マウスにおける腎障害の糖尿病発症機序における全腎臓・髄質・皮質尿細管の比較プロテオミクス解析

要約

ここでは、腎臓全体、単離された皮質尿細管、および髄質プロテオームのプロテオミクス解析のための詳細なプロトコールを紹介します。また、この研究では、糖尿病マウスモデルと非糖尿病マウスの局所プロテオームも比較しています。

要約

腎疾患におけるイベントの順序を定義することは、腎臓専門医ツールキットの臨床診療の基礎です。組織プロテオミクス解析は、腎病態生理学の基本的な生理学的および分子的プロセスを理解するための重要なアプローチです。ここで紹介する方法とプロトコルは、疾患の後遺症に関連する関心のある各特定の領域における腎臓の分子解剖を可能にします。疾患が特定の腎臓領域や独自の機能を持つ構造に及ぼす影響を判断するために、このプロトコルの目標は、簡素化されたマウス腎臓の区画化と腎皮質尿細管分離技術を、合理化されたラベルフリーの定量的プロテオミクスワークフローと並行して実証することです。これらの方法を組み合わせることで、腎臓全体、髄質コンパートメント、および腎臓の皮質尿細管構造における摂動分子パターンの同定に役立ち、病理学的状況におけるシングルセルプロテオミクスの究極的かつ最終的な目標を達成します。これらの方法をほぼすべての疾患モデルに適用することは、腎機能障害に関連する病理学のメカニズムを描写するのに役立ちます。

概要

慢性腎臓病(CKD)は現代医学における主要な懸念事項であり、米国だけでも860億ドル以上の医療費が支出されています¹。世界中で、CKDの罹患率は、糖尿病の有病率および関連する腎併存疾患とともに増加しています。米国人口の14%近くがCKDを患っています(USRDS 2024年年次報告書)。また、糖尿病性腎症はCKDの一種であり、末期腎疾患(ESRD)の主な原因であり、ESRD患者の60%が糖尿病を患っています^1,2,3。糖尿病は、腎臓の機能単位であるネフロンのすべての腎臓構造と細胞型に影響を及ぼします。図1に示すように、ネフロンのさまざまな部分が腎臓皮質と髄質領域に含まれています。腎臓の大部分は尿細管で構成されています。腎尿細管機能障害と構造的病変は、糖尿病性腎症(DN)の発症に大きく寄与しており、これらの変化は腎機能の低下率とよく相関しています4,5,6,7,8。糖尿病の初期には、すべての尿細管セグメントにおけるグルコースとそれに伴うナトリウムの取り込みおよび膜輸送タンパク質の要求の増加に反応して、尿細管は肥大します。糖尿病の後半で微小血管損傷が増加すると、尿細管は萎縮と拡張を示しますが、線維化と間質の拡張があります⁹。私たちの研究室からの以前の研究では、糖尿病マウスの皮質尿細管に変化したプロテオームと豊富なストレス応答タンパク質が見つかりました^10,11。髄質は尿中濃度を調節するために重要であり、腎臓病中の機能障害は酸化ストレスと関連しており、糖尿病は代謝活動による酸素消費量の増加、膜輸送タンパク質の活性の増加、および微小血管損傷12,13,14により、腎臓のこの領域の酸素圧の低下につながります。

DNの発生と進行の詳細なメカニズムを理解することは、疾患のモデリングとシグナル伝達プロセスの分子プロファイリング、細胞タンパク質ダイナミクスの適応的変化、および慢性疾患の損傷の影響を受ける腎細胞および組織成分の正確な定義を呼び出す新しい統合的なアプローチを必要とする継続的な取り組みです。プロテオミクス、メタボロミクス、トランスクリプトミクスは、腎臓病の分子メカニズムを解析的に調べる可能性を提供します。オミクスは、システムバイオロジーのアプローチを利用して、生物学的システムをより包括的に理解する比較的新しい分野です。プロテオミクスは、ここ数十年で腎臓学における強力なオミクスツールとなっています。バイオマーカー研究は、出版物の増加に示されているように、過去20年間で拡大しましたが、これらの発見を臨床に完全に実装するには広範な作業が必要です¹⁵。尿細管細胞集団と、腎皮質と髄質内のそれぞれの機能的役割は大きく異なるため、腎臓全体のプロテオミクス分析では、これらの異なる領域内の特定の構造に関連する独自の変化を隠すことができます。したがって、この研究の目標は、腎皮質と髄質の分離、および糸球体からの皮質尿細管の分離を実証することであり、続いて、最先端の質量分析およびバイオインフォマティクス分析のための単離構造からのタンパク質抽出物の調製に関する詳細なプロトコルを示すことです。糖尿病性腎症のマウスモデルは、疾患の進行メカニズムを定義するのに役立ちます。本研究では、早期発症型のI型糖尿病を発症し、ヒトにおける早期および後期のDNの特徴であるOVE26トランスジェニックマウスを用いて、1)糸球体濾過率の早期上昇と後期低下、2)腎肥大、3)糸球体基底膜肥厚とメサンギウム拡大、4)重度のタンパク尿、5)尿細管間質性^{線維症9、16、17}。生後2か月のマウスを選抜して、明白な構造病変の前に尿細管コンパートメントのプロテオミクス変化を示しました。以前に報告され、図2に示されているように、生後2か月のOVE26マウスは、若い糖尿病マウスでは、近位尿細管(図2、黄色の矢印)に明らかな組織学的変化を伴わずに、糸球体メサンギウムマトリックスの拡大(図2、緑の矢印)と重度のタンパク尿¹⁷を示します。ここでは、腎臓全体、髄質、および皮質尿細管の特性評価のための複合定量的プロテオミクスアプローチを提示し、糖尿病の各コンパートメントのプロテオームの違いを解明し、説明します。

プロトコル

OVE26マウスとFVBマウスを用いた研究は、ルイビル大学動物管理委員会(IACUC)のガイドラインによって承認されました。トランスジェニック女性OVE26(糖尿病;株#:005564)およびFVB(非糖尿病;バックグラウンド株;Strain #:001800)マウスをJackson Laboratories(メイン州バーハーバー)から購入しました。動物は、25°Cで12時間の明暗サイクルで維持され、水と食物への自由なアクセスが与えられました。すべての研究は、生後2ヶ月のマウスで実施されました。

1.動物モデル

1. 腎臓の隔離
   1. 80 mg / kgケタミンと12 mg / kgキシラジンを腹腔内に投与することにより、マウスに麻酔をかけます。.
   2. 小さな手術用ハサミで腹部の正中線を切開し、綿棒を使用して腸をマウスの側面にゆっくりと移動させ、大静脈を露出させます。
   3. 右腎臓の上の大静脈に小さな切り込みを入れます。
   4. マウスを左心室に通して、20 mLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS:pH 7.4; 210 mg/L KH₂PO₄, 9 g/L NaCl, 726 mg/L Na₂HPO_4·7H₂O)蠕動ポンプを使用して、10 mL/分の速度で。
      注:腎臓に血液タンパク質と血液細胞を含めることが下流の分析において重要な要素でない場合、この手順は必要ありません。
   5. 小さな手術用ハサミを使用して腎臓を取り出します。腎臓の外側から余分な脂肪を取り除きます。腎臓の重さを量り、氷の上の冷たいPBSに入れます。
   6. 腎臓嚢を取り出します。
   7. 腎臓をガラス皿または氷の上にセットしたシャーレに置きます。かみそりの刃(図3)を使用して腎臓にいくつかの横方向の切り込みを入れ、腎臓の上極と下極の間に3〜4スライスします。
   8. 各腎臓から1〜2個の中央のスライスと2つの極( 図3の丸で囲まれた腎臓スライス)を「腎臓全体」サンプルとして確保します。一部を1.5 mLの遠心チューブに入れ、氷冷ホモジナイズバッファー(10%グリセロール、50 mM HEPES、100 mM KCl、2 mM EDTA、0.1% NP40、10 mM NaF、0.25 mM NaVO₃、1x HALTSプロテアーゼ阻害剤)を約10 μL/mgの組織サンプル(獲得腎臓重量から得られる腎臓切片の推定質量に基づく)に加えます。チューブを氷の上に置いておきます。
   9. 中央の横スライスの残りの部分については、スライスを平らに置き、かみそりの刃またはメスを使用して各スライスから皮質(外側1 mm)を慎重にスライスします(図3、概略ワークフロー)。皮質尿細管分離プロトコル(下記、ステップ1.3)のために、皮質を髄質領域から分離しておきます。
   10. 解剖した髄質の一部を1.5mLの遠心チューブに入れ、ステップ1.1.8のように氷冷均質化緩衝液を加え、チューブを氷上に置きます。
   11. 均質化に使用されなかった残りのすべての全腎臓および髄質片を液体窒素でスナップ凍結し、-80°Cで保存します。
2. あるいは、分離した腎臓全体と髄質のコンパートメントをすべて凍結し、ステップ1.1.11の説明に従って保管します。.ステップ1.1.8のように均質化バッファーを追加するために、後でそれらを保管庫から取り出します。
3. 皮質尿細管の分離
   1. 解剖した皮質をガラス皿またはシャーレの上でかみそりの刃で1〜3mmの小片に刻み、ペーストを形成します。
   2. 刻んだ皮質を1 mLのIA型コラゲナーゼ(1 mg/mL)で30分間、37°Cでロッキングウォーターバスで消化します。
   3. 氷上の50 mLコニカルチューブの上に100 μmのセルストレーナーを置きます。
   4. 消化した皮質懸濁液を100 μm細胞ストレーナーに置き、10 mLシリンジのプランジャーを使用してストレーナーを静かに押し込みます。ストレーナの上部を1mLのPBSで洗い、ストレーナの下側を1mLのPBSで洗います。
   5. 50 mLチューブ内の濾液を追加の100 μmストレーナに通し、ストレーナーの上部を1 mLのPBSで洗浄します。
   6. 濾液を70 μmのセルストレーナーに通し、氷上に50 mLのコニカルチューブの上に置きます。尿細管はこのストレーナを通過して濾液に入ります(糸球体は70μmのストレーナに保持されます)。ストレーナーを1mLのPBSで洗います。
   7. 最終濾液を120 × g で4°Cで2分間遠心します。 尿細管ペレットから余分なPBSを廃棄します。
   8. 皮質尿細管ペレットの純度は、10倍対物レンズを使用して顕微鏡で可視化します。画分の10%以上に糸球体が含まれている場合は、濾液を1 mLのPBSで再懸濁し、ストレーナーを追加で洗浄せずに清潔な70 μmセルストレーナーを通過します。
   9. 濃縮尿細管画分を1.5 mLの遠心チューブに分配し、2000 × g で4°Cで2分間遠心します。 上清を捨てます。
   10. 腎臓全体および髄質と同様に、尿細管ペレットに均質化バッファーを添加します(ステップ1.1.8および1.1.10)。
4. 組織均質化/タンパク質抽出
   1. 1.5 mL チューブ専用のプラスチック製乳棒を使用して、1.5 mL 微量遠心チューブで各サンプルタイプを均質化します。均質化された懸濁液が厚すぎる場合は、必要に応じて均質化バッファーを追加します。
   2. 均質化された懸濁液を氷上に15分間放置し、続いてバスソニケーター(オン/オフスイッチのみ、ユニットの調整可能な設定なし)で5分間超音波処理し、25°Cのバスに水を入れます。 サンプルを氷上に10分間放置します。
   3. 短時間ボルテックス(1000-1500 RPM)でホモジネートし、次にピペットで20回回転させ、さらに15分間氷上に置きます。
   4. 13,000 × g で4°Cで20分間遠心分離する前に、サンプルを数回粉砕します。
   5. 透明化したタンパク質抽出物をきれいなチューブに移します。
   6. 30 μLの透明抽出物をアリコートして、タンパク質の推定と質量分析用のサンプル調製を行います。残りのサンプルは-80°Cで保存します。

2. Suspension-Trap mini スピンカラム消化プロトコール

1. タンパク質のトリプシン断片へのタンパク質分解消化によるプロテオミクス解析
2. ~40-50 μg のサンプル (~2 μg/ μL) をサンプル溶解バッファー (10% w/v ドデシル硫酸ナトリウム [SDS] 含有 100 mM 重炭酸トリエチルアンモニウム (TEA-BC) pH 8.5、40 mM トリス (2-カルボキシエチル) ホスフィン [TCEP]) に希釈し、最終容量 46 μL にします。
3. タンパク質の還元とアルキル化
   1. 65°Cで30分間インキュベートします(TCEPの最終濃度は20 mMです)。
   2. 液体クロマトグラフィー-質量分析(LC-MS)グレードの水に 0.5 M ヨードアセアミド 4 μL を加え、暗所で室温 (RT) で 30 分間インキュベートします (ヨードアセトアミドの最終濃度は 40 mM です)。
4. 5 μL の 12% w/w リン酸を LC-MS グレードの水に添加します (141 μL の 85% リン酸を 859 μL の水に希釈して 12% 溶液にします)。
   1. リン酸の代わりに、リン酸化ペプチド濃縮を行う場合は、トリフルオロ酢酸またはギ酸を使用してください¹⁸。
5. 350 μL の懸濁液トラップ結合バッファー (100 mM TEA-BC 含有 90% v/v メタノール/10% v/v 水、pH 7.55) を添加します。
6. サスペンショントラップ列にサンプルを追加します。固定角ローターでRTで4,000 × g で30秒間遠心分離し、各容量をカラムに通します。
7. 4x 400 μLの懸濁液トラップ結合バッファーで洗浄します。固定角ローターでRTで4,000 x g で30秒間遠心分離し、各洗浄液をカラムに通過させます。
   注意: SDSの除去を容易にするために、各洗浄後にローター内のカラムを180°回転させます。
8. 4,000 g でRTで1分間遠心分離し、結合バッファーを完全に除去します(消化中の滴下を防ぎます)。
9. サスペンショントラップカラムを清潔な収集チューブに移します。
10. LC-MSグレードの水(トリプシンプロテアーゼ、MSグレード)中の50 mM TEA-BC pH 8.5の125 μLに2.5-5 μgのトリプシンを加えます。サンプルに対するトリプシンの最終的な比率は1:20から1:10までです。
11. 47°Cで2時間インキュベートします(キャップを締めないでください。0 RPMに設定されたサーマルミキサーが推奨されます)。キャップに針で穴をあけると、サスペンショントラップの上部チャンバーに圧力がかかるのを防ぐことができます(圧力が増加すると、トリプシン溶液がカラムから滴り落ちます)。
12. 50 mM TEA-BC pH 8.5 の 80 μL を LC-MS グレードの水に添加します。固定角ローターで室温 4,000 g で 1 分間遠心分離し、各消化物をカラムに通します。
13. 80 μL の 0.2% v/v ギ酸を LC-MS グレードの水に添加します。4,000 g で固定角ローターのRTで1分間遠心分離し、ステップ2.11の消化物で回収します。
14. 50% v/v アセトニトリル 80 μL を LC-MS グレードの水に添加します。4,000 gの室温で固定角ローターで1分間遠心分離し、ステップ2.11の消化物で回収します。
15. 懸濁液トラップ溶出液は-80°Cで保存してください。
16. サンプルを真空濃縮器で乾燥させます。
17. 乾燥したサンプルを-80°Cで保存します。

3. HLB(Hydrophilic-Lipophilic Balance)カラムによるクリーンアップ

1. 溶液A(2%v/vアセトニトリル/0.1%v/vギ酸)とB(80%v/vアセトニトリル/0.1%v/vギ酸)を作製します。
2. サンプルを500μLの溶液Aに溶解します。
3. カラムを真空マニホールドに置き、1~2 mL/minのガス圧を加えます。
4. 500 μL の溶液 B を HLB カラムに加え、1 〜 2 mL/分でエキュートします。2回繰り返します。
5. 750 μL の溶液 A を HLB カラムに加え、1 〜 2 mL/分で排気します。2回繰り返します。
6. 清潔な 2 mL マイクロチューブを HLB カラムの下のラックに置き、サンプルを 500 μL の溶液 A にロードし、上記のようにガス圧をかけます。フロースルーを 2 回目にカラムに通します。
7. HLBカラムを廃液チューブの上に置き、500 μLの溶液Aを加えて、上記のように排気します。2回繰り返します。
8. 清潔な 2 mL マイクロチューブの上にカラムを置き、500 μL の溶液 B を加えて、上記のように排気します。2回繰り返します。
9. 溶出液を-80°Cで凍結し、真空濃縮器で乾燥させます。乾燥した残留物を-80°Cで保存します。
10. MS 分析の前に、残渣を 20 μL の 2% v/v アセトニトリル/0.1% v/v ギ酸に溶解します。分光光度計を使用して、205 nmの吸光度でペプチド濃度を推定します。

4. 質量分析

1. 一次元逆相液体クロマトグラフィー(LC)-MS/MS
   1. 等質量のペプチド(~600 ng)を1次元ナノLCに注入し、逆相C18カラムで分画します。
   2. イオントランスファーチューブを 250 °C に維持し、1.8 kV のスプレー電圧でペプチドを直接 MS に溶出します。
   3. データ依存の上位 20 イオンモードでスペクトルを取得し、最も強度の高い MS/MS フラグメントを分析キューから除去して、存在量の少ないイオンのイオンマッピングの深さを改善します。

5. データ解析とバイオインフォマティクス

1. データ処理手順
   1. PEAKS 12.0(LC-MS/MSデータ解析ソフトウェア)でスペクトルの割り当てとペプチドおよびタンパク質の同定を行った後、MetaboAnalyst 6.0(メタボロミクスデータ解析プラットフォーム)で単一因子統計解析アプローチ(https://www.metaboanalyst.ca/)を使用して、解析するタンパク質のリストを提出します。
   2. LC-MS/MS データ解析ソフトウェアを使用して、Mouse Reviewed FASTA データベースに対して厳密な偽発見率(FDR)基準(1% タンパク質およびペプチド)を使用してスペクトルを検索およびフィルタリングします。
      注:すぐに利用できる代替検索プログラムには、Maxquant、Proteome Discovererなど、広く使用されているオプションがあります。
   3. システインのカルバミドメチル化を固定修飾として指定します。メチオニンの酸化を変数修飾として指定します。
   4. リストをカンマ区切り値 (CSV) 形式に変換し、各列と行に割り当てられたグループ/サンプル ラベルに変換します。このフォーマットは、メタボロミクスデータ解析プラットフォームにおいて柔軟性があります。
   5. 欠損変数の 1/5 最小値ルールを使用して、欠損値を代入します。
   6. データをフィルタリングし、カットオフに 40% の分散が使用される四分位範囲を使用して、変動の大きい値を除外します。
   7. 値を中央値強度、log₁₀ 変換、平均中心化に正規化します。他の正規化アプローチを使用しますが、結果が異なる場合があることに注意してください。
   8. 対応のない方法で t 検定を p 値のカットオフ値 0.05 <実行します。この段階では、複数のテスト修正を実行します。
      注:この研究では、データ表示の目的で代表的なデータセットに対してこの補正は行われませんでした。
   9. 1.5倍変化(FC)とp<0.05の火山プロットを示します。
   10. ヒートマップを生成し、サンプルグループの部分最小二乗判別分析(PLSDA)および統計(投影の重要度変数[VIP])分析を実行します。
   11. フォローアップの潜在的な候補は、PLSDA分析で示されているように、1.5FCを上回るほど堅牢で、p-val < 0.05またはVIP>1.0のいずれかです。
   12. OVE26マウスの腎臓、尿細管、および髄質全体のプロテオームの違いを示すベン図を生成します。

結果

全体として、各サンプルタイプからの総タンパク質同定は、1)全腎臓(1438)、2)髄質(2145)、および皮質尿細管(1859)であった。MetaboAnalyst 6.0でのデータ処理、データフィルタリング、インピュテーションを経て、最終的に各腎臓コンパートメントのタンパク質同定を解析したのは、全腎臓(455)、髄質(997)、皮質尿細管(896)でした。 図4 は、OVE26糖尿病マ?...

ディスカッション

この技術的アプローチで提示される方法は、腎臓のさまざまな領域の比較プロテオーム分析を説明するように設計されています。ここでは、糖尿病マウス(OVE26)および対照マウス(FVB)の髄質および皮質尿細管を単離する方法を利用し、1次元LC-MS/MSおよびバイオインフォマティクス解析を行い、腎臓全体のプロテオームに加えて、腎臓の各部分のプロテオームの基本的な...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Collagenase type 1A	Millipore Signal	C9891
Exploris 480 Orbitrap	Thermofisher	https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/BRE725539	MS
Falcon Cell Strainer, 100 µm	VWR	21008-950
Falcon Cell Strainer, 70 µm	VWR	21008-952
Gibco PBS pH 7.4	Thermo	1001023
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail	VWR	PI78440
Iodoacetamide	Sigma Aldrich	I1149
MetaboAnalyst 6.0	MetaboAnalyst 6.0	https://www.metaboanalyst.ca/	metabolomics data analysis platform
NanoDrop 2000	Thermofisher	https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/ND-2000
Oasis HLB column	Waters	186002034
PEAKS 12.0	Bioinformatics Solutions Inc		LC-MS/MS data analysis software
Pestle for 1.5 mL Microtube	Fisher Scientific	NC0782485
Suspension Trap (S-trap)	Protifi	C02-micro-10
TCEP	ThermoFisher Scientific	20490
TEABC	Sigma Aldrich	T7408
Trypsin Protease, MS-Grade	ThermoFisher Scientific	90057
Ultrasonic Cleaner	Cole-Parmer	Model 0884900