Name: detecting the lyme disease spirochete, borrelia burgdorferi, in ticks using nested pcr
Uploaded: 2018-02-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 20 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR at JoVE.com

Gli autori desiderano ringraziare Kami Harris per disegno dell'iniettore, Ashley McKibbon e Jessica Thomas-Ebbett per le riprese e John Blakely, Alexandra Foley-Eby, Chris Langley, Julie Lewis, Kelsey McIntyre, Ashley McKibbon, Chris Zinck e Rosie il cane per essere apparso nella video. A. M. K. è stata sostenuta dalla Fondazione canadese per la ricerca malattia di Lyme, e finanziamento del progetto è stato fornito dalle scienze naturali e ingegneria ricerca Consiglio del Canada (NSERC). M. K. B. W. ha ricevuto un finanziamento di stipendio da New Brunswick Innovation Foundation (NBIF).

1. DNA isolamento da zecche
<ol><li>Acquisire le zecche via campo insieme o sorveglianza passiva da veterinari e membri del pubblico. Zecche dovrebbero essere ucciso da congelamento, inserite in un sacchetto sigillato e spedite a temperatura ambiente.<ol>
<li>Utilizzando un modulo di presentazione, raccogliere informazioni sulla data e la posizione geografica dell'incontro, lo stato di attaccamento tick, specie ospite e storia recente viaggio dell'host.</li>
		<li>Poiché la PCR annidata è intrinsecamente vulnerabile alla contaminazione, assicurarsi che l'area di lavoro di laboratorio è impostato per minimizzare la croce-esposizione dei campioni. Ciò comporta l'esecuzione di diversi elementi del protocollo in spazi separati, dedicati ben isolati da altro sono accuratamente puliti e sterilizzati, e garantire che tutti gli strumenti sono prive di sostanze contaminanti.</li>
		<li>Dopo aver ricevuto l'esemplare, fotografare il segno di spunta e determinare la specie, Stadio di sviluppo, sesso e stato di congestione in confronto a un'identificazione chiave32 .</li>
		<li>In condizioni asettiche, bisecare il segno di spunta utilizzando una lama di rasoio sterile o bisturi e inserire i frammenti di due segni di graduazione in microcentrifuga separato.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Per estrarre il DNA totale, utilizzare qualsiasi procedura di isolamento che produce il modello di PCR-compatibile; Questo protocollo viene illustrato un semplice approccio basato su chelazione.<ol>
<li>Inizia aggiungendo un volume adeguato (spesso tra 50-200 µ l) di un reagente litico chelazione per il frammento di segni di graduazione. L'importo specifico dipenderà molto lo stato di dimensione e ingorgo esemplare; linee guida dovrebbero essere fornite dal produttore. Omogeneizzare con un pestello di Conetti.</li>
		<li>Incubare i campioni in un bagno di acqua a 60 ° C per 45 min e vortexare brevemente.</li>
		<li>Centrifugare i campioni per 4 min a 16.276 x g (13.300 giri/min) in una microcentrifuga desktop.</li>
		<li>Trasferire il surnatante in una fresca, con etichetta microprovetta contenente 50 µ l isopropanolo, mix di inversione e ri-Centrifugare come in (1.2.3).</li>
		<li>Decantare il supernatante e sciacquare la pallina di DNA con 50 µ l di etanolo al 70%.</li>
		<li>Eliminare l'etanolo in eccesso con una pipetta e lasciar asciugare all'aria per 15 min a temperatura ambiente il pellet.</li>
		<li>Risospendere il DNA, aggiungere 50 µ l di 1 mM a Tris pH 7.0 e incubare i campioni in un bagno di acqua per 1 h a 60 ° C. Ora, il DNA può essere conservato a-20 ° C per future analisi molecolari.</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. nested PCR Detection di OspA Borrelia e ciccia.
Nota: Una panoramica dei generali principi PCR e pratiche è fornita da Lorenz, 201233.
<ol><li>Sintetizzare o ottenere iniettori del oligonucleotide di interni ed esterni di gene-specifico di Borrelia . Vedere la tabella 1 per set di primer, loro rispettivi amplicone dimensioni e temperature di fusione.</li>
</ol><table border="1"><tbody>
<tr>
<td>Nome di primer</td>
			<td>Gene bersaglio</td>
			<td colspan="2">Sequenza (5' - 3')</td>
			<td>Dimensione del amplicon</td>
			<td>Temperatura di annealing</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ciccia su Fw</td>
			<td>Ciccia</td>
			<td colspan="2">gcatcactttcagggtctca</td>
			<td rowspan="2">503 bp</td>
			<td rowspan="2">55° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ciccia su Rv</td>
			<td>Ciccia</td>
			<td colspan="2">tggggaacttgattagcctg</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ciccia nel Fw</td>
			<td>Ciccia</td>
			<td colspan="2">ctttaagagttcatgttggag</td>
			<td rowspan="2">447 bp</td>
			<td rowspan="2">58° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ciccia In Rv</td>
			<td>Ciccia</td>
			<td colspan="2">tcattgccattgcagattgt</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA Out Fw</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">cttgaagttttcaaagaagat</td>
			<td rowspan="2">487 bp</td>
			<td rowspan="2">55° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA Out Rv</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">caactgctgacccctctaat</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA nel Fw</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">acaagagcagacggaaccag</td>
			<td rowspan="2">350 bp</td>
			<td rowspan="2">58° C</td>
		</tr>
<tr>
<td>OspA In Rv</td>
			<td>OspA</td>
			<td colspan="2">ttggtgccatttgagtcgta</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabella 1: Primer interno ed esterno per nPCR di Borrelia burgdorferiFlaB e OspA. In pratica, i primer di ciccia rilevare B. burgdorferi s.s. e altri strettamente correlati Borrelia genospecies, mentre gli iniettori OspA catturano solo b. burgdorferi s.s. amplificazione da entrambi loci indicherebbe B. burgdorferi. s.s.
<ol start="2"><li>Pre-sterilizzare un armadietto PCR con UV luce e 70% di etanolo. Nota: Per minimizzare la potenziale contaminazione del campione, questa area di lavoro deve essere distinta dalla posizione della dissezione di tick, estrazione del DNA ed elettroforesi del gel.<ol>
<li>Per l'esecuzione iniziale di PCR, è possibile utilizzare il primer esterno in combinazione con il modello DNA recuperato nel passaggio 1.0 sopra e impostata la miscela di reazione, come descritto nella tabella 2. In parallelo, eseguire positivo controllo esegue composto verificato Borrelia DNA e controllo negativo esegue incluse reazioni no-modello per rilevare la contaminazione del reagente e aerosol. Aggiungere del DNA al fine di minimizzare la potenziale contaminazione dei reagenti. Garantire che ogni tubo è chiuso a tutti i tempi quando i reagenti non vengono aggiunti e chiudere tubi immediatamente dopo l'aggiunta di DNA e prima di altri tubi sono aperti.</li>
		<li>Programma un termociclatore come segue: 95 ° C per 5 min; 40 cicli di 95 ° C per 15 s, ricottura temperatura per 30 s, 72 ° C per 45 s; 72 ° C per 5 min; e tenere a 4 ° C.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Eseguire il secondo round della PCR simile alla prima reazione, tranne usare primer interno con 2 µ l del primo prodotto PCR (prodotto in 2.2.2). Nota: Volumi di reazione sono nuovamente disponibili in tabella 2. Deve prestare attenzione per evitare la contaminazione incrociata degli ampliconi assicurando che il DNA del modello viene aggiunto ultima e che soli tubi corrispondenti a un campione siano aperte alla volta. 
	 
	<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>Componente</td>
				<td>Volumi PCR # 1</td>
				<td>PCR # 2 volumi</td>
			</tr>
<tr>
<td>Taq polimerasi Master Mix 2 X</td>
				<td>12,5 Μ l</td>
				<td>12,5 Μ l</td>
			</tr>
<tr>
<td>Nuclease-free Water</td>
				<td>Μ l 8.5</td>
				<td>Μ l 8.5</td>
			</tr>
<tr>
<td>10 µM primer forward e Reverse</td>
				<td>1,0 µ l primer esterno</td>
				<td>1,0 µ l primer interno</td>
			</tr>
<tr>
<td>Modello di DNA</td>
				<td>µ L 2.0, dall'estrazione del campione (1.2.7)</td>
				<td>µ L 2.0, dal 1 ° giro della PCR (2.2.2)</td>
			</tr>
</tbody></table>
Tabella 2: Miscele di reazione di PCR per amplificazioni di primi e secondo. 
	 
	<ol>
<li>Programmare il termociclatore come prima, ma regolare la temperatura di ricottura per ospitare i primer interni (Vedi tabella 1).</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Imaging ed elettroforesi su Gel di agarosio al
Nota: Per le istruzioni di base sulla separazione del DNA tramite l'elettroforesi, vedere Lee et al., 201234.
<ol><li>Preparare un gel di agarosio all'1.2% utilizzando 20 X SB buffer (0.2 M NaOH, 0,8 M acido borico pH 8), diluito a 1 X e aggiungere circa 5 µ l di una macchia di DNA, prima di versare, se pre-macchiatura del gel è desiderata.</li>
	<li>Caricare 10 µ l del prodotto dalla seconda reazione di PCR (interno) da ogni sperimentale e campione di controllo, insieme a una scala di 100 bp (5 µ l).<ol>
<li>Elettroforesi per 1 h a 107 V (5 v/cm).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Visualizzare e documentare il gel utilizzando un transilluminatore e telecamera associata e software.</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla a rivelare.

In decenni di uso, tecniche basate sulla PCR hanno costantemente dimostrato il loro valore nella rilevazione di Borrelia da esemplari di mammiferi e artropodi, se Borrelia provengono da origini ambientali o clinici. PCR offre numerosi miglioramenti rispetto pre-esistenti approcci alla sorveglianza. In particolare, esso non si basa sullo sviluppo e le prestazioni dei reagenti dell'anticorpo e invece può essere facilmente adattato per rilevare nuovi target di interesse semplicemente modificando le sequenze dell'iniettore. PCR può ospitare anche la valutazione dei luoghi multipli in parallelo, in modo indipendente o tramite una reazione multiplex. Può essere applicato agli ingressi dei campioni diversi, tra cui zecche fresco e archiviati22, animale o umani fluidi corporei e tessuto resecato25. PCR produce anche ampliconi che possono essere ulteriormente elaborati, per esempio di digestione degli enzimi di restrizione, ibridazione della sonda o sequenziamento, di fornire una maggiore comprensione nella identità microbica21.
Come strumento clinico, PCR è concettualmente preferibile la diagnostica sierologica standard, in quanto fornisce un'indicazione diretta della presenza batterica, piuttosto che fare affidamento sulla risposta immunitaria ospite come misura secondaria di infezione. Tuttavia, la borreliosi di Lyme è associata con un relativamente modesto onere microbico (< 50 organismi/mL di urina o plasma) e spirochetemia transitoria, che può dar luogo a falsi negativi risultati25. La sensibilità di questa tecnica nella clinica varia considerevolmente a seconda del tipo di tessuto, fase dell'infezione e la condizione di campione, che cade tra il 12,5% e il 62% negli studi esistenti di sangue, liquido cerebrospinale e tessuto biopsiato36. Limitazioni di sensibilità molecolari non sono una preoccupazione se PCR è intrapresa a seguito di coltura batterica, tuttavia il recupero della spirocheta praticabile da campioni clinici ha dimostrato allo stesso modo stimolante. Solo recentemente i protocolli sono stati ottimizzati per maggiore resa35. Nel frattempo, l'intestino di una zecca infetta adulta può harbor mediamente ovunque da 2.000 a oltre 50.000 Borrelia37,38,39, che è solidamente all'interno della gamma di rilevazione di nPCR. Così, il protocollo è adatto agli sforzi di sorveglianza di segni di graduazione.
Nonostante i suoi molti vantaggi, nPCR pongono alcune sfide e la capacità di questa tecnica di segnalare con precisione infezione tick dipende quindi dalla scelta strategica di geni e sequenze amplificate, meticolose dei flussi di lavoro sperimentale che recuperare DNA di qualità da campioni, riducendo al minimo la croce-esposizione dei campioni e l'uso di adeguati controlli che può segnalare contaminanti nell'ambiente di laboratorio e reagenti. Prima di qualsiasi sperimentazione, l'ambito e le intenzioni dell'indagine opportuno definire chiaramente affinché appropriati loci genetici e regioni ivi, possono essere selezionati. Se l'obiettivo è quello di fornire uno schermo imparziale per la causa di Lyme Borrelia burgdorferi s.l. complessi, primer deve essere creato per rilevare tutti i ceppi associati con simile affinità ed efficienza di amplificazione, senza catturare indipendente organismi25. Nuovi primer può essere progettato e valutato in silico utilizzando strumenti software come Primer-BLAST40, anche se dovrebbe anche essere validati sperimentalmente contro standard di riferimento isola prima di essere applicate ai campioni atipici. L'obiettivo della procedura di estrazione del DNA è di recuperare modello microbica intatto da un campione ambientale misto (tick omogeneato). Un passaggio facoltativo prima di procedere con la PCR è di valutare l'integrità del DNA estratto. Inoltre, reazioni in parallelo potrebbero essere impostare come destinazione un gene housekeeping nel segno di spunta. Quest'ultimo metodo può anche indicare la presenza di inibitori nella miscela di reazione, fornendo una maggiore fiducia che le reazioni negative di Borrelia sono a causa dell'assenza dell'organismo e non alla presenza di un contaminante inibitorio.
La sensibilità aumentata dell'approccio PCR annidata a scapito di potenziale contaminazione che genera risultati falsi-positivi. Modello esogeno potrebbe essere introdotto in un campione durante la dissezione di segni di graduazione ed il recupero di DNA, o nel processo di creazione le reazioni di amplificazione esterna e interna. Pertanto è particolarmente importante seguire protocolli di pratica migliore per PCR evitare modello o amplicon contaminazione incrociata. Questi includono l'uso di stazioni di lavoro separata con flussi d'aria indipendente, contenimento in PCR e armadietti di sicurezza biologici eventualmente approfondita chimico e fisico pulizia e sterilizzazione delle superfici e dei reagenti e gestione prudente del DNA 41. No-modello controlli sono inoltre vitali nell'identificare la contaminazione dei reagenti stock. Una particolare vulnerabilità del nPCR è l'amplicone movimentazione che si verifica quando si trasferiscono i prodotti della reazione prima nel secondo recipiente di PCR. Poiché il DNA dell'obiettivo ha già subito l'arricchimento esponenziale in campioni positivi, questo passaggio è particolarmente soggetto a contaminazioni e un tubo singolo nPCR protocollo è stato sviluppato per aggirare questa limitazione. In questo approccio, entrambi i set di primer per un dato gene vengono aggiunti insieme ad un tubo di reazione che rimane sigillato per entrambi i turni di PCR31. Le coppie di primer esterno e quello interno devono essere termodinamicamente distinte, tale che la coppia esterna amplifica modello ad alta temperatura ricottura che è proibitiva per i primers interni. Nel secondo turno, si abbassa la temperatura di ricottura per ospitare l'accoppiamento interno. Non solo fa questo ignorare un passaggio potenzialmente di confusione, permette inoltre l'utilizzo di ulteriori misure anti-contaminazione31,42. Tuttavia, questa modifica può sacrificare alcune sensibilità. Indipendentemente dall'approccio, aumentando il numero delle ripetizioni tecniche eseguita in modo indipendente su un campione vi aiuterà a identificare spurie contaminazioni.
Tecniche molecolari hanno continuato ad evolversi dall'introduzione del nPCR, e questi approcci più recenti offrono vantaggi selezionare sopra i disegni originali, seppur a aumentato degli oneri finanziari. Come suggerisce il nome, PCR quantitativa (qPCR o real time (RT)-PCR) consente l'enumerazione dei patogeni in un campione, mentre le tecniche convenzionali sono di natura43qualitative. La sensibilità di qPCR è piuttosto simile a quella del nPCR38, anche se esso può oscillare a seconda del primer caratteristiche28. Una variazione di qPCR che utilizza molecular beacon (MB) al posto di sonde TaqMan tradizionali inoltre ha indicato la promessa nella rilevazione di Borrelia in campioni clinici44,45,46. Grazie alla loro struttura secondaria unica, molecular beacon riferito produrre fluorescenza di fondo inferiore e superiori segnali legittimi, fornendo in tal modo una sensibilità superiore47. Valutazioni pre-cliniche suggeriscono una potenziale soglia di rilevamento della tra uno e dieci le spirochete44,45. Inoltre, la tecnica è stata applicata correttamente in multiplex reazioni per rilevare contemporaneamente un mammifero ospite gene44 e altri agenti patogeni da zecche45, che non è così facilmente realizzabile con nPCR. Altre modifiche di progettazione includono gocciolina digitale tecnologia PCR (ddPCR), che può quantificare il DNA senza l'uso di una curva standard39,48. Il limite inferiore di rilevamento di questa tecnica per Borrelia è similarmente circa dieci spirocheta/campione39. Rispetto a nPCR, questi approcci hanno anche il vantaggio del ridotto potenziale per contaminazione, dato che richiedono solo un protocollo di amplificazione singola.
Se l'obiettivo della sorveglianza è invece per analizzare il contenuto batterico variato di un tick, 16S rRNA metagenomica screening è un' opzione attraente49. Sebbene questo approccio è più costoso, richiede specializzati Sequenziatori di DNA non trovati in tutti i laboratori di biologia molecolare e richiede più sofisticati basati su bioinformatica interpretazione, può catturare un vasto spettro di microbi più accuratamente rappresentano il carico agente patogeno del vettore.
Mentre qPCR e suoi derivati sono metodi di scelta per le applicazioni quantitative e metagenomica schermate forniscono ampi inventari del microbioma tick, sforzi di sorveglianza mirata sono spesso interessati con binario di segnalazione della presenza o dell'assenza di uno o più agenti patogeni in un vettore. In tali circostanze, questi approcci più recenti, più elaborati possono introdurre inutili complessità e onere finanziario nel processo. Per questi motivi, nPCR ha resistito alla prova del tempo come una tecnica fondamentale in graduazione del test.

Malattia di Lyme (LD) è l'infezione di vettore-sopportata più diffusa nell'emisfero settentrionale, e la sua incidenza continua ad aumentare di1. Questa malattia debilitante è causata da agenti patogeni spirocheteal della borreliosi di Lyme (LB) complesso (comunemente come lato di sensu di burgdorferi di Borrelia , o s.l.), che comprende storicamente predominante patogeno nordamericano, B. burgdorferi sensu stricto (s.s.), oltre a b. afzelii e b. garinii, che sono diffuse in tutta Europa e Asia e sono specie della emergente rilevanza clinica2,3. Questi batteri vengono trasmessi all'uomo attraverso il morso di infetti Ixodes battiti2. Anche se i principali vettori nordamericani sono scapularis I. e I. pacificus, specie multiple all'interno di questo genere sono stati trovati per harbor e trasmettere il batterio4. In esseri umani, b. burgdorferi può causare sintomi di sistema multiplo che interessa la pelle, articolazioni, cuore, sistema nervoso, ghiandole endocrine, tratto gastrointestinale e organi interni5,6,7, 8,9,10. Il Center for Disease Control and Prevention stima attualmente oltre 300.000 nuovi casi umani annualmente negli Stati Uniti11,12. Mentre la prognosi è spesso favorevole quando la malattia è diagnosticata e trattata nelle fasi iniziali, gli studi hanno suggerito che ovunque tra 10% e il 60% dei pazienti che hanno ricevuto i dosaggi raccomandati di antibiotico ha continuato ad avvertire i sintomi dopo la terapia cessazione, in un fenomeno definito Post trattamento malattia di Lyme sindrome (PTLDS)13,14,15. Inoltre, possono verificarsi ritardi nell'intervento clinico a causa della mancanza di consapevolezza di un morso del battito, la presentazione non specifica della malattia iniziale e la bassa sensibilità della tradizionale basato su sierologia diagnostica quando utilizzato all'inizio dell'infezione. Fallimento per trattare rapidamente e in modo appropriato consente la progressione di sintomo che può manifestarsi in sempre più debilitanti complicazioni16,17. Prevenzione della malattia di Lyme è pertanto un elemento fondamentale della gestione del rischio. Strategie per combattere questa minaccia crescente includono misure di sorveglianza robusto per indicare la prevalenza del patogeno in segni di graduazione e identificano regioni geografiche di preoccupazione.
Questo articolo dimostra l'utilità della reazione a catena annidata della polimerasi (nPCR) come strumento di screening molecolare da cui identificare zecche infette. Per aumentare la specificità, due geni di Borrelia sono utilizzati per l'amplificazione parallelo. B flagellina (ciccia) codifica per una proteina del filamento principale del flagello18, e il gene è localizzato sul cromosoma lineare singolo, mentre il prodotto della lipoproteina di proteina di superficie esterno A (OspA) media del midgut tick colonizzazione, è codificato in plasmide19,20. Il flusso di lavoro è costituito da tick raccolta, estrazione del DNA e poi un giro iniziale di PCR per rilevare Borrelia-loci specifici. PCR successive utilizza il prodotto della prima reazione come un nuovo modello per generare frammenti di amplificazione interna, più piccola. Un segno di spunta viene considerato positivo per Borrelia burgdorferi quando interna ampliconi di entrambi i geni Borrelia possono essere rilevato tramite l'elettroforesi del gel dell'agarosi.
Sia la tecnica nPCR e la ciccia e OspA geni bersaglio, è stati ampiamente usati per sorveglianza ecologica e rilevazione clinica dello spirochete Lyme dal primi anni 199021,22,23 ,24,25. Prima dello sviluppo di protocolli molecolari, le zecche sono state valutate sottoponendo la gut contenuto anti -Borrelia colorazione di immunofluorescenza (IF), coltura microbica o una loro combinazione26. Questi approcci soffrono di limitazioni inerenti, compreso la crescita lenta e la natura fastidiosa di Borrelia27, problemi di prestazioni dell'anticorpo e il requisito di segni di graduazione diretta per se elaborazione21. PCR è stata successivamente adottata per fornire l'identificazione veloce, sensibile e specifica di vettori infetti. Ha offerto miglioramenti notevoli sopra la metodologia tradizionale, compresa la coltura-indipendente diretta applicazione per tipi di campioni diversi, quali zecche morte e archiviati che altrimenti sarebbero inadatti per il test21,22 . Disegni sperimentali nidificati ulteriormente migliorano la specificità e la sensibilità della PCR classica impiegando due insiemi distinti di iniettori di gene-specific in due turni consecutivi di amplificazione25,28.
Sperimentale successo dipende criticamente dalla design di selezione e amplicon di gene strategico. Per stimare con precisione la presenza di Borrelia burgdorferi, primer dovrebbe rilevare gli agenti patogeni rilevanti senza grado di reagire con la spirocheta di febbre di ricaduta anche nel genere Borrelia . Nel caso di ciccia, questa specificità è ottenuta prendendo di mira una regione interna variabile del gene, piuttosto che le sequenze fiancheggianti relativamente conservate che sono condivisi da diversi batteri (Figura 1)24,29 , 30.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56471/56471fig1.jpg"> Figura 1: il concetto di nPCR, come illustrato utilizzando Borrelia ciccia gene come bersaglio. Stazione termini 5' e 3' del gene sono comuni per gli organismi di là di Borrelia burgdorferi s.l., rendering di queste regioni non idonei per la valutazione specifica degli agenti patogeni che causano Lyme. Utilizzando le sequenze interne conservati meno di target primer, due cicli di PCR vengono eseguiti per rilevare un amplicone finale, interno. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56471/56471fig1large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>
In una prova della loro capacità discriminatoria, interni FlaB primer sono stati valutati con più di 80 diversi isolati di Borrelia e trovato per identificare solo quelli associati con la malattia di Lyme24. Il limite inferiore di rilevamento del nPCR è stato documentato presso tra sei24 e dieci31 batteri da coltura pura, anche se la sensibilità può essere ulteriormente migliorata mediante Southern blotting amplicon e ibridando un radiomarcato o sonda a chemiluminescenza. Le tecniche di accoppiamento riduce la soglia di rilevamento a un singolo spirochete31. Tramite il confronto diretto, PCR con un unico arrotondamento convenzionale, inesplorata è stato trovato per segnalare la presenza di un minimo di 104 spirocheta31. Dovrebbe essere notato, tuttavia, che la sensibilità del test sarà inferiore quando si lavora con campioni ambientali e clinici complessi, a causa della presenza schiacciante di DNA estraneo e potenziali sostanze inibitorie. Queste sfide possono essere aggirate in gran parte dall'utilizzo di nPCR.
Malgrado gli avanzamenti nelle tecnologie molecolari negli ultimi decenni, nPCR rimane una tecnica fiocco in sforzi di sorveglianza moderna. Se la cura nella progettazione e nell'esecuzione del presente protocollo, è un approccio relativamente semplice, potente e adattabile per catturare la presenza di agenti patogeni in vettori di graduazione.

<table><tbody><tr><td>LabGard Class II, Type A2 biological safety cabinet</td><td>Nuaire</td><td>ES AIR NU-543&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Razor blades</td><td>VWR</td><td>55411-050</td><td>0.22 mm thickness</td></tr><tr><td>Microfuge Tubes (Microtubes 1.5 mL)</td><td>Axygen</td><td>311-08-051</td><td></td></tr><tr><td>AquaGenomic&amp;nbsp;</td><td>MultiTarget Pharmaceuticals</td><td>2030</td><td>DNA extraction reagent</td></tr><tr><td>Microtube Pestle</td><td>Diamed</td><td>DIATEC610-1551</td><td>Designed for 1.5 ml tubes</td></tr><tr><td>Water bath - Isotemp 202</td><td>Fishse Scientific</td><td>15-462-2</td><td></td></tr><tr><td>Vortex</td><td>Labnet</td><td>S0100 CAN</td><td></td></tr><tr><td>Spectrafuge 24D Digital Microcentrifuge</td><td>Labnet</td><td>C2400</td><td></td></tr><tr><td>Isopropanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>190764</td><td></td></tr><tr><td>BIS-TRIS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B9754</td><td></td></tr><tr><td>Primer Synthesis</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>OLIGO</td><td></td></tr><tr><td>PCR Cabinet</td><td>Misonix</td><td>PCR6-482</td><td></td></tr><tr><td>PCR tube with attached flat caps 0.2mL</td><td>VWR</td><td>20170-012</td><td></td></tr><tr><td>GoTaq Green Master Mix 2x</td><td>Promega</td><td>M7123</td><td></td></tr><tr><td>Nuclease-free water</td><td>Promega</td><td>M7123</td><td>The water comes with the GTG</td></tr><tr><td>Spectrafuge Mini</td><td>Labnet</td><td>C1301</td><td></td></tr><tr><td>SYBR Safe DNA Stain 10,000X Concentration</td><td>EDVOTEK</td><td>608</td><td></td></tr><tr><td>Froggarose LE (Molecular Biology Grade Agarose)</td><td>FroggaBio</td><td>A87-500G</td><td></td></tr><tr><td>GD 100 bp DNA Ladder</td><td>FroggaBio</td><td>DM001-R500&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Electrophoresis power pack&amp;nbsp;</td><td>VWR</td><td>VWR 105</td><td>EC Apparatus Corporation</td></tr><tr><td>Fluor-S MultiImager&amp;nbsp;</td><td>BioRad</td><td>170-7700 (Serial number 433B0154)</td><td></td></tr><tr><td>Quantity One 1-D Analysis Software (V. 4.5.2)</td><td>BioRad</td><td>1709600</td><td></td></tr></tbody></table>

detecting the lyme disease spirochete, borrelia burgdorferi, in ticks using nested pcr

Malattia di Lyme è una grave infezione trasmesse da vettori che è causata dalla Borrelia burgdorferi sensu lato famiglia delle spirochete, che vengono trasmessi all'uomo attraverso la puntura delle zecche Ixodes infette. L'agente eziologico primario in Nord America è Borrelia burgdorferi sensu stricto. Come espandono regioni rischio geografico, è prudente sostenere programmi di sorveglianza robusto che possono misurare i tassi di infezione tick e comunicare i risultati clinici, veterinari e il pubblico in generale. La tecnica molecolare della reazione a catena annidata della polimerasi (nPCR) lungo è stata utilizzata per questo scopo, e rimane un approccio centrale, economico e robusto nella rilevazione di Borrelia in segni di graduazione e la fauna selvatica.
Questo articolo viene illustrato l'applicazione del nPCR a spuntare gli estratti di DNA per identificare gli esemplari infetti. Due indipendente destinato a b. burgdorferi , geni codifica B flagellina (ciccia) e proteina di superficie esterno A (OspA), sono stati ampiamente utilizzati con questa tecnica. Il protocollo coinvolge tick raccolta, estrazione del DNA e poi un giro iniziale di PCR per rilevare tutte le due Borrelia-loci specifici. Successivi catena della polimerasi (PCR) utilizza il prodotto della prima reazione come un nuovo modello per generare frammenti di amplificazione interna, più piccola. L'approccio nidificato migliora la specificità e la sensibilità della PCR convenzionale. Un segno di spunta viene considerato positivo per l'agente patogeno quando interna ampliconi di entrambi i geni Borrelia possono essere rilevato tramite l'elettroforesi del gel dell'agarosi.

nPCR è un approccio elegante per aumentare la specificità e la sensibilità di rilevamento del patogeno, specialmente quando campioni ambientali complessi sono sotto inchiesta. Come descritto in Figura 1, due cicli di PCR destinazione è un'area strategica della Borrelia FlaB locus (e OspA, non nella foto) possono segnalare la presenza del batterio Borrelia burgdorferi attraverso la generazione di corte interna ampliconi. Quando risolto tramite l'elettroforesi del gel, i prodotti di reazione di ciccia e OspA da ogni segno di graduazione possono essere visivamente segnati e confrontati con controlli. Nella Figura 2, esemplare unico identificatori sono forniti nella parte superiore di ogni gel e controlli no-modello e aerosol sono rappresentati all'estrema sinistra e destra, rispettivamente, adiacente le scale.
Amplicon robusto bande sono chiaramente visibili nel selezionare campioni sperimentali, e si distinguono facilmente dagli iniettori surplus e residuo del DNA (Figura 2). Basato su principi di disegno sperimentale stabiliti, un segno di spunta viene considerato positivo per Borrelia quando parallelo controlli negativi non dimostrano amplificazione, e interni ampliconi sono prodotte da primer sia ciccia e OspA . In questo caso, gli esemplari T907, T604 e T606 incontrato i criteri di sorveglianza per l'agente patogeno di Lyme (Figura 2). Al contrario, T923 solo era positivo per OspA, un risultato per il quale esistono più spiegazioni possibili: A) il segno di spunta di origine era negativa per Borrelia, ma la preparazione di OspA PCR esterna o interna spurio è stata contaminata con modello DNA (si noti che sistematica contaminazione dei reagenti è stata esclusa tramite controlli negativi), B) il segno di spunta trasportato Lyme Borrelia, ma modello basso importi o errore sperimentale ha impedito l'amplificazione di ciccia, o C) un organismo era presente che conteneva la sequenza conservata di OspA , ma mancava la flagellina o avuto insufficiente identità della regione mirata della ciccia tempri gli iniettori. Infatti, OspA sequenza somiglianze sono state notate in una varietà di organismi, tra cui piante e animali28. La situazione di converse, amplificazione più conservato flagellina gene, ma non il gene OspA , potrebbe indicare una specie di Borrelia correlate. In pratica, questo protocollo produce più risultati di singolo-positivi di OspA di fanno gli iniettori di ciccia , suggerendo che scenario 'A' è la meno probabile spiegazione. Senza ulteriori analisi sperimentale dell'esemplare polemico, tuttavia, non è possibile determinare l'origine del singolo-positivo risultato. Aumentando il numero delle ripetizioni tecnici effettuati sui campioni di equivoci può aiutare a conciliare il loro status di vero, poiché eventuali contaminanti introdotti spurio per precedenti reazioni non sarebbero presenti nel DNA archiviato. Tuttavia, se le reazioni successive con questi iniettori non riescono a fornire risultati conclusivi, altri loci di Borrelia potrebbero essere studiati mediante PCR. Ampliconi generati da queste reazioni potrebbero anche essere sequenziato e rispetto tra gli isolati per assegnare identità e stimare il grado di divergenza di ceppo. SAPI e colleghi forniscono un esempio di questo flusso di lavoro utilizzando campioni clinici umani35.
Tutti i fattori considerati, i criteri delineati di protocollo e l'interpretazione sono stati stimati per produrre falsi positivi e falsi negativi tassi di 0,17% e 0.0063%, rispettivamente.
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56471/56471fig2.jpg"> Figura 2 : Rilevazione di Borrelia burgdorferi nelle singole zecche di nPCR di Ciccia e OspA. Codici assegnati a ogni tick sono rappresentati nella parte superiore del gel e identità allineano verticalmente per segnalare l'individuazione di OspA e ciccia in ogni esemplare. Corsie intitolata B a sinistra dei controlli immagine rappresentano no-modello, mentre un (corsie di destra) sono controlli di aerosol per catturare la contaminazione dell'ambiente di laboratorio. <a href="//cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/56471/56471fig2large.jpg" target="_blank">Clicca qui per visualizzare una versione più grande di questa figura.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR at JoVE.com

Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

Nested PCR è una tecnica sensibile, specifica e semplice che può essere applicata a tick che DNA estratti per sonda per Borrelia burgdorferi, l'agente eziologico della malattia di Lyme. L'esperimento PCR iniziale utilizza gli iniettori di gene-specific per generare ampliconi lunghi, che poi diventano modelli per una successiva reazione utilizzando primers interna.

Rilevare il malattia di Lyme Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in segni di graduazione utilizzando la PCR annidata

Lyme disease is a serious vector-borne infection that is caused by the Borrelia burgdorferi sensu lato family of spirochetes, which are transmitted to ...

detecting-lyme-disease-spirochete-borrelia-burgdorferi-ticks-using

Research

JoVE Journal

Biology

Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

17.9K Views.  Mount Allison University. Nested PCR è una tecnica sensibile, specifica e semplice che può essere applicata a tick che DNA estratti per sonda per Borrelia burgdorferi, l'agente eziologico della malattia di Lyme. L'esperimento PCR iniziale utilizza gli iniettori di gene-specific per generare ampliconi lunghi, che poi diventano modelli per una successiva reazione utilizzando primers interna.

Video: Detecting the Lyme Disease Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in Ticks Using Nested PCR

Methods for Rapid Transfer and Localization of Lyme Disease Pathogens Within the Tick Gut

Lyme disease is caused by infection with the spirochete pathogen Borrelia burgdorferi, which is maintained in nature by a tick-rodent infection cycle 1. A tick-borne murine model 2 has been developed to study Lyme disease in the laboratory. While na&iacute;ve ticks can be infected with B. burgdorferi by feeding them on infected mice, the molting process takes several weeks to months to complete. Therefore, development of more rapid and efficient tick infection techniques, such as a microinjection-based procedure, is an important tool for the study of Lyme disease 3,4. The procedure requires only hours to generate infected ticks and allows control over the delivery of equal quantities of spirochetes in a cohort of ticks. This is particularly important as the generation of B. burgdorferi infected ticks by the natural feeding process using mice fails to ensure 100% infection rate and potentially results in variation of pathogen burden amongst fed ticks. Furthermore, microinjection can be used to infect ticks with B. burgdorferi isolates in cases where an attenuated strain is unable to establish infection in mice and thus can not be naturally acquired by ticks 5. This technique can also be used to deliver a variety of other biological materials into ticks, for example, specific antibodies or double stranded RNA 6. In this article, we will demonstrate the microinjection of nymphal ticks with in vitro-grown B. burgdorferi. We will also describe a method for localization of Lyme disease pathogens in the tick gut using confocal immunofluorescence microscopy.

Lyme disease research studies often require generation of ticks infected with the pathogen Borrelia burgdorferi, a process that typically takes several weeks. Here we demonstrate a microinjection-based tick infection procedure that can be accomplished within hours. We also demonstrate an immunofluorescence method for in situ localization of B. burgdorferi within ticks.

Metodi per il trasferimento rapido e localizzazione di agenti patogeni malattia di Lyme All&#39;interno della Gut Tick

Lyme disease is caused by infection with the spirochete pathogen Borrelia burgdorferi, which is maintained in nature by a tick-rodent infection cycle 1.  ...

Ricerca

Immunologia e infezioni

Evaluation of a Universal Nested Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction for the Detection of Lyssaviruses

To detect rabies virus and other member species of the genus Lyssavirus within the family Rhabdoviridae, the pan-lyssavirus nested reverse transcription polymerase chain reaction (nested RT-PCR) was developed to detect the conserved region of the nucleoprotein (N) gene of lyssaviruses. The method applies reverse transcription (RT) using viral RNA as template and oligo (dT)15 and random hexamers as primers to synthesize the viral complementary DNA (cDNA). Then, the viral cDNA is used as a template to amplify an 845 bp N gene fragment in first-round PCR using outer primers, followed by second-round nested PCR to amplify the final 371 bp fragment using inner primers. This method can detect different genetic clades of rabies viruses (RABV). The validation, using 9,624 brain specimens from eight domestic animal species in 10 years of clinical rabies diagnoses and surveillance in China, showed that the method has 100% sensitivity and 99.97% specificity in comparison with the direct fluorescent antibody test (FAT), the gold standard method recommended by the World Health Organization (WHO) and the World Organization for Animal Health (OIE). In addition, the method could also specifically amplify the targeted N gene fragment of 15 other approved and two novel lyssavirus species in the 10th Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV) as evaluated by a mimic detection of synthesized N gene plasmids of all lyssaviruses. The method provides a convenient alternative to FAT for rabies diagnosis and has been approved as a National Standard (GB/T36789-2018) of China.

A pan-lyssavirus nested reverse transcription polymerase chain reaction has been developed to detect specifically all known lyssaviruses. Validation using rabies brain samples of different animal species showed that this method has a sensitivity and specificity equivalent to the gold standard fluorescent antibody test and could be used for routine rabies diagnosis.

Valutazione di una reazione a catena della polimerasi di trascrizione inversa nidificata universale per la rilevazione di Lyssaviruses

To detect rabies virus and other member species of the genus Lyssavirus within the family Rhabdoviridae, the pan-lyssavirus nested reverse transcription ...

Genetica

Feeding of Ticks on Animals for Transmission and Xenodiagnosis in Lyme Disease Research

Transmission of the etiologic agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi, occurs by the attachment and blood feeding of Ixodes species ticks on mammalian hosts. In nature, this zoonotic bacterial pathogen may use a variety of reservoir hosts, but the white-footed mouse (Peromyscus leucopus) is the primary reservoir for larval and nymphal ticks in North America. Humans are incidental hosts most frequently infected with B. burgdorferi by the bite of ticks in the nymphal stage. B. burgdorferi adapts to its hosts throughout the enzootic cycle, so the ability to explore the functions of these spirochetes and their effects on mammalian hosts requires the use of tick feeding. In addition, the technique of xenodiagnosis (using the natural vector for detection and recovery of an infectious agent) has been useful in studies of cryptic infection. In order to obtain nymphal ticks that harbor B. burgdorferi, ticks are fed live spirochetes in culture through capillary tubes. Two animal models, mice and nonhuman primates, are most commonly used for Lyme disease studies involving tick feeding. We demonstrate the methods by which these ticks can be fed upon, and recovered from animals for either infection or xenodiagnosis.

Lyme disease is the most commonly-reported vector-borne disease in North America. The causative agent, Borrelia burgdorferi is a spirochete bacterium transmitted by Ixodid ticks. Transmission and detection of infection in animal models is optimized by the use of tick feeding, which we describe here.

Alimentazione di zecche su animali per trasmissione e Xenodiagnosis a Lyme Disease Research

Transmission of the etiologic agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi, occurs by the  attachment and blood feeding of Ixodes species ticks on ...

Cultivation Methods of Spirochetes from Borrelia burgdorferi Sensu Lato Complex and Relapsing Fever Borrelia

The Borrelia consists of three groups of species, those of the Lyme borreliosis (LB) group, also known as B. burgdorferi sensu lato (s.l.) and recently reclassified into Borreliella, the relapsing fever (RF) group Borrelia, and a third reptile-associated group of spirochetes. Culture-based methods remain the gold standard for the laboratory detection of bacterial infections for both research and clinical work, as the culture of pathogens from bodily fluids or tissues directly detects replicating pathogens and provides source material for research. Borrelia and&#160;Borreliella spirochetes&#160;are fastidious and slow growing, and thus are not commonly cultured for clinical purposes; however, culture is necessary for research. This protocol demonstrates the methodology and recipes required to successfully culture LB and RF spirochetes, including all recognized species from B. burgdorferi s.l. complex including&#160;B. afzelii, B. americana, B. andersonii, B. bavariensis, B. bissettii/bissettiae, B. burgdorferi sensu stricto&#160;(s.s.), B. californiensis, B. carolinensis, B. chilensis, B. finlandensis, B. garinii, B. japonica, B. kurtenbachii, B. lanei, B. lusitaniae, B. maritima, B. mayonii, B. spielmanii, B. tanukii, B. turdi, B. sinica, B. valaisiana, B. yangtzensis, and RFspirochetes, B. anserina, B. coriaceae, B. crocidurae, B. duttonii, B. hermsii, B. hispanica, B. persica, B. recurrentis, and B. miyamotoi. The basic medium for growing LB and RF spirochetes is the Barbour-Stoenner-Kelly (BSK-II or BSK-H) medium, which reliably supports the growth of spirochetes in established cultures. To be able to grow newly isolated Borrelia isolates from tick- or host-derived samples where the initial spirochete number is low in the inoculum, modified Kelly-Pettenkofer (MKP) medium is preferred. This medium also supports the growth of B. miyamotoi. The success of the cultivation of RF spirochetes also depends critically on the quality of ingredients.

Cultivation Methods of Spirochetes from Borrelia burgdorferi Sensu Lato Complex and Relapsing Fever Borrelia

In vitro culture is a direct detection method for the presence of living bacteria. This protocol describes methods for the culture of diverse Borrelia spirochetes,&#160;including those of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex, relapsing fever Borrelia species, and Borrelia miyamotoi. These species are fastidious and slow growing but can be cultured.

Metodi di coltivazione delle spirochete di Borrelia burgdorferi Sensu Lato Complex e febbre recidivante Borrelia

The Borrelia consists of three groups of species, those of the Lyme borreliosis (LB) group, also known as B. burgdorferi sensu lato (s.l.) and recently ...

Phage-Mediated Genetic Manipulation of the Lyme Disease Spirochete Borrelia burgdorferi

Introducing foreign DNA into the spirochete Borrelia burgdorferi has been almost exclusively accomplished by transformation using electroporation. This process has notably lower efficiencies in the Lyme disease spirochete relative to other, better-characterized Gram-negative bacteria. The rate of success of transformation is highly dependent upon having concentrated amounts of high-quality DNA from specific backgrounds and is subject to significant strain-to-strain variability. Alternative means for introducing foreign DNA (i.e., shuttle vectors, fluorescent reporters, and antibiotic-resistance markers) into B. burgdorferi could be an important addition to the armamentarium of useful tools for the genetic manipulation of the Lyme disease spirochete. Bacteriophage have been well-recognized as natural mechanisms for the movement of DNA among bacteria in a process called transduction. In this study, a method has been developed for using the ubiquitous borrelial phage &#966;BB-1 to transduce DNA between B. burgdorferi cells of both the same and different genetic backgrounds. The transduced DNA includes both borrelial DNA and heterologous DNA in the form of small shuttle vectors. This demonstration suggests a potential use of phage-mediated transduction as a complement to electroporation for the genetic manipulation of the Lyme disease spirochete. This report describes methods for the induction and purification of phage &#966;BB-1 from B. burgdorferi, the use of this phage in transduction assays, and the selection and screening of potential transductants.

Phage-Mediated Genetic Manipulation of the Lyme Disease Spirochete Borrelia burgdorferi

The ability of bacteriophage to move DNA between bacterial cells makes them effective tools for the genetic manipulation of their bacterial hosts. Presented here is a methodology for inducing, recovering, and using &#966;BB-1, a bacteriophage of Borrelia burgdorferi, to transduce heterologous DNA between different strains of the Lyme disease spirochete.

Manipolazione genetica mediata dai fagi della malattia di Lyme Spirochete Borrelia burgdorferi

Introducing foreign DNA into the spirochete Borrelia burgdorferi has been almost exclusively accomplished by transformation using electroporation. This ...

Dosaggio immunologico multiplex per IgG e IgM specifiche per Borrelia nel siero

Simultaneous Detection of Different Antibody Classes in a Multiplexed Serological Test

To monitor the progression of infectious diseases, it is useful to assess immunoreactivity against various antigenic determinants, and measure different antibody isotypes because they appear at different stages of the host immune response. With Lyme borreliosis, the pathogenic agent can be one of the multiple members of the Borrelia species. Therefore, correct sample classification requires evaluating the immunoreactivity against different antigens of different Borrelia species. Additionally, anti-pathogen IgG and IgM responses can have different elicitation time courses during disease progression. Here we demonstrate the development of a two-reporter multiplex immunoassay that has utility in identifying Borrelia-specific immune response in human serum samples by simultaneously evaluating both IgG and IgM immunoreactivity against different bacterial antigens in the same reaction well. This dual-reporter approach retains the analytical performance of single-reporter methods while conserving time and resources and reducing sample size requirements. This assay allows essentially double the serological information to be generated from a blood sample in half the time.

Autore in primo piano: Espansione dell'ambito dei dosaggi immunologici multiplex per la diagnostica della borreliosi di Lyme e la ricerca sui patogeni 

A three-channel dual-reporter fluorescence flow analysis system was used to develop a bead-based multiplex immunoassay that simultaneously evaluates serum samples for IgG and IgM elicited against multiple antigens of different Borrelia species that cause Lyme borreliosis in Europe and North America.

Rilevamento simultaneo di diverse classi di anticorpi in un test sierologico multiplexato

To monitor the progression of infectious diseases, it is useful to assess immunoreactivity against various antigenic determinants, and measure different ...

Esposizione umana alle zecche larvali per la ricerca sulle malattie trasmesse dalle zecche

A Model for Experimental Exposure of Humans to Larval Ixodes scapularis Ticks

Tickborne diseases are a significant public health problem in the United States and worldwide. Ticks are obligate blood-feeding arthropods; an ixodid tick must remain attached to the skin of the host and complete its multi-day feeding process to acquire its blood meal. Exposing animals to ticks is a common practice for studying host responses to tick bites and tickborne diseases. We developed the procedure, conducted the first human research study, and published the findings on exposing human volunteers to uninfected larval Ixodes scapularis ticks. This article describes the methodology used to construct the containment dressing, how to apply and secure the ticks to the host, how to maintain the dressing, and how to remove the ticks from the host. Exposing volunteers to tick bites is an experimental procedure and must be performed under a clinical research protocol approved by the appropriate regulatory authorities. This method allows for translational research to better understand the human response to tick bites and foster the development of diagnostics, prevention, and therapies for tickborne diseases.

Autore in primo piano: Modello di esposizione umana controllata per la ricerca sulle zecche e gli studi sulla malattia di Lyme

This article presents the methodology for exposing humans to larval Ixodes scapularis for clinical research. The technique is relatively simple, tolerable by the research volunteers, and can be modified according to experimental needs. Such research involving human subjects must be conducted under clinical study protocols approved by the appropriate regulatory authorities.

Un modello per l'esposizione sperimentale dell'uomo alle zecche larvali di Ixodes scapularis

Tickborne diseases are a significant public health problem in the United States and worldwide. Ticks are obligate blood-feeding arthropods; an ixodid tick ...

Rilevare il malattia di Lyme Spirochete, Borrelia Burgdorferi, in segni di graduazione utilizzando la PCR annidata

Riepilogo

Esplora Altri Video

Capitoli in questo video

Metodi per il trasferimento rapido e localizzazione di agenti patogeni malattia di Lyme All'interno della Gut Tick

Valutazione di una reazione a catena della polimerasi di trascrizione inversa nidificata universale per la rilevazione di Lyssaviruses

Alimentazione di zecche su animali per trasmissione e Xenodiagnosis a Lyme Disease Research

Metodi di coltivazione delle spirochete di Borrelia burgdorferi Sensu Lato Complex e febbre recidivante Borrelia

Manipolazione genetica mediata dai fagi della malattia di Lyme Spirochete Borrelia burgdorferi

Rilevamento simultaneo di diverse classi di anticorpi in un test sierologico multiplexato

Rilevamento simultaneo di diverse classi di anticorpi in un test sierologico multiplexato

Rilevamento simultaneo di diverse classi di anticorpi in un test sierologico multiplexato

Un modello per l'esposizione sperimentale dell'uomo alle zecche larvali di Ixodes scapularis

Un modello per l'esposizione sperimentale dell'uomo alle zecche larvali di Ixodes scapularis