私たちは、原稿にコメントをM·ボイセンに感謝します。このプロジェクトは、（MPMに1278/4-1 SFB638とMA、そして卓越したクラスター：CellNetworks EXC 1分の81）ドイツ学術振興によって資金を供給された。 CellNetworks：MPMは卓越性のクラスタの研究者でもある。

1。バッファーおよびタンパク質サンプルの調製<ol><li> H 2 Oのバッファを準備します。 H 2 OバッファとしてのHsp90標準緩衝液（40mMのHEPES / KOH、pH7.5で、50mMのKCl、5mMのMgCl 2、10％グリセロール）の使用。 注 ：サンプルは、分析の前に透析した場合、H 2 Oのバッファとして透析緩衝液を使用しています。それは、D 2 Oのバッファのみ水素同位体中のH 2 Oバッファと異なっていることが不可欠です。 NH 4 CO 3又はNH 4 -アセテートまたはバッファーの構成要素のような揮発性のバッファが適切ではない！ </li><li>真空濃縮器を用いたHsp90標準緩衝液の凍結乾燥により、D 2 Oのバッファを準備します。 H 2 Oを完全に蒸発させた後、初期の全体積（ 例えば、1〜850μlのD 2 Oの添加を必要とし、15％グリセロール緩衝液ミリリットル）に達するまでチューブに純粋なD 2 Oを加える。バッファの完全な蒸発を繰り返し、バッファ/塩COMを再溶解D 2 O 2X内ponents。 </li><li>クエンチバッファーを準備します（0.4M KH 2 PO 4 / H 3 PO 4 pHは2.2）。 注 ：4 M塩酸グアニジンおよび0.5 Mトリス（2 -カルボキシエチル）ホスフィン（TCEP塩酸）を添加することができる非常に安定なタンパク質のペプシン消化物の効率を改善する。 </li><li> 100％の対照サンプル（6 M塩酸グアニジン、D 2 O）を調製する。完全に試料からH 2 Oを蒸発させ、10％グリセロールとの最初の合計体積（ 例えば 、100μlのサンプルに到達するためにチューブにD 2 Oを追加6 M.の最終濃度に達するようにするHsp90アリコートに塩酸グアニジンを追加添加を必要とする90μlのD 2 O）の。バッファの完全な蒸発を繰り返しとD 2 Oのバッファ/塩成分を再溶解 注意 ：サンプルの20〜100 pmolの各注射のために必要とされる。 HX-MS実験の日々のために100％のコントロールを持ってするのに十分なサンプルを準備します。 </li><li> 5μLのHsp90標準バッファに50ピコモルのHsp90を準備します。 注意 ：サンプルの20〜100 pmolの量は、生データの各ポイントに必要です。反応中の試料の量は、理想的には1〜5μLです。これらの要件に合わせて濃度を調整します。任意の緩衝剤は、それが洗剤または揮発性成分を含んでいないとして使用することができる。 </li></ol> 2。アルデヒド活性化ビーズ上に固定化ペプシンの調製<ol><li> 2ミリリットルの50mMクエン酸ナトリウム（pHは5）に80mgの新鮮なペプシンを溶解する。 </li><li> 、シアノ水素化ホウ素ナトリウム20mgを溶解する1ミリリットルの2MのNa 2 SO 4でのケア（ 非常に毒性が強い ！）で処理し、ペプシン溶液に加える。 </li><li>穏やかに（ 例えば、オーバーヘッドシェーカー）を攪拌しながら室温で10分間混合物をインキュベートする。 </li><li>混合物に固定化されたアルデヒド基を有する600mgのビーズを添加し、室温で5〜10分間インキュベートする。 </li><li> SO 2のNa 2の2.2ミリリットルを追加します。4100μlのアリコート中（pHが5）3分毎に1時間以上、ゆっくりペプシンを塩に。そっと室温でオーバーヘッドシェーカーに追加間のサンプルをミックス。 </li><li>オーバーヘッドシェーカー中で一晩14〜16時/ 4℃でペプシンビーズをインキュベートする。 </li><li> 2時間室温で1ミリリットルの1Mエタノールアミンおよびインキュベーションを加えることにより反応を停止さ。 </li><li> 、500 rpmで50ミリリットルファルコンチューブ内のビーズをスピンダウンし、上清を廃棄し、0.1％ギ酸中でビーズを懸濁します。このステップの2倍を繰り返します。最後の遠心分離工程の後、上清およびビーズの推定体積を捨てる。 0.1％ギ酸の当量を添加し、4℃で保存し</li></ol> 3。アミド水素交換用カラムの作製<ol><li>列をトラップすると、ペプシン列の2ミリメートルと1ミリメートルの内径のガードカラムを使用してください。 </li><li>ガードカラムの片側を外し、フィルターを取り外します。しっかり表示Funn梱包ネジ列の開放端の上にEL。塔の底部出口に空のシリンジ（5ミリリットル）を添付し、1/16インチのアダプターとチューブを使用してください。ガードカラムに気密それを修正してください。 </li><li>漏斗の上にスラリービーズ材料を数滴を適用する。ガードカラムに漏斗でスラリーを吸引するシリンジのプランジャを引く。漏斗の上に、よりスラリービーズ材料を適用し、ガードカラムが完全にビーズ材料で満たされるまでの手順を続けます。漏斗を取り外し、開放端にフィルター、フィルターリングを配置。しっかりとガードカラムにカラム·スクリューキャップと反対側からシリンジを取り外します。カラム材料から乾燥を避けるためにプラグでガードカラムの両端を閉じる。 </li></ol> 4。水素交換質量分析（HX-MS）のためのシステムの設定<ol><li> HPLCシステムでトラップカラム（ 図1）を接続します。の流量を設定することにより、カラムを平衡化溶媒として0.1％ギ酸を0.4ミリリットル/分でポンプ。まだペプシン列や分析カラムを接続しないでください。 </li><li>質量分析計を較正し、質量分析計のソースにHPLCの出口を接続する。 </li></ol> 5。為替のダイナミックレンジの決定<ol><li>超純溶媒A（水中0.1％ギ酸）、超純溶媒B（アセトニトリル中0.1％ギ酸）を調製し、レディーミクスト溶媒市販されている。 HPLCポンプをパージします。短い脱塩工程の後に段階勾配を使用してプログラムを選択することで、クロマトグラフィーおよび制御ソフトウェアにおける質量分析法を設定します。フルレングスのHsp90 5％に溶出するために脱塩/ LOADおよび90％の溶媒A/10％溶媒Bから段階的勾配から溶媒A/95％の溶媒を6ポートバルブを切り替えることで、その後1〜2分の脱塩工程を使用B.は、注入前/積載位置を脱塩するためにロードするために噴射弁および6ポートバルブを設定します。 ノートこの実験中にペプシンや分析カラムを使用しないでください。 </li><li> 1月10日μlのH 2 OバッファにHsp90の100〜200 pmolのを準備し、30℃で10分間インキュベート100μLまでのサンプル量を持参し、一定の期間（ 例えば 10秒、100秒、千秒）のために、正確にインキュベートし、温度調整のD 2 Oのバッファを追加します。 100μlのクエンチ緩衝液を添加し、上下にピペッティングにより混和する。ハミルトンシリンジを有する噴射弁の噴射口に200μlのサンプルを注入する。ー·プログラムを開始して、インジェクトの位置に注入バルブを切り替える。 2分後に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替える。少なくとも3の時点でこれを繰り返します。 </li><li>手順を繰り返しますが、5.2は以前の30℃で10分間インキュベートしたHsp90サンプルにSTI1の2〜3倍の過剰を追加</li><li>質量分析ソフトウェアでスペクトルのデコンボリューションにより全長タンパク質の質量を決定。 incorporatの数を計算し各実行（ 例えば 、10秒、100秒、千秒）後に観察された質量との完全長Hsp90の分子量を比較することによって、重陽子を編</li><li>非存在と時間（x軸）対STI1（y軸）の存在下でのHsp90のため援用重陽子をプロットする。両方の曲線間の差が最大であるダイナミックレンジの時点を決定します。ペプチドレベルでのHsp90-STI1インターフェイスとダイナミクスを識別するとき、D 2 O中のインキュベーション時間のためにこの値を使用します。 </li></ol> 6。 MS / MSスペクトルを用いて消化ペプチドの定量<ol><li>システムにペプシンカラムと分析カラムを接続します。 </li><li>グラデーションの種類及び質量分析法を選択することによって、制御ソフトウェアにおけるクロマトグラフィーおよび質量分析のためのパラメータを設定する。良いクロマトグラフの解像度を確保するために長い勾配（ 例えば 90以上の分）を選択します。質量分析計でのMS / MSスペクトルを有効にします。 注：良い分解能HPLCおよび高い質量精度へのTiONは、このステップで最も高い優先度を持っている。 </li><li> 100μlのH 2 OバッファにHsp90の100〜200 pmolのを準備します。 100μlのクエンチ緩衝液を添加し、上下にピペッティングにより混和する。ハミルトンシリンジを有する噴射弁の噴射口に200μlのサンプルを注入する。ー·プログラムを開始して、インジェクトの位置に注入バルブを切り替える。 2分の位置に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替えた後。 注 ：複数のタンパク質が、HX-MS（ すなわち、タンパク質-タンパク質相互作用インターフェース）で分析する場合には各タンパク質のペプチドは、個別に決定されなければならない。 </li><li>得られたペプチドのデータベース（ すなわちマスコット）を検索することによって、Hsp90の消化性ペプチドを同定する。 注 ：目的は、できるだけ多くの消化性ペプチドを決定することであると分析は、精製タンパク質を用いて行われているようにこれは、カスタム·データベースを使用することが可能である。サンプル純度意志H考慮すべきaveは。 </li><li> MS / MSせずに、実際のHX実験に使用される勾配で、この手順を繰り返します。 Hsp90はとSTI1は45％で、溶媒A/55％溶媒Bに90％の溶媒A/10％溶媒Bから10分間の勾配を使用してください 注意 ：グラデーションは通常の間5〜15分間であり、高度にサンプルの複雑さおよびHXシステムの仕様に依存します。 </li><li> 6.5で使用するグラデーションで6.4で識別された消化性ペプチドの保持時間を決定し、1を含むリストを作成してください。）ペプチド配列2）のペプチド電荷状態と3。）保持時間。これはHX実験後に各ペプチドを識別するために使用されます。 注意 ：小のm / zの違い、同一の電荷状態と同一の保持時間を有するペプチドは、曖昧さの原因となる可能性があることに注意してください。 </li></ol> 7。タンパク質 - タンパク質相互作用界面の同定<ol><li>制御softwarを勾配と質量分析法を設定E。のほとんどが、300〜1,500のm / zの間の質量の検出のために最適化されている質量分析法を読み込み溶媒A/55％溶媒Bでの45％と90％溶媒A/10％溶媒Bの10分間の直線勾配を使用しペプチドは、千メートル/ zの下になります。負荷位置、ロード/脱塩位置に6ポートバルブへの注入バルブを設定します。 0.4ミリリットル/分に装填ポンプの流量を設定する。 注意 ：長さやグラデーションの種類は、サンプルに依存しており、最適化されなければならないことがある。長い勾配はクロマトグラフィの分解能を向上させることが、バック交換をする予定蛋白質に重陽子の取り込みを減少させる。選択された方法は、比較される全ての実験で同じである必要がある。 </li><li>未交換の参考のために100μlのH 2 OバッファにHsp90の20〜100 pmolのを準備します。二回ピペット上下に、100μLの氷冷クエンチバッファーを添加し、HPLCの注入バルブに試料を注入する。すぐにクロマトグラフィー·プログラムとSWを開始INJECT位置に噴射弁かゆみ。 2分の位置に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替えた後。個別タンパク質の混合物のためのHsp90とSTI1のためにこれを行う。 </li><li> 1-5μLの容量でHsp90の20〜100 pmolのを準備します。 100μlにサンプル量を表示し、一定の期間のために、正確にインキュベート2 Oバッファに温度調整され、Dを追加します（ 例：30秒; ノートを参照してコンフォメーションダイナミックスの場合）。氷のように冷たいクエンチ緩衝液100μl、ピペットアップを追加し、上下二回、迅速に、HPLCの注入バルブに200μLを注入。すぐにクロマトグラフィー·プログラムを開始し、噴射位置に注入バルブを切り替える。 2分の位置に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替えた後。相互作用するタンパク質の非存在下での各ペプチドへの重陽子の取り込みを決定するために、個々のタンパク質のためにこれを行います。 注意 ：準拠した形のダイナミクスを研究するときmational変化、D 2 OバッファにHsp90の異なるインキュベーション時間で実験を繰り返す。 （ 例えば 、10秒、30秒、100秒、300秒、千秒など ） を対数的にインキュベーション時間を選択することで、広いタイムスケールをカバーしよう。 D 2 Oバッファとサンプル·バッファは、水素同位体を除いて、正確に同じでなければなりません。 </li><li> 100％のコントロールサンプル（20〜100ピコモル）を同量を用意し、100μlまでのサンプル量をもたらすためにD 2 Oバッファを追加します。氷のように冷たいクエンチ緩衝液100μl、ピペットアップを追加し、上下二回、迅速に、HPLCの注入バルブに200μLを注入。すぐにクロマトグラフィー·プログラムを開始し、噴射位置に注入バルブを切り替える。 2分の位置に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替えた後。 </li><li>相互作用面を決定するため（ 注 ）束縛状態に平衡を移動し、インキュベートするSTI1の少なくとも2倍過剰のHsp90を混ぜる所望の温度での複合体形成は、平衡状態になるまで。温度調整Dの100μlにサンプル量を表示し、一定の期間のために、正確にインキュベート2 Oバッファ（ 例えば 30秒）を追加します。氷のように冷たいクエンチ緩衝液100μl、ピペットアップを追加し、上下二回、迅速に、HPLCの注入バルブに注入。 2分の位置に溶出するために脱塩/ LOADINGから6ポートバルブを切り替えた後。 20〜100 STI1のピコモルとHsp90の過剰のこの実験を繰り返します。 注意 ：絶対濃度は、相互作用の解離平衡定数に依存します。理想的には、D 2 Oへの希釈後のタンパク質の濃度が（下限濃縮タンパク質の&gt; 85％に相当する）は、少なくとも10倍のK Dであるべきで過剰に添加した。 </li><li>適切なソフトウェアで取得したデータを分析し、分析の各ペプチドを発見するために、ステップ6.5で決定された保持時間を使用しています。 CalculaTE未交換タンパク質（ステップ7.2）用およびHX実験（ステップ7.3）のための同位体分布の重心。 注意 ：交換されたペプチドの同位体パターンは、ペプチドの電荷状態についての知識と重心の容易な決定を可能にする質量分析装置の高い質量精度の両方、彼らの未交換の対応が異なって見える場合があるが。 </li><li>単独および結合パートナー過剰の標的タンパク質の重陽子の取り込みを比較してください。これはスプレッドシートプログラムで自動的に商用ソフトウェアにあるか、手動で行うことができます。 100％の対照サンプルの値は、各ペプチドの最大の交換を表し、O標識による逆交換し、実験中に失わD 2の量を決定するために使用することができる。 </li></ol>

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F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+and+characterization+of+EX1+kinetics+in+H/D+exchange+mass+spectrometry+by+peak+width+analysis.">Identification and characterization of EX1 kinetics in H/D exchange mass spectrometry by peak width analysis.</a> J. Am. Soc. Mass Spectrom. 17 (11), 1498-1509 (2006).</li><li>Fang, J., Rand, K. D., Beuning, P. J., Engen, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=False+EX1+signatures+caused+by+sample+carryover+during+HX+MS+analyses.">False EX1 signatures caused by sample carryover during HX MS analyses.</a> Intl. J. Mass Spectrom. 302 (1-3), 19-25 (2011).</li><li>Deng, Y., Smith, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+unfolding+domains+in+large+proteins+by+their+unfolding+rates.">Identification of unfolding domains in large proteins by their unfolding rates.</a> Biochem. 37 (18), 6256-6262 (1998).</li><li>Wales, T. E., Engen, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partial+unfolding+of+diverse+SH3+domains+on+a+wide+timescale.">Partial unfolding of diverse SH3 domains on a wide timescale.</a> J. Mol. Biol. 357 (5), 1592-1604 (2006).</li><li>Pan, Y., Piyadasa, H., O'Neil, J. D., Konermann, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conformational+dynamics+of+a+membrane+transport+protein+probed+by+h/d+exchange+and+covalent+labeling:+the+glycerol+facilitator.">Conformational dynamics of a membrane transport protein probed by h/d exchange and covalent labeling: the glycerol facilitator.</a> J. Mol. Biol. 416 (3), 400-413 (2012).</li><li>Hebling, C. M., Morgan, C. R., Stafford, D. W., Jorgenson, J. W., Rand, K. D., Engen, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conformational+analysis+of+membrane+proteins+in+phospholipid+bilayer+nanodiscs+by+hydrogen+exchange+mass+spectrometry.">Conformational analysis of membrane proteins in phospholipid bilayer nanodiscs by hydrogen exchange mass spectrometry.</a> Anal chem. 82 (13), 5415-5419 (2010).</li><li>Abzalimov, R. R., Kaplan, D. A., Easterling, M. L., Kaltashov, I. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protein+conformations+can+be+probed+in+top-down+HDX+MS+experiments+utilizing+electron+transfer+dissociation+of+protein+ions+without+hydrogen+scrambling.">Protein conformations can be probed in top-down HDX MS experiments utilizing electron transfer dissociation of protein ions without hydrogen scrambling.</a> J. Am. Soc. Mass Spectrom. 20 (8), 1514-1517 (2009).</li></ol>

我々は、開示することは何もありません。

タンパク質に相互作用パートナーの結合は、必然的に結合部位に溶媒接近の変化を引き起こす。さらに、多くのタンパク質は、実際の結合界面以外の領域に影響を結合すると、動的な立体構造変化を受ける。 HX-MSは、これらの変更を監視するための堅牢な方法であり、他の方法もカバーすることはできませんタイムスケール上のタンパク質の立体構造変化を明らかにすることさえ可能です。 ...

タンパク質およびタンパク質複合体の結晶構造の数は、近年急速に増加した。彼らは、これらのタンパク質の構造組織の貴重なスナップショットを提示し、構造 - 機能分析のための基礎を提供する。しかし、タンパク質のダイナミクスとその機能のために不可欠な立体構造変化は、、めったにX線結晶構造解析によって明らかにされていません。クライオelectronmicroscopyは、一方で、異なる構造タンパク質およびタンパク質複合体を捕捉することができるが、一般的に二次構造レベル1にコンホメーション変化を下に解決できない。原子細部で溶液中のタンパク質のコンフォメーションダイナミックスは、NMRによって解決することができますが、この方法では、まだ比較的小さいサイズ（一般的には≤30 kDa）ののタンパク質に制限されて実験を妨げるタンパク質を高濃度（≥100μM）を、必要とされているオリゴマー化または凝集しやすいタンパク質2。一つの方法は、その高分解能X線結晶学およびクライオelectronmicroscopy間をブリッジすることができ、タンパク質サイズ又は濃度によって限定されないアミド水素1 H / 2質量分析（MS）と組み合わせたH-交換（HX）である。近年では、この方法は、タンパク質のダイナミクス、タンパク質のフォールディング、タンパク質の安定性およびコンフォメーション変化3-5の分析のための貴重な分析ツールを開発しました。この方法の分子的基礎は、タンパク質がD 2 O溶液中に置かれたときに重水素原子と交換するであろうタンパク質中の骨格アミド水素の不安定な性質である。経時的なタンパク質質量のその後の増加は、高分解能MSで測定する。 HXは温度のみに依存する短い非構造化ペプチド、触媒濃度-及び誘導のために隣接する残基のアミノ酸側鎖（OH、H 3 O +、すなわち pHが、 図3を参照）、ネコalyticと立体効果。固有の化学交換速度k CH ONこれらの効果は、エレガントな白ら 6によって定量化されたプログラムは、pHおよび温度に依存してポリペプチド内の各アミノ酸のK CHを算出する（礼儀Z.チャン）、提供されています。中性pH及び周囲温度でのk個のchが 10 1〜10 3秒-1のオーダーである。きつく折り畳まれたタンパク質の内部へのイオン-折り畳まれたタンパク質で、HXは、主に二次構造における水素結合とOHの水和のアクセス制限による軽微な程度に遅くなる大きさの2-9桁です。天然タンパク質中のHXはそのため部分的または全体的な展開、化学交換と式に従って天然の状態にリフォールディングを関与（1）とK OBS開口率kのOP、クロージング率kのCLと真性化学交換に依存して観測された為替レートRAテchの k個の式（2）に従って。 <img alt="方程式1〜2" src="/files/ftp_upload/50839/50839eq1-2.jpg" /> 天然の状態条件下のk opは k個のchのよりもはるかに小さく、分母に無視することができる。 EX1とEX2と呼ばれる2の極端な為替制度があります。 k個のclが k chを （EX1）よりもはるかに小さい場合に観察された速度は、開口率と実質的に等しく、HXは、構造要素のアンフォールディングの直接の観察を可能にする。構造的要素の開始時に一度にすべてのアミドプロトン交換は、同位体ピーク7の二峰性の分布によって、MSに容易に観察可能であるような為替制度、。 k個のclが k chをよりはるかに大きい場合には、比例定数は折りたたみ展開均衡に等しいができる（EX2）が観察された速度は、k個のchのに比例する定数K uは k個のオペアンプ </sub&gt; / K CL。同位体分布がほぼ同じままであるこれらの条件下では、多くの開閉イベントは、平均質量が徐々に増加をもたらす、重陽子のすべてのアミドプロトン交換前に必要である。 EX2体制はΔGUアンフォールディングの自由エネルギーと構造要素の、したがって安定性の決定を可能にする。ネイティブ状態の条件の下でEX2政権が最も一般的である。 pHとカオトロピック剤の添加の増加は、EX1に交換メカニズムをシフトすることができます。したがって、HX-MSは、熱力学ならびにタンパク質フォールディングの動力学的パラメーターおよびコンフォメーション変化を探索するために使用することができる。 HX上述したように本質的になる骨格アミド基の完全に露出したプロトン溶媒のpHおよび温度依存性の交換半減期は、生理的pH（pH7.6）中で5〜400ミリ秒、および30℃、しかし10分の間である&gt; pHは2.9と0℃で&gt; 2時間の平均は15時間（ およその半減期との交流ポリペプチドの最初の骨格アミド結合、1〜2分間のプロトンを除く）C。そのような遅い交換条件下ではタイムアウトが組み込ま重陽子に含まれるすべての情報を失うことに、これらの条件下で活性であるプロテアーゼ（ 例えばペプシン）を用いて試料を消化することができる。遅い交換の条件でペプシン消化の導入以来、完全長タンパク質の全体的なHX速度のみならず、解析することができますが、HXは特定の領域8,9に局在することができます。空間分解能は、現在、10〜30残基の間、一般的に消化され生成されたフラグメントの大きさに制限される。しかし、ペプシンによって起因する切断の非特異的な性質のために作成された重複フラグメントは、空間分解能の増加につながる可能性があります。さらに、いくつかの他のプロテアーゼしかしながら、はるかに効率的な10ペプシンより、急冷条件下で活性であることが判明した。さらにincrea空間分解能のそれは、例えば、電子捕獲解離（ECD）、電子移動解離（ETD）と、赤外多光子解離（IRMPD）11-13として重水素化パターンを保存方法によって、気相中のペプチドの断片化によって到達することができる。これらの技術は、衝突誘起解離（CID）によって観察された分子内プロトン移動（「スクランブル」）、最も一般的に使用される断片化法に空間分解能の損失を防ぐ。しかし、これらの方法は、すべての個々のペプチドについての最適化を必要とし、したがって、依然として非常に困難である。 HX-MSは、ウイルスキャプシドアセンブリ14-17を含むタンパク質-リガンドとタンパク質-タンパク質相互作用を分析するために使用されている。タンパク質がアンフォールディングおよびリフォールディングだけでなく、温度が誘発されるコンフォメーション変化は、7,18,19を調査した。リン酸化と、単一のアミノ酸変異に関連したコンホメーション変化16,20とnucleotアミド誘導変化は21,22を分析した。したがって、この方法は、アセンブリおよび分子機械の動力学を分析するために理想的に好適と思われる。そのメカニズム大将軍興味深い1つの魅力的な候補者は、Hsp90のシャペロン複合体である。

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Reagent/Equipment</td>
			<td>Company</td>
			<td>Catalogue number</td>
			<td>Comments (optional)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>maXis QTOF</td>
			<td>Bruker</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>nanoAcquity UPLC</td>
			<td>Waters Corp.</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shimadzu 10AD-VP</td>
			<td>Shimadzu</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>6-port Valve EPC6W with microelectric actuator</td>
			<td>Valco</td>
			<td>#EPC6W</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Injection valve (manual)</td>
			<td>Rheodyne</td>
			<td>#7725</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poros AL20 media</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>#1-6029-06</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poros R2</td>
			<td>Applied Biosystems</td>
			<td>#1-1118-02</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pepsin</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>#P6887</td>
			<td>use fresh pepsin</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microbore (1 mm)</td>
			<td>IDEX</td>
			<td>#C-128</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microbore (2 mm)</td>
			<td>IDEX</td>
			<td>#C-130B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acquity UPLC BEH C8 Column</td>
			<td>Waters Corp.</td>
			<td>#186002876</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Thermomixer</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>#5355000.011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tubing (various diameters)</td>
			<td>IDEX</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fittings</td>
			<td>IDEX</td>
			<td>#PK-110 with PK-100</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

analyzing protein dynamics using hydrogen exchange mass spectrometry

すべての細胞プロセスは、タンパク質の機能に依存します。所与のタンパク質の機能性は、そのユニークなアミノ酸配列の直接的な結果であるが、それは単一の定義された三次元配置またはより一般的には相互変換する立体配座のアンサンブル内にポリペプチド鎖の折り畳みによって実現される。タンパク質の立体構造とその機能との間の接続を調査すると、タンパク質は、タスクの彼らの多種多様を満たすことができる方法を完全に理解するために不可欠である。その機能的なサイクルを進行しながら、タンパク質が受けるコンホメーション変化を研究するための一つの可能性は、高分解能質量分析（HX-MS）と組み合わせた水素を1 H / 2 H交換である。 HX-MSは、 例えば結晶解析によって得られた構造情報に新たな次元を追加して汎用性の高い、堅牢な方法です。これは、小さいモルの結合は、フォールディング及びアンフォールディングタンパク質を研究するために使用されているeculeリガンド、タンパク質 - タンパク質相互作用、触媒作用、およびアロステリック酵素に連結コンホメーション変化。タンパク質の量は非常に限られているまたはタンパク質の結晶化が不可能な場合に加えて、HX-MSは、しばしば使用される。ここでは、HX-MSを用いたタンパク質のダイナミクスを研究するための一般的なプロトコルを提供し、どのように複雑では2つのタンパク質の相互作用界面を明らかにすることを例として説明します。

Hsp90は、酵母およびHSP90シャペロンファミリーのメンバーの分子シャペロンである。複雑なATPアーゼサイクルを経由することにより、多くのタンパク質のクライアントの後期折りたたみステップを支援します。効率的な折りたたみのHsp70のクライアントからの移転と共同シャペロンSti1/Hopの相互作用を必要とする。 STI1は直接のHsp90に結合したHsp90のATPase活性の阻害によって結合クライアントを?...

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Analyzing Protein Dynamics Using Hydrogen Exchange Mass Spectrometry

タンパク質の立体構造とダイナミクスは、タンパク質の構造と機能の関係を理解するための鍵となります。高分解能質量分析と組み合わせた水素の交換は、タンパク質のコンフォメーションのダイナミクスを研究だけでなく、接触インタフェースおよびアロステリック効果を含むタンパク質 - リガンドとタンパク質 - タンパク質相互作用を特徴付けるための汎用的な方法である。

水素交換質量分析法を用いてタンパク質のダイナミクスを分析する

All cellular processes depend on the functionality of proteins. Although the functionality of a given protein is the direct consequence of its unique ...

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18.3K ビュー.  University of Heidelberg. タンパク質の立体構造とダイナミクスは、タンパク質の構造と機能の関係を理解するための鍵となります。高分解能質量分析と組み合わせた水素の交換は、タンパク質のコンフォメーションのダイナミクスを研究だけでなく、接触インタフェースおよびアロステリック効果を含むタンパク質 - リガンドとタンパク質 - タンパク質相互作用を特徴付けるた?...

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Real-time Breath Analysis by Using Secondary Nanoelectrospray Ionization Coupled to High Resolution Mass Spectrometry

Exhaled volatile organic compounds (VOCs) have aroused considerable interest, since they can serve as biomarkers for disease diagnosis and environmental exposure in a non-invasive manner. In this work, we present a protocol to characterize the exhaled VOCs in real time by using secondary nanoelectrospray ionization coupled to high resolution mass spectrometry (Sec-nanoESI-HRMS). The homemade Sec-nanoESI source was readily set up based on a commercial nanoESI source. Hundreds of peaks were observed in the background-subtracted mass spectra of exhaled breath, and the mass accuracy values are -4.0-13.5 ppm and -20.3-1.3 ppm in the positive and negative ion detection modes, respectively. The peaks were assigned with accurate elemental composition according to the accurate mass and isotopic pattern. Less than 30 s is used for one exhalation measurement, and it takes approximately 7 min for six replicated measurements.

A protocol for characterizing chemical composition of exhaled breath in real time by using secondary nanoelectrospray ionization coupled to high resolution mass spectrometry is demonstrated.

高分解能質量分析に結合された二次 Nanoelectrospray イオン化を用いたリアルタイム呼吸解析

Exhaled volatile organic compounds (VOCs) have aroused considerable interest, since they can serve as biomarkers for disease diagnosis and environmental ...

化学

Synthesis and Mass Spectrometry Analysis of Oligo-peptoids

Peptoids are sequence-controlled peptide-mimicking oligomers consisting of N-alkylated glycine units. Among many potential applications, peptoids have been thought of as a type of molecular information storage. Mass spectrometry analysis has been considered the method of choice for sequencing peptoids. Peptoids can be synthesized via solid phase chemistry using a repeating two-step reaction cycle. Here we present a method to manually synthesize oligo-peptoids and to analyze the sequence of the peptoids using tandem mass spectrometry (MS/MS) techniques. The sample peptoid is a nonamer consisting of alternating N-(2-methyloxyethyl)glycine (Nme) and N-(2-phenylethyl)glycine (Npe), as well as an N-(2-aminoethyl)glycine (Nae) at the N-terminus. The sequence formula of the peptoid is Ac-Nae-(Npe-Nme)4-NH2, where Ac is the acetyl group. The synthesis takes place in a commercially available solid-phase reaction vessel. The rink amide resin is used as the solid support to yield the peptoid with an amide group at the C-terminus. The resulting peptoid product is subjected to sequence analysis using a triple-quadrupole mass spectrometer coupled to an electrospray ionization source. The MS/MS measurement produces a spectrum of fragment ions resulting from the dissociation of charged peptoid. The fragment ions are sorted out based on the values of their mass-to-charge ratio (m/z). The m/z values of the fragment ions are compared against the nominal masses of theoretically predicted fragment ions, according to the scheme of peptoid fragmentation. The analysis generates a fragmentation pattern of the charged peptoid. The fragmentation pattern is correlated to the monomer sequence of the neutral peptoid. In this regard, MS analysis reads out the sequence information of the peptoids.

A protocol is described for the manual synthesis of oligo-peptoids followed by sequence analysis by mass spectrometry.

合成とオリゴ ペプチドの質量分析

Peptoids are sequence-controlled peptide-mimicking oligomers consisting of N-alkylated glycine units. Among many potential applications, peptoids have ...

Analyzing Protein Architectures and Protein-Ligand Complexes by Integrative Structural Mass Spectrometry

Proteins are an important class of biological macromolecules that play many key roles in cellular functions including gene expression, catalyzing metabolic reactions, DNA repair and replication. Therefore, a detailed understanding of these processes provides critical information on how cells function. Integrative structural MS methods offer structural and dynamical information on protein complex assembly, complex connectivity, subunit stoichiometry, protein oligomerization and ligand binding. Recent advances in integrative structural MS have allowed for the characterization of challenging biological systems including large DNA binding proteins and membrane proteins. This protocol describes how to integrate diverse MS data such as native MS and ion mobility-mass spectrometry (IM-MS) with molecular dynamics simulations to gain insights into a helicase-nuclease DNA repair protein complex. The resulting approach provides a framework for detailed studies of ligand binding to other protein complexes involved in important biological processes.

Mass spectrometry (MS) has emerged as an important tool for the investigation of structure and dynamics of macromolecular assemblies. Here, we integrate MS-based approaches to interrogate protein complex formation and ligand binding.

タンパク質のアーキテクチャと統合構造質量分析法によるタンパク質-リガンド複合体の分析

Proteins are an important class of biological macromolecules that play many key roles in cellular functions including gene expression, catalyzing ...

Large-scale Top-down Proteomics Using Capillary Zone Electrophoresis Tandem Mass Spectrometry

Capillary zone electrophoresis-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (CZE-ESI-MS/MS) has been recognized as a useful tool for top-down proteomics that aims to characterize proteoforms in complex proteomes. However, the application of CZE-MS/MS for large-scale top-down proteomics has been impeded by the low sample-loading capacity and narrow separation window of CZE. Here, a protocol is described using CZE-MS/MS with a microliter-scale sample-loading volume and a 90-min separation window for large-scale top-down proteomics. The CZE-MS/MS platform is based on a linear polyacrylamide (LPA)-coated separation capillary with extremely low electroosmotic flow, a dynamic pH-junction-based online sample concentration method with a high efficiency for protein stacking, an electro-kinetically pumped sheath flow CE-MS interface with extremely high sensitivity, and an ion trap mass spectrometer with high mass resolution and scan speed. The platform can be used for the high-resolution characterization of simple intact protein samples and the large-scale characterization of proteoforms in various complex proteomes. As an example, a highly efficient separation of a standard protein mixture and a highly sensitive detection of many impurities using the platform is demonstrated. As another example, this platform can produce over 500 proteoform and 190 protein identifications from an Escherichia coli proteome in a single CZE-MS/MS run.

A detailed protocol is described for the separation, identification, and characterization of proteoforms in protein samples using capillary zone electrophoresis-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (CZE-ESI-MS/MS). The protocol can be used for the high-resolution characterization of proteoforms in simple protein samples and the large-scale identification of proteoforms in complex proteome samples.

キャピラリー ゾーン電気泳動タンデム質量分析法による大規模なトップダウン プロテオミクス

Capillary zone electrophoresis-electrospray ionization-tandem mass spectrometry (CZE-ESI-MS/MS) has been recognized as a useful tool for top-down ...

High-throughput and Comprehensive Drug Surveillance Using Multisegment Injection-Capillary Electrophoresis-Mass Spectrometry

New analytical methods are urgently needed to enable high-throughput, yet comprehensive drug screening, given an alarming opioid and prescription drug crisis in public health. Conventional urine drug testing based on a two-tier immunoassay screen followed by a gas chromatography-tandem mass spectrometry (GC-MS/MS) or liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method are expensive and prone to bias while being limited to targeted panels of known drugs of abuse (DoA). Herein, we outline an improved method for drug surveillance that allows for the resolution and detection of an expanded panel of DoA and their metabolites when using multisegment injection-capillary electrophoresis-mass spectrometry (MSI-CE-MS). Multiplexed separations of ten urine samples with a quality control by CE (&lt; 3 min/sample) in conjunction with full-scan data acquisition using a time-of-flight mass spectrometer (TOF-MS) under positive ion mode detection allows for the identification and quantification of DoA above recommended cut-off levels. An excellent resolution of drug isomers and isobars, including background interferences, are achieved when using MSI-CE-MS with an electrokinetic spacer between sample segments, where accurate mass/molecular formula together with the comigration of a matching deuterated internal standard and the detection of one or more bio-transformed metabolites facilitate DoA identification over a wider detection window. Additionally, urine samples can be analyzed directly without enzyme deconjugation for the rapid screening without complicated sample workup. MSI-CE-MS enables the surveillance of a broad spectrum of DoA that is required for the treatment monitoring of high-risk patients, including confirming prescribed drug adherence, revealing illicit drug use/substitution, and evaluating optimal dosage regimes as required for new advances in precision medicine.

Here we describe a high-throughput method for comprehensive drug surveillance that allows for the improved resolution and detection of large panels of drugs of abuse and their metabolites, with quality control based on multisegment injection-capillary electrophoresis-mass spectrometry.

マルチ セグメントの注入キャピラリー電気泳動質量分析法による高スループットかつ包括的な薬物監視

New analytical methods are urgently needed to enable high-throughput, yet comprehensive drug screening, given an alarming opioid and prescription drug ...

Imaging Corrosion at the Metal-Paint Interface Using Time-of-Flight Secondary Ion Mass Spectrometry

Corrosion developed at the paint and aluminum (Al) metal-paint interface of an aluminum alloy is analyzed using time-of-flight secondary ion mass spectrometry (ToF-SIMS), illustrating that SIMS is a suitable technique to study the chemical distribution at a metal-paint interface. The painted Al alloy coupons are immersed in a salt solution or exposed to air only. SIMS provides chemical mapping and 2D molecular imaging of the interface, allowing direct visualization of the morphology of the corrosion products formed at the metal-paint interface and mapping of the chemical after corrosion occurs. The experimental procedure of this method is presented to provide technical details to facilitate similar research and highlight pitfalls that may be encountered during such experiments.

Time-of-flight secondary ion mass spectrometry is applied to demonstrate the chemical mapping and corrosion morphology at the metal-paint interface of an aluminum alloy after being exposed to a salt solution compared with a specimen exposed to air.

飛行時間二次イオン質量分析を用いた金属塗料界面での腐食イメージング

Corrosion developed at the paint and aluminum (Al) metal-paint interface of an aluminum alloy is analyzed using time-of-flight secondary ion mass ...

3D Depth Profile Reconstruction of Segregated Impurities Using Secondary Ion Mass Spectrometry

The presented protocol combines excellent detection limits (1 ppm to 1 ppb) using secondary ion mass spectrometry (SIMS) with reasonable spatial resolution (~1 &#181;m). Furthermore, it describes how to obtain realistic three-dimensional (3D) distributions of segregated impurities/dopants in solid state materials. Direct 3D depth profile reconstruction is often difficult to achieve due to SIMS-related measurement artifacts. Presented here is a method to identify and solve this challenge. Three major issues are discussed, including the i) nonuniformity of the detector being compensated by flat-field correction; ii) vacuum background contribution (parasitic oxygen counts from residual gases present in the analysis chamber) being estimated and subtracted; and iii)&#160;performance of all steps within a stable timespan of the primary ion source. Wet chemical etching is used to reveal the position and types of dislocation in a material, then the SIMS result is superimposed on images obtained via scanning electron microscopy (SEM). Thus, the position of agglomerated impurities can be related to the position of certain defects. The method is fast and does not require sophisticated sample preparation stage; however, it requires a high-quality, stable ion source, and the entire measurement must be performed quickly to avoid deterioration of the primary beam parameters.

The presented method describes how to identify and solve measurement artifacts related to secondary ion mass spectrometry as well as obtain realistic 3D distributions of impurities/dopants in solid state materials.

二次イオン質量分析を用いた分離不純物の3D深さプロファイル再構成(英語)

The presented protocol combines excellent detection limits (1 ppm to 1 ppb) using secondary ion mass spectrometry (SIMS) with reasonable spatial ...

Capillary Electrophoresis Mass Spectrometry Approaches for Characterization of the Protein and Metabolite Corona Acquired by Nanomaterials

The adsorption of biomolecules from surrounding biological matrices to the surface of nanomaterials (NMs) to form the corona has been of interest for the past decade. Interest in the bio-nano interface arises from the fact that the biomolecular corona confers a biological identity to NMs and thus causes the body to identify them as &#8220;self&#8221;. For example, previous studies have demonstrated that the proteins in the corona are capable of interacting with membrane receptors to influence cellular uptake and established that the corona is responsible for cellular trafficking of NMs and their eventual toxicity. To date, most research has focused upon the protein corona and overlooked the possible impacts of the metabolites included in the corona or synergistic effects between components in the complete biomolecular corona. As such, this work demonstrates methodologies to characterize both the protein and metabolite components of the biomolecular corona using bottom-up proteomics and metabolomics approaches in parallel. This includes an on-particle digest of the protein corona with a surfactant used to increase protein recovery, and a passive characterization of the metabolite corona by analyzing metabolite matrices before and after NM exposures. This work introduces capillary electrophoresis &#8211; mass spectrometry (CESI-MS) as a new technique for NM corona characterization. The protocols outlined here demonstrate how CESI-MS can be used for the reliable characterization of both the protein and metabolite corona acquired by NMs. The move to CESI-MS greatly decreases the volume of sample required (compared to traditional liquid chromatography &#8211; mass spectrometry (LC-MS) approaches) with multiple injections possible from as little as 5 &#181;L of sample, making it ideal for volume limited samples. Furthermore, the environmental consequences of analysis are reduced with respect to LC-MS due to the low flow rates (&#60;20 nL/min) in CESI-MS, and the use of aqueous electrolytes which eliminates the need for organic solvents.

Here we present a protocol to characterize the complete biomolecular corona, proteins, and metabolites, acquired by nanomaterials from biofluids using a capillary electrophoresis &#8211; mass spectrometry approach.

ナノ材料で獲得したタンパク質と代謝物コロナの特性解析のためのキャピラリー電気泳動質量分析法

The adsorption of biomolecules from surrounding biological matrices to the surface of nanomaterials (NMs) to form the corona has been of interest for the ...

Covalent Labeling with Diethylpyrocarbonate for Studying Protein Higher-Order Structure by Mass Spectrometry

Characterizing a protein&#39;s higher-order structure is essential for understanding its function. Mass spectrometry (MS) has emerged as a powerful tool for this purpose, especially for protein systems that are difficult to study by traditional methods. To study a protein&#39;s structure by MS, specific chemical reactions are performed in solution that encode a protein&#39;s structural information into its mass. One particularly effective approach is to use reagents that covalently modify solvent accessible amino acid side chains. These reactions lead to mass increases that can be localized with residue-level resolution when combined with proteolytic digestion and tandem mass spectrometry. Here, we describe the protocols associated with use of diethylpyrocarbonate (DEPC) as a covalent labeling reagent together with MS detection. DEPC is a highly electrophilic molecule capable of labeling up to 30% of the residues in the average protein, thereby providing excellent structural resolution. DEPC has been successfully used together with MS to obtain structural information for small single-domain proteins, such as &#946;2-microglobulin, to large multi-domain proteins, such as monoclonal antibodies.

The experimental procedures for performing diethylpyrocarbonate-based covalent labeling with mass spectrometric detection are described. Diethylpyrocarbonate is simply mixed with the protein or protein complex of interest, leading to the modification of solvent accessible amino acid residues. The modified residues can be identified after proteolytic digestion and liquid chromatography/mass spectrometry analysis.

質量分析によるタンパク質高次構造の研究のためのジエチルピロカーボネートとの共有結合標識

Characterizing a protein&#39;s higher-order structure is essential for understanding its function. Mass spectrometry (MS) has emerged as a powerful tool ...

Capillary Electrophoresis-based Hydrogen/Deuterium Exchange for Conformational Characterization of Proteins with Top-down Mass Spectrometry

Resolving conformational heterogeneity of multiple protein states that coexist in solution remains one of the main obstacles in the characterization of protein therapeutics and the determination of the conformational transition pathways critical for biological functions, ranging from molecular recognition to enzymatic catalysis. Hydrogen/deuterium exchange (HDX) reaction coupled with top-down mass spectrometric (MS) analysis provides a means to characterize protein higher-order structures and dynamics in a conformer-specific manner. The conformational resolving power of this technique is highly dependent on the efficiencies of separating protein states at the intact protein level and minimizing the residual non-deuterated protic content during the HDX reactions. 
Here we describe a capillary electrophoresis (CE)-based variant of the HDX MS approach that aims to improve the conformational resolution. In this approach, proteins undergo HDX reactions while migrating through a deuterated background electrolyte solution (BGE) during the capillary electrophoretic separation. Different protein states or proteoforms that coexist in solution can be efficiently separated based on their differing charge-to-size ratios. The difference in electrophoretic mobility between proteins and protic solvent molecules minimizes the residual non-deuterated solvent, resulting in a nearly complete deuterating environment during the HDX process. The flow-through microvial CE-MS interface allows efficient electrospray ionization of the eluted protein species following a rapid mixing with the quenching and denaturing modifier solution at the outlet of the sprayer. The online top-down MS analysis measures the global deuteration level of the eluted intact protein species, and subsequently, the deuteration of their gas-phase fragments. This paper demonstrates this approach in differential HDX for systems, including the natural protein variants coexisting in milk.

Presented here is a protocol for a capillary electrophoresis-based hydrogen/deuterium exchange (HDX) approach coupled with top-down mass spectrometry. This approach characterizes the difference in higher-order structures between different protein species, including proteins in different states and different proteoforms, by conducting concurrent differential HDX and electrophoretic separation.

トップダウン質量分析によるタンパク質の立体構造特性評価のためのキャピラリー電気泳動ベースの水素/重水素交換

Resolving conformational heterogeneity of multiple protein states that coexist in solution remains one of the main obstacles in the characterization of ...