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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

La purezza e l'integrità dell'RNA isolato è un passo vitale nei saggi dipendenti dall'RNA. Qui, presentiamo un metodo pratico, rapido ed economico per estrarre l'RNA da una piccola quantità di tessuto pancreatico non danneggiato.

Abstract

Indipendentemente dal metodo di estrazione, l'estrazione ottimizzata dell'RNA dei tessuti e delle linee cellulari viene effettuata in quattro fasi: 1) omogeneizzazione, 2) denaturazione efficace delle proteine da RNA, 3) inattivazione della ribonuclea e 4) rimozione della contaminazione da DNA, proteine e carboidrati. Tuttavia, è molto laborioso mantenere l'integrità dell'RNA quando ci sono alti livelli di RNase nel tessuto. L'autolisi spontanea rende molto difficile estrarre l'RNA dal tessuto pancreatico senza danneggiarlo. Pertanto, è necessario un metodo pratico di estrazione dell'RNA per mantenere l'integrità dei tessuti pancreatici durante il processo di estrazione. Uno studio sperimentale e comparativo dei protocolli esistenti è stato effettuato ottenendo 20-30 mg di tessuti pancreatici di ratto in meno di 2 minuti ed estraendo l'RNA. I risultati sono stati valutati per elettroforesi. Gli esperimenti sono stati effettuati tre volte per la generalizzazione dei risultati. Immergere il tessuto pancreatico nel reagente di stabilizzazione dell'RNA a -80 gradi centigradi per 24 h ha prodotto RNA ad alta integrità, quando il reagente di estrazione dell'RNA è stato utilizzato come reagente. I risultati ottenuti sono stati paragonabili ai risultati ottenuti da kit commerciali con attacchi di colonna di spin.

Introduzione

I dati genetici strutturali possono essere trascritti in un prodotto funzionale attraverso l'espressione genica. L'analisi dell'RNA viene utilizzata per scoprire le differenze nell'espressione genica in diverse condizioni. Ci sono una serie di metodi per estrarre gli acidi nucleici come segue: guanidinium thiocyanate, estrazione tramite fenolo-cloroformio, cromatografia a base di cellulosa, estrazione da matrici di silice e scambio dianioni 1,2.

La corretta rilevazione dell'espressione genica è influenzata dall'integrità dell'RNA isolato dai tessuti; pertanto, è fondamentale valutare l'integrità dell'RNA isolato dai tessuti prima che vengono effettuati ulteriori test perché test molecolari complementari su RNA di bassa qualità possono compromettere i risultati dell'applicazione diagnostica. Pertanto, l'RNA ad alta integrità è necessario per i test biologici molecolari con diverse applicazioni diagnostiche: RT-PCR quantitativo, micro-array, analisi della protezione della ribonucleasi, analisi delle macchie settentrionali, mappatura dell'RNA e costruzione della libreria cDNA3,4.

L'RNA diventa piuttosto instabile dopo essere stato tenuto a lungo. Frammenti di mRNA lunghi oltre 10 kb sono particolarmente suscettibili alla degradazione5,6. Pertanto, i ricercatori devono considerare vari fattori che influenzano l'integrità dell'RNA purificato. La purezza dell'RNA deve essere protetta da RNases, proteine, DNA genomico e contaminazione da inibitori enzimatici. Inoltre, il miglior e accettabile rapporto di assorbimento tra RNA e UV (260/280) deve essere compreso nell'intervallo di 1,8-2,0 con frammentazione minima sull'elettroforesi. Tecniche di laboratorio sviluppate di recente hanno permesso agli scienziati di valutare l'integrità del campione di analisi molecolarepiù praticamente 7,8.

È molto più difficile estrarre l'RNA non danneggiato dal tessuto pancreatico rispetto ad altri tipi di tessuti a causa dell'elevata quantità di ribonucleasi (RNases). Tuttavia, i metodi di estrazione esistenti, vale a dire la rapida espulsione del tessuto pancreatico dalla cavità addominale e l'omogeneizzazione a basse temperature per ostacolare le RNases, si sono dimostrati inefficaci7,8,9,10,11,12,13,14.

Lo scopo dell'attuale studio sperimentale comparativo è quello di modificare e confrontare i metodi esistenti per determinare i metodi più efficienti. A tal fine, vari protocolli di estrazione dell'RNA sono stati modificati e confrontati. Era specificamente finalizzato a determinare il metodo meno costoso che richiede una quantità minima di tessuto pancreatico.

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Protocollo

L'approvazione etica per questo studio è stata ottenuta dalla Shiraz University of Medical Sciences (numero di approvazione: 93-01-01-7178-03-07-2014).

NOTA: Utilizzare ratti maschi Sprague-Dawley del peso di 250 g. Posizionare la fiala contenente una scheggia di tessuto pancreatico immerso nel reagente stabilizzante dell'RNA in un serbatoio di azoto liquido a -80 gradi centigradi e utilizzare la soluzione del reagente di estrazione dell'RNA per mantenere l'integrità dell'RNA.

1. Rimozione del tessuto pancreatico ratto

  1. Preparare la sala operatoria e posizionare tutti i materiali necessari sotto il cofano.
  2. Sterilizzare tutti gli strumenti chirurgici (dressing forceps, forceps Brown-Adson, forbici Iris e forbici Littler) in forno per almeno 4 h a 240 gradi centigradi per inattivare RNases15. Sterilizzare la superficie del luogo di chirurgia con 70% di alcol sotto il cofano.
  3. Iniettare chetamina/xylazina intraperitonealmente utilizzando una siringa insulina [80/8 mg/kg]. Controllare la profondità dell'anestesia pizzicando le dita dei piedi del ratto per una mancanza di risposta.
  4. Aggiungere 1 mL di reagente di stabilizzazione dell'RNA nel microtubo corretto (2 mL) per inibire l'attivazione delle endonucleasi nei tessuti azizzati.
  5. Posizionare immediatamente il ratto sulla tavola chirurgica (allontanarsi dal chirurgo) per un'incisione a media linea.
  6. Sterilizzare l'intera superficie addominale con il 70% di alcol e rimuovere i capelli di ratto utilizzando un tagliacapello con #40 lame.
  7. Fai un'incisione a forma di V per aprire l'addome dall'area pubica alle zampe anteriori con le forbici Dressing, le forcepi Brown-Adson, le forbici Iris e le forbici Littler.
  8. Capovolgere gli organi addominali sul lato sinistro per esporre il pancreas. Trova con attenzione il tessuto pancreatico, che si diffonde nella cavità addominale. Individuare l'area sotto la milza per trovare il pancreas senza essere confuso con il tessuto adiposo.
  9. Rimuovere immediatamente 20-30 mg di pancreas dalla cavità addominale in meno di 2 min. Mettere rapidamente il tessuto rimosso nel microtubo da 2 mL e tagliarlo con una fresa sterile per penetrare i tessuti separati con il reagente di stabilizzazione dell'RNA.
  10. Posizionare il microtubo in un serbatoio di azoto per congelare immediatamente. Conservare il microtubo in un congelatore a -80 gradi centigradi per 24 h16.
  11. Dopo 24 h, trasferire i piccoli pezzi di tessuti pancreatici in un contenitore di ghiaccio.
  12. Iniettare cloruro di potassio (KCl) intracardially per l'eutanasia dei ratti dopo l'intervento chirurgico.

2. Estrazione dell'RNA

  1. Sterilizzare la superficie sotto il cofano con 70% di alcol.
  2. Mettere 1 mL del reagente di estrazione dell'RNA, che contiene il diocianio di guanidinio per inibire RNase, nel microtubo sterile.
  3. Trasferire il tessuto pancreatico separato nel microtubo. Trasferire il microtubo nell'azoto liquido per congelare immediatamente.
  4. Omogeneizzare il tessuto con il sonicatore della sonda a micro punta a 4 gradi centigradi impostato al livello 20 per 60 s on e 5 s off.
  5. Incubare ogni campione omogeneizzato per 5 minuti a 4 gradi centigradi utilizzando ghiaccio tritato per consentire ai complessi di nucleoproteina di essere completamente dissociati.
  6. Arricchire i campioni con 0,2 mL di cloroformio per ogni 1 mL di reagente di estrazione dell'RNA. Stringere saldamente il tubo e agitarlo con forza per 15 s.
  7. Incubare il tubo per 15 minuti sul ghiaccio tritato (4 gradi centigradi) per separare il reagente in tre fasi.
  8. Eseguire la centrifuga a 12.000 x g per 15 min a 2 -8 . Trasferire la fase aques incolore in un nuovo microtubo.
  9. Aggiungere 0,5 mL del 100% isopropanolo alla fase aque. Chiudere il tubo e invertire almeno 3 volte per mescolare accuratamente l'RNA.
  10. Incubare il campione per 5-10 min su una scatola fredda (4 gradi centigradi) per consentire la precipitazione dell'RNA.
  11. Eseguire la centrifuga a 12.000 x g per 15 min a 2 -8 . Scarta il supernatant.
  12. Arricchire ciascuno dei tubi centrifuga con 1 mL del 75% di etanolo.
  13. Lavare il pellet dell'RNA invertendo il tubo almeno 3 volte.
  14. Eseguire la centrifuga a 7.500 x g a 2-8 dollari per 5 min. Scartare il supernatant per rimuovere l'etanolo in eccesso dal pellet dell'RNA mediante l'essiccazione dell'aria.
  15. Sospendere nuovamente il pellet di RNA in acqua libera da diethylpyrocarbonate (DEPC) trattata senza RNase.
  16. Passare la soluzione attraverso una punta di pipetta più volte per sciogliere il pellet di RNA. Quindi, incubare la soluzione per 10-15 min a 65 dollari.

3. Valutazione dell'integrità dell'RNA con elettroforesi denaturazione

  1. Preparare il buffer di esecuzione del gel: 50 mM NaAc (DEPC trattato) e 0,5 M EDTA (pH 8.0) in H2O trattato da DEPC.
  2. Preparare 5x formaldeide gel-running buffer (buffer di esecuzione MOPS): 0,1 M MOPS (pH 7.0), 40 mM NaAc, 5 mM EDTA (pH 8.0).
    1. Sciogliere 20,6 g di MOPS in 800 mL di DEPC trattati con acetato di sodio da 50 mM. Regolare il pH a 7,0 con 2 N NaOH. Aggiungere 10 mL di DEPC-trattato 0.5 M EDTA (pH 8.0). Regolare il volume della soluzione a 1 L con acqua trattata DEPC.
    2. Filtrare la soluzione attraverso un filtro da 0,2 m e tenerla a temperatura ambiente lontano dalla luce per motivi di sterilizzazione. Il buffer diventa giallo con il tempo se è esposto alla luce o è autoclaved. Un buffer color paglia funziona bene, ma quelli più scuri non17.
  3. Preparare un gel di agarose18. Per 50 mL, aggiungere 0,75 g di agarose e 31 mL di H2O. Microonde la soluzione nel microonde per 1 min. Aggiungere 9 mL di formaldeide e 10 mL di buffer in esecuzione MOPS 5x.
  4. Preparare i campioni per il gel. Mescolare quanto segue in un tubo di microfugio sterile:
    RNA X L (fino a 30 g)
    2 L di buffer di caricamento gel 5x
    10 L di formamide
    4 L di buffer di esecuzione MOPS
    1 L di 0,1 mg/mL EtBr
    3 L di formaldeide 5-x L di DEPC-H2O
  5. Incubare i campioni a 65 gradi centigradi per 15 minuti e raffreddarli sul ghiaccio. Centrifuga per 5 s fino a quando tutto il fluido viene depositato.
  6. Pre-eseguire il gel a 5 V/cm per 5 minuti.
  7. Caricare immediatamente i campioni nelle corsie del gel e poi immergere il gel in un tampone di gel di formaldeide 1x. Eseguire a 3-4 V/cm19.

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Risultati

Valutazione dell'integrità dell'RNA nel reagente di estrazione dell'RNA secondo un protocollo chirurgico di routine e modificato senza reagente di stabilizzazione dell'RNA
Dopo l'estrazione dell'RNA sono state osservate bande inaccettabili con il reagente di estrazione dell'RNA da un protocollo chirurgico di routine. La corsia 1 mostra l'RNA dal fegato come controllo. La corsia 2 mostra lo stato degradato delle bande di rRNA 28S/18S nell'RNA totale ottenuto da un protocollo chirurgico di routine. Qua...

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Discussione

Nella biologia molecolare è fondamentale ottenere RNA di alta qualità. La presenza degli enzimi ribonucleasi nelle cellule e nei tessuti degrada rapidamente l'RNA e rende l'estrazione complessa. Le rule sono enzimi stabili che funzionano senza co-fattori. Piccole quantità di RNase sono adeguate per distruggere l'RNA. Quando il tessuto pancreatico del ratto viene rimosso dalla cavità addominale, è necessario disinfettare gli strumenti chirurgici con detergenti forti, sciacquarli accuratamente e metterli in forno per ...

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Divulgazioni

Nessuno dichiarato.

Riconoscimenti

Il presente studio è stato sostenuto finanziariamente dalla Shiraz University of Medical Sciences (Grant No. Ringraziamo il Sig. Eomorodian e il Sig. Rostami presso il Dipartimento di e-Learning in Scienze Mediche, Scuola Virtuale e Centro di Eccellenza in e-Learning, Università di Scienze Mediche di Shiraz per la modifica del video.

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Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
AgaroseMerck116801Germany
AtoclaveTeb ZaimIran
CentrifugeSigmaGermany
ChloroformMerck107024Germany
Diethylpyrocarbonate (DEPC)-treated waterSigmaGermany
EDTAsigma60-00-4Germany
Electrophoresis tankPayapajooheshIran
Eppendorf microTubeExtrageneTaiwan
EtBrsigmaE 8751Germany
EthanolMerck81870Germany
Falcon TubeExtrageneTaiwan
FormaldehydeMerck344198Germany
FormamideMerck344206Germany
Homogenizer-sunicatorMicroson XL 2000USA
Isopropanolsigma19516Germany
Ketamine hydrochloridesigma1867-66-9Germany
Laminar Flow HoodJal TajhizIran
Mgnetic stirrerLabrotechnikUSA
MicrocentrifugeEppendorfGermany
Micropipette TipsExtrageneTaiwan
MOPSsigma85022106Germany
Na ACMerck567422Germany
NaOHMerck109137Germany
OvenTeb ZaimIran
PH meterKnickGermany
RNA Later/RNA stabilization reagentQiagen76104USA
Surgical instrumentAgn ThosGerman made
SyringesAvaPezeshkIran
TriPure reagent/RNA extraction reagentRoche11667157001USA
VortexLabincoNetherland
Water bathMemmertGermany
zylazinesigma7361-61-7Germany

Riferimenti

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