CEES Verlaan、ジョイスフィッセル、メレルSchurink、グレースクロフトは親切に動物実験で、その優れた技術支援のために承認されます。

全てのインビボ実験は、実験動物資源協会によって調製実験動物の管理と使用に関する指針に従って行った。実験は、地元の動物実験委員会によって承認された。 1。薬、麻酔、静脈アクセス、及び挿管<ol><li>薬や麻酔<ol><li>前投薬<ol><li>アミオダロン150 mgの開始/不整脈を防ぐために、手術前に10日間キロ。 28日目​​には。29日目50 mg / kgの投与量を削減と研究の終了まで継続するまでの手順の日から100 mg / kgでの用量でアミオダロンを続ける。 </li><li>手術および4.5 mg / kgのアセチルサリチル酸手術前に1日の前に抗血小板療法、3日目から1 mg / kgのクロピドグレルを開始します。クロピドグレル1 mg /日あたりのkgおよびアセチルサリチル酸80mg /日を続けています。 </li><li>鎮痛薬1日は、フェンタニルパッチで手術前に開始し25〜70キロの豚μgの/時。適切な鎮痛薬を確保するために、24時間後に手術のためフェンタニルパッチの使用を継続する。また、推定される不快感の兆候鎮痛剤を増加させる（ つまり行動、呼吸、歩行、運動性など ） を毎日モニター。 </li><li> 12時間動物を絶食、水への無制限のアクセスを維持します。 </li></ol></li><li>麻酔<ol><li>不必要なストレスや不快感を防ぐために、ミダゾラム0.4 mg / kgを、ケタミン10 mg / kgであり、アトロピン0.014 mg / kgでの混合物の筋肉内注射により、その安定した中で豚を鎮静。 </li><li> 18 Gの静脈カニューレを耳静脈にカニューレを挿入することにより静脈アクセスを得る。 5 mg / kgのsodiumthiopentalの静脈内投与により麻酔を誘導し、感染を防ぐために、1,000 / 100mgのアモキシシリン/クラブラン酸を得た。豚は、抗生物質治療として手術後一日1,000 / 100mgのアモキシシリン/クラブラン酸を受け取ります。 </li><li> endotrachを使って豚を挿管EALチューブ（〜70キロの重量を量る豚サイズ8.5）。必要に応じて12/minの周波数にバルーン換気を行い、手術室に豚を輸送する。 </li><li>手術室に到着時、直ちにのFiO 2 0.50、10ミリリットル/キログラム回換気量と機械的陽圧換気を開始し、12/min下の周波数はカプノグラフィーを継続します。 </li><li>ミダゾラム0.5 mg / kgの/時、フェンタニル2.5マイクログラム/キロ/時であり、パンクロニウム臭化物0.1 mg / kgの/時間の組み合わせの静脈内注入を続けることで、バランス麻酔を開始します。全体の動作中、連続的に、麻酔の深さを測定するためにECG、動脈血圧、温度、およびカプノグラフィーを監視する。洞性頻脈が存在する場合には鎮痛薬および/または麻酔が十分である場合は、確認してください。 </li><li>静脈内に6％venofundin 500ミリリットル中のアミオダロンの4.3 mg / kgのを注入する。 </li><li> 5によって心臓のリズムを監視して心電図をリードしています。 </li><li>首と後足LIMを剃るときれいB領域。 </li><li>フォーリーカテーテルを挿入します。 </li></ol></li></ol></li></ol> 2。経胸壁心エコー検査<ol><li>右側臥位で動物を配置します。このようなDalland豚などの在来種の豚では、唯一の胸骨傍のビュー（ロングとショート軸）を得ることができる。原因胸郭の形状に、心尖ビューの取得は現実的ではありません。 </li><li>東洋と2D（Bモード）での胸骨傍の長軸像を得る。 Mモードでの拡張末期と収縮末期でのLV寸法を決定。 </li><li>僧帽弁乳頭筋と頂点のレベルでLV短軸像を買収する胸骨の位置を維持しながら、エコープローブを時計回りに90度回転させます。乳頭筋と頂点の短軸像は、僧帽弁の短軸像のための位置を基準に低エコープローブ1または2肋間スペースの配置を必要とする場合があります。 </li></ol> 3。手術の準備と血管アクセス<ol><li>感染駆除ヨウ素の2％で、外科分野をfectとブタの非滅菌部分をカバーするために、無菌の手術用ドレープを使用。 </li><li>首の内側の切開を行います。筋肉の損傷を最小限に抑え、ぶっきらぼう気管の隣に頸動脈と内頸静脈にアプローチする白線を渡す。 </li><li>慎重に頸動脈と内頸静脈を分離します。迷走神経が損傷を受けていないことを確認します。血管制御を得るために両方の容器の周りのVicryl 2-0縫合糸を配置します。セルジンガー法を用いて8Fシースと内頸動脈にカニューレを挿入することによって、動脈のアクセスを達成する。動脈にシースを固定し、動脈が完全に縫合によって塞がれていないことを確認してください。静脈アクセスは9Fシースはまた、セルジンガー法を用いて頸静脈にカニューレを挿入することによって取得することができる。シースを固定する前に静脈を結紮されていることを確認します。代替的に、大腿動脈にも、動脈アクセスのために使用することができる。 </li><li>すぐにsheatを挿入した後100、IE / kgのヘパリンを投与し血栓形成を阻害するために、HS。 </li><li>安定かつ一定の動脈圧測定のために、動脈の上にある小さな切開を行うことで、後肢の一小さい動脈のいずれかにカニューレを挿入。動脈が皮膚のすぐ下にあり、脈動は、皮膚を通して感じることができる。その周囲の組織から動脈を分離します。容器の周りの2のVicryl 2-0の縫合糸、1近位およ​​び遠位の1を配置します。先端側を連結し、18のG静脈カニューレを挿入し、しっかりと圧力を接続して固定します。 </li></ol> 4。侵襲圧力ボリュームループ解析<ol><li>内頸静脈内の以前に位置したシーズを経由スワンガンツカテーテル（SG）を挿入します。 </li><li>近位の内腔で絶頂に達する、SGの一部に心臓出力デバイスを接続します。 </li><li> SGの近位管腔に0.9％食塩水を5ml注入し、心拍出量を測定する;この3回繰り返すと指標を平均化。 </li><li>以前を使用して太陽光発電システムをキャリブレーション心拍出量を決定した。 </li><li>透視下で左心室に頸動脈を経由して 7Fのコンダクタンスカテーテルを挿入します。 </li><li>容積測定のためのLVで最大のセグメントに存在を選択し、ベースラインが無呼吸の下でスキャンを実行します。 </li><li>体積較正が完了した後、レコード10-15無呼吸の下で打つ。 </li><li> SGを削除し、透視下で、振動板の高さで劣る大静脈にバルーンカテーテルを配置。 </li><li>無呼吸の下でバルーンを膨張させることで負荷軽減を実行し、対応するPV-ループを録音。 </li></ol> 5。冠動脈内圧力および流量測定<ol><li>ミリリットルは100μg/の濃度でニトログリセリンを希釈し、30μg/ mlの濃度でアデノシンを希釈。 </li><li>左冠状動脈の口に8Fガイディングカテーテルの位置を決めます。 </li><li>左冠状arterの近位部に組み合わさ圧力/流量線を配置Y。 </li><li>ニトログリセリン冠動脈内の200μgのを投与し、動脈圧で、有線で測定された先端圧力（Pd）を、正規化します。 </li><li>左前下行冠動脈（LAD）の中央部分にワイヤーを配置します。 </li><li>基準圧力と流量の測定を開始する。 、アデノシン冠動脈内の60μgのを投与することにより、充血を誘導生理食塩水を2ミリリットルと同一平面と充血圧力と流量を測定します。ベースラインの値に復元するために流れを待つ。二回の測定を繰り返します。 </li><li>別の200μgのニトログリセリンの冠動脈内に注入し、繰り返して、左回旋冠動脈のため1.6と1.7を繰り返します。 </li></ol> MIの6。誘導<ol><li>静脈シースを使用して、右心室に心腔内除細動カテーテルを配置します。遠位電極は、心室の頂点に心房と/または上大静脈における近位電極である必要があります。除細動カテーテルを接続し、50に設定しますJ. </li><li> APとLAO 30°ビューで（D2）斜めからのLAD遠位の直径を測定します。 </li><li> D2（ 図1）からLAD遠位の直径に従って径の血管形成バルーンを選択してください。 </li><li>遠位にLADにガイディングカテーテルを介してガイドワイヤーを配置します。 </li><li>ガイドワイヤ上にバルーンカテーテルを前進させる。 D2からバルーンの遠位に配置します。 </li><li> 30 IE / kgのヘパリンを管理します。 </li><li>圧力がLADの右直径と一致するまでバルーンを膨らませる。 </li><li>血管造影（ 図1）によってLADの完全閉塞を確認してください。 </li><li>無菌作業する分野、および滅菌ドレープ布で首の傷をカバーしています。胸骨圧迫や経胸腔除細動のためにそれを使用できるようにするために任意の報道から胸を解放します。 </li><li>次の90分の間にバルーン内の圧力を確認し、必要に応じて圧力を復元します。 </li><li>心室細動の場合：<ol><li>すぐに100/minの頻度で胸骨圧迫を開始します。 </li><li>速いボーラス（〜1分）として静脈内の300mgアミオダ​​ロンを管理します。 </li><li> 50 Jの衝撃を与え、心腔内除細動を開始</li><li> 5失敗したショックの後、胸骨圧迫を再開します。失敗したショックの場合、150 J.との経胸壁除細動ショックを心臓内除細動を変更、200 Jに変更</li><li>必要に応じて、150ミリグラムのアミオダロンおよび/または1mgのアドレナリンの他の用量を投与する。必要に応じて3〜5分間隔で二回アドレナリンを繰り返します。 </li><li>経胸壁除細動が散在し、胸部圧迫を継続</li></ol></li></ol>手術を終えた（長期フォローアップのための） <ol><li> LADは、まだ完全に閉塞している場合、血管造影による90分の確認後。 </li><li>別の30のIE / kgのヘパリンを投与し、バルーンを収縮させる。再灌流のために確認してください。 GUIDに収縮したバルーンを削除頸動脈鞘からカテーテルをING。 </li><li>慎重に動脈シースを除去し、吻合クランプ（ 図1）で直ちに頚動脈をクランプする。使用は頸動脈を閉じるには、ステッチ（6-0プロレン）を続けています。クランプを外し、漏れをチェックする。 </li><li>内部除細動カテーテルを取り外し、内頸静脈からシースを除去します。シースエントリのライゲーション近位。 </li><li> 2-0ビクリルを使用して2層に首の皮下組織や皮膚を閉じます。 </li></ol> 7。心臓磁気共鳴画像<ol><li>連続麻酔下仰臥位で最初のMRIのテーブルの頭の上に動物を配置します。 </li><li>動物の胸の上に専用フェーズドアレイ、心コイルを配置します。 </li><li>画像計画のための短軸と2室の長軸像でのスカウト画像を得る。 </li><li>心電図同期定常状態自由歳差運動（SSFP）短軸のシネ（頂点からのLVのベースに）と2 chambeを獲得長軸景色R。 </li><li>後期ガドリニウム増強（LGE）は、反転回復3D-ターボ勾配エコー手法ガドリニウムベースの造影剤の二重用量静脈内ボーラス投与後15分を使用して取得することができる。 </li><li>機能パラメータの検証ソフトウェアを使用してオフラインで解析を実行する。左室駆出率（LVEF）、LV質量、拡張末期容積、収縮末期容積、拍出量、心拍出量、および瘢痕塊を評価する。 </li></ol> 8。研究の終了および梗塞サイズ<ol><li>試験終了時、フォローアップ測定値を取得するためのプロトコル1-5と7に従ってください。 </li><li>ただ剣状突起下の点にちょうど胸骨上切痕下から中央値30〜40センチメートル切開を行います。胸骨まで白線を進む。剣状突起を分割し、慎重に心膜から事後胸骨を分離するためKlinkenbergはさみを使用しています。ぶっきらぼうにハサミを使用した後、さらに分離を継続する。胸骨切開Bを実行するY 例えばハンマーとLebschナイフを使用。骨髄出血は骨髄に骨ろうを擦ることにより最小化される。胸骨リトラクタで胸部を開きます。 </li><li>第三胸膜腔に入り、縦隔に劣る大静脈の位置を確認します。 </li><li>人道的に深い麻酔下で劣る大静脈を切断した動物を安楽死させる。吸引装置で血液を除去。心室細動を誘発するために頂点に9 Vバッテリーを置きます。 </li><li>心の切除した後、右をカットし、頂点までのベースから5スライスに心室を出て、15分間、37℃で0.9％生理食塩水に溶解し、1％トリフェニルテトラゾリウムクロライド中でインキュベートした。次に、0.9％食塩水にスライスを洗って、両側からのスライスを撮影しています。 </li></ol>

<ol>
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C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myocardial+infarction+and+intramyocardial+injection+models+in+swine.">Myocardial infarction and intramyocardial injection models in swine.</a> Nature Protoc. 8 (7), 1479-1496 (2012).</li><li>Roussi, J., Andre, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Platelet+functions+and+haemostasis+parameters+in+pigs:+absence+of+side+effects+of+a+procedure+of+general+anaesthesia.">Platelet functions and haemostasis parameters in pigs: absence of side effects of a procedure of general anaesthesia.</a> Thromb Res. 81 (3), 297-305 (1996).</li></ol>

この作品は、HGGグループBV（SK）、「Wijnand M.ポンステフティング」（SC、SK）によってサポートされていました。本研究は、オランダ経済省、農業·イノベーション（SJL、JG）によってcofunded生体材料研究所のプロジェクトP1.04 SMARTCAREの一部を形成する。すべての著者は、彼らが開示することなく関係を持っていないことを報告している。

LADの冠動脈内バルーン閉塞は、安全性と密接にヒトの状況を模倣する新たな心血管治療法の有効性を調査するために使用することができるブタの再現性と一貫性のある前臨床MIモデルを提供する。 図5に示すように、提示さ虚血/再灌流梗塞モデルは、さらに、初期虚血/再灌流傷害の両方に対して同一である一方MIおよびMI後リモデリングの異なる段階を調査するために調整することができるプラットフォームを提供する。 ここで説明する記述されたプロトコルの成功は、プロトコルの中で最も重要な段階として、心筋虚血に依存している。 LADの第二対角枝にバルーン遠位の正しい配置は、高い生存率を確保しながら、適切な梗塞サイズに到達するために重要です。このミシガンモデルに基づいて、約15％の死亡率が、観察された大規模なミッドと前、中隔とinferiの先端セグメントCMRおよびTTC染色（ 図2Aおよび2B）で見られるように、または壁梗塞した。虚血の持続時間は、所望の梗塞の大きさに応じて調整することができる。我々は、このプロトコルではランドレース種の豚を使用していたが、ミニブタ（ すなわちゲッティンゲンのミニブタ）は、通常、心筋虚血（ 例えば 150分閉塞）の長い期間を必要とする。 前臨床および臨床のMI研究における結果分析は、多くの場合、左室駆出率に基づいています。低LVEFがしっかりと心血管死亡のリスクの増大と関連しているが、このようなプリロード9などhemodynamicalパラメータに依存したまま。間違いなく、平均的にLVのわずか10〜15％が梗塞していることを考えると、いくつかの概念と実践的な制限は、LVEFは左室収縮機能の全体的な尺度ではなく、地元の改善を反映して10に関連しています。したがって、このモデルで使用される成果の対策案はのさまざまな側面に光を当てる<html> MIおよびMI後リモデリングすることにより、研究者に正確に、複数のレベルでの新たな治療法の有効性を評価するための手段を提供する。 臨床診療への前臨床モデルからの翻訳を最適化するために、我々は大規模な豚の代わりに、ミニブタを使用して選択します。血行動態測定は、薬剤投与量および外科用デバイスは、臨床現場で容易に交換することができる。ミニブタと比較すると、大規模な豚は、比較的多くの重量を得る。これは、シリアルの結果の比較可能性に関しては、長期的なフォローアップに問題が発生することがあります。女性Dallandランドレース種の豚は6ヶ月齢で約70キロの重さ。フォローアップ期間中に、豊富な体重増加を防ぐために、動物は制限食に保存されています。 （：タンパク質15.6％、脂肪2.0％、繊維14.8％、灰8.8％、カルシウム0.9％、リン0.57％、マグネシウム0.29％、カリウム0.18％含有）を一日二回のブタはカスタムメイドの低カロリー食品の750グラムを受ける4週間で重量の約10キロを得ることができます。 e_content &quot;&gt;マッコールらは、以前に豚11に心筋梗塞のための同様のプロトコルを公開しています。かなりの重複がLADの優先ではなく、左回旋枝（LCX）または右冠動脈（RCAを強調し、このプロトコルと彼らの間に存在するRCAの梗塞が高く、不要な伝導障害の可能性（ つまり、洞結節機能不全、AVノード機能障害）を伴うされている間）。我々の経験では、LCXを用いて全左心室の梗塞サイズの程度は低いがあります。との違いの1つは、我々は閉塞した冠動脈における止血の90分の結果として血栓形成に基づく非リフローの高い率を観察しているように、2つのプロトコルは、このプロトコルでの増加理学的血小板阻害の使用に関する。この観察はに沿ったものである既知の凝固性亢進は、豚12で観察された。·マッコールは、ヘパリン、THIのシングル、高用量ボーラスを使用して提案したがSプロトコルは、血栓性合併症を最小限に抑えるために、手術全体に広がる複数の低用量でのヘパリンの使用に依存している。 要約すると、我々は、ファースト·イン·マンの臨床試験に向けた重要なステップとして、新しい治療法を研究するためにヒトの疾患の効果的な再現性および上記のすべての実用的な大規模な動物モデルを利用するために研究者を可能にするブタ心筋梗塞モデルを提示する。

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Sanne Jansen of Lorkeers
to:
Sanne J. Jansen of Lorkeers

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The middle initial J. has been added to author Sanne Jansen of Lorkeers.

Erratum: Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

急性心筋梗塞（AMI）および慢性心不全（CHF）としての長期的な後遺症は深く、患者の予後や生活の質に影響を与え、言うまでもなく私たちの利用可能な医療資源1に課せられた高コストの制約。西洋世界におけるスイスフランの有病率は症例の60％が主な原因2として、AMIの結果である〜そのうち1〜2％と推定されている。米国だけでは、約5.7万人の患者は、2030年1で毎年970億ドルに上昇するコストの予測三連で、2008年の年間医療費は約300億ドルのCHF会計に苦しんでいます。総合すると、これらの数字は、のための強力な議論をするSWIFT翻訳のために、正確に人間のシナリオを模倣し、再現性と信頼性の高い大型動物の心筋梗塞モデルに依存している、新しいcardioregenerative治療法の開発。 ブタ（ イノシシ ） がますますcardiovascuで使用されている薬理学的および毒性学的試験の3 LAR研究。トランスレーショナルリサーチツールとしてのこの成功に責任を特色の一つは、人間の心臓4,5と心機能と解剖学の類似性である。例えば、ブタ心臓対体重比、心臓のサイズおよび冠状動脈の解剖学的構造の分布は、すべての4人に顕著に類似することが示されている。また、心筋細胞の代謝、電気生理学的特性などのAMIなどの虚血性発作に対する応答は、ヒトの状況6,7との協定の高いレベルを示すことが報告されている。最終的には、上記の基準を満たすために、治験薬（IND）のテストのために、堅牢で持続可能なMIを生成し、標準化され、MI-プロトコルが必要とされている。ここでは、それによってで再現性の心筋梗塞を作成し、再灌流に続く左前下行冠動脈（LAD）の90分の非開胸冠動脈バルーン閉塞を使用していますこのような標準化されたモデルを提示farction anteroapical、中隔、左心室のinferoseptal壁をカバーする。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="726">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">0.9% Saline</td>
			<td style="width:224px;">Braun</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">6-0 Prolene</td>
			<td style="width:224px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Acetylsalicylic acid</td>
			<td style="width:224px;">80 mg (Ratiopharm)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Adenosine</td>
			<td style="width:224px;">3mg/ml apotheek UMCU</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">AdVantage PV loop system</td>
			<td style="width:224px;">Transonic Scisence</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="43" rowspan="2" style="height:43px;width:216px;">Amiodarone</td>
			<td style="width:224px;">Cordarone I.V. (Sanofi)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:224px;">Amiodaron HCl (PCH)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Amoxicilline/ clavulaanzuur</td>
			<td style="width:224px;">500/50mg (Sandoz)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Atropinesulfaat</td>
			<td style="width:224px;">0,5 mg/ml (PCH)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Bone Marrow Wax</td>
			<td style="width:224px;">Syneture</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Cardiac Defibrillator</td>
			<td style="width:224px;">Philips</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Clopidogrel</td>
			<td style="width:224px;">Clopidrogel 75A (Apothecon B.V.)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Contrast agent</td>
			<td style="width:224px;">Telebrix</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Endotracheal tube</td>
			<td style="width:224px;">Covidien</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Fentanyl patch</td>
			<td style="width:224px;">Durogesic&#174; 25 mcg/h (Janssen-Cilag)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Fogarty catheter</td>
			<td style="width:224px;">Edwards Lifesciences</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Gadolinium</td>
			<td style="width:224px;">Gadovist</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Guidewire</td>
			<td style="width:224px;">Abbott</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Heparin</td>
			<td style="width:224px;">Leo</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">I.V. cannula</td>
			<td style="width:224px;">Abbocath&#174; (Hospira venisystems)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Iodine</td>
			<td style="width:224px;">Jodiumtictuur 2% (Eurovet)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Ketamine</td>
			<td style="width:224px;">Narketan&#174; 10 V&#233;toquinol</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Midazolam</td>
			<td style="width:224px;">5mg/ml (Actavis)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Nitroglycerin</td>
			<td style="width:224px;">1mg/ml Pohl Boskamp</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Pancuronium bromide</td>
			<td style="width:224px;">2mg/ml</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Seldinger vascular sheath 8F</td>
			<td style="width:224px;">Arrow</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Sufentanil&#160;</td>
			<td style="width:224px;">50 mcg/ml (Sufentanil-hameln)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Swann-Ganz catheter</td>
			<td style="width:224px;">Criticath ref 680078 (Argon)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Synolux</td>
			<td style="width:224px;">250 mg (Pfizer)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Tetra-polar catheter</td>
			<td style="width:224px;">Transonic Scisence</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Thiopental</td>
			<td style="width:224px;">0,5 g (Inresa)</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Triphenyl-tetrazolium chloride</td>
			<td style="width:224px;">Merck</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Venofundin</td>
			<td style="width:224px;">Braun</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Vicryl 2-0</td>
			<td style="width:224px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:216px;">Volcano ComboMap system</td>
			<td style="width:224px;">Volcano</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

myocardial infarction and functional outcome assessment in pigs

ファースト·イン·マン試験に新たに発見された心血管治療薬の導入は厳しく規制、倫理的、法的なロードマップに依存します。一つの重要な前提条件は、正当に心筋梗塞（MI）の人のシナリオを反映した大型動物モデルで得られたすべての安全性と有効性の面をよく理解です。彼らの心臓の大きさ、血行動態、および冠動脈解剖が人間のそれに近いことから、豚は広く、この点で使用されている。ここでは、再灌流に続いて動脈（LAD）を左前の閉胸冠状動脈バルーン閉塞を用いて、ブタのMIモデルを使用するために有効なプロトコルを提示する。このアプローチは、前、中隔とinferoseptal壁の大左心室梗塞を誘発する、心筋虚血の90分に基づいています。さらに、我々は、心臓収縮期および拡張期機能、hemodynami心臓に関する幅広い情報を提供するアウトカムの様々な施策のためのプロトコルを提示csを、冠血流速度、微小血管抵抗、および梗塞サイズ。このプロトコルは、簡単に様々な段階での小説cardioregenerative生物製剤のバリデーション（ すなわち直接急性虚血性発作の後、亜急性の設定で、あるいは慢性MIに瘢痕形成が完了した後に）のための特定の要件を研究満たすように調整することができる。このモデルは、したがって、MIを研究するための有用なトランスレーショナルなツール、それに続く不利な改造、及び新規cardioregenerative薬の可能性を提供します。

死亡率と梗塞サイズ当センターでは、このMIプロトコル、5（15.6％）に供した32匹のブタ（6ヶ月女性Dallandランドレース、、〜70キロ）のうち、虚血時に起因する難治性心室細動に死亡した。このプロトコルは、前壁、中隔とinferoseptal壁（ 図2A）に位置して左心室の約10〜15％をカバー梗塞を作成します。梗塞サイズの連続非侵襲的評価が保証される場合、後期ガドリニウム増強（LGE）CMRの時刻（ 図2B）を介して非生存梗塞領域を追跡するために使用することができる。 心機能およびリモデリング四週間心筋梗塞後の心機能を反映して世界と地域のパラメータは、健康的なベースライン値と比較して減少させるべきである。具体的には、左室駆出率（LVEF）は約〜35から45% 4週間MI後に減少するはずである。グローバル収縮機能のほかに、MI後の有害なリモデリングを反映するいくつかのパラメータはまた、そのようなCMRおよび心エコー検査（ 図3Aおよび3B）を用いて、LVの形態および直径として測定することができる。 MI、有害なリモデリングの符号と拡張末期容積（EDV）の増加が期待できる4週間後（ 図3Aおよび3B）。 冠状動脈流量と圧力のパラメータ血管新生および新しい毛細血管の形成は、多くの場合、虚血性心疾患8における重要な治療目標とみなされる。微小血管抵抗の評価は、間接的冠動脈内の圧力および流速の測定値を組み合わせに基づくこ​​とができる。通常の条件の下で、最大充血代表圧力および流速の測定は、図4に示されている。MI後4週間、充血微小血管抵抗を比較し、梗塞関連の冠状動脈（LAD）に増加されるべきであるベースラインの状況8。 <img alt="図1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig1.jpg" /> 図1のMIモデルのLADバルーン閉塞に基づく（A）と標準的な外科機器：1）タオルクランプ; 2）蚊; 3）鉗子を解剖。 4）ラウンド容器; 5）針ホルダー（罰金とラフ）; 6）Klinkenbergはさみ; 7）はさみを解剖（直線と曲線）; 9）鉗子（脱Bakey、罰金とラフ）; 10）ホースクランプ; 11）吻合クランプ; 12）ガーゼ; 13）電気外科ペンシル; 14）、メスホルダー; 15）Dreesman（吸引）; 16）リトラクター; 17）ランプホルダー。 （B）は、LADとLCXの前方斜め透視ビューを残しました。 （c）第二対角枝を可視化した後、ちょうど遠位にD2のバルーンの2放射線不透過性マーカー（挿入図を参照して、黒矢印）の位置。 InflatEと冠動脈の血流が正常（アスタリスクを参照）造影剤注入によってブロックされていることを確認してください。心臓内除細動器リード線が（白矢印参照）、右心室で見ることができます。 LADは、左前下行枝を表し; LCXは、左回旋枝を示し、 LAOは左前斜視図を示し、 APは、前方後面図を示し、 D1は最初の対角枝を示し、 D2は二対角枝を表す。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig1highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。</a> <img alt="図2" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig2.jpg" /> 図2。MI後の梗塞サイズ。（A）LADの90分のバルーン閉塞が1カ月のフォローアップでTTC染色により可視化し大規模な心筋障害および瘢痕形成（白色）、につながる。（B）図梗塞分布が梗塞心臓の前面、前壁中隔及びinferoseptalセグメントに位置していることを示している。 （C、D）短い長軸後半ガドリニウム強化CMRイメージが前方に局在広範な梗塞瘢痕（白信号、黒の矢印参照）、心臓の前壁とinferoseptalセグメントを示しています。 LG電子、CMRは後半ガドリニウム強化心臓の磁気共鳴を示す。スケールバーは3センチメートルを示している。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig2highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。</a> <img alt="図3" fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig3highres.jpg" width="400" /> INFの機能障害を示す、図3。虚血性心筋梗塞モデルでの心機能の評価。（A）代表CMRシネループ画像最後に、拡張期および収縮末期ARCT傷セグメント。左室拡張（LVIDdの増加）、MI後1ヶ月だけでなく、機能的障害（中隔の肥厚がないこと）を示す心エコー検査により2D胸骨長軸（B）の Mモード画像、。 EDVは、拡張末期容積を示し; ESVは収縮末期容積を表し; LVIDdは拡張期に左心室の内径を示し、LVIDsは収縮期に左心室の内径を表す。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig3highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。</a> <img alt="図4" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig4.jpg" /> 図4冠動脈内の圧力及び流速は、パラメータを導出した。高的応答とのMIの前に（A）の基準値を示すCombowireを用いて冠動脈内の圧力及び流速レコーディング充血（黒矢印）へのE。 （B）は 1ヶ月、MI後に、梗塞関連動脈（LAD）は、冠血流速度（黒矢印）で減少充血応答を有する。その結果、圧力および流速導出されるパラメータ（HMR）または流速リザーブ（CFR）は、ベースラインと比較して減少する。 bAPVは、基礎の平均ピーク速度を表し、 pAPV、ピーク平均ピーク速度を表し、 CFRは、冠血流予備能を示し、 HMRは充血微小血管抵抗である。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig4highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。</a> <img alt="図5" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51269/51269fig5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51269/51269fig5.jpg" /> 治験薬を検証するための複数の可能な試験デザインの異なる研究デザインの図5。概要。（A）の回路図このLADのMIブタモデルを用いて、MIの様々な段階での（のIND）。調査中であるMIの選ばれた位相に応じて、機能解析の直前リスク領域のベースライン値および評価などの治療の割り当てを行うことができます。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51269/51269fig5highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するにはここをクリックしてください。</a>

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Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

このプロトコルは、再灌流に続く左前下行冠動脈（LAD）の90分の非開胸冠動脈バルーン閉塞を使用して、ブタ心筋梗塞（MI）モデルについて説明します。さらに、このような心機能、血行動態、微小血管抵抗、および梗塞サイズなどのいくつかの転帰パラメータのためのプロトコルもまた提示される。

豚における心筋梗塞および機能的結果の評価

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

myocardial-infarction-and-functional-outcome-assessment-in-pigs

Research

JoVE Journal

Medicine

27.7K ビュー.  University Medical Center Utrecht. このプロトコルは、再灌流に続く左前下行冠動脈（LAD）の90分の非開胸冠動脈バルーン閉塞を使用して、ブタ心筋梗塞（MI）モデルについて説明します。さらに、このような心機能、血行動態、微小血管抵抗、および梗塞サイズなどのいくつかの転帰パラメータのためのプロトコルもまた提示される。 

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Acute Myocardial Infarction in Rats

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular diseases. Animal models that mimic human cardiac disease, such as myocardial infarction (MI) and ischemia-reperfusion (IR) that induces heart failure as well as pressure-overload (transverse aortic constriction) that induces cardiac hypertrophy and heart failure (Goldman and Tarnavski), are useful models to study cardiovascular disease. In particular, myocardial ischemia (MI) is a leading cause for cardiovascular morbidity and mortality despite controlling certain risk factors such as arteriosclerosis and treatments via surgical intervention (Thygesen). Furthermore, an acute loss of the myocardium following myocardial ischemia (MI) results in increased loading conditions that induces ventricular remodeling of the infarcted border zone and the remote non-infarcted myocardium. Myocyte apoptosis, necrosis and the resultant increased hemodynamic load activate multiple biochemical intracellular signaling that initiates LV dilatation, hypertrophy, ventricular shape distortion, and collagen scar formation. This pathological remodeling and failure to normalize the increased wall stresses results in progressive dilatation, recruitment of the border zone myocardium into the scar, and eventually deterioration in myocardial contractile function (i.e. heart failure). The progression of LV dysfunction and heart failure in rats is similar to that observed in patients who sustain a large myocardial infarction, survive and subsequently develops heart failure (Goldman). The acute myocardial infarction (AMI) model in rats has been used to mimic human cardiovascular disease; specifically used to study cardiac signaling mechanisms associated with heart failure as well as to assess the contribution of therapeutic strategies for the treatment of heart failure. The method described in this report is the rat model of acute myocardial infarction (AMI). This model is also referred to as an acute ischemic cardiomyopathy or ischemia followed by reperfusion (IR); which is induced by an acute 30-minute period of ischemia by ligation of the left anterior descending artery (LAD) followed by reperfusion of the tissue by releasing the LAD ligation (Vasilyev and McConnell). This protocol will focus on assessment of the infarct size and the area-at-risk (AAR) by Evan's blue dye and triphenyl tetrazolium chloride (TTC) following 4-hours of reperfusion; additional comments toward the evaluation of cardiac function and remodeling by modifying the duration of reperfusion, is also presented. Overall, this AMI rat animal model is useful for studying the consequence of a myocardial infarction on cardiac pathophysiological and physiological function.

The rat model of acute myocardial infarction (AMI) is useful to study the consequence of a MI on cardiac pathophysiological and physiological function.

ラットにおける急性心筋梗塞

With heart failure leading the cause of death in the USA (Hunt), biomedical research is fundamental to advance medical treatments for cardiovascular ...

医学

Induction of Myocardial Infarction in Adult Zebrafish Using Cryoinjury

The mammalian heart is incapable of significant regeneration following an acute injury such as myocardial infarction1. By contrast, urodele amphibians and teleost fish retain a remarkable capacity for cardiac regeneration with little or no scarring throughout life2,3. It is not known why only some non-mammalian vertebrates can recreate a complete organ from remnant tissues4,5. To understand the molecular and cellular differences between regenerative responses in different species, we need to use similar approaches for inducing acute injuries.
In mammals, the most frequently used model to study cardiac repair has been acute ischemia after a ligation of the coronary artery or tissue destruction after cryoinjury6,7. The cardiac regeneration in newts and zebrafish has been predominantly studied after a partial resection of the ventricular apex2,3. Recently, several groups have established the cryoinjury technique in adult zebrafish8-10. This method has a great potential because it allows a comparative discussion of the results obtained from the mammalian and non-mammalian species.
Here, we present a method to induce a reproducible disc-shaped infarct of the zebrafish ventricle by cryoinjury. This injury model is based on rapid freezing-thawing tissue, which results in massive cell death of about 20% of cardiomyocytes of the ventricular wall. First, a small incision was made through the chest with iridectomy scissors to access the heart. The ventricular wall was directly frozen by applying for 23-25 seconds a stainless steel cryoprobe precooled in liquid nitrogen. To stop the freezing of the heart, fish water at room temperature was dropped on the tip of the cryoprobe. The procedure is well tolerated by animals, with a survival rate of 95%.
To characterize the regenerative process, the hearts were collected and fixed at different days after cryoinjury. Subsequently, the specimen were embedded for cryosectioning. The slides with sections were processed for histological analysis, in situ hybridization and immunofluorescence. This undertaking enhances our understanding of the factors that are required for the regenerative plasticity in the zebrafish, and provide new insights into the machinery of cardiac regeneration. A conceptual and molecular understanding of heart regeneration in zebrafish will impact both developmental biology and regenerative medicine.

Zebrafish represents a valuable model to study the mechanisms of heart regeneration in vertebrates. Here, we present a protocol for induction of a heart infarct in adult zebrafish using cryoinjury. This method results in massive cell death within 20% of the ventricular wall, similar to that observed in mammalian infarcts.

Cryoinjuryを使用した大人のゼブラフィッシュにおける心筋梗塞の誘発

The mammalian heart is incapable of significant regeneration following an acute injury such as myocardial infarction1. By contrast, urodele amphibians and ...

MRI and PET in Mouse Models of Myocardial Infarction

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ideal model for testing novel therapeutic strategies.
In vivo magnetic resonance imaging (MRI) gives excellent views of the heart noninvasively with clear anatomical detail, which can be used for accurate functional assessment. Contrast agents can provide basic measures of tissue viability but these are nonspecific. Positron emission tomography (PET) is a complementary technique that is highly specific for molecular imaging, but lacks the anatomical detail of MRI. Used together, these techniques offer a sensitive, specific and quantitative tool for the assessment of the heart in disease and recovery following treatment.
In this paper we explain how these methods are carried out in mouse models of acute myocardial infarction. The procedures described here were designed for the assessment of putative protective drug treatments. We used MRI to measure systolic function and infarct size with late gadolinium enhancement, and PET with fluorodeoxyglucose (FDG) to assess metabolic function in the infarcted region. The paper focuses on practical aspects such as slice planning, accurate gating, drug delivery, segmentation of images, and multimodal coregistration. The methods presented here achieve good repeatability and accuracy maintaining a high throughput.

We describe how to perform MRI and PET imaging of the mouse heart. The protocol is tailored to assess treatment efficacy in models of myocardial infarction and heart failure.

Myocardial infarction is one of the leading causes of death in the Western world. The similarity of the mouse heart to the human heart has made it an ...

Minimal Invasive Surgical Procedure of Inducing Myocardial Infarction in Mice

Myocardial infarction still remains the main cause of death in western countries, despite considerable progress in the stent development area in the last decades. For clarification of the underlying mechanisms and the development of new therapeutic strategies, the availability of valid animal models are mandatory. Since we need new insights into pathomechanisms of cardiovascular diseases under in vivo conditions to combat myocardial infarction, the validity of the animal model is a crucial aspect. However, protection of animals are highly relevant in this context. Therefore, we establish a minimally invasive and simple model of myocardial infarction in mice, which assures a high reproducibility and survival rate of animals. Thus, this models fulfils the requirements of the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction) for animal experiments and assure the scientific information needed for further developing of therapeutical strategies for cardiovascular diseases.

A highly reproducible model for myocardial infarction in mice with minimal invasive manipulations is described. The model can be easily performed, resulting in a high reproducibility and survival rate. Thus, the described model will reduce the number of required animals as requested by the 3R principle (Replacement, Refinement and Reduction).

マウスにおける心筋梗塞を誘発する低侵襲手術手順

Myocardial infarction still remains the main cause of death in western countries, despite considerable progress in the stent development area in the last ...

Primary Outcome Assessment in a Pig Model of Acute Myocardial Infarction

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are therefore required to confine cardiac damage, promote survival and reduce the disease burden of heart failure. Large animal experiments are an essential part in the translational process from experimental to clinical therapies. To optimize clinical translation, robust and representative outcome measures are mandatory. The present manuscript aims to address this need by describing the assessment of three clinically relevant outcome modalities in a pig acute myocardial infarction (AMI) model: infarct size in relation to area at risk (IS/AAR) staining, 3-dimensional transesophageal echocardiography (TEE) and admittance-based pressure-volume (PV) loops. Infarct size is the main determinant driving the transition from AMI to heart failure and can be quantified by IS/AAR staining. Echocardiography is a reliable and robust tool in the assessment of global and regional cardiac function in clinical cardiology. Here, a method for three-dimensional transesophageal echocardiography (3D-TEE) in pigs is provided. Extensive insight into cardiac performance can be obtained by admittance-based pressure-volume (PV) loops, including intrinsic parameters of myocardial function that are pre- and afterload independent. Combined with a clinically feasible experimental study protocol, these outcome measures provide researchers with essential information to determine whether novel therapeutic strategies could yield promising targets for future testing in clinical studies.

Reliable and accurate outcome assessment is the key for translation of preclinical therapies into clinical treatment. The current paper describes how to assess three clinically relevant primary outcome parameters of cardiac performance and damage in a pig acute myocardial infarction model.

急性心筋梗塞の豚モデルにおける主要アウトカム評価

Mortality after acute myocardial infarction remains substantial and is associated with significant morbidity, like heart failure. Novel therapeutics are ...

Myocardial Infarction in Neonatal Mice, A Model of Cardiac Regeneration

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and regeneration, and to define new targets for therapeutics. For decades, models of complete heart regeneration existed in amphibians and fish, but a mammalian counterpart was not available. The recent discovery of a postnatal window during which mice possess regenerative capabilities has led to the establishment of a mammalian model of cardiac regeneration. A surgical model of mammalian cardiac regeneration in the neonatal mouse is presented herein. Briefly, postnatal day 1 (P1) mice are anesthetized by isoflurane and placed on an ice pad to induce hypothermia. After the chest is opened, and the left anterior descending coronary artery (LAD) is visualized, a suture is placed around the LAD to inflict myocardial ischemia in the left ventricle. The surgical procedure takes 10-15 min. Visualizing the coronary artery is crucial for accurate suture placement and reproducibility. Myocardial infarction and cardiac dysfunction are confirmed by triphenyl-tetrazolium chloride (TTC) staining and echocardiography, respectively. Complete regeneration 21 days post myocardial infarction is verified by histology. This protocol can be used to as a tool to elucidate mechanisms of mammalian cardiac regeneration after myocardial infarction.

This protocol describes a highly reproducible model of cardiac regeneration by surgical induction of myocardial infarction in the left ventricle of postnatal day 1 mice. The method involves induction of hypothermic anesthesia and ligation of the left anterior descending coronary artery.

新生児マウスの心筋梗塞、心臓再生のモデル

Myocardial infarction induced by coronary artery ligation has been used in many animal models as a tool to study the mechanisms of cardiac repair and ...

Real-time Pressure-volume Analysis of Acute Myocardial Infarction in Mice

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any potential therapeutic approach directed against acute left ventricular (LV) dysfunction. Current imaging modalities (e.g., echocardiography and magnetic resonance imaging) have several limitations since data on LV pressure cannot directly be measured. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion could serve as a novel method for a real-time evaluation of LV function.
At the beginning of the procedure, mice were anesthetized followed by endotracheal intubation. For LV catheterization, the right carotid artery was exposed via middle-neck incision. The catheter was introduced and placed into the LV cavity. Left thoracotomy was conducted and the left main coronary artery (LCA) was ligated. To induce reperfusion, the suture was released after 45 min. Pressure-volume data was recorded at all times.
Ligation of the LCA caused a decrease in LV systolic function as evidenced by a 30% reduction in stroke volume, LV ejection fraction (EF), and cardiac output. Maximum dP/dt as a parameter for LV contractility was also significantly reduced and diastolic function was severely impaired (minimum dP/dt -40%). Reperfusion over a period of 20 min did not lead to a complete recovery of LV function.
Real-time pressure-volume analysis served as a valid procedure for monitoring cardiac function during acute myocardial infarction in mice. Maintaining stable anesthesia and a standardized surgical approach was crucial to ensure valid results. As the early phase of acute myocardial infarction is critical for morbidity and mortality, the delineated method could be beneficial for preclinical evaluation of new strategies for cardioprotection.

Acute myocardial infarction in mice induces acute but incompletely characterized changes in left ventricular (LV) function. LV catheterization in mice undergoing coronary artery occlusion serves as a novel method for a real-time evaluation of LV function.

マウスにおける急性心筋梗塞のリアルタイム圧解析

Acute myocardial infarction can lead to acute heart failure and cardiogenic shock. The evaluation of hemodynamics is critical for the evaluation of any ...

Digital PCR for Quantifying Circulating MicroRNAs in Acute Myocardial Infarction and Cardiovascular Disease

Circulating serum microRNAs (miRNAs) have shown promise as biomarkers for the cardiovascular disease and acute myocardial infarction (AMI), being released from the cardiovascular cells into the circulation. Circulating miRNAs are highly stable and can be quantified. The quantitative expression of specific miRNAs can be linked to the pathology, and some miRNAs show high tissue and disease specificity. Finding novel biomarkers for cardiovascular diseases is of importance for medical research. Quite recently, digital polymerase chain reaction (dPCR) has been invented. dPCR, combined with fluorescent hydrolysis probes, enables specific direct absolute quantification. dPCR exhibits superior technical qualities, including a low variability, high linearity, and high sensitivity compared to the quantitative polymerase chain reaction (qPCR). Thus, dPCR is a more accurate and reproducible method for directly quantifying miRNAs, particularly for the use in large multi-center cardiovascular clinical trials. In this publication, we describe how to effectively perform digital PCR in order to assess the absolute copy number in serum samples.

Circulating microRNAs have shown promise as biomarkers for cardiovascular diseases and acute myocardial infarctions. In this study, we describe a protocol for miRNA extraction, reverse transcription, and digital PCR for the absolute quantification of miRNAs in the serum of patients with cardiovascular disease.

急性心筋梗塞と心血管疾患のマイクロ Rna を循環の定量化デジタル PCR

Circulating serum microRNAs (miRNAs) have shown promise as biomarkers for the cardiovascular disease and acute myocardial infarction (AMI), being released ...

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we demonstrate a murine cryoinjury infarct model that generates precise infarct sizes with high reproducibility and replicability. In brief, after intubation and sternotomy of the animal, the heart is lifted from the thorax. The probe of a handheld liquid nitrogen delivery system is applied onto the myocardial wall to induce cryoinjury. Impaired ventricular function and electrical conduction can be monitored with echocardiography or optical mapping. Transmural myocardial remodeling of the infarcted area is characterized by collagen deposition and loss of cardiomyocytes. Compared to other models (e.g., LAD-ligation), this model utilizes a handheld liquid nitrogen delivery system to generate more uniform infarct sizes.

This article demonstrates a model to study cardiac remodeling after myocardial cryoinjury in mice.

マウスの心筋梗塞を研究する凍結傷害モデル

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Semi-Minimal Invasive Method to Induce Myocardial Infarction in Rats and the Assessment of Cardiac Function by an Isolated Working Heart System

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily and highly reproducible MI induction procedure is required to obtain further insight and better understanding of the underlying pathological changes. This procedure can also be used to evaluate the effects or potency of new and promising treatments (as drugs or interventions) in acute MI, subsequent remodeling and heart failure (HF). After intubation and pre-operative preparation of the animal, an anesthetic protocol with isoflurane was performed, and the surgical procedure was conducted&#160;quickly. Using a minimally invasive approach, the left anterior descending artery (LAD) was located and occluded by a ligature. The occlusion can be performed acutely for subsequent reperfusion (ischemia/reperfusion injury). Alternatively, the vessel can be ligated permanently to investigate the development of chronic MI, remodeling or HF. Despite common pitfalls, the drop-out rates are minimal. Various treatments such as remote ischemic conditioning can be examined for their cardioprotective potential pre-, peri- and post-operatively. The post-operative recovery was quick as the anesthesia was precisely controlled and the duration of the operation was short. Post-operative analgesia was administered for three days. The minimally invasive procedure reduces the risk of infection and inflammation. Furthermore, it facilitates rapid recovery. The &#8220;working heart&#8221; measurements were performed ex vivo and enabled precise control of preload, afterload and flow. This procedure requires specific equipment and training for adequate performance. This manuscript provides a detailed step-by-step introduction for conducting these measurements.

This article presents an efficient method to perform myocardial ischemia and subsequent chronic reperfusion in rats using a minimally invasive approach. In addition, left ventricular hemodynamic function of rats is assessed by echocardiography and isolated working heart methods.&#160;

ラットの心筋梗塞を誘導する半最小侵襲法と、単離した働く心臓システムによる心機能の評価

Myocardial infarction (MI) remains the main contributor to morbidity and mortality worldwide. Therefore, research on this topic is mandatory. An easily ...