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L'integrazione di diversi input sinaptici ai neuroni è meglio misurata in una preparazione che preserva tutti i nuclei pre-sinaptici per la tempismo naturale e la plasticità del circuito, ma le fette cerebrali in genere tagliano molte connessioni. Abbiamo sviluppato una fetta cerebrale modificata per imitare l'attività del circuito in vivo mantenendo la capacità di sperimentazione in vitro.
Le tecniche di elettrofisiologia a fette in vitro misurano l'attività a singola cellula con una precisa risoluzione elettrica e temporale. Le fette cerebrali devono essere relativamente sottili per visualizzare e accedere correttamente ai neuroni per il bloccaggio delle patch o l'imaging, e l'esame in vitro dei circuiti cerebrali è limitato solo a ciò che è fisicamente presente nella fetta acuta. Per mantenere i benefici della sperimentazione di fette in vitro preservando una porzione maggiore di nuclei presnaptici, abbiamo sviluppato una nuova preparazione di fette. Questa "fetta di cuneo" è stata progettata per le registrazioni di elettrofisiologia patch-clamp per caratterizzare i diversi input monaurali e sound-driven ai neuroni olivocochlear mediali (MOC) nel tronco encefalico. Questi neuroni ricevono i loro input eccitatori e inibitori afferenti primari dai neuroni attivati dagli stimoli nell'orecchio contralaterale e dal corrispondente nucleo cocleare (CN). È stata progettata una fetta cerebrale asimmetrica che è più spessa nel dominio rostro-caudale sul bordo laterale di un emisfero e poi si assottiglia verso il bordo laterale dell'emisfero opposto. Questa fetta contiene, sul lato spesso, la radice nervosa uditiva che trasmette informazioni sugli stimoli uditivi al cervello, sui circuiti NC intrinseci e sia sulle vie afferenti inibitorie disinaptiche che trisintottiche che convergono sui neuroni MOC contralaterali. La registrazione viene eseguita dai neuroni MOC sul lato sottile della fetta, dove vengono visualizzati utilizzando l'ottica DIC per tipici esperimenti patch-clamp. La stimolazione diretta del nervo uditivo viene eseguita mentre entra nel tronco uditivo, consentendo l'attività intrinseca del circuito CN e la plasticità sinaptica a sinapsi a monte dei neuroni MOC. Con questa tecnica, si può imitare l'attivazione del circuito in vivo il più vicino possibile all'interno della fetta. Questa preparazione della fetta di cuneo è applicabile ad altri circuiti cerebrali in cui le analisi dei circuiti beneficeranno della conservazione della connettività a monte e degli input a lungo raggio, in combinazione con i vantaggi tecnici della fisiologia delle fette in vitro.
L'osservazione dell'attività dei circuiti neurali viene eseguita idealmente con input sensoriali e feedback nativi e connettività intatta tra le regioni cerebrali, in vivo. Tuttavia, l'esecuzione di esperimenti che danno una risoluzione a una cellula della funzione del circuito neurale è ancora limitata da sfide tecniche nel cervello intatto. Mentre l'elettrofisiologia extracellulare in vivo o i metodi di imaging multifotonica possono essere utilizzati per studiare l'attività in sistemi nervosi intatti, interpretare come diversi input integrino o misurino gli input sinaptici sottosoglie rimane difficile. Le registrazioni intere cellulari in vivo superano questi limiti....
Tutte le procedure sperimentali sono state approvate dal National Institute of Neurological Disorders and Stroke/National Institute on Deafness and Other Communication Disorders Animal Care and Use Committee.
1. Preparazioni sperimentali
NOTA: I dettagli relativi alla preparazione delle fette, tra cui la soluzione di affettare, la temperatura di affezione, la temperatura e l'apparato di incubazione delle fette (ecc.) sono specifici per la preparazione del tronco encefalico eseguita in questo esperimento. I dettagli dell'incubazione delle fette possono essere modificati per esperienza di laboratorio.
Esame istologico della fetta di cuneo
Per la nostra indagine sulla funzione neuronale del tronco encefalico uditivo, la preparazione della fetta di cuneo è stata progettata per contenere la radice nervosa uditivo e il contralaterale CN ai neuroni MOC destinati alle registrazioni (fetta di esempio mostrata nella figura 1B). L'esame istologico iniziale del preparato è importante per confermare che la fetta contiene i nuclei necessari per l'attivazione del circuito e che l.......
La procedura di affettare qui descritta come una fetta di cuneo è potente per mantenere intatti circuiti neuronali presnaptici, ma con l'accessibilità della sperimentazione della fetta cerebrale per l'analisi della funzione neuronale. Occorre fare molta attenzione in diversi passaggi iniziali al fine di massimizzare l'utilità della preparazione per l'analisi del circuito. Le dimensioni del cuneo devono essere confermate mediante esame istologico, che è parte integrante della conferma che sia i nuclei presnaptici che .......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Questa ricerca è stata supportata dal Programma di ricerca intramurale del NIH, NIDCD, Z01 DC000091 (CJCW).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Experimental Preparations | |||
Agar, powder | Fisher Scientific | BP1423500 | 4% agar block used to stabilize brain tissue during vibratome sectioning |
AlexaFluor Hydrazide 488 | Invitrogen | A10436 | Fluorophore used in internal solution to confirm successful MOC neuron patch |
Analytical Balance | Geneses Scientific (Intramalls) | AV114 | Weighing chemicals |
Double edged razor blade | Ted Pella | 121-6 | Vibratome cutting blade |
Kynurenic acid (5g) | Sigma Aldrich | K3375-5G | Slicing ACSF additive used to reduce neuron activity during dissection and slicing in order to improve tissue health for patch clamping |
pH Meter | Fisher Scientific (Intramalls) | 13-620-451 | Solution pH tester |
Plastic petri dishes 100mm dia X 20mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556-002 | 4% Agar Prep |
Stirring Hotplate | Fisher Scientific (Intramalls) | 11-500-150 | Heating for 4% Agar preparation |
Dissection and Slicing | |||
Biocytin | Sigma Aldrich | B4261-250MG | Chemical used for axonal tracing (conjugated to Streptavidin 488) |
Dissecting Microscope | Amscope | SM-1BN | For precision dissection during brain removal |
Dumont #5 Forceps | Fine Science Tools | 11252-20 | Fine forceps dissection tool |
Economy tweezers #3 | WPI | 501976 | Forceps dissection tool |
Glass Petri Dish 150mm dia x 15mm H | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-747E | Dissection dish |
Interface paper (203 X 254mm PCTE Membrane 10um) | Thomas Scientific | 1220823 | Slice incubation/biocytin application |
Leica VT1200S Vibratome | Leica | 1491200S001 | Vibratome for wedge slice sectioning |
Mayo scissors | Roboz | RS-6872 | Dissection tool |
Single-edged carbon steel blades | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-640 | Razor blade for dissection |
Specimen disc, orienting | Leica | 14048142068 | Specialized vibratome stage for reproducible tilting |
Spoonula | FisherSci | 14-375-10 | Dissection tool |
Super Glue | Newegg | 15187 | Used for glueing tissue to vibratome stage |
Vannas Spring Scissors | Fine Science Tools | 91500-09 | Dissection tool |
Electrophysiology | |||
A1R Upright Confocal Microscope | Nikon Instruments | Electrophysiology and imaging microscope, can be any microscope compatible with electrophysiology | |
Electrode Borosilicate glass w/ Filament OD 1.5mm, ID 1.1mm, 10 cm long | Sutter Instrument | BF150-110-10 | Patch clamping pipette glass |
Electrode Filler MicroFil | WPI | CMF20G | Patch electrode pipette filler |
In-line solution heater | Warner Instruments (GSAdvantage) | SH-27B | Slice perfusion system heater |
Multi-Micromanipulator Systems | Sutter Intruments | MPC-200 with MP285 | Micromanipulators for patch clamp and stimulation electrode placement |
P-1000 horizontal pipette puller for glass micropipettes | Sutter instruments | FG-P1000 | Patch clamp pipetter puller |
Patch-clamp amplifier and Software | HEKA | EPC-10 / Patchmaster Next | Can be any amplifier/software |
Recording Chamber | Warner Instruments | RC26G | Slice "bath" during recording |
Recording Chamber Harp | Warner Instruments | 640253 | Stablizes slice during electrophysiology recording |
Slice Incubation Chamber | Custom Build | Heated, oxygenated holding chamber for slices during recovery after slicing | |
Stimulus isolation unit | A.M.P.I. | Iso-Flex | Stimulus isolation unit for electrophysiology |
Syringe 60CC | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-820-11 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Temperature controller | Warner Instruments (GSAdvantage) | TC-324C | Slice perfusion system temperature controller |
Tubing 1/8 OD 1/16 ID | Fischer Scientific (Intramalls) | 14-171-129 | Electrophysiology perfusion fluid handling |
Tugsten concentric bipolar microelectrode | WPI | TM33CCINS | Stimulating electrode for electrophysiology |
Histology | |||
24 well Plate | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-556006 | Histology slice collection and immunostaining |
Alexa Fluor 488 Streptavidin | Jackson Immuno labs | 016-540-084 | Secondary antibody for biocytin visualization |
Corning Orbital Shaker | Sigma | CLS6780FP | Shaker for immunohistochemistry agitation |
Cresyl Violet Acetate | Sigma Aldrich (Intramalls) | C5042-10G | Cellular stain for histology |
Disposable Microtome Blades | Fisher Scientific | 22-210-052 | Sliding microtome blade |
Filter-syringe Nalgene 4mm Cellulose Acetate 0.2um | Fisher Scientific (Intramalls) | 09-740-34A | Syringe filter for filling recording pipettes with internal solution |
Fluoromount-G Slide Mounting Medium | Fisher Scientific | OB100-01 | Immunohistochemistry fluorescence mounting medium |
glass slide staining dish with rack | Fisher Scientific (Intramalls) | 08-812 | Cresyl Violet staining chamber |
Microm HM450 Sliding Microtome | ThermoFisher | 910020 | Freezing microtome for histology |
Microscope Cover Glasses: Rectangles 50mm X 24mm | Fisher Scientific (Intramalls) | 12-543D | Histochemistry slide cover glass |
Permount mounting medium | Fisher Scientific | SP15-100 | Cresyl violet section mounting medium |
Superfrost Slides | Fisher Scientific | 22-034980 | Histology slides |
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