作業は、トランスレーショナル医学と治療のための研究所からのフェローシップ、およびペンシルベニア大学で医学と工学（T32HL007954）研究所から訓練助成金とマレーネL.コーエンとでジェロームH. Fleisch学者グラントによって資金を供給されたコネチカット大学保健センター（LHS）とNIH NS - 029331（FAW）。

1。機器の準備<ol><li>細菌汚染を最小限に抑えるために75％エタノールで定位フレームとポンプを拭う。 </li><li>ハミルトンシリンジとフューズドシリカニードルを滅菌する。 注：化学物質の滅菌が使用されている場合は、使用前に滅菌水で数回洗浄してください。 </li><li> 75％エタノールでパラフィンワックスペーパーの表面を拭き、乾燥させてください。 </li></ol> 2。注射のためのマウスの準備注意：それらが新しい環境に順応し、ストレスを軽減できるように、少なくとも7日間手術前に、動物施設に供給されるマウスを持っている。 <ol><li>術前のベースラインのためのマウスの重量を量る。 </li><li>テールピンチに応答するまで、イソフルラン30％酸素、70％亜酸化窒素、および4％で麻酔を誘発する</li><li>術後鎮痛のためにブプレノルフィン0.1mg/kg腹腔内にマウスを注入する</li><li>頭皮を剃る</li><li>無菌石油ゼリーでコーティングの目</li><li> betadine × 3ワイプと頭皮を準備して、頭皮が乾燥することができます</li><li>滅菌外科用メスを使用して頭皮の1cm正中矢状切開を加えます 注：寛大な切開が頭蓋骨のランドマークの完全な露出をできるようになります。 </li><li>ベースから1cmとbetadineで準備× 3ワイプを開始する尾の腹側表面の1cmを剃る</li><li>定位フレームの上にマウスを置きます 注：これは、マウスが優れたブレグマの曝露とブレグマの右に3 mm以上で、フレームのベースと頭蓋骨の平行の表面でフレームに固定されるようにすることが重要です。 </li></ol> 3。脳内出血の手術注：全体の手術中にマウスが連続して37℃に維持イソフルラン30％酸素、70％亜酸化窒素、および1-3％、± 0.5℃のサーミスタ制御の加熱パッドを使用し、直腸温度計によって監視で麻酔です。 <ol><li>フレームに1 ccシリンジに滅菌27グラムの針を取り付けます。 </li><li>針が正確にブレグマ以上になるまで、定位固定アームを調整します。 </li><li>その針はブレグマの外側と頭蓋骨の表面に低い2.5ミリメートルになるようにアームを調整します。 </li><li>手動で完全に頭蓋骨に穴をしないフレームテイクケアの穏やかな下方への移動を印加しながら頭蓋骨の表面にバリ穴を作るために注射器を回転させる。 </li><li>注射器/注射針を使用して手動で針と完全なバリ穴を削除します。 注：あなたが頭蓋骨と誤って脳実質に針を押すのを最小限に抑えるリスクの内部表を穴あきがある場合、手作業でバリ穴を完了するには、即時認識することができます。 </li><li>滅菌外科用ブレードを用いて尾の腹面に横切開を行い、動脈血の2-3大滴はパラフィンワックスペーパーの上に落ちるように。その後すぐに滅菌ガーゼを用いて、圧力で出血を止める。 </li><li>ポンプでハミルトンシリンジと場所のシリンジに17μLの血液を撤回。 </li><li>ポイント5に定位固定アームを調整して°の垂直軸に対して内側に相対的。 </li><li>針のその先端が頭蓋骨のバリ穴と、下部針3.5ミリメートルを超えているので、慎重に定位固定アームを調整する。 </li><li> 2分後、針0.5mmの撤退を待つ（ように先端が深さ3mmである） </li><li>脳は、針の周りに再展開し、注入時の針挿入のトラックを還流血液の危険性を最小限にするように5分間待ちます。 </li><li> 7.5μLの血液1μL/分を注入する。 </li><li>初期の血液凝固を可能にすると組織の変化のために頭蓋内圧の上昇を最小限に抑えるために発生する5分待ってください。 </li><li> 1μL/分で、残りの7.5μLを注入</li><li>針は、血液凝固を可能にするために25分のための場所の中に残さないように 注：血液凝固を待つに失敗すると、針を引き出す時に血液が針の挿入部位を還流につながる</li><li>ゆっくりと針を撤回し、直ちに凝固から針での残留血液を予防し、針の再利用性を確保するためにお湯で洗い流してください。 </li><li>フレームからマウスを削除し、獣医外科的接着剤で尾と頭皮切開を閉じてください。 </li><li>麻酔の電源を切ります。 </li><li>継続的に食物を湿らせて自由にアクセスできるように暖めている間に目覚めさせるマウスすることができます。 </li><li>完全に目覚め同腹でケージにマウスを返します。食料へのアクセスに動物を助けるためにケージの底部に水分のある食品ペレットを置きます。 </li></ol> 4。代表的な結果： <img src="/files/ftp_upload/2618/2618fig1.jpg" alt="図1"/> 図1 15分ICHの手術後のマウス脳の冠状断面。直ちに脳を犠牲にした後は、針の挿入部位での冠状断面の総点検に基づいて、ICHの成功のために検査した。脳梁過去針のトラックまで、または心室に、脳の基底部にダウン追跡出血が失敗したとみなされ、そのマウスは、すべての分析から除外した。全体的なICH succeSS率が0％の死亡率で50匹に75から85パーセントでした。 <img src="/files/ftp_upload/2618/2618fig2.jpg" alt="図2"/> 図2。シリンダーテストでは、右大脳基底核のICHの後に左片麻痺を示しています。 ICHの手術後の（A）サンプルマウスの背面。左大脳基底核のICH後のシリンダーの壁にのみ右前肢の配置に注意してください。 （B）シャム（N = 4）と比較してICH手術（n = 5）は後のマウスのコホートから円筒試験1の結果のグラフを。偽のマウスは、血液の注射（針を脳に挿入された）を除いてすべての手順を持っていた。各マウスは、12 cmの直径の透明ガラス製のシリンダーに入れ、20後部のために観察された。シリンダーの壁に前肢の初期配置はリアごとに採点した。マウスが地面に戻り、次の後部がゴールするまで、後続の動きは（例えば横方向探査など）採点されていなかった。側性指数は、（シリンダーの側面に＃右前肢の配置 - ＃左前肢のプレースメント）として算出した（＃右+＃左+＃両方）/、0は右前肢が使用されたのみ示されているも前肢優先と1を示していない場所。

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	<li>Hua, Y., Schallert, T., Keep, R. F., Wu, J., Hoff, J. T., Xi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+Tests+After+Intracerebral+Hemorrhage+in+the+Rat.">Behavioral Tests After Intracerebral Hemorrhage in the Rat.</a> Stroke. 33, 2478-2484 (2002).</li><li>James, M., Warner, D., Laskowitz, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preclinical+Models+of+Intracerebral+Hemorrhage:+A+Translational+Perspective.">Preclinical Models of Intracerebral Hemorrhage: A Translational Perspective.</a> Neurocritical Care. 9, 139-152 (2008).</li><li>Foerch, C., Arai, K., Jin, G., Park, K. -. P., Pallast, S., van Leyen, K., Lo, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+Model+of+Warfarin-Associated+Intracerebral+Hemorrhage.">Experimental Model of Warfarin-Associated Intracerebral Hemorrhage.</a> Stroke. 39, 3397-3404 (2008).</li><li>Nakamura, T., Xi, G., Hua, Y., Schallert, T., Hoff, J. T., Keep, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intracerebral+hemorrhage+in+mice:+model+characterization+and+application+for+genetically+modified+mice.">Intracerebral hemorrhage in mice: model characterization and application for genetically modified mice.</a> Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 24, 487-494 (2004).</li><li>Rynkowski, M. A., Kim, G. H., Komotar, R. J., Otten, M. L., Ducruet, A. F., Zacharia, B. E., Kellner, C. P., Hahn, D. K., Merkow, M. B., Garrett, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+mouse+model+of+intracerebral+hemorrhage+using+autologous+blood+infusion.">A mouse model of intracerebral hemorrhage using autologous blood infusion.</a> Nat. Protocols. 3, 122-128 (2008).</li><li>Wang, J., Fields, J., Dor&#233;, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+development+of+an+improved+preclinical+mouse+model+of+intracerebral+hemorrhage+using+double+infusion+of+autologous+whole+blood.">The development of an improved preclinical mouse model of intracerebral hemorrhage using double infusion of autologous whole blood.</a> Brain Research. 1222, 214-221 (2008).</li><li>Zhao, X., Sun, G., Zhang, J., Strong, R., Song, W., Gonzales, N., Grotta, J. C., Aronowski, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hematoma+resolution+as+a+target+for+intracerebral+hemorrhage+treatment:+Role+for+peroxisome+proliferator-activated+receptor+&#947;+in+microglia/macrophages.">Hematoma resolution as a target for intracerebral hemorrhage treatment: Role for peroxisome proliferator-activated receptor &#947; in microglia/macrophages.</a> Annals of Neurology. 61, 352-362 (2007).</li></ol>

利害の衝突は宣言されません。

自発的な基底核出血の再現可能なモデルで自家尾動脈の血液の結果を使用してマウスの脳内出血のこの外科的モデル。マウスにおけるICHのモデルは、病態生理を調査するためにトランスジェニック動物の可用性の利点を提供しているが、その小さなサイズが大きい動物よりも脳神経外科手術はより技術的に困難になります。 コラゲナーゼのモデルと自家血注入モデルは?...

マウスの脳神経外科のための定位フレーム（Stoelting、51925） Microinfusionポンプとプロセッサ（UMP - 3とMicro4、世界の精密機器、サラソタ、フロリダ州） マウスウォーマー（Stoelting、50300） 吸入マウスの麻酔（ブレーントリーサイエンティフィック、EZ - AF9000） コー​​ティングされたプランジャーとのない針で25μL気密ホウケイ酸ハミルトンシリンジ （ハミルトン社、リノ、ネバダ州、1702RNのシリンジ：765401、フェルール：30949、スペーサー：30946） フューズドシリカニードルは2cmの長さ（ハミルトン、17739）にカット *前に、各手術に滅菌場合ハミルトンシリンジとフューズドシリカニードルが複数の手術のために再利用化されることがあります。これらの材料は、血液凝固を避けるために不可欠です。 無菌手術用手袋手術衣、ボンネットとマスク Betadine 75％エタノール滅菌27グラム針（シングルユース） 滅菌1 ccシリンジ（シングルユース） 滅菌外科用ブレード Cidex 滅菌水ブプレノルフィンとイソフルラン滅菌ガーゼパラフィンワックスペーパーの正方形獣医外科接着剤（Vetbond、3M、セントポール、ミネソタ州）

autologous blood injection to model spontaneous intracerebral hemorrhage in mice

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model. While ICH
accounts for 10-15% of all strokes, there remains no specific
effective therapy. The autologous blood injection model in mice
involves the stereotaxic injection of arterial blood into the basal
ganglia mimicking a spontaneous hypertensive hemorrhage in man. The
response to hemorrhage can then be studied in vivo and the
neurobehavioral deficits quantified, allowing for description of the
ensuing pathology and the testing of potential therapeutic agents. The
procedure described in this protocol uses the double injection
technique to minimize risk of blood reflux up the needle track, no
anticoagulants in the pumping system, and eliminates all dead space
and expandable tubing in the system.

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Autologous Blood Injection to Model Spontaneous Intracerebral Hemorrhage in Mice

このプロトコルで説明されているマウスの脳内出血の自家血注入モデルでは、針のトラックまでの血液逆流、ポンプシステムにおける無抗凝固剤のリスクを最小限に抑えるために二重注入の技術を使用し、システム内のすべてのデッドスペースと拡張可能なチューブを排除。

マウスにおける自発脳内出血をモデル化する自家血注入

Investigation of the pathophysiology of injury after intracerebral
hemorrhage (ICH) requires a reproducible animal model.  While ICH
accounts for 10-15% ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

14.6K ビュー.  University of Connecticut Health Center. このプロトコルで説明されているマウスの脳内出血の自家血注入モデルでは、針のトラックまでの血液逆流、ポンプシステムにおける無抗凝固剤のリスクを最小限に抑えるために二重注入の技術を使用し、システム内のすべてのデッドスペースと拡張可能なチューブを排除。