ヒト脳の高時間分解能陽電子放射断層撮影のための放射線トレーサー投与:FDG-fPETへの応用

要約

この原稿は、FDG-PET(定数注入およびボーラスプラス注入)のための2つの放射トレーサ投与プロトコルを記述し、それらをボーラス投与と比較する。16 s の時間的な解像度は、これらのプロトコルを使用して達成可能です。

要約

機能性陽電子放射断層撮影(fPET)は、ヒト脳内の分子標的を追跡する方法を提供する。放射性標識されたブドウ糖^{アナログ、18}F-フルオルデオキシグルコース(FDG-fPET)により、機能的磁気共鳴イメージング(fMRI)に近づく時間分解能を用いてグルコース代謝のダイナミクスを測定できるようになりました。ブドウ糖取り込みのこの直接的な尺度は、正常および異常な脳機能を理解し、代謝および神経変性疾患の影響を調査するための巨大な可能性を有する。さらに、ハイブリッドMR-PETハードウェアの新たな進歩により、fMRIとFDG-fPETを用いてブドウ糖と血液酸素の変動を同時に捕捉することが可能になりました。

FDG-fPET イメージの時間分解能と信号対雑音は、放射光放射の管理に大きく依存します。この研究は、2つの代替連続注入プロトコルを提示し、従来のボーラスアプローチと比較します。血液サンプル、タイムロックPET、MRI、実験刺激を取得し、非伝統的なトレーサー送達を管理する方法を提示する。視覚刺激を用いて、プロトコル結果は、16sの時間分解能を持つ個々のレベルの外部刺激に対するグルコース応答の皮質マップを示す。

概要

陽電子放射断層撮影(PET)は、臨床および研究の両方の設定で広く使用されている強力な分子イメージング技術です(最近の包括的なレビューについては、Heurling et al.¹を参照)。PETを用いて画像化できる分子標的は、放射線トレーサーの入手可能性によってのみ制限され、神経代謝受容体、タンパク質、^酵素2、3を画像化するために多数のトレーサーが開発されている。神経科学では、最も使用される放射線トレーサーの1つは、通常、脳ブドウ糖代謝の指標として解釈されるグルコース取り込みを測定^する18F-フルオロデオキシグルコース(FDG-PET)である。人間の脳は、シナ^{プス伝達6}の間にニューロンによって使用される脳ブドウ糖代謝^の4、5、および70-80%を満たすために、ブドウ糖の一定かつ信頼性の高い供給を必要とする。脳ブドウ糖代謝の変化は、精神医学的、神経変性、虚血^{状態7、8、9}を含む多数の条件を開始^し、寄与すると考えられている。さらに、FDG取り込みはシナプス^{活性10、11、12}に比例するとして、より広く使用されている血液と比較して、より直接的で、より少ない神経活動の指標と考えられる。酸素化レベル依存性機能磁気共鳴イメージング(BOLD-fMRI)応答。BOLD-fMRIは神経活動の間接的な指標であり、神経活動後の神経血管変化のカスケードに続いて起こる脱酸素ヘモグロビンの変化を測定する。

人間の脳のほとんどのFDG-PET研究は、脳ブドウ糖取り込みの静的画像を取得します。参加者は暗い部屋で目を開けて10分間静かに休む。完全な放射線トレーサーの用量は、数秒の期間にわたってボーラスとして投与され、参加者はさらに30分間休息する。取り込み期間に続いて、参加者はPETスキャナの中央に配置され、取り込みおよびスキャン期間の過程で累積FDG分布を反映したPET画像が取得されます。したがって、PET画像によってインデックス化されたニューロン活動は、取り込みおよびスキャン期間に対する全ての認知活動の累積平均を表し、スキャン中の認知活動に特異的ではない。この方法は、脳と神経機能の脳代謝に大きな洞察を提供しています。.しかし、時間分解能はスキャン期間に等しい(多くの場合〜45分、効果的にグルコース取り込みの静的測定を生み出す;これは認知プロセスおよび神経イメージングにおける一般的な実験中の神経反応と比較して好ましくない。限られた時間的解決のために、この方法は、グルコース取り込みの非特異的な指標を提供し(すなわち、タスクや認知プロセスにロックされていない)、被験者内変動の尺度を提供することができず、誤った科学的結論につながる可能性があります。シンプソンのパラド^ックス13に.シンプソンのパラドックスは、被験者間で計算された脳行動関係が必ずしも被験者内でテストされた同じ関係を示すものではないシナリオである。さらに、FDG-PETに機能的な接続対策を適用する最近の試みは、被験者間の接続性のみを測定することができます。したがって、接続性の違いはグループ間でのみ比較でき、個々の被験者に対して計算することはできません。被験者間の接続性^対策14は議論の余地があるが、被験者間で計算された測定は、疾患状態のバイオマーカーとして使用したり、個々の変動の原因を調べるために使用することはできないことは明らかである。

過去5年間で、臨床グレードの同時MRI-PETスキャナの開発とより広いアクセシビリティは、認知神経科学におけるFDG-PET^{イメージング2}に対する新たな研究の関心を引き起こしました。これらの開発により、研究者はBold-fMRI(約0.5−2.5秒)の基準に近づくFDG-PETの時間分解能を改善することに焦点を当てています。BOLD-fMRIの空間分解能はサブミリメートル解像度に近づくことができますが、FDG-PETの空間分解能は、ポジトロン^範囲15により、基本的に最大値の約0.54mm全幅(FWHM)に制限されています。動的FDG-PET取得は、しばしば臨床的に使用され、ボーラス投与法を使用し、リストモードデータをビンに再構築する。ボーラス動的FDG-PET法は、約100sの一時的な分解能を提供します(例えば、Tomasi et al.^16)。これは、静的なFDG-PETイメージングに比べて明らかに優れていますが、BOLD-fMRIに匹敵しません。さらに、FDGの血漿濃度はボーラスが投与された直後に減少するため、脳機能を検査する窓は限られている。

この実験ウィンドウを拡大するために、研究の一握り17、18、19、20、21は、以前に^{カーソン22}によって提案された放射性トレーサー注入法を適応^{させ、 23}.この方法では、「機能性FDG-PET」(FDG-f PET、BOLD-f MRIに類似)と記載されることがあり、ラジオトレーサは、PETスキャン全体(〜90分)の過程で一定の注入として投与される。注入プロトコルの目標は、時間の間にブドウ糖取り込みの動的変化を追跡するために、FDGの一定のプラズマ供給を維持することです。概念実証研究では、Villien et al.²¹は、一定の注入プロトコルと同時MRI/FDG-f PETを使用して、60sの時間分解能を持つチェッカーボード刺激に応答してグルコース取り込みの動的変化を示しました。その後の研究では、この方法を使用して、タスクロックされたFDG-f PET(すなわち、外部^刺激19にタイムロック)とタスク関連のFDG-f PET(すなわち、外部^刺激17に時間ロックされていない)を示しました。¹⁸⁾グルコース取り込み。これらの方法を用いて、60sのFDG-f PET時間分解能が得られており、これはボーラス法に対する実質的な改善である。予備データは、注入方法が20−60 s¹⁹の時間的分解能を提供できることを示している。

定一注入法からの有望な結果にもかかわらず、これらの研究の血漿放射能曲線は、注入方法が90分^{スキャン19、21}の時間枠内で定常状態に達するのに十分ではないことを示している。一定の注入手順に加えて、Carson²²はまた、スキャンの開始時に速やかに平衡に達し、その後、平衡で血漿放射能レベルを維持することを目標とするハイブリッドボーラス/注入手順を提案した。スキャンの期間。Rischka et al.^{20は最近、20%}のボーラスプラス80%の注入を使用して、この技術を適用しました。予想通り、動脈入力機能は、注入のみの^{手順19、21}を使用した結果と比較して、ベースラインレベルを上回り、より長い時間、より高い速度で持続した。

本論文では、輸液のみおよびボーラス/輸液放射レーサー投与を用いて高時間分解能FDG-f PETスキャンを取得するための取得プロトコルについて述べた。これらのプロトコルは90−95分の集録^時間19との同時MRI-PET環境の使用のために開発された。プロトコルでは、血液サンプルは、PET画像の後続の定量化のための血漿血清放射能を定量するために採取される。プロトコルの焦点は、BOLD-f MRI/FDG-f PETを用いて機能性神経イメージングのための注入方法の適用であるが、これらの方法は、同時MRI、BOLD-fの有無にかかわらず、任意のFDG-f PET研究に適用することができる。MRI、コンピュータ断層撮影(CT)、または他の神経画像が取得される。図 1は、このプロトコルの手順のフローチャートを示しています。

プロトコル

このプロトコルは、人間研究における倫理的行動に関するオーストラリア国家^声明24に従って、モナッシュ大学人間研究倫理委員会(承認番号CF16/1108 - 2016000590)によってレビューされ、承認されています。手順は、認定医学物理学者、核医学技術者、および臨床レントゲン写真家の指導の下で開発されました。研究者は、人間の電化放射線の管理のための地元の専門家やガイドラインを参照する必要があります。

1. 必要な機器と人員

1. スキャナー室、放射線化学研究室、一般材料については、材料の表を参照してください。無線トレーサには商用サプライヤーが使用されました。
2. 同時MRI-PET環境では、4人の人員を使用してスキャンを実行する放射線技師(RG)、放射線トレーサーの投与と血液サンプルの取得を監督する核医学技術者(NMT)、血液を紡ぐラボアシスタント(LA)、実験設計と刺激プレゼンテーションを監督する研究アシスタント(RA)。

2. 準備

1. NMTによるトレーサー用量製剤
   1. スキャンの過程で投与される注入量を計算します。このプロトコルでは、注入速度は95分以上0.01 mL/sである。したがって、95 分のスキャンでは、参加者は 0.01 mL/s x 60 s x 95 分 = 57 mL を受け取ります。
   2. 投与された生理生理生理生理液に希釈されるトレーサー用量を計算します。このプロトコルでは、260 MBqの総用量が95分以上参加者に投与される。この線量は、放射線被曝量を4.9 mSvに制限するために選ばれ、オーストラリア放射線防護・原子力安全庁(ARPANSA)の電離放射線への人への曝露に関するガイドラインに従って「低レベルリスク」の分類に留まるように^した25。中間注入点(47.5分)からT₀に戻って正しい260 MBqを減衰します。方程式 1 を使用して、A₀を解く
      
      A_tが注入の途中で放射能(MBq)である場合、A₀は初期放射能であり、λ はトレーサーに固有の放射性減衰定数です。FDG の場合、値は λ ≥ 0.693/T_1/2です。T_1/2^は18F(110分)の半減期です。
      注: この例では、A_t = 260 MBq、λ = 0.693/110、および t = -47.5 なので、A₀ = 350.942 MBq。
   3. 参加者に用量を管理するために使用される100 mL生理生理袋に必要な放射線トレーサー用量を計算します。生理食生用袋に必要な放射性トレーサーは5 mLの総容積まで希釈され、5 mLの注射器で描かれる。したがって、100 mL生理生理袋の場合、希釈係数は、放射性トレーサを用いてシリンジの5mL体積に加えて生理生理物の体積(100mL)である。この総体積105mLは、57mLの注入量で割った(すなわち、105 mL/57 mL= 1.842)。したがって、100 mL バッグに添加するために必要な 5 mL の体積の総放射能は、希釈係数の A₀ x (つまり、350.942 MBq x 1.842 = 646.44 MBq) です。生理生理生理生殖のために放射性トレーサーを無菌的に加える。
      注:生理生殖袋に添加される646.44 MBqの計算された活性は、注入の開始時に必要な活性であることに注意することが重要です。一般に、このプロトコルの用量は、投与前に15分〜1時間の間に調製される。したがって、放射性同位体の崩壊を考慮することが重要である。2.1.2 の方程式 1.時間(t)が用量の調製から活性が投与される日時までの合計分数である、A 0を解くことによって、A_t = 646.44 MBqを説明するために使用することができる。
   4. プライミング用量を準備します。袋から20mLを注射器に引き出し、キャップします。この20 mLシリンジとラベルを校正します。注射器は、放射能が生理食袋内に均等に分散していることを確認するためのリファレンスチェックとして校正されます。
   5. 用量を準備します。50 mLの注射器を使用して、赤いコンビストッパーで袋とキャップから60 mLを引き出します。このシリンジは、生理食袋に添加した時点から放射能の濃度が知られているため、較正されていない(ステップ2.1.3)。スキャンの準備ができるまで、両方の注射器を放射線化学実験室に保管してください。
      注:テルモシリンジはラベル付き体積より20%高くマークされているため、50mLのシリンジで60mLの体積を引き出す場合があります(つまり、50 mLシリンジは60mLにマークされています)。
   6. 基準用量を準備します。500 mLの容積フラスコを約480mLの蒸留水で充填します。18 FDG の¹⁰MBq をシリンジに描画し、スキャン開始時間(式 1 を使用)に減衰補正し、フラスコに追加します。より蒸留水で500 mLマークまでのボリュームを上にして、十分に混ぜます。注射器のキャリブレーション前および後のラベルを貼り付けます。
2. NMTによるスキャナールームの準備
   1. 参加者がスキャナーに配置されると、閉塞が発生した場合に注入または血液サンプルのラインを操作または回収する余地はほとんどありません。ラインの閉塞の可能性を最小限に抑えるために、スキャナールームを準備します。
   2. すべての採血装置が回収場所から簡単に手の届くところにあることを確認してください。カニューレの端と血液容器を保持する任意の表面にアンダーパッドを配置します。定期的な廃棄物や生物有害廃棄物のビンを採血場所から簡単に手の届くところに置いてください。
3. NMTによる注入ポンプ調製
   1. 参加者に接続する側のスキャナールームに注入ポンプを設置します。ポンプのベースの周りに鉛レンガを構築し、ポンプの前にリードシールドを配置します。参加者に注入を提供し、正しい注入速度が入力されていることを確認する注入ポンプのチューブを接続します。このプロトコルの場合、レートは 0.01 mL/s です。
   2. 参加者のカニューレに接続する前にチューブをプライムします。20 mLプライミング用量を注入ポンプに接続します。参加者に接続されるチューブの端に、3ウェイタップと空の20 mLシリンジを取り付けます。¹⁸F-FDG 溶液がプライミング用量からチューブを通って流れるようにタップが配置され、空のシリンジにのみ集められるようにします。
   3. 注入ポンプを15 mLの体積にプリプレットします。ポンプのプライムボタンを選択し、プロンプトに従ってラインをプライムします。
   4. プライミング用量の代わりに、50 mL用量注射器を注入ポンプに取り付けます。3ウェイタップの15 mLプライミング線量は、参加者がポンプに接続する準備ができるまでそこに残ることができます。
4. NMT、RA、および RG による参加者の準備
   1. スキャンの前に、6時間断食し、水(約2杯)のみを消費するように参加者に勧めます。
   2. RAに同意手続きを行い、追加措置(人口調査、認知電池など)を取得しさせる。NMTおよびRGに安全スクリーン、PETスキャンのためのNMTレビューの安全性(例えば、妊娠、糖尿病、化学療法または放射線療法の過去8週間の除外、および既知のアレルギー)、およびRGレビュー参加者の安全性(例えば、妊娠、医療または非医療用金属インプラント、取り外し不可能な歯科インプラント、閉所恐怖症の除外)
   3. 参加者をカニューレします。
      1. 2つのカニューレを使用します:1つは用量投与用、もう1つは血液サンプリング用です。最も適切なカニューレは参加者によって異なりますが、最も適切な静脈は採血のために予約する必要があります。22 G カニューレは、好ましい最小サイズです。カナリング中に10 mLベースライン血液サンプルを採取します。ラインの遅延を維持するために圧力の下ですべての生理生理物のフラッシュを切断します。
      2. 参加者の血糖値および他のベースライン血液測定(例えば、ヘモグロビン)をベースラインサンプルからテストする。
5. RG および NMT によるスキャナーでの参加者の位置決め
   1. RG をスキャナーボアの参加者に配置します。長いスキャンのために、参加者が脱落し、不快感による動きのアーティファクトのリスクを減らすために慰めを確保することが不可欠です。参加者は快適な体温を維持するために使い捨て毛布で覆われるべきです。
   2. NMTは、注入ラインを接続する前に、最小限の抵抗で特許であることを確認するためにカニューレを洗い流します。一度接続すると、チューブは手首の近くに軽くテープで留めることができます。参加者に腕をまっすぐに保つように指示します。快適さのために泡やクッションなどのサポートを使用してください。NMTはまた、それが最小限の抵抗で血液を引き出すことができることを確認するために、血漿サンプルに使用されるカニューレをチェックしてもらいます。参加者がスキャナにいる間にカニューレをよりアクセスしやすくするために、通常の生理生理生理でプライミングされた延長チューブを接続する必要があるかもしれません。これが必要な場合は、漏れが確認されている必要があります。
   3. 被験者がスキャナーボアに入ったら、両方のカニューレに適切にアクセスできることをNMTにチェックしてもらいます。
   4. NMTは、血液採取カニューレ、輸液カニューレ、または注入ポンプ(例えば、閉塞、バッテリー、浸潤)に問題がある場合は、スキャン中にいつでもRGおよびRAに通知する。

3. 参加者をスキャンする

1. NMT、RG、および RA を使用してスキャンを開始する
   1. スキャンの開始時に、スキャナールームにNMTを座って注入装置を監視します。NMTが聴覚保護を装着し、バリアシールドを使用して、可能な限り線量からの放射線被曝を最小限に抑えることを確認してください。
   2. RG はローカライザ スキャンを実行して参加者が正しい位置にあることを確認しますので、PET 取得の詳細を確認します (スキャン期間、リスト モード データ収集、正しい同位味座など)。
   3. PET の取得が最初の MRI シーケンスで開始できるようにプロトコルを設計します。RG は MRI シーケンスを準備して開始します。95分PET取得の開始時刻は、MRIシーケンスの開始までタイムロックされます。必要に応じて、NMTはPET取得時にボーラスを提供する必要があります(図1)。
   4. 注入ポンプを起動します。RGは、PET取得の開始後にポンプ30sを開始するためにNMT(例えば、親指アップサインを介して)に信号を送る必要があります。このプロトコルは、スキャン開始時間の後に注入ポンプ30sを開始し、スキャン障害の場合に安全バッファを提供する。これはまた、PETスキャン中に撮影された最初の画像が、完全な時間活動曲線データ収集のための放射線トレーサー投与の前に脳をインデックス化することを保証します。NMTがポンプを観察^して、18FDGが注入され始め、ラインの即時閉塞がないことを確認します。
   5. RAに合意された時間(すなわち、機能的実行/実験ブロックの開始時)に外部刺激を開始し、血液サンプルの時間を計算しあいます。レコードフォームの例は、補足 1に示されています。RAに各血液サンプルの予測時間を計算し、NMTおよびラボアシスタント(LA)にコピーを提供しさせる。RAは、NMTがほぼ正しい時間に血液サンプルを採取し、装置(例えば、注入ポンプ、刺激)にエラーの兆候がないか監視するようにする。
2. 一定の時間間隔で血液サンプルを採取する
   1. NMT と RA に 10 分ごとに 1 つのサンプルを採取し込む。通常、ベースラインサンプルを含まない合計10個のサンプルがあります。
   2. PETスキャンと同時にMRIスキャンを取得する場合は、スキャナールームに入るときにNMT摩耗聴覚保護を受け取ります。
   3. NMTは手袋を着用し、カニューレの先端をきれいに洗い出します。カニューレ部位が乾燥している間、5 mLと10 mLの注射器、バキュテーナー、および10 mLの生理生理生理物のフラッシュを開きます。
   4. 5 mL注射器を使用して、新鮮な血液の4-5 mLを撤回し、バイオハザード廃棄物中の注射器を廃棄します。
   5. 10 mL注射器を使用して、最大10mLの血液を引き出します。体積は、血液をどれだけ簡単に引き出すことができるかによって制限されるかもしれません。その後、血液を含む赤血球に損傷を引き起こす任意の抵抗を最小限に抑えることが重要です。中間集合点で、RAへのNMT信号を持って、この時間をレコードフォーム(補足1)にサンプルの「実際の」時間としてマークします。
   6. 10 mL注射器を血管に接続し、関連する血液管に血液を堆積させます。
   7. カニューレを10mLの生理生理生理生理で素早く洗い流し、圧力下で切断し、ライン凝固の可能性を最小限に抑えます。
   8. 直ちに血液サンプルを放射線化学研究室に持って行き、分析を行います。
3. LAで血を紡ぐ
   1. LAにすべての機器を用意してもらい(表1)、手袋を着用してください。サンプル用に3つのラックを用意します:1つは血液管用、1つはサンプルをピペッティング用、もう1つはピペテッドサンプル用、もう1つはピペテッドサンプル(事前およびカウント後)です。
      1. LAは、特に計数チューブを取り扱う場合は、手順全体を通して定期的に手袋を交換してください。LAが手袋に放射性プラズマ汚染がある場合は、計数チューブに移され、サンプルの記録数を誤って増加させることができる。
   2. 血液サンプルは、血液サンプルが採取された時間とカウントされた時間が記録されたので、人員配置リソースの可用性が許す限り遠心分離機に置くことができます。724 x gの相対遠心力ですべてのサンプルを回転させます。このプロトコルに使用される遠心分離機の設定は、加速度と減速曲線を 8 に設定した 5 分間の 2,000 rpm です。
   3. サンプルがスピンされたら、チューブをピペッティング ラックに入れます。チューブキャップを取り外し、サンプルの分離を妨げないようにします。ラベル付きの棚管をラックに置きます。ラベルは、血液チューブに対応する必要があります。
   4. 先端がピペットにしっかりと固定されていることを確認します。任意の点滴のための準備ができてティッシュを持っています。血管から血漿の1,000 μLを着実にピペットし、計数管に移し、計数管および血液管の蓋を取り替える。
   5. カウントチューブをウェルカウンターに入れ、4分間カウントします。これは、PET 取得開始時刻の後続の修正に必要です。スキャン中の後の時点で、LAにサンプルのバックログを避けるために各ステップを連続して実行しさせる。
   6. バイオハザードバッグに血液製品の廃棄物を処分してください。

結果

スタディ固有の方法
ここでは、代表的な結果に関する研究固有の詳細を報告する。これらの詳細は手順にとって重要ではなく、研究によって異なります。

参加者とタスク設計
参加者(n=3、表2)は、同時BOLD-fMRI/FDG-f PET試験を受けた。この原稿はPET取得プロトコルに焦?...

ディスカッション

FDG-PETは、脳ブドウ糖代謝の指標であるグルコース取り込みを測定する強力なイメージング技術です。現在までに、FDG-PETを使用したほとんどの神経科学研究は、^{スキャン2}の過程ですべての代謝活性の不可欠を表す静的画像分解能を用いた従来のボーラス投与アプローチを使用する。この原稿は、注入のみ(例えば、Villien et al.、Jamadar et al.^19,21)および

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Blood Collection Equipment
--12-15 vacutainers	Becton Dickinson, NJ USA	364880	Remain in sterile packaging until required to put blood in tube
--12-15 10mL LH blood collecting tubes	Becton Dickinson	367526	Marked with the sample number (e.g., S1, S2…) and subsequently marked with the sample time (e.g., time 0 + x min [T0+x])
--2-15 10mL Terumo syringe	Terumo Tokyo, Japan	SS+10L	These are drawn up on the day of the study and capped with the ampoule that contained the saline
-- pre-drawn 0.9% saline flushes	Pfizer, NY, USA	61039117
--12-15 5mL Terumo syringes	Terumo Tokyo, Japan	SS+05S	Remain in sterile packaging until ready to withdraw a blood sample
Safety & Waste Equipment			All objects arranged on a plastic chair inside the scanner room on the same side as the arm from which the blood samples will be taken. Biohazard and non-biohazard waste bags to be used. Gloves and waste bags to be easily accessible when preparing the radioactivity in the dispensing area and when pipetting the plasma samples. Biohazard and non-biohazard waste bags to be used. All waste generated is checked with the Geiger counter to ensure that radioactive contaminated waste is stored until it is safe to be disposed of according to Australian Radiation Protection and Nuclear Safety Agency (APRANSA) guidelines for Radiation protection series No.6 (2017).
-- Gloves	Westlab, VIC, Australia	663-219
-- waste bags	Austar Packaging, VIC, Australia	YIW6090
--cello underpads ‘blueys’ Underpads 5 Ply	Halyard Health, NSW, Australia	2765A
--Blue Sharpie pen	Sharpie, TN, USA	S30063
Dose Syringes			Remain in sterile packaging until ready for use. All syringes used in this facility have an additional 20% volume capacity above the stated volume on the packaging. This is important for the 50mL syringe where the total capacity of 60mL is used
--5mL	Terumo Tokyo, Japan	SS+05S
-- 20mL	Terumo Tokyo, Japan	SS+20L
--50mL	Terumo Tokyo, Japan	SS*50LE
--1 Terumo 18-gauge needle	Terumo Tokyo, Japan	NN+1838R	Remain in sterile packaging until ready to inject [18F]FDG into the saline bag
--100mL 0.9% saline bag	Baxter Pharmaceutical, IL, USA	AHB1307	Remain in sterile packaging until ready to inject [18F]FDG
Radiochemistry Lab Supplies
--Heraeus Megafuge 16 centrifuge; Rotor Bioshield 720	ThermoScientific MA, USA	75004230	Relative Centrifugal Force = 724 Our settings are 2000RPM for 5mins. Acceleration and deceleration curves set to 8
--Single well counter	Laboratory Technologies, Inc. IL, USA	630-365-1000	Complete daily quality control (includes background count) and protocol set to 18F and 4mins. Cross calibration is performed between the well counter, dose calibrator and scanner on a bi-monthly basis.
--Pipette	ISG Xacto, Vienna, Austria	LI10434	We use a 100-1000 μL set to 1000μL. It is calibrated annually.
--12-15 plasma counting tubes	Techno PLAS; SA Australia	P10316SU	Marked in the same manner as the LH blood tubes
--12-15 pipette tips	Expell Capp, Denmark	5130140-1
--3 test tube racks	Generic		Checked with a Geiger counter to ensure there is no radiation contamination on them
--500mL volumetric flask and distilled water	Generic		Need approximately 500mL of distilled water to prepare the reference for gamma counting
--Synchronised clocks in scanner room, console and radiochemistry lab	Generic		Synchronisation checks are routinely completed in the facility on a weekly basis
--Haemoglobin Monitor	EKF Diagnostic Cardiff, UK Haemo Control.	3000-0810-6801	Manufacturer recommended quality control performed before testing on participant’s blood sample.
--Glucometre	Roche Accu-Chek	6870252001	Accu-Chek Performa is used to measure participant blood sugar levels in mmol/L. Quality control is performed daily using high and low concentration solution control test.
Cannulating Equipment			Check expiry dates and train NMT to prepare aseptically for cannulation.
--Regulation tourniquet	CBC Classic Kimetec GmBH	K5020
--20, 22 and 24 gauge cannulas	Braun, Melsungen Germany	4251644-03; 4251628-03; 4251601-03
--tegaderm dressings	3M, MN USA	1624W
--alcohol and chlorhexidine swabs	Reynard Health Supplies, NSW Australia	RHS408
--0.9% saline 10mL ampoules; for flushes	Pfizer, NY, USA	61039117
--10mL syringes	Terumo Tokyo, Japan	SS+10L
--3-way tap	Becton Dickinson Connecta	394600
--IV bung	Safsite Braun PA USA	415068
--Optional extension tube, microbore extension set	M Devices, Denmark	IV054000
Scanner Room Equipment
--Siemens Biograph 3T mMR	Siemens, Erlangen, Germany
--Portable lead barrier shield	Gammasonics	Custom-built	MR-conditional lead barrier shield. Positioned at the 2000 Gauss line with the castors locked to provide additional shielding of the radioactivity connected to the infusion pump.
--Infusion pump BodyGuard 323 MR-conditional infusion pump	Caesarea Medical Electronics	300-040XP	MR-compatible. This model is cleared for use on 1.5 and 3T scanners at 2000 Gauss with castors locked.
--Infusion pump tubing	Caesarea Medical Electronics	100-163X2YNKS	Tubing is administration set with an anti-siphon valve and male luer lock (REF 100-163X2YNKS).
--Lead bricks	Custom built		Tested for ferromagnetic translational force
Other Equipment
--Syringe shields	Biodex, NY USA	Custom-built	There is a 5mL tungsten syringe shield that is MR-safe, as well as a 50mL lead shield that has been tested for ferromagnetic attraction prior to use in the MR-PET scanner. It is used to transport the radioactive dose from the radiochemistry lab into the scanner to minimise radiation exposure to the NMT.
--Geiger counter Model 26-1 Integrated Frisker	Ludlum Measurements, Inc. TX USA	48-4007	This is calibrated annually and used to monitor potential contamination and waste. It is not taken into the MR-PET scanner.