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  • 転載および許可

要約

陰イオン交換樹脂ベース方法、ウイルスのバイオエアロゾルの衝突によるサンプリングを示した液体に適応します。下流分子の検出と相まって、メソッドはバイオエアロゾルからのウイルスの簡便かつ高感度検出できます。

要約

このプロトコルは、ウイルスのカスタマイズされたバイオエアロゾル サンプリング メソッドを示します。このシステムでは、負荷電のウイルスの効果的な濃度の液体の衝突に基づく空気サンプリング装置をバイオエアロゾルから陰イオン交換樹脂が結合されます。したがって、樹脂はバイオエアロゾル サンプリング ワークフローの添加濃度ステップとして機能します。ウイルス粒子の核酸抽出が陰イオン交換樹脂、分子解析に適した結果サンプルから直接実行されます。さらに、このプロトコル記述特注バイオエアロゾルの商工会議所の様々 な環境条件や温度、湿度などの環境変数の連続的な監視を可能にするの下でウイルスを含んだバイオエアロゾルを生成する能力が風の速度、およびエアロゾル質量濃度。このプロトコルを使用しての主な利点は、そのまま従来液体リンカーンインピン ジャーへの直接比較によって評価ウイルス検出の感度の向上です。その他の利点には、多様な負荷電ウイルス、陰イオン交換樹脂 (サンプルあたり ~$0.14)、使いやすさと低コストを集中する可能性があります。デメリットがこのプロトコルの樹脂に吸着したウイルス粒子の感染性を評価できないと液体サンプリング バッファーの最適化の必要性が、インピン内で使用される可能性があります。

概要

このメソッドの目的は、バイオエアロゾルからのウイルスの負荷電の分子の検出を容易にする高感度バイオエアロゾル サンプリング プラットフォームを提供することです。微生物、ウイルス粒子を含むバイオエアロゾルの時間1の長時間生き残ることができます。バイオエアロゾル比較的長距離移動し、冷却塔の影響を受けた個人から 6 km の距離に位置する工業に由来するレジオネラ症の発生によって証明されるように発芽力と感染力を維持し、18 死亡者2で起因しました。人間バイオエアロゾルを介したウイルスの間接感染は複数の設定で発生することができ、学校やレストランの3,4におけるノロウイルス感染アウトブレイクの実証されています。同様に、ウイルスのバイオエアロゾル伝送生産設備5,間のウイルスの動きの主要な要因と見なされているこの経路で豚や家禽農場で農業設定で発生する可能性6,7,8,9

どの h5 型インフルエンザ ウイルスが検出された生きている動物のバイオエアロゾル市場中国でのデモで示すように、迅速な診断と発生防止のための対策の改善のためウイルスを含んだバイオエアロゾルの効果的なサンプリングを可能とアメリカ合衆国の1011。現在バイオエアロゾル サンプリング技術は異なるパーティクル キャプチャ原則の数を含む、インピン、サイクロン、インパクター、およびフィルター12に広く分類することができます。それはこのプロトコルのすべての利点を余すところなくカバーするの範囲とバイオエアロゾル; からウイルスのサンプリングのためのこれらのプラットフォームのデメリットを超えてただし、これらのサンプリング デバイスの大半がウイルスやバクテリオファージ13コレクションの最適化されていない記述できます。さらに、液体のインピン固体インパクターやフィルター14などのデバイスのサンプリングよりもより効果的にウイルスの感染性を維持するために考えと、ウイルス粒子の感染はしばしば否定的影響します。液体の衝突の 1 つの欠点はターゲットの希釈効果、ウイルスにコレクションの容器内の液体の比較的大きなボリューム (通常 ≥20 mL) で収集するために発生します。もう一つの重要な欠点を含む粒子を濃縮する液体インピンの最適効率 < サイズ150.5 μ M。ただし、固定は、ウイルス核酸とウイルス感染16,17の保存を高めることができるとこれらの装置の捕集効率を固体マトリックスに固定化によって改善できます。

我々 は以前陰イオン交換樹脂がキャプチャと F RNA バクテリオファージ、A 型肝炎ウイルス、ヒト アデノ ウイルスやロタウイルス18,19 を含む液体の行列からのウイルスの集中のための効果的なツールであることを示しています。 ,20。製造元によって定義された、本研究で陰イオン交換樹脂は機能性第四紀アミン グループの仲介する魅力と21液中の陰イオンのキャプチャ用いたポリスチレン強基本陰イオン交換樹脂.その結果、陰イオン交換樹脂は、net 負の表面電荷、多く腸管系ウイルス、インフルエンザ ウイルス、公共と動物の健康に関連するその他のウイルスなどのウイルスをキャプチャする予定です。

現在のプロトコルは、液体インピンに陰イオン交換樹脂の付加を含みます。このシステムでは、樹脂はインピン液体で捕獲したウイルス粒子のセカンダリ濃度ステップとして機能します。核酸は、小さなボリューム、分子解析の集中のサンプルを提供することで直接溶出することができます。したがって、このメソッドの主な利点は、主にサンプル量の削減を通じて、ウイルス検出感度の改善です。さらに、ウイルスの負荷電の固有の非特異的キャプチャ、ためメソッドは可能性があります興味のあるウイルスの大規模な数の検出のために適当。ここでは、メソッドは、ワクチン株の A 型と B 型のインフルエンザ ウイルスと FRNA ファージ MS2 (MS2) に示されています。これらのウイルスでは、前述の22として標準 qRT PCR の試金を使用して検出されます後。エンドポイント ユーザーは困難に遭遇、このメソッドを実行するために期待しないでください現在既存の修正装置はバイオエアロゾル サンプリング及び分析の従来の流れに大きな混乱を構成しません。

プロトコル

1. バイオエアロゾルの部屋のセットアップ (図 2参照)

  1. 20 ml の 0.01 M リン酸緩衝生理食塩水、pH 7.5 (PBS) の液体のインピンのスプリングプリ ロードします。
    1. 陰イオン交換樹脂の 0.5 g を追加し、1 つのコントロールとして別の液体インピンに液体のインピン PBS 中に一時停止します。
  2. クランプ スタンドを用いたネブライザーに直面してエアロゾル入り江バイオエアロゾル チャンバ内の並行位置液体インピン。
    注: 詳細については図 2を参照してください。
  3. ダイレクト読み取りエアロゾル モニター、バイオエアロゾルの質量濃度 (mg/m3) を測定する液体インピンの近くを共存します。
  4. 追加のダイレクト読み取りインストルメンテーション (室内空気質モニターと熱風速計) を共存環境変数、温度などを監視する液体インピンに近い湿度と風速度、バイオエアロゾル チャンバー内。
  5. エアロゾルの混合を容易にするバイオエアロゾル室の隅に軸流ファンを実行します。
    注: 軸流ファンは一定のスピードで走る、調節可能ではないです。

2. モデル Bioaerosolization 実験 (図 3参照)

  1. シリアル、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で必要な濃度に MS2 バクテリオファージとインフルエンザ ワクチンの 10 倍希釈を行います。
    注: 103.5型 A と B インフルエンザ ウイルス ワクチン株の FFU/mL と 10 をここでは、メソッドを示す5 Pfu/ml MS2 バクテリオファージが利用されています。抗体は、接種を判断するには、ファージが大腸菌HS (pFamp) R で伝達され、前述20として列挙します。商業ワクチン 4 ライブ弱毒ウイルス インフルエンザの知られている数量が含まれている、2 つはインフルエンザ ウイルスや FFU または蛍光フォーカス単位で表される、2 つの B 型インフルエンザ ウイルスを入力します。
  2. 100 mL の PBS でウイルス粒子の希望濃度の懸濁液を作成することによって 6 噴流衝突ネブライザーのガラス容器内で接種を準備し、カスタム バイオエアロゾル チャンバ内でインストールします。
  3. 温度、% の相対湿度、炭酸ガス濃度などのバイオエアロゾル チャンバー内の変数を測定し、(軸流ファンを使用して生成された) 風速の計測を開始します。ダイレクト読み取りエアロゾル モニターを使用して、バイオエアロゾル チャンバ内でマスの集中化を追跡し、内と試験間の一貫性を確立します。
  4. バイオエアロゾル チャンバーを密封し、HEPA フィルターの空気と 10 分のためのパージします。
  5. 6.9 kPa でネブライザーにフィルター処理された、乾燥した空気を提供します。
  6. 各バイオエアロゾル チャンバー試験でウイルス バイオエアロゾル (ネブライザー) を経由してターゲット濃度を生成します。このデモでは、5 mg/m3の濃度とバイオエアロゾルが生成されます。
  7. エアロゾルの対象質量濃度に達している、一度止めます。
  8. サンプリング ボリュームの一貫性を確保するため各サンプリング イベント前後に一次流量標準を用いた行動校正の 12.5 L/分の流量を調整して各の液体インピンの空気サンプリング ポンプを動作します。供給希釈は噴霧器の近くにある HEPA フィルターの行を使用して空気し、商工会議所で一定の圧力を維持します。
  9. 積極的にバイオエアロゾル炉内雰囲気のサンプル 1 サンプルあたり 500 L の採取量を達成するために 40 分の期間の。
    注: サンプリング、並列に 2 つのポンプで 12.5 L/分の 40 分間、バイオエアロゾルの 1,000 L のサンプリングのためことができます。したがって、実験終了でバイオエアロゾル チャンバー内の空気の大半のサンプリングし、HEPA フィルターのシステムを通じて、地球環境に放出ことが期待されます。これは、粒子濃度の減少によって証明されます。後の実験では、表面は 10% 家庭用漂白剤と 70% エタノールで除染します。指標は、このデモで使用されます。ただし、病原体はこのシステムで使用される知られている、その他バイオ セーフティ対策は必要に応じて実装可能性があります。

3. 核酸抽出と qRT PCR 検出

  1. 陰イオン交換樹脂から直接と、液体インピンの内で使用される液体からの比較の目的のための核酸を分離します。この例では、RNA の隔離プロシージャを説明すると、しかし、DNA ウイルスに類似したプロトコルを使用できます。
    1. 陰イオン交換樹脂からの核酸の分離。
      1. 滅菌 50 mL の円錐管に液体インピンの陰イオン交換樹脂を含む液体のすべてを転送します。
      2. 解決、樹脂と陰イオン交換樹脂から液体のサンプルをゆっくりとデカントします。陰イオン交換樹脂から残りの液体のすべてを削除するのにには、1 mL ピペット チップを使用します。
      3. ウイルス RNA 分離キットから陰イオン交換樹脂に直接キャリア RNA を含むウイルスの換散バッファーの 560 μ L を追加し、周期的な混合を室温で 10 分間インキュベートします。
      4. 1 mL のピペット チップを使用して転送ウイルス ライセート (ウイルスの換散バッファー) 滅菌 1.5 ml コニカル チューブし、RNA を続行ウイルス RNA の隔離を使用して分離キット (材料の表を参照してください) 製造元の指示に従ってを除いてその RNA は 60 μ L の溶出バッファーの総量で溶離されます。
    2. 液体インピンから核酸分離。
      1. 滅菌 1.5 mL の円錐管に液体のサンプルの 140 μ L をピペット、RNA を量 60 μ L の溶出バッファーで溶出を除いて、製造元の指示に従ってウイルス RNA 分離キットを使用しての RNA の隔離を実行します。
        注: 140 μ L は、シングル ステップの準備に従事する特定のウイルス RNA 分離キットで処理できる最大サンプル ボリュームです。
  2. QRT PCR 前述23,24MS2 とインフルエンザ A、B ウイルスの検出を実行します。このデモでは、核酸の波の 5 μ L、qRT PCR のため使用されます。

結果

図 1は、インピンの液状樹脂の含有によりバイオエアロゾルからウイルスのキャプチャを充電ベースの背後にある原理を示しています。図 2は、特注のバイオエアロゾルの部屋のセットアップを示しています。図 3では、エアロゾル化実験と措置の設定品質管理を確保するために必要な手順について説?...

ディスカッション

このプロトコルは、使用変更された液体インピン バイオエアロゾルから機密のウイルス キャプチャする方法をについて説明します。メソッドは、バイオエアロゾルのウイルス負荷の検出と定量に最適です。ここに示す特定の変更は、一般的な液体インピンに含まれる液体を陰イオン交換樹脂の付加を含みます。このメソッドは、遠心分離、ろ過、沈殿法などサンプル加工技術は、このよう?...

開示事項

著者が明らかに何もありません。

謝辞

この作業は、農業の保健及び安全性 (5U54OH008085) の CDC/NIOSH 高平原 Intermountain センターとコロラド州バイオ検出評価助成プログラム (14BGF 16) からの資金によって支えられました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Escherichia coli bacteriophage MS2 (ATCC 15597-B1)American Type Culture CollectionATCC 15597-B1
FluMist QuadrivalentAstraZenecaContact manufacturerViral constitutents of this vaccine are subject to change on an annual basis
CFX96 Touch Real-Time PCR Detection SystemBio-Rad1855195
Primers and probesIntegrated DNA TechnologiesNA
0.2 µM sterile filterNANA
1 L pyrex bottles or equivalentNANA
1 mL pipet tipsNANA
1 mL pipettorNANA
50 mL serological pipetNANA
PCR tubesNANA
Pipet-aid or equivalentNANA
QIAamp Viral RNA Mini KitQiagen52904
QuantiTect Probe RT-PCR KitQiagen204443
Amberlite IRA-900 chloride formSigma-Aldrich216585-500G
Phosphate buffered salineSigma-AldrichP5368-10PAK
Water (molecular biology grade)Sigma-AldrichW4502-1L
Eppendorf DNA LoBind Microcentrifuge TubesThermoFisher13-698-791
Falcon 50 mL Conical Centrifuge Tubes ThermoFisher14-432-22
Falcon Polypropylene Centrifuge TubesThermoFisher05-538-62
SuperScript III Platinum One-Step qRT-PCR Kit w/ROXThermoFisher11745100
SKC Biosampler 20 mL, 3-piece glass setSKC Inc.225-9593
Vac-u-Go sample pumpsSKC Inc.228-9695
Collison nebulizer (6-jet)BGI Inc.NA
HEPA capsulePALL12144
Q-TRAK indoor air quality monitor 8554TSI Inc.NA
Alnor velometer thermal anemometer AVM440-ATSI Inc.NA
SidePak AM510 personal aerosol monitorTSI Inc.NA
Bioaerosol chamberNANA

参考文献

  1. Pirtle, E. C., Beran, G. W. Virus survival in the environment. Revue scientifique et technique (International Office of Epizootics). 10 (3), 733-748 (1991).
  2. Nguyen, T. M., et al. A community-wide outbreak of legionnaires disease linked to industrial cooling towers--how far can contaminated aerosols spread?. The Journal of Infectious Diseases. 193 (1), 102-111 (2006).
  3. Marks, P. J., et al. Evidence for airborne transmission of Norwalk-like virus (NLV) in a hotel restaurant. Epidemiology and Infection. 124 (3), 481-487 (2000).
  4. Marks, P. J., et al. A school outbreak of Norwalk-like virus: Evidence for airborne transmission. Epidemiology and Infection. 131 (1), 727-736 (2003).
  5. Corzo, C. A., Culhane, M., Dee, S., Morrison, R. B., Torremorell, M. Airborne detection and quantification of swine influenza a virus in air samples collected inside, outside and downwind from swine barns. PLoS One. 8 (8), e71444 (2013).
  6. Anderson, B. D., et al. Bioaerosol sampling in modern agriculture: A novel approach for emerging pathogen surveillance. The Journal of Infectious Diseases. 214 (4), 537-545 (2016).
  7. Hietala, S. K., Hullinger, P. J., Crossley, B. M., Kinde, H., Ardans, A. A. Environmental air sampling to detect exotic Newcastle disease virus in two California commercial poultry flocks. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 17 (2), 198-200 (2005).
  8. Jonges, M., et al. Wind-mediated spread of low-pathogenic avian influenza virus into the environment during outbreaks at commercial poultry farms. PLoS One. 10 (5), e0125401 (2015).
  9. Otake, S., Dee, S. A., Jacobson, L., Torremorell, M., Pijoan, C. Evaluation of aerosol transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus under controlled field conditions. The Veterinary Record. 150 (26), 804-808 (2002).
  10. Wu, Y., et al. Aerosolized avian influenza A (H5N6) virus isolated from a live poultry market, China. The Journal of Infection. 74 (1), 89-91 (2017).
  11. Choi, M. J., et al. Live animal markets in Minnesota: A potential source for emergence of novel influenza A viruses and interspecies transmission. Clinical Infectious Diseases. 61 (9), 1355-1362 (2015).
  12. Haig, C. W., Mackay, W. G., Walker, J. T., Williams, C. Bioaerosol sampling: Sampling mechanisms, bioefficiency and field studies. The Journal of Hospical Infection. 93 (3), 242-255 (2016).
  13. Anderson, B. D., Lednicky, J. A., Torremorell, M., Gray, G. C. The use of bioaerosol aampling for airborne virus surveillance in swine production facilities: A mini review. Frontiers in Veterinary Science. 4, 121 (2017).
  14. Verreault, D., Moineau, S., Duchaine, C. Methods for sampling of airborne viruses. Microbiology and Molecular Biology Reviews. 72 (3), 413-444 (2008).
  15. Hogan, C. J. Sampling methodologies and dosage assessment techniques for submicrometre and ultrafine virus aerosol particles. Journal of Applied Microbiology. 99 (6), 1422-1434 (2005).
  16. Yu, K. -. P., Chen, Y. -. P., Gong, J. -. Y., Chen, Y. -. C., Cheng, C. -. C. Improving the collection efficiency of the liquid impinger for ultrafine particles and viral aerosols by applying granular bed filtration. Journal of Aerosol Science. 101, 133-143 (2016).
  17. Perez-Mendez, A., et al. Evaluation of a simple and cost effective filter paper-based shipping and storage medium for environmental sampling of F-RNA coliphages. J Virol Methods. 194 (1-2), 60-66 (2013).
  18. Chandler, J. C., et al. Field-based evaluation of a male-specific (F+) RNA coliphage concentration method. Journal of Virological Methods. 239, 9-16 (2017).
  19. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Concentration of enteric viruses from tap water using an anion exchange resin-based method. Journal of Virological Methods. 206, 95-98 (2014).
  20. Perez-Mendez, A., Chandler, J. C., Bisha, B., Goodridge, L. D. Evaluation of an anion exchange resin-based method for concentration of F-RNA coliphages (enteric virus indicators) from water samples. Journal of Virological Methods. 204, 109-115 (2014).
  21. Kammerer, J., Carle, R., Kammerer, D. R. Adsorption and ion exchange: Basic principles and their application in food processing. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 59 (1), 22-42 (2011).
  22. Chandler, J. C., et al. A method for the improved detection of aerosolized influenza viruses and the male-specific (F+) RNA coliphage MS2. Journal of Virological Methods. 246, 38-41 (2017).
  23. Friedman, S. D., Cooper, E. M., Calci, K. R., Genthner, F. J. Design and assessment of a real time reverse transcription-PCR method to genotype single-stranded RNA male-specific coliphages (Family Leviviridae). Journal of Virological Methods. 173 (2), 196-202 (2011).
  24. Selvaraju, S. B., Selvarangan, R. Evaluation of three influenza A and B real-time reverse transcription-PCR assays and a new 2009 H1N1 assay for detection of influenza viruses. Journal of Clinical Microbiology. 48 (11), 3870-3875 (2010).
  25. Cademartiri, R., et al. Immobilization of bacteriophages on modified silica particles. Biomaterials. 31 (7), 1904-1910 (2010).
  26. Michen, B., Graule, T. Isoelectric points of viruses. Journal of Appled Microbiology. 109 (2), 388-397 (2010).
  27. Turgeon, N., Toulouse, M. J., Martel, B., Moineau, S., Duchaine, C. Comparison of five bacteriophages as models for viral aerosol studies. Applied and Environmental Microbiology. 80 (14), 4242-4250 (2014).
  28. Vergara, G. G., et al. Evaluation of FRNA coliphages as indicators of human enteric viruses in a tropical urban freshwater catchment. Water Research. 79, 39-47 (2015).
  29. Tung-Thompson, G., Libera, D. A., Koch, K. L., de Los Reyes, F. L., Jaykus, L. A. Aerosolization of a human norovirus surrogate, bacteriophage MS2, during simulated vomiting. PLoS One. 10 (8), e0134277 (2015).

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