הטכניקה שלנו מתאימה לסוגים שונים של ניסויים אך מודל העכבר שלנו נדרש להאכלת קרציות ויש צורך לשמור את הקרציות באזור סגור לאיסוף וניטור קלים. היתרון של שיטה פשוטה זו הוא יעילות, משך זמן קצר, ואת היכולת לפקח או לאסוף קרציות בנקודות זמן שונות של ניסוי. המערכת שלנו מתאימה לחקר ביולוגיה של קרציות, אינטראקציות פתוגן וקטור מארח או הערכת מדדי בקרה שונים של פרוקי רגליים חשובים מבחינה רפואית אלה.
שיטה זו דורשת דיוק ותשומת לב לפרטים הקטנים כתוצאה מקטנת לא בוגרת, והאכלתם בעכברים מחייבת את הקפסולה המצורפת להיות מחוברת היטב לעכבר במשך מספר ימים. התחל על ידי דבק יחד קצף EVA שני מילימטר, קצף דבק כפול דביק. השתמש ניקוב חור עור בקוטר 20 מ"מ כדי לחתוך עיגול חתיכות קצף.
לאחר מכן, השתמש ניקוב חור 12 מילימטר לחתוך את הפנים. מקלפים את רצועת הנייר המגן מהקצף הדביק הכפול הדביק ומצמידים עיגול פלסטיק שקוף באורך 20 מ"מ לקצף. אם מאכילים זחלים, אין להסיר את רצועת הנייר המגן מקצף ההיצמדות ולהמשיך ישירות עם חיבור הקפסולה.
הפוך חתך סנטימטר אחד בפלסטיק שקוף ולאחר מכן להשתמש סיכה אנטומולוגית כדי ליצור לפחות 10 חורים קטנים עבור אידוי לחות במהלך הניסוי. לאחר שהעכבר כבר הרדמה למקם אותו על כרית מניפולציה ולצרף חרוט האף עבור אספקה isoflurane מתמשך. ודא כי קצב הנשימה הוא פחות מ 80 נשימות לדקה על ידי התאמת רמת isoflurane.
לגלח את החלק האחורי של העכבר מאחורי השכמות עד לאזור ממש מאחורי האוזניים יצירת אזור מגולח כי הוא גדול יותר משטח הקפסולה. החל דבק לטקס לא מעצבן על כל אתר קצף EVA של הקפסולה ולחכות דקה אחת. מניחים את הקפסולה על גב העכבר ומפעילים לחץ מתמיד במשך שלוש דקות במיוחד בצד שמאל ויימין של הקפסולה.
הרם מעט את הקפסולה כדי לבדוק באופן חזותי את ההחזקה שלה לעור. כדי להבטיח את ההחזקה המשרדית של הקפסולה להחיל לחץ קבוע קל שלוש דקות עם האצבעות במיוחד בצד שמאל ויימין של הקפסולה. אם נמצאים אזורים שאינם מחוברים, יש למרוח יותר דבק עם מרית וללחוץ במשך שלוש דקות נוספות.
אם אזור שאינו קובץ מצורף נוצר במהלך הניסוי, תקן אותו באותו אופן. מכניסים נימפות בודדות לתוך הקפסולה דרך חריץ סנטימטר אחד. לסחוט מעט את הקפסולה משני צדדים כדי לאפשר לפלסטיק השקוף להתכופף ואז לדחוף את הנימפה בתוך הקפסולה.
סובב את המדפים ב-90 מעלות ומשוך אותם החוצה. עבור התפשטות זחלים, להסיר את החלקת הנייר מן הקפסולה המצורפת מניחים את המזרק עם הזחלים ישירות בפנים. להפקיד את הקרציות על ידי דחיפת הבוכנה מזרק ואז בעדינות להפוך את הבוכנה לכיוון העור כדי להסיר את הזחלים המחוברים הנותרים.
לאחר הזחלים מופקדים על העור לסגור את הקפסולה על ידי חיבור עיגול פלסטיק שקוף. חותכים רצועה 3.5 מילימטר של רצועת פלסטיק מגן ולהחיל את רצועת פלסטיק מגן סביב הקפסולה ואז להחזיר את העכבר לכלוב. כדי לאסוף את הקרציות, ליצור חתך בצורת צלב בפלסטיק עם אזמל ולהשתמש מדפים כדי לאסוף את הקרציות.
במידת הצורך, יש לבודד את הקפסולה על ידי דבק טלאי פלסטיק דבק על הפלסטיק השקוף. ניתן להשתמש באותו תיקון פלסטיק אם נדרש אוסף של קרציות בנקודות זמן מרובות. לחלופין, העכבר יכול להיות המתת לחץ ואת הקרציות שנאספו או מנותק באופן ידני לאחר הסרת כמוסה.
להתאוששות מוצלחת של העכברים, שמור אותם בכלוב לשבוע נוסף ותן לקפסולות להתנתק באופן טבעי. לאחר הקפסולה כבויה, לבדוק תגובות חריגות על העור. יש למרוח כל גירוי אם יש גירוי כלשהו.
פרוטוקול זה מאפשר להאכיל קרציות קשות לא בוגרות בכמוסות קצף EVA המוחלות על גב העכבר. השימוש בדבק לטקס מהיר ולא מעצבן מבטיח כי הקפסולה מחוברת היטב תוך שלוש דקות ונשארת מחוברת לפחות שבעה ימים. הצמדת שתי כמוסות מאפשרת להאכיל שתי קבוצות שונות של קרציות על אותה חיה.
יתר על כן, התאוששות מלאה של העכברים לאחר הניסויים, מאפשר לעשות שימוש חוזר בבעלי החיים ולהימנע המתת חסד. מערכת זו שימשה בהצלחה כדי להאכיל את נימפות ריצינוס Ixodes. שיעור הצלחה בינוני עד גבוה הושג בשני זנים שונים של עכברים.
בשני הזנים, כל הנימפות סיימו את ההאכלה בתוך ארבעה עד חמישה ימים בעוד הרוב ירד ביום הרביעי. בעת ניסיון פרוטוקול זה, חשוב לגלח שטח מספיק של העור של העכבר ביעילות לחבר את הקפסולה, כדי למנוע ניתוק מקרי שלה במהלך הניסוי. מלבד המחקר של ביולוגיה בסיסית של קרציות, שיטה זו יכולה לשמש כדי לחקור העברת פתוגן מתקתק למארח או מארח לקרציות.
בנוסף, האפשרות לעשות שימוש חוזר בעכבר מציעה אפשרות להתפשטות חוזרת מרובה שיכולה להועיל למחקרים אימונולוגיים או לחקירת שידורי פתוגן שונים המועברים בקרציות.
