組織解離と差動濾過により移植のためにミトコンドリアの迅速な単離および精製

要約

哺乳動物の組織生検からのミトコンドリアの迅速な単離のための方法が記載されている。ラット肝臓または骨格筋​​調製物は、商業的な組織解離をホモジナイズし、ミトコンドリアをナイロンメッシュフィルターを通して差動濾過により単離した。代替的な方法を用いて100分間 - ミトコンドリアの分離時間は60と比較して<30分である。

要約

以前に分画遠心法および/またはフィコール勾配遠心分離を用いてミトコンドリア単離方法が完了するまで60〜100分を必要とする。私たちは、商業組織の解離及び差動濾過を用いて、哺乳動物の生検からのミトコンドリアの迅速な単離のための方法を記載している。このプロトコルでは、手動の均質化は、組織解離の標準化された均質化サイクルに置き換えられる。これは、均一かつ簡単に手動均質化で達成されていない組織の一貫した均質化することができます。組織解離の後、ホモジネートを、繰り返し遠心分離工程を排除ナイロンメッシュフィルターを通して濾過する。結果として、ミトコンドリアの単離は、30分未満で行うことができる。この単離プロトコールは、0.18±0.04グラム（湿重量）組織サンプルから約2×10 ¹⁰の生存および呼吸有能なミトコンドリアをもたらす。

概要

ミトコンドリアは、赤血球を除く体内のあらゆる細胞に存在し、重要な細胞及び代謝過程^1-4の多数に関与している。そのため、これらの多くの機能により、ミトコンドリアの損傷は有害な影響^3を持つことができます。ミトコンドリア機能および機能不全を調べるために、いくつかのミトコンドリアの単離方法が記載されている。 1940 ^5-8ミトコンドリアアイソ日の最も早い公表さを占めています。最初の文書化された試みは、低速^5,8での塩溶液中で遠心分離し、乳鉢で肝組織を粉砕することにより、ミトコンドリアの単離を実証した。その後、他のグループは、元の手順の際に展開され、分画遠心^6-8に基づいて、組織の分別を実証した。これらの初期の方法は、しばしば均質化、および/ ​​または分画遠心^9-15を組み込む現在の技術の基礎を形成した。 homogenizati数ステップにし、遠心分離プロトコルによって異なります。これらの反復的な手順では、ミトコンドリアの分離のための時間を増加させ、最終的には実行可能性を減らすことができます。正しく^10,16を制御しない場合に加えて、手動の均質化は、ミトコンドリアの損傷や一貫性のない結果を引き起こす可能性があります。

最近では、心筋組織^17,18への移植のためのミトコンドリアを分離するために均質化および分画遠心を使用していました。この長時間の単離手順は、約90分を要し、このメソッドの臨床的適用可能性は、したがって限られていた。臨床的および外科的治療の急性治療的使用を可能にするために、私たちは30分未満で行うことができる迅速なミトコンドリアの単離法を開発した。

このプロトコルの主な利点は、標準化された組織解離が均一かつ簡単に手動均質化で達成されていない組織の一貫した均質化を可能にすることである。 ADDITでイオン、分画遠心の代わりに、差動ろ過の使用は、時間がかかり、高度に精製された実行可能な呼吸有能なミトコンドリアのより迅速な単離を可能にする、繰り返しの遠心分離工程を排除します。

30分未満で生存可能であり、呼吸有能なミトコンドリアを単離する能力は、臨床応用が可能となる。この分離プロトコルは、冠動脈バイパスグラフト術（CABG）および他の治療手順において使用するための可能性を有する。

プロトコル

準備

1. 1 M K-HEPES原液を（KOHでpHを7.2に調整）を準備します。
2. 0.5 M K-EGTAストック溶液を（KOHで8.0にpHを調整）を準備します。
3. 1MのKH ₂ PO ₄原液を準備します。
4. 1 MのMgCl ₂ストック溶液を準備します。
5. 均質化緩衝液（pH7.2）300 mMスクロース、10 mMのK-HEPES、および1mM K-EGTAを準備します。 4℃で保存。
6. 呼吸バッファー250mMスクロースを調製2mMのKH ₂ PO _4、10mMのMgCl _2、20mMのK-HEPES緩衝液（pH7.2）及び0.5mMのK-EGTA液（pH8.0）。 4℃で保存。
7. 1リットル中に再蒸留H ₂ O（pH7.4）中のNaCl 80グラムのKCl 2グラムのNa ₂ HPO ₄ 14.4gの、およびKH ₂ PO ₄ 2.4gの溶解して10倍のPBS原液を準備します。
8. 1リットル中に100ミリリットル10倍のPBSをピペットによって1×PBSを準備し、二重蒸留H ₂ O
9. ズブチリシンA 4mgの中を計量することによりサブチリシンA株式を準備1.5mlマイクロチューブに。使用するまで-20℃で保存してください。
10. 1.5mlマイクロチューブにBSA 20mgを秤量することにより、BSA株式を準備します。使用するまで-20℃で保存してください。

ミトコンドリアの単離（図1）

1. 分離の直前に、均質化緩衝液1mlにスブチリシンAを溶解する。
2. 分離の直前に、均質化緩衝液1mlにBSAを溶解する。
3. 氷上で50ミリリットルコニカル遠心管中で1×PBS中で6ミリメートル生検試料のパンチとストアを使用して2新鮮な組織サンプルを収集します。
4. 氷冷均質化緩衝液5mlを含む解離Cチューブに組織の2 6mmのパンチを転送します。
5. 組織解離に対する解離Cチューブをフィッティングすることにより、組織をホモジナイズし、予め設定されたミトコンドリアアイソレーション·サイクル（60秒均質化）を選択します。
6. アイスバケットに解離Cチューブを取り外します。
7. にサブチリシンA原液を250μlを追加ホモジネートは、転倒混和し、氷上で10分間ホモジネートをインキュベートする。
8. 均質化バッファーで氷とプリウェットフィルター上の50mlの円錐遠心管に40μmのメッシュフィルターを置き、氷上で50ミリリットルコニカル遠心チューブにホモジネートをフィルタリングします。
9. ろ液に新たに調製したBSA原液を250μlを加え、転倒混和。
   注：ミトコンドリアタンパク質の決定が必要な場合は、この手順を省略します。
10. 均質化バッファーで氷とプリウェットフィルター上の50mlの円錐遠心管に40μmのフィルターを置き、氷上で50ミリリットルコニカル遠心チューブにホモジネートをフィルタリングします。
11. 均質化バッファーで氷とプリウェットフィルター上の50mlの円錐遠心管に10μmのフィルターを置き、氷上で50ミリリットルコニカル遠心チューブにホモジネートをフィルタリングします。
12. で10分間、9,000×gで2予備冷却1.5mlマイクロチューブと遠心分離機にろ液を移し4ºC。
13. 上清を除去し、再懸濁し、氷冷呼吸緩衝液1mlにペレットを兼ね備えています。

ATPアッセイ

注：ATPルミネセンスアッセイはATPアッセイキットを用いて行うことができる単離されたミトコンドリアの代謝活性を測定するため。プロトコル、試薬および標準は、アッセイキットで供給された。手順の概要について説明する。

1. RTにキット試薬​​を平衡化する。
2. 蒸留水の1170μlの凍結乾燥したATPペレットを溶解することにより10 mMのATP原液を準備します。氷上で保存ATP標準原液、準備ミトコンドリアのサンプル。
3. 凍結乾燥した基質溶液のバイアルに基質緩衝溶液5mlを追加します。穏やかに混合し、暗所に置きます。
4. 黒、不透明な底の96ウェルプレートのすべてのウェルに呼吸緩衝液100μlを追加します。
5. Oよく準備のサンプルからそれぞれにミトコンドリアの10μl添加FA黒、不透明な底の96ウェルプレート。注：サンプルは、三連でプレーティングする。規格および陰性コントロール（呼吸バッファ）のための3つのウエルの行を含めます。
6. 標準やコントロールを含む、全てのウェルに、哺乳類細胞溶解液50μlを追加します。
7. 125 rpmでオービタルシェーカー上で5分間37ºCでプレートをインキュベートする。
8. インキュベーション中の10mMのATP原液から0.1ミリメートル、0.05ミリメートル、0.01ミリメートル、0.005ミリモル、0.001 mmであり、0.0001 mMのATPの濃度のATP標準を準備します。氷の上の基準を保管してください。
9. インキュベーション後、プレートマップ上に示されるように、対応するウェルに、ATP標準液10μlを加える。注：標準は二重に実施されている。
10. 各ウェルに再構成された基質溶液50μlを追加します。
11. 125 rpmで5分間、オービタルシェーカー上で37ºCでプレートをインキュベートする。
12. 分光光度計を用いて接続されたコンピュータ上で開くのGen5 1.11ソフトウェア。
13. "の下で新規アイテムの作成」をクリックして「実験」。
14. 「デフォルトのプロトコル」をクリックします。 「OK」をクリックしてください。
15. 左の列で、「プロトコル」、そして「プロシージャ」を選択します。
16. 「遅延」を選択します。夜12時10分00秒に設定します。 「OK」をクリックしてください。
17. 選択して「読み取り」。ドロップダウンメニューから「ルミネセンス」を選択します。読み取りタイプエンドポイント、積分時間0：01.00 MM：次のように他の設定を調整しSS.SS、フィルター1セット、排出穴、光学ポジショントップ、感度100、トッププローブ縦1.00ミリメートルオフセット。
18. プレートを分析する準備ができたら、一番上の行の「リード·プレート」アイコンをクリックします。 「読む」をクリックしてください。分光光度計が開いたら、左上隅にあるだけでなく、A1にしてトレイにプレートを置く。温度のボックスが開きます。 「読む」をクリックしてください。注：値が大きいほど、増加したATPレベルより高い代謝活性と相関する。

結果

組織解離および差動濾過を用いてミトコンドリアの単離における処理手順の概要を示す図が図1に示されている。合計手続き時間が30分未満である。

組織サンプルは、6mmの生検パンチを使用して得た。組織重量は0.18±0.04グラム（湿重量）であった。粒径計数によって決定されるように単離したミトコンドリアの数は2.4であった×10 ^10±0.1×10 6の骨格筋

ディスカッション

正常にこのプロトコルを使用してミトコンドリアを分離するためには、ミトコンドリアの生存能力を維持するために氷の上のすべてのソリューションおよび組織サンプルを維持することが不可欠である。氷上に維持した場合でも、単離されたミトコンドリアは^、19時間にわたって機能的活性の減少を示すであろう。私たちは、すべてのソリューションや追加が事前に準備することをお...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Sucrose	Sigma Aldrich	84100
HEPES	Sigma Aldrich	H4034
EGTA	Sigma Aldrich	E4378
Substilsin A	Sigma Aldrich	P5380
BSA	Sigma Aldrich	A7906
KH2PO4	Sigma Aldrich	P5379
MgCl2	Sigma Aldrich	M8266
NaCl	Sigma Aldrich	S6191
KCl	Fisher Scientific	P2173
Na2HPO4	Fisher Scientific	S374
ATPlite Luminescence Assay System, 1000 Assay Kit	Perkin Elmer	6016941
Equipment
50 mL Conical Tubes	BD	352098
40 μm Nylon Filters	BD	352340
GentleMACS C tube	Miltenyl Biotech	120-005-331
1.5 mL Eppendorf tube	Fisher Scientific	05-408-129
6 mm biopsy punch	Miltex	33-36
10 μm Pluristrainer	Pluriselect	43-500-10-03
Eppendorf Centrifuge 5415C	Marshall Scientific	EP-5415C
GentleMACS Dissociator	Miltenyl Biotech	130-093-235
96-well plates, tissue culture treated	VWR	82050-732
Rotomax 120 orbital shaker	Heidolph	544-41200-00
Synergy H4 Hybrid Multi-Mode  Microplate Reader	BioTek
Multisizer 4 Coulter Counter	Beckman Coulter	A63076
Oxytherm System	Hansatech Instruments
Hemacytometer	Fisher Scientific	267110