive, robust and quantitatively repeatable, and can be used in studies of functional genetics, evolutionary life history, and physiology.

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Drosophila melanogaster is an outstanding model organism for studying innate immune systems and the physiological consequences of infection and disease. This protocol describes how to deliver robust and quantitatively repeatable bacterial infections to D. melanogaster, and how to subsequently measure infection severity and quantify the host immune response.

זיהום חיידקים מערכתי וחיסון ביטחון פנוטיפים ב<em&gt; דרוזופילה melanogaster</em

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the premier model organisms for studying the function and evolution of immune defense. Many aspects of ...

Immunology and Infection

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

During the pathogenic infection of Drosophila melanogaster, hemocytes play an important role in the immune response throughout the infection. Thus, the goal of this protocol is to develop a method to visualize the pathogen invasion in a specific immune compartment of flies, namely hemocytes. Using the method presented here, up to 3 &#215; 106 live hemocytes can be obtained from 200 Drosophila 3rd instar larvae in 30 min for ex vivo infection. Alternatively, hemocytes can be infected in vivo through injection of 3rd instar larvae followed by hemocyte extraction up to 24 h post-infection. These infected primary cells were fixed, stained, and imaged using confocal microscopy. Then, 3D representations were generated from the images to definitively show pathogen invasion. Additionally, high-quality RNA for qRT-PCR can be obtained for the detection of pathogen mRNA following infection, and sufficient protein can be extracted from these cells for Western blot analysis. Taken together, we present a method for definite reconciliation of pathogen invasion and confirmation of infection using bacterial and viral pathogen types and an efficient method for hemocyte extraction to obtain enough live hemocytes from Drosophila larvae for ex vivo and in vivo infection experiments.

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

This method demonstrates how to visualize pathogen invasion into insect cells with three-dimensional (3D) models. Hemocytes from Drosophila larvae were infected with viral or bacterial pathogens, either ex vivo or in vivo. Infected hemocytes were then fixed and stained for imaging with a confocal microscope and subsequent 3D cellular reconstruction.

החילוץ של Hemocytes של הזחלים דרוזופילה melanogaster זיהום מיקרוביאלי וניתוח

During the pathogenic infection of Drosophila melanogaster, hemocytes play an important role in the immune response throughout the infection. Thus, the ...

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our knowledge of prevention and treatment of viral infection. The fruit fly Drosophila melanogaster has proven to be one of the most efficient and productive model organisms to screen for antiviral factors and investigate virus-host interaction, due to powerful genetic tools and highly conserved innate immune signaling pathways. The procedure described here demonstrates a nano-injection method to establish viral infection and induce systemic antiviral responses in adult flies. The precise control of the viral injection dose in this method enables high experimental reproducibility. Protocols described in this study include the preparation of flies and the virus, the injection method, survival rate analysis, the virus load measurement, and an antiviral pathway assessment. The influence effects of viral infection by the flies' background were mentioned here. This infection method is easy to perform and quantitatively repeatable; it can be applied to screen for host/viral factors involved in virus-host interaction and to dissect the crosstalk between innate immune signaling and other biological pathways in response to viral infection.

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

This protocol describes how to establish viral infection in vivo in Drosophila melanogaster using the nano-injection method and basic techniques to analyze virus-host interaction.

הקמתה של זיהום נגיפי וניתוח של התערבות מארח-וירוס דרוזופילה Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our ...

Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

In all animals, innate immunity provides an immediate and robust defense against a broad spectrum of pathogens. Humoral and cellular immune responses are the main branches of innate immunity, and many of the factors regulating these responses are evolutionarily conserved between invertebrates and mammals. Phagocytosis, the central component of cellular innate immunity, is carried out by specialized blood cells of the immune system. The fruit fly, Drosophila melanogaster, has emerged as a powerful genetic model to investigate the molecular mechanisms and physiological impacts of phagocytosis in whole animals. Here we demonstrate an injection-based in vivo phagocytosis assay to quantify the particle uptake and destruction by Drosophila blood cells, hemocytes. The procedure allows researchers to precisely control the particle concentration and dose, making it possible to obtain highly reproducible results in a short amount of time. The experiment is quantitative, easy to perform, and can be applied to screen for host factors that influence pathogen recognition, uptake, and clearance.

Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

This protocol describes an in vivo phagocytosis assay in adult Drosophila melanogaster to quantify phagocyte recognition and clearance of microbial infections.

הערכת התגובה החיסונית הסלולר של זבוב הפירות, דרוזופילה melanogaster, שימוש ב Vivo Phagocytosis Assay

In all animals, innate immunity provides an immediate and robust defense against a broad spectrum of pathogens. Humoral and cellular immune responses are ...

Drosophila melanogaster Larva Injection Protocol

The use of unconventional models to study innate immunity and pathogen virulence provides a valuable alternative to mammalian models, which can be costly and raise ethical issues. Unconventional models are notoriously cheap, easy to handle and culture, and do not take much space. They are genetically amenable and possess complete genome sequences, and their use presents no ethical considerations. The fruit fly Drosophila melanogaster, for instance, has provided great insights into a variety of behavior, development, metabolism, and immunity research. More specifically, D. melanogaster adult flies and larvae possess several innate defense reactions that are shared with vertebrate animals. The mechanisms regulating immune responses have been mostly revealed through genetic and molecular studies in the D. melanogaster model. Here a novel larval injection technique is provided, which will further promote investigations of innate immune processes in D. melanogaster larvae and explore the pathogenesis of a wide range of microbial infections.

Drosophila melanogaster Larva Injection Protocol

Drosophila melanogaster adult flies have been extensively utilized as model organisms to investigate the molecular mechanisms underlying host antimicrobial innate immune responses and microbial infection strategies. To promote the D. melanogaster larva stage as an additional or alternative model system, a larval injection technique is described.

Drosophila melanogaster פרוטוקול הזרקת זחלים

The use of unconventional models to study innate immunity and pathogen virulence provides a valuable alternative to mammalian models, which can be costly ...

Infecting Flies with Bacterial Suspension Using a Nanoinjector

Source: Khalil, S. et al., <a href="https://app.jove.com/v/52613">Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160; (2015)
This video demonstrates the nano-injection of bacterial suspension into the fly body cavity, resulting in bacterial multiplication and infection. The fly&#39;s immune response clears some bacteria, while others escape immune clearance and survive within the host causing an infection.

הדבקת זבובים בתרחיף חיידקי באמצעות ננו-מזרק

Source: Khalil, S. et al., Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.&#160;J. Vis. Exp.&#160; (2015)
This ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Immunology

Immune Response

Host-Pathogen Interaction

A Septic Pinprick Technique to Introduce Systemic Bacterial Infection in Flies

Source: Khalil, S., et al. <a href="https://app.jove.com/v/52613">Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.</a> J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates a technique to infect Drosophila by introducing a pathogenic bacteria directly into their body cavity. This method bypasses epithelial barriers and other passive defense mechanisms, allowing for the induction of systemic infection. Upon infection, the resulting immune response is assessed by monitoring fly mortality and performing downstream assays.

טכניקת דקירה ספטית להחדרת זיהום חיידקי מערכתי בזבובים

Source: Khalil, S., et al. Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster. J. Vis. Exp. (2015)
This video ...

Measuring E. coli Bacterial Load in Drosophila melanogaster following E. coli Infection

Source: Khalil, S., et al. <a href="https://app.jove.com/v/52613">Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.</a> J. Vis. Exp. &#160;(2015)
In this video, we demonstrate a technique for measuring the E. coli bacterial load after injecting E. coli into the thorax of Drosophila melanogaster.

מדידת עומס חיידקי E. coli ב- Drosophila melanogaster בעקבות זיהום E. coli

Source: Khalil, S., et al. Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster. J. Vis. Exp. &#160;(2015)
In this video, ...

זיהום חיידקי הפה ו Shedding ב דרוזופילה melanogaster

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video