Farelerde Böbrek Hasarının Diyabetik Patogenezinde Tüm Böbrek, Medulla ve Kortikal Tübüllerin Karşılaştırmalı Proteomik Analizi

Özet

Burada, tüm böbrek, izole kortikal tübül ve medüller proteomların proteomik analizi için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Çalışma ayrıca diyabetik bir fare modelinde ve diyabetik olmayan farelerde bölgesel proteomları karşılaştırır.

Özet

Böbrek hastalığındaki olayların sırasını tanımlamak, nefrolog araç setindeki klinik uygulamanın temel taşıdır. Doku proteomik analizleri, renal patofizyolojinin temel fizyolojik ve moleküler süreçlerini anlamak için önemli bir yaklaşımdır. Burada sunduğumuz yöntemler ve protokoller, hastalık sekelleri ile ilgili her bir spesifik ilgi bölgesinde böbreğin moleküler diseksiyonuna izin verecektir. Hastalığın belirli böbrek bölgeleri ve benzersiz işlevlere sahip yapılar üzerindeki etkilerini belirlemek için bu protokolün amacı, basitleştirilmiş fare böbrek bölümlendirme ve renal kortikal tübül izolasyon tekniklerini, kolaylaştırılmış, etiketsiz kantitatif proteomik iş akışlarıyla birlikte göstermektir. Bu yöntemlerin birleştirilmesi, patolojik bağlamlarda tek hücreli proteomiklerin nihai ve nihai hedefi ile tüm böbrek, medüller bölmeler ve böbreklerin kortikal tübül yapılarındaki bozulmuş moleküler modellerin tanımlanmasına yardımcı olacaktır. Bu yöntemlerin hemen hemen her hastalık modelinde uygulanması, böbrek fonksiyon bozukluğu ile ilgili patoloji mekanizmalarının tanımlanmasında yardımcı olacaktır.

Giriş

Kronik böbrek hastalığı (KBH), modern tıpta önemli bir endişe kaynağıdır ve yalnızca Amerika Birleşik Devletleri'nde 86 milyar doların üzerinde sağlık harcaması tutarındadır¹. Dünya çapında, KBH insidansı, diyabet ve ilişkili renal komorbiditelerin prevalansı ile artmaktadır. ABD nüfusunun yaklaşık %14'ü KBH'ye sahiptir (USRDS 2024 yıllık raporu). Ayrıca, diyabetik nefropati KBH'nin bir şeklidir ve son dönem böbrek yetmezliğinin (SDBY) önde gelen nedenidir ve SDBY hastalarının %60'ında diyabet vardır ^1,2,3. Diyabet, böbreklerin fonksiyonel birimi olan nefronların tüm böbrek yapılarını ve hücre tiplerini etkiler. Şekil 1'de gösterildiği gibi, böbrek korteksi ve medulla bölgelerinde nefronların farklı kısımları bulunur. Böbreğin büyük çoğunluğu tübüllerden oluşur. Renal tübül disfonksiyonu ve yapısal lezyonlar diyabetik nefropati (DN) gelişimine önemli ölçüde katkıda bulunur ve bu değişiklikler böbrek fonksiyonlarındaki azalma oranı^{ile iyi} ilişkilidir 4,5,6,7,8. Diyabetin erken dönemlerinde, tüm tübül segmentlerinde artan glikoz ve buna bağlı sodyum alımı ve membran taşıma proteini taleplerine yanıt olarak, tübüller hipertrofiye uğrar. Diyabetin ilerleyen dönemlerinde artan mikrovasküler yaralanma ile tübüller atrofi ve dilatasyon sergilerken, fibroz ve interstisyumun^{genişlemesi vardır 9}. Laboratuvarımızdan yapılan önceki çalışmalar, diyabetik farelerin kortikal tübüllerinde değişmiş proteomlar ve bol miktarda stres yanıt proteini bulmuştur^10,11. Medulla, idrar konsantrasyonunun düzenlenmesi için önemlidir ve böbrek hastalığı sırasındaki işlev bozukluğu oksidatif stres ile ilişkilidir, diyabet, metabolik aktivitelerden kaynaklanan oksijen tüketiminin artması, zar taşıma proteinlerinin aktivitesinin artması ve mikrovasküler yaralanma nedeniyle böbreğin bu bölgesinde oksijen gerginliğinin azalmasına neden olur 12,13,14.

DN'nin ayrıntılı gelişim ve ilerleme mekanizmalarını anlamak, hastalığın modellenmesini ve sinyalleme süreçlerinin moleküler profillenmesini, hücresel protein dinamiklerinde adaptif değişiklikleri ve kronik durumlarda yaralanmadan etkilenen böbrek hücresi ve doku bileşenlerinin kesin tanımını içeren yeni ve entegre yaklaşımlar gerektirecek devam eden bir çabadır. Proteomik, metabolomik ve transkriptomik, böbrek hastalıklarının moleküler mekanizmalarını analitik olarak inceleme imkanı sunar. Omik, biyolojik sistemler hakkında daha küresel bir anlayış kazanmak için sistem biyolojisi yaklaşımlarını kullanan nispeten yeni bir alandır. Proteomik, son yıllarda nefrolojide güçlü bir Omik aracı olmuştur. Biyobelirteç araştırmaları, yayınlardaki büyümede belirtildiği gibi son 20 yıl içinde genişlemiştir, ancak bu bulguları kliniğe tam olarak uygulamak için kapsamlı çalışmalar gereklidir¹⁵. Renal korteks ve medulla içindeki çok farklı tübül hücre popülasyonları ve ilgili fonksiyonel rollerle, tüm böbreklerin proteomik analizi, bu farklı bölgelerdeki belirli yapılarla ilişkili benzersiz değişiklikleri maskeleyebilir. Bu nedenle, bu çalışmanın amacı, renal korteks ve medullanın ayrılmasının yanı sıra kortikal tübüllerin glomerüllerden ayrılmasını ve ardından son teknoloji kütle spektrometresi ve biyoinformatik analizler için izole edilmiş yapılardan protein ekstraktlarının hazırlanması için ayrıntılı protokolleri göstermektir. Diyabetik nefropatinin fare modelleri, hastalığın ilerleme mekanizmalarını tanımlamada etkilidir. Bu çalışma için, erken başlangıçlı tip I diyabet geliştiren ve insanlarda erken ve geç evre DN özelliklerini gösteren OVE26 transgenik fareyi kullandık, bunlar arasında 1) glomerüler filtrasyon hızında erken bir artış ve daha sonra düşüş, 2) böbrek hipertrofisi, 3) glomerüler bazal membran kalınlaşması ve mezanjiyal genişleme, 4) şiddetli proteinüri ve 5) tubulointerstisyel fibroz^{9, 16,17}. Açık yapısal lezyonlardan önce tübül kompartmanlarında proteomik değişiklikler göstermek için iki aylık fareler seçildi. Daha önce bildirildiği ve Şekil 2'de gösterildiği gibi, 2 aylık OVE26 fareleri, genç diyabetik farelerde proksimal tübüllerde açık histolojik değişiklikler olmaksızın (Şekil 2, sarı ok) glomerüler mezanjiyal matriks genişlemesi (Şekil 2, yeşil ok) ve şiddetli proteinüri¹⁷ sergiler. Burada, diyabetli her bir bölmedeki proteomdaki farklılıkları aydınlatmak ve göstermek için tüm böbrek, medulla ve kortikal tübüllerin karakterizasyonu için birleşik bir kantitatif proteomik yaklaşım sunuyoruz.

Protokol

OVE26 ve FVB fareleri ile yapılan çalışmalar, Louisville Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC) yönergeleri tarafından onaylanmıştır. Transgenik dişi OVE26 (diyabetik; Suş #:005564) ve FVB (diyabetik olmayan; arka plan suşu; Suş #:001800) fareler Jackson Laboratories'den (Bar Harbor, ME) satın alındı. Hayvanlar, 25 ° C'de 12 saatlik bir aydınlık / karanlık döngüsünde tutuldu ve su ve yiyeceğe serbest erişim sağlandı. Tüm çalışmalar 2 aylık fareler üzerinde yapılmıştır.

1. Hayvan modeli

1. Böbrek izolasyonu
   1. İntraperitoneal olarak 80 mg / kg Ketamin ve 12 mg / kg Ksilazin uygulayarak fareleri uyuşturun.
   2. Küçük bir cerrahi makasla orta hat karın kesisi yapın ve vena kava'yı ortaya çıkarmak için swab kullanarak bağırsakları nazikçe farenin dışına ve yanına doğru hareket ettirin.
   3. Sağ böbreğin üzerindeki vena kavada küçük bir kesi yapın.
   4. Fareyi sol ventrikülden 20 mL soğuk fosfat tamponlu salin ile perfüze edin (PBS: pH 7.4; 210 mg / L KH₂PO₄, 9 g / L NaCl, 726 mg / L Na₂HPO_{4 ·}7H₂O) 10 mL/dk hızında peristaltik bir pompa kullanarak.
      NOT: Kan proteinlerinin ve hücrelerinin böbreklere dahil edilmesi, aşağı akış analizlerinde kritik bir faktör değilse bu adım gerekli değildir.
   5. Küçük cerrahi makas kullanarak böbrekleri çıkarın. Böbreklerin dışındaki fazla yağı alın. Böbrekleri tartın ve buz üzerinde soğuk PBS'ye yerleştirin.
   6. Böbrek kapsülünü çıkarın.
   7. Böbrekleri bir cam tabağa veya buz üzerine yerleştirilmiş Petri kabına yerleştirin. Böbreklerin üst ve alt kutupları arasında 3-4 dilim elde etmek için bir tıraş bıçağı (Şekil 3) kullanarak böbreklerde birkaç enine kesim yapın.
   8. Her böbrekten 1-2 orta dilim ve iki kutbu ( Şekil 3'te daire içine alınmış böbrek dilimleri) "tam böbrek" örnekleri olarak hizmet etmek için bir kenara ayırın. Bir kısmını 1,5 mL'lik santrifüj tüplerine yerleştirin ve buz gibi soğuk homojenizasyon tamponu (%10 gliserol, 50 mM HEPES, 100 mM KCl, 2 mM EDTA, %0,1 NP40, 10 mM NaF, 0,25 mM NaVO₃, 1x HALTS proteaz inhibitörü) yaklaşık 10 μL/mg doku örneğinde (edinilmiş böbrek ağırlığından elde edilen böbrek dilimlerinin tahmini kütlesine göre) ekleyin. Tüpü buzun üzerinde bırakın.
   9. Orta enine dilimlerin geri kalanı için, dilimi düz bir şekilde yatırın ve bir tıraş bıçağı veya neşter kullanarak her dilimden korteksi (dıştaki 1 mm) dikkatlice dilimleyin (Şekil 3, şematik iş akışı). Kortikal tübül izolasyon protokolü için korteksi medulla bölgelerinden ayrı tutun (aşağıda, adım 1.3).
   10. Diseke edilen medullanın bir kısmını 1.5 mL'lik santrifüj tüplerine yerleştirin, adım 1.1.8'deki gibi buz gibi soğuk homojenizasyon tamponu ekleyin ve tüpü buz üzerinde bırakın.
   11. Homojenizasyon için kullanılmayan kalan tüm tüm böbrek ve medulla parçalarını sıvı nitrojen içinde dondurun ve -80 °C'de saklayın.
2. Alternatif olarak, ayrılmış tüm böbrek ve medulla bölmelerini dondurun ve adım 1.1.11'de açıklandığı gibi saklayın. Adım 1.1.8'de olduğu gibi homojenizasyon tamponunun eklenmesi için bunları daha sonra depodan çıkarın.
3. Kortikal tübül izolasyonu
   1. Diseke korteksi bir cam tabak veya Petri kabı üzerinde bir jiletle 1-3 mm'lik parçalar halinde doğrayın ve bir macun oluşturun.
   2. Kıyılmış korteksi 1 mL tip IA kollajenaz (1 mg / mL) içinde 30 dakika, 37 ° C'de, sallanan bir su banyosunda sindirin.
   3. Buz üzerinde 50 mL'lik konik bir tüpün üzerine 100 μm'lik bir hücre süzgeci yerleştirin.
   4. Sindirilmiş kortikal süspansiyonu 100 μm hücre süzgecinin üzerine yerleştirin ve 10 mL'lik bir şırınganın pistonunu kullanarak süzgecin içinden hafifçe bastırın. Süzgecin üst kısmını 1 mL PBS ile ve süzgecin alt tarafını 1 mL PBS ile yıkayın.
   5. Süzüntüyü 50 mL'lik tüpte 100 μm'lik ek bir süzgeçten geçirin, ardından süzgecin üstünü 1 mL PBS ile yıkayın.
   6. Süzüntüyü, buz üzerinde 50 mL'lik konik bir tüp üzerine yerleştirilmiş 70 μm'lik bir hücre süzgecinden geçirin. Tübüller bu süzgeçten süzüntüye geçecektir (Glomerüller 70 μm'lik süzgeç üzerinde tutulacaktır). Süzgeci 1 mL PBS ile yıkayın.
   7. Son süzüntüyü 120 × g'da 4 °C'de 2 dakika döndürün. Tübül peletinden fazla PBS'yi atın.
   8. 10x objektif kullanarak mikroskop altında görselleştirerek kortikal tübül peletinin saflığını kontrol edin. Fraksiyonun %10'undan fazlası glomerül içeriyorsa, süzgeci 1 mL PBS ile yeniden süspanse edin ve süzgeci ilave yıkamadan temiz bir 70 μm hücre süzgecinden geçirin.
   9. Zenginleştirilmiş tübül fraksiyonunu 1.5 mL santrifüj tüplerine dağıtın ve 2000 × g'da 2 dakika boyunca 4 ° C'de döndürün. Süpernatanı atın.
   10. Tüm böbrek ve medullada olduğu gibi tübül peletine de homojenizasyon tamponu ekleyin (adım 1.1.8 ve 1.1.10).
4. Doku homojenizasyonu/Protein ekstraksiyonu
   1. Her bir numune tipini, özellikle 1,5 mL tüpler için plastik bir tokmak kullanarak 1,5 mL mikrosantrifüj tüplerinde homojenize edin. Homojenize süspansiyon çok kalınsa, gerektiği kadar ilave homojenizasyon tamponu ekleyin.
   2. Homojenize süspansiyonu 15 dakika buz üzerinde bırakın, ardından bir banyo sonikatöründe (yalnızca açma / kapama düğmesi, ünitede ayarlanabilir ayar yok) 5 dakika boyunca sonikasyon, banyoda 25 ° C'de su ile. Numuneleri 10 dakika buz üzerinde bırakın.
   3. Kısa bir süre girdap (1000-1500 RPM) homojenleştirin, ardından bir pipetle 20 kez ezin ve 15 dakika daha buz üzerinde bırakın.
   4. Santrifüjlemeden önce numuneleri 13.000 × g'da 4 °C'de 20 dakika boyunca birkaç kez tritüre edin.
   5. Temizlenmiş protein ekstraktlarını temiz tüplere aktarın.
   6. Protein tahmini ve kütle spektrometresi analizi için numune hazırlama için 30 μL berraklaştırılmış ekstrakt. Numunelerin geri kalanını -80 °C'de saklayın.

2. Süspansiyon-Tuzak mini spin kolon sindirim protokolü

1. Proteomik analizler için proteinlerin triptik parçalara proteolitik sindirimi
2. ~ 40-50 μg numuneyi (~ 2 μg / μL'de) numune lizis tamponuna seyreltin (100 mM trietilamonyum bikarbonat (TEA-BC) pH 8.5, 40 mM tris (2-karboksietil) fosfin [TCEP]) içinde numune lizis tamponuna (% 10 w / v sodyum dodesil sülfat [SDS]) 46 μL'lik bir nihai hacme kadar.
3. Proteinlerin azaltılması ve alkilasyonu
   1. 65 ° C'de 30 dakika inkübe edin (TCEP'nin nihai konsantrasyonu 20 mM'dir).
   2. Sıvı kromatografi-kütle spektrometresi (LC-MS) dereceli suya 4 μL 0.5 M iyodoasetamid ekleyin ve karanlıkta oda sıcaklığında (RT) 30 dakika inkübe edin (nihai iyodoasetamid konsantrasyonu 40 mM'dir).
4. LC-MS dereceli suya 5 μL %12 w/w fosforik asit ekleyin (%12 çözelti için 141 μL %85 fosforik asidi 859 μL suya seyreltin).
   1. Fosforik aside alternatif olarak, fosfopeptit zenginleştirme¹⁸ yapıyorsanız trifloroasetik asit veya formik asit kullanın.
5. 350 μL süspansiyon tuzağı bağlayıcı tampon ekleyin (%90 v/v metanol/%10 v/v su pH 7.55 içinde 100 mM TEA-BC).
6. Süspansiyon tuzağı sütununa örnek ekleyin. Her hacmi kolondan geçirmek için sabit açılı bir rotorda RT'de 30 saniye boyunca 4.000 × g'da santrifüjleyin.
7. 4x 400 μL süspansiyon tuzağı bağlayıcı tampon ile yıkayın. Her yıkamayı kolondan geçirmek için sabit açılı bir rotorda RT'de 30 saniye boyunca 4.000 x g'da santrifüjleyin.
   NOT: SDS'nin çıkarılmasına yardımcı olmak için, her yıkamadan sonra rotordaki sütunu 180° döndürün.
8. Bağlayıcı tamponu tamamen çıkarmak için RT'de 1 dakika boyunca 4.000 g'da santrifüjleyin (sindirim sırasında damlamayı önler).
9. Süspansiyon sifonu kolonunu temiz bir toplama tüpüne aktarın.
10. 125 μL'lik 50 mM TEA-BC pH 8.5 içinde 2.5-5 μg tripsin ilave edin LC-MS dereceli suya (Tripsin Proteaz, MS-Grade). Tripsinin numuneye nihai oranı 1:20 ila 1:10'dur.
11. 47 °C'de 2 saat inkübe edin (kapağı sıkmayın; 0 RPM'ye ayarlanmış bir termal karıştırıcı tercih edilir). Kapakta bir iğne ile bir delik açmak, süspansiyon kapanının üst bölmesinde basınç oluşmasını önleyebilir (artan basınç, tripsin çözeltisinin kolondan damlamasına neden olur).
12. 80 μL 50 mM TEA-BC pH 8.5 seviyesini LC-MS dereceli suya ekleyin. RT'de 4.000 g'da sabit açılı bir rotorda 1 dakika santrifüjleyin ve her bir sindirimi kolondan geçirin.
13. LC-MS dereceli suya 80 μL %0.2 v/v formik asit ekleyin. Adım 2.11'den itibaren sindirim ile toplamak için sabit açılı bir rotorda RT'de 1 dakika boyunca 4.000 g'da santrifüjleyin.
14. LC-MS dereceli suya 80 μL %50 v/v asetonitril ekleyin. Adım 2.11'den itibaren sindirim ile toplamak için sabit açılı bir rotorda 1 dakika boyunca RT'de 4.000 g'da santrifüjleyin.
15. Süspansiyon sifonu elüatını -80 °C'de saklayın.
16. Numuneyi bir vakum yoğunlaştırıcıda kurutun.
17. Kurutulmuş numuneyi -80 °C'de saklayın.

3. Hidrofilik-lipofilik denge (HLB) sütunu ile temizleme

1. A (%2 v/v asetonitril/%0.1 v/v formik asit) ve B (%80 v/v asetonitril/%0.1 v/v formik asit) çözeltileri yapın.
2. Numuneyi 500 μL çözelti A içinde çözün.
3. Kolonu bir vakum manifolduna yerleştirin ve ~1-2 mL/dk'da gaz basıncı uygulayın.
4. HLB kolonuna 500 μL çözelti B ekleyin ve 1-2 mL / dk'da boşaltın; İki kez tekrarlayın.
5. HLB kolonuna 750 μL çözelti A ekleyin ve 1-2 mL / dk'da boşaltın; İki kez tekrarlayın.
6. HLB kolonunun altındaki rafa temiz bir 2 mL mikrotüp yerleştirin, numuneyi 500 μL çözelti A'ya ve yukarıdaki gibi gaz basıncına yükleyin; Akışı sütuna ikinci kez geçirin.
7. HLB kolonunu atık tüpünün üzerine yerleştirin, 500 μL çözelti A ekleyin ve yukarıdaki gibi boşaltın; İki kez tekrarlayın.
8. Sütunu temiz bir 2 mL mikrotüpün üzerine yerleştirin, 500 μL B çözeltisi ekleyin ve yukarıdaki gibi boşaltın; İki kez tekrarlayın.
9. Elüatı -80 °C'de dondurun, ardından bir vakum yoğunlaştırıcıda kurutun. Kurumuş kalıntıyı -80 °C'de saklayın.
10. MS analizinden önce kalıntıyı 20 μL %2 v/v asetonitril /%0.1 v/v formik asit içinde çözün. 205 nm'lik bir absorbansta peptit konsantrasyonunu tahmin etmek için bir spektrofotometre kullanın.

4. Kütle spektrometresi analizi

1. Tek boyutlu ters fazlı sıvı kromatografisi (LC)-MS/MS
   1. 1 boyutlu nano-LC üzerine eşit kütlede peptit (~ 600 ng) enjekte edin ve ters faz C18 sütunları üzerinde fraksiyonlayın.
   2. Peptitleri, 250 ° C'de tutulan bir iyon transfer tüpü ile 1.8 kV'luk bir püskürtme voltajında doğrudan MS'ye aktarın.
   3. Daha düşük bolluktaki iyonlarda iyon haritalama derinliğini iyileştirmek için en yoğun MS/MS fragmanının analiz kuyruğundan çıkarıldığı veriye bağlı ilk 20 iyon modunda spektrumları elde edin.

5. Veri analizi ve biyoinformatik

1. Veri işleme prosedürleri
   1. PEAKS 12.0'da (LC-MS/MS veri analiz yazılımı) spektral atama ve peptit ve protein tanımlamasının ardından, tek faktörlü istatistiksel analiz yaklaşımını (https://www.metaboanalyst.ca/) kullanarak MetaboAnalyst 6.0'da (metabolomik veri analiz platformu) analiz için protein listelerini gönderin.
   2. Mouse Reviewed FASTA veritabanına karşı katı yanlış keşif oranı (FDR) kriterleri (%1 protein ve peptit) kullanarak spektrumları aramak ve filtrelemek için LC-MS/MS veri analiz yazılımını kullanın.
      NOT: Kolayca bulunabilen alternatif arama programları, yaygın olarak kullanılan diğer seçeneklerin yanı sıra Maxquant, Proteome Discoverer'ı içerir.
   3. Sisteinin karbamidometilasyonunu sabit bir modifikasyon olarak belirtin. Metiyoninin oksidasyonunu değişken bir modifikasyon olarak belirtin.
   4. Listeleri virgülle ayrılmış değerler (CSV) biçimine ve her sütun ve satıra atanan grup/örnek etiketlerine dönüştürün. Bu format, metabolomik veri analizi platformunda esnektir.
   5. Eksik değişkenler için 1/5 minimum değer kuralını kullanarak eksik değerleri atayın.
   6. Kesme için %40 varyansın kullanıldığı çeyrekler arası aralığı kullanarak yüksek değişkenli değerleri hariç tutmak için verileri filtreleyin.
   7. Değerleri medyan yoğunluğa normalleştirin,_10'u dönüştürün ve ölçeklendirme için ortalamayı ortalayın. Sonuçların farklılık gösterebileceğini göz önünde bulundurarak diğer normalleştirme yaklaşımlarını kullanın.
   8. T testlerini, 0,05'lik bir p değeri kesme < eşleşmemiş bir şekilde gerçekleştirin. Bu aşamada birden fazla test düzeltmesi gerçekleştirin.
      NOT: Bu çalışma, veri sunumu amacıyla temsili veri seti için bu düzeltmeyi gerçekleştirmemiştir.
   9. 1.5 kat değişim (FC) için yanardağ grafiklerini ve 0.05 < p belirtin.
   10. Isı haritaları oluşturun ve örnek grupların kısmi en küçük kareler diskriminant analizi (PLSDA) ve istatistiksel (projeksiyonun önem değişkeni [VIP]) analizini gerçekleştirin.
   11. Takip için potansiyel adaylar, PLSDA analizinde belirtildiği gibi, 1.5FC ve p-val < 0.05'i veya VIP > 1.0'ı gölgede bırakacak kadar sağlamdır.
   12. OVE26 farelerinde tüm böbrek, tübül ve medullanın proteomundaki farklılıkları göstermek için Venn diyagramları oluşturun.

Sonuçlar

Genel olarak, her numune tipinden toplam protein tanımlamaları 1) tüm böbrek (1438), 2) medulla (2145) ve kortikal tübüller (1859) idi. MetaboAnalyst 6.0'da veri işleme, veri filtreleme ve atamanın ardından, son olarak her böbrek bölmesi için analiz edilen protein tanımlamaları şunlardı: tüm böbrek (455), medulla (997) ve kortikal tübüller (896). Şekil 4 , OVE26 diyabetik fare böbreğindeki küresel proteomik değişiklikleri göstermek...

Tartışmalar

Bu teknik yaklaşımda sunulan yöntemler, böbreğin farklı bölgelerinin karşılaştırmalı proteom analizini göstermek için tasarlanmıştır. Burada, diyabetik (OVE26) ve kontrol (FVB) farelerinde medulla ve kortikal tübülleri izole etmek için yöntemler kullandık ve tüm böbreklerin proteomuna ek olarak böbreğin her bir bölümündeki proteomdaki temel farklılıkları göstermek için 1 boyutlu LC-MS/MS ve biyoinformatik analiz gerçekleştirdik.

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Collagenase type 1A	Millipore Signal	C9891
Exploris 480 Orbitrap	Thermofisher	https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/BRE725539	MS
Falcon Cell Strainer, 100 µm	VWR	21008-950
Falcon Cell Strainer, 70 µm	VWR	21008-952
Gibco PBS pH 7.4	Thermo	1001023
Halt Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail	VWR	PI78440
Iodoacetamide	Sigma Aldrich	I1149
MetaboAnalyst 6.0	MetaboAnalyst 6.0	https://www.metaboanalyst.ca/	metabolomics data analysis platform
NanoDrop 2000	Thermofisher	https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/ND-2000
Oasis HLB column	Waters	186002034
PEAKS 12.0	Bioinformatics Solutions Inc		LC-MS/MS data analysis software
Pestle for 1.5 mL Microtube	Fisher Scientific	NC0782485
Suspension Trap (S-trap)	Protifi	C02-micro-10
TCEP	ThermoFisher Scientific	20490
TEABC	Sigma Aldrich	T7408
Trypsin Protease, MS-Grade	ThermoFisher Scientific	90057
Ultrasonic Cleaner	Cole-Parmer	Model 0884900