ヒト末梢リンパ球におけるγH2AXと53BP1の二重免疫蛍光法

要約

このプロトコルは、ブレオマイシン処理されたヒト末梢リンパ球の間期核におけるγH2AXおよび53BP1病巣の同時検出を通じて、DNA二本鎖切断の形成および修復を評価する方法を提示する。

要約

二本鎖切断(DSB)は、細胞核に発生する可能性のある最も重篤な病変の1つであり、修復されない場合、癌を含む重篤な結果につながる可能性があります。したがって、細胞はDSBを修復するための複雑なメカニズムを備えており、これらの経路には、Ser-139(すなわちγH2AX)およびp53結合タンパク質1(53BP1)のリン酸化形態のヒストンH2AXが含まれます。両方のタンパク質はDSBの部位で病巣を形成する可能性があるため、これらのマーカーの同定は、DSBとその修復速度論の両方を研究するのに適した方法と考えられています。γH2AXと53BP1病巣の形成につながる分子プロセスによると、2つのDNA損傷マーカーを同時に検出することによってDSBを定量できる代替アプローチを設定するために、DSB付近でのそれらの共局在を調べることがより有用である可能性があります。したがって、このプロトコルは、二重免疫蛍光におけるγH2AXおよび53BP1病巣の存在を介して、放射線模倣剤ブレオマイシンによってヒトリンパ球に誘導されるゲノム損傷を評価することを目的としています。この方法論を用いて、ブレオマイシン誘発性DSBの修復動態を研究する予備的な試みとして、γH2AXと53BP1病巣の数の経時的な変化も明らかにしました。

概要

DNA損傷は、細胞の酸化的代謝によって生成されるROSなどの内因性、または化学物質と物理的の両方の外因性の薬剤によって継続的に誘発されます¹。最も有害な病変の中で、二本鎖切断(DSB)は、染色体異常を引き起こし、それが発がんプロセスを開始する可能性があるため、ゲノム不安定性に寄与する上で基本的な役割を果たします。したがって、細胞はDSBを修復する複雑で効率的なメカニズムを備えている²。

DSBが発生すると、細胞はDNA損傷応答(DDR)をトリガーし、MRE11 / RAD50 / NBS1複合体とともに、ATMまたはATRキナーゼが動員され、細胞周期を遅くしたり停止したりする他のタンパク質を活性化します³。これらのキナーゼの必須標的はヒストンH2AXであり、これはDSBから数メガ塩基以内のSer-139上でリン酸化され(すなわちγH2AX)、それによってBRCA1およびp53結合タンパク質1(53BP1)³などのいくつかの修復因子の動員を可能にする。その後、相同組換え(HR)、非相同末端結合(NHEJ)、または一本鎖アニーリング(SSA)の間の1つの経路がトリガーされ、DSBが修復されます^4,5。したがって、53BP1はHRまたはNHEJの選択を決定することに関与し、主に^HR6ではなくNHEJの活性化を促進します。さらに、H2AXヒストンのリン酸化型と53BP1の両方がDSBの部位に病巣を形成する可能性があります。これらの病巣は二本鎖の完全性が回復するまで持続するため、時間間隔内のγH2AXまたは53BP1病巣の出現/消失を評価することは、細胞系におけるDSBの発生および修復を評価するための有用な方法と考えられる^6,7。しかし、上記の分子プロセスによれば、γH2AXと53BP1病巣はDDR ^8,9の間にDSBの近くで共局在することが予想されるので、二重免疫蛍光においてこれらのマーカーの存在を同時に検出することは有用であり得る。

したがって、この原稿の目的は、放射性模倣剤ブレオマイシンによってヒト末梢リンパ球に誘発されるゲノム損傷を評価するためのγH2AXと53BP1病巣の同時定量の適合性を評価することでした。同じ方法論を使用して、以前に設定された実験手順¹⁰に従って、ブレオマイシン誘発性DSBの修復速度論を描写することも試みました。

プロトコル

研究はピサ大学の倫理委員会によって承認され、各ドナーから情報を得て署名された同意が得られました。

1. γH2AXおよび53BP1病巣の形成

1. サンプルの調製と変異原性治療
   1. 抗凝固剤としてリチウムヘパリンを含む採血(例えば、Vacutainer)チューブ内の健康な成人から静脈穿刺によって全血サンプルを収集する。
   2. 適切な血液サンプルの保存を保証するために、サンプリングから24時間以内に手順を開始してください。
   3. 300 μLのサンプルを、4.7 mLの完全培地(0.5%ペニシリン-ストレプトマイシン、0.75%フィトヘマグルチニン、10%FBS以前に不活性化、88.75%RPMI 1640)を含むチューブに加えます。
   4. 次に、硫酸ブレオマイシンを最終濃度5 μg/mLまで添加します。
      注意:硫酸ブレオマイシンは変異原です。皮膚への接触や吸入を避けてください。溶液を調製し、フードの下にサンプルを追加します。
   5. 各サンプルについて、ネガティブコントロール(変異原の非存在)を設定します。
   6. チューブを37°Cのサーモスタットに2時間入れます。
2. 固定
   1. サンプルを540 x g で室温で5分間遠心分離します。
   2. 上清を吸引し、ペレットを渦で再懸濁します。
   3. 5 mLの低張溶液(500 mLの脱イオン水に溶解した2.87 gのKCl)と400 μLの固定前溶液(5:3酢酸:メタノール)を加えて、赤血球の溶血を引き起こします。
   4. サンプルを540 x g で室温で5分間遠心分離します。
   5. 上清を吸引し、ペレットを室温で5 mLのメタノールに少なくとも30分間再懸濁して細胞を固定します。
   6. あるいは、使用時まで細胞を-20°Cで保存してください。
3. スライドの準備
   1. サンプルを540 x g で室温で5分間遠心分離します。
   2. 上清を吸引し、ペレットを5 mLの3:1メタノール:酢酸溶液に再懸濁します。これらの手順をもう一度繰り返します。
   3. 最後に、溶液を540 x g で室温で5分間遠心分離します。
   4. ペレットを再懸濁するのに十分な溶液(0.5 mL)を残して上清を再度吸引し、激しくピペットで移動し、再懸濁した細胞ペレットをスライドに落とし、風乾します。スライドは4°Cで保管してください。
4. 免疫蛍光
   注:免疫蛍光法は、標的自体に結合する一次抗体と、標的を局在化させることを可能にする一次抗体に結合する蛍光二次抗体を使用して、特定の細胞標的を同定するための免疫学的方法です¹¹。この場合、一次抗体としてマウスモノクローナル抗53BP1(1:50)およびウサギポリクローナル抗γH2AX(1:50)が使用され、二次抗体としてAlexaFluor568抗マウス(1:400)およびDyLight488抗ウサギ(1:200)がそれぞれ使用されます。
   1. スライドを50 mLの1x PBSでクープリンジャーで5分間2回洗浄します(スライド16枚を背中合わせに)。
   2. 次に、ブロッキング溶液(10 mLのFBS、10 mLの10x PBS、80 mLの脱イオン水、300 μLのTriton-X)で30分間保持します。
   3. ブロッキング溶液に溶解した一次抗体を含む2つの溶液のそれぞれを各スライドに10 μL加えます。スライドをパラフィンテープで覆い、4°Cで一晩インキュベートします。
   4. インキュベーション後、1x PBSで5分間3回の洗浄を行います。
   5. ブロッキング溶液に溶解した二次抗体を含む2つの溶液のそれぞれを各スライドに10 μL加えます。スライドをパラフィンテープで覆い、室温で2時間インキュベートする。
   6. 1x PBSで5分間3回洗浄します。
   7. アセンブリの前にカバーガラスにDAPIを含む退色防止溶液2.5 μLを加え、核を対比染色します。
      注:病巣動態を評価するために、手順は1.1から1.4で説明したのと同じであり、細胞採取と二重免疫蛍光は、ブレオマイシン治療後2時間後、および変異原を除去した後、治療後4時間、6時間、および24時間で実行されます。

2. 蛍光顕微鏡による分析

注:「蛍光顕微鏡」とは、蛍光を使用して画像を生成する顕微鏡を指します。試料は、蛍光色素によって吸収される特定の波長の光で照らされ、より長い波長の光を放出させます¹²。AlexaFluor568とDyLight 488は、それぞれ約568nmと488nmの光を吸収し、603nmと520nmの光を放出します。したがって、それらはそれぞれTRITCまたはFITCフィルターを使用して赤色または緑色の蛍光として可視されます。

1. 100倍の浸漬対物レンズの下で各スライドの焦点の存在をスコアリングします(図1)。
2. スライドごとに200個の核をスコアリングし、各核のγH2AX/53BP1病巣の数を数えます。
3. スコアリングされた全核あたりの病巣の平均数の観点から結果を表現します。これらには、γH2AX/53BP1陽性(少なくとも1つの蛍光シグナルを示す)および陰性(蛍光シグナルを示さない)の両方の核が含まれる。

結果

末梢リンパ球の蛍光顕微鏡分析によって得られたデータは、3つの主要な側面を評価することを可能にします:その変異原性効果によるγH2AXおよび53BP1病巣(したがってDSB)の数の増加におけるブレオマイシン治療の有効性、DSBの部位で両方の病巣がどの程度共局在しているか、およびブレオマイシン誘発性DSBの修復動態を描写するためのγH2AXおよび53BP1病巣の時間経過。予想通り、未処理細胞と?...

ディスカッション

γH2AXおよび53BP1病巣の免疫蛍光分析は、細胞系の間期核におけるゲノム損傷を評価するのに適した方法です。この手順には、実験の結果に影響を与える可能性のあるいくつかの重要なポイント、主に固定および透過処理に使用される薬剤、抗体の種類とその希釈因子、および変異原の濃度があります。

免疫蛍光法は、主にタンパク質である抗原を同定することが期待され...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
AlexaFluor 568 goat anti-mouse IgG (γ1)	Invitrogen	A21124	53BP1 secondary antibody
Bleoprim	Sanofi		bleomycin sulfate (mutagen)
Penicillin-streptomycin solution 100X	Euroclone	ECB3001D	antibiotics for culture medium
PBS 10X	Termofisher	14200075	Phosphate-buffered saline
FBS	Euroclone	EC20180L	Fetal Bovine Serum for immunofluorescence
Goat anti-rabbit IgG (H+L) DyLight 488 Coniugated	Termofisher	#35552	γH2AX secondary antibody
Mouse anti-53BP1 monoclonal antibody	Merck	MAB 3802	53BP1 primary antibody
Labophot 2	Nikon		Fluorescence microscope
P-histone H2AX (Ser139) rabbit antibody	Cell Signaling	#2577	γH2AX primary antibody
Phytohemoagglutinin	Termofisher	R30852801	component of culture medium
Prolong gold antifade reagent with DAPI	Cell Signaling	#8961	Antifade solution with DAPI for counterstaining
RPMI 1640	Euroclone	ECB9006L	Culture medium
Triton-X100	Sigma	T9284	Nonionic detergent for permeabilization