まず、脱細胞化したリンゴの足場をリン酸緩衝生理食塩水で洗浄します。細孔径を測定するには、1 mLの10%カルコフルオウ白色溶液中で、室温の暗所で25分間、足場をインキュベートします。PBSで足場を洗浄した後、高速共鳴共焦点レーザー走査型顕微鏡を使用し、レーザー発光フィルターの構成を設定します。
レーザー出力と検出器を手動で調整して、最適な画像取得を確保します。5マイクロメートルのステップサイズで20枚の画像のZスタックを取得します。次に、ImageJソフトウェアで、Z project to maximum intensity関数を使用して画像を作成し、find edges関数を適用して細孔のエッジを強調表示します。
フリーハンド選択ツールを使用して、毛穴を手動でトレースします。各細孔を楕円としてフィットさせ、長径の長さを測定します。すべての測定値をコンパイルし、平均長さを計算します。
細胞分布の解析には、適当培地で培養した細胞播種スキャフォールドをPBSで3回洗浄した後、4%パラホルムアルデヒドで10分間固定します。次に、各足場を脱イオン水で十分に洗浄し、Triton X-100溶液で細胞を5分間透過処理し、PBSで再度洗浄します。足場を1ミリリットルの1%過ヨウ素酸で40分間インキュベートし、脱イオン水ですすいでください。
次に、足場を1ミリリットルの染色液に完全に浸してインキュベートします。足場をPBSで洗浄し、足場を5ミリグラム/ミリリットルのDAPI溶液中で暗所で10分間インキュベートして細胞核を染色します。もう一度よく洗い、足場をPBSに保管します。
ここに示す設定を使用して、高速共鳴共焦点レーザー走査型顕微鏡で細胞播種したスキャフォールドを10倍の倍率で画像化します。レーザー出力と検出器を手動で調整して、最適な画像取得を確保し、5マイクロメートルのステップサイズで20枚の画像のZスタックを取得します。次に、ImageJソフトウェアを使用して共焦点画像を処理し、Z project to maximum intensity関数を使用して、画像解析用のz軸に最大投影を作成します。
共焦点顕微鏡画像の定量化により、73〜288マイクロメートルの細孔径分布が示され、平均は約154マイクロメートルでした。大部分の細孔は100〜200マイクロメートルの範囲でした。分化培地で培養した後、足場にミネラルの堆積が観察されました。
細胞播種された足場は、石灰化作用を示唆する不透明な白色を示しましたが、これは空白の足場では観察されませんでした。さらに、共焦点レーザー走査型顕微鏡分析により、足場内の細胞分布が均一であることが明らかになりました。