この研究は、オランダ王立芸術科学アカデミー(KNAW)研究基金からの助成金とStart2Cure(0-TI-01)からの助成金によって支援されました。プロトコルの設定における Leisha Kopp 氏の意見とアドバイスに感謝します。図はBiorenderを使用して作成されました。

すべての実験手順は、オランダ王立科学アカデミー(KNAW)の動物実験委員会によって承認され、プロジェクト番号AVD8010020199126に基づくオランダの動物実験法に準拠していました。 図1に、完全なプロトコルの概略図を示します。細胞の播種からAAV精製まで、プロトコルは完了するまでに6日かかります。
1. 試薬調製
<ol><li>プラスミド精製<ol><li>プラスミドの無菌性を確保するために、メーカーの説明に従ってプラスミド抽出を数回調整して実行します。</li>
		<li>滅菌蒸留水と無水エタノールを使用して70%エタノールを調製します。</li>
		<li>イソプロパノール遠心分離ステップの後、フローキャビネットフードでプラスミドを乾燥させ、滅菌済みの70%エタノールをチューブに加えます。エタノール沈殿後、フローキャビネットフードでプラスミドを乾燥させ、プラスミドを滅菌蒸留水に再懸濁します。滅菌された微量遠心チューブを使用するように注意してください。</li>
		<li>定量、制限酵素分析、および必要に応じてシーケンシングのためにアリコートを採取します。突然変異は収量に悪影響を与える可能性があるため、逆末端反復配列(ITR)の完全性を確認することをお勧めします。サンプル濃度を 1 μg/μL に調整します。</li>
	</ol></li>
	<li>10x Tween溶解バッファーの調製<ol><li>30.3gのトリス緩衝液と2.033gのMgCl2.6H 2Oを400mLの滅菌蒸留水に溶解し、pHを8.0に設定し、総容量を450mLに増やします。</li>
		<li>Tween 20を無菌状態に保ち、フード内の緩衝液に50 mLのTween 20を加え、0.2 μMの真空フィルターを使用してろ過滅菌します。</li>
	</ol></li>
	<li>ヨウジキサノール希釈液<ol><li>ヨウジキサノール溶液は60%濃度で提供されます。開始溶液を使用して、15%、25%、および40%の溶液を作成します。</li>
		<li>15%溶液の場合、60%溶液60 mLを48 mLの5 M NaClと48 mLのPBS-MK(5 mM MgCl2 および12.5 mM KClの5x PBS)で希釈し、最大240 mLの蒸留水を加えます。</li>
		<li>25%溶液の場合は、67 mLの60%溶液と32 mLのPBS-MKを希釈します。最大160mLの蒸留水を加えます。よく混合し、1.6 mLのフェノールレッド溶液を加えます。</li>
		<li>40%溶液の場合は、160 mLの60%溶液を48 mLのPBS-MKで希釈し、最大240 mLの蒸留水を加えます。60%溶液の場合は、100 mLの60%溶液に1 mLのフェノールレッドを加えます。</li>
	</ol></li>
	<li>PBS 5%ショ糖溶液<ol><li>カルシウムまたはマグネシウムを含まないDPBSの500 mLボトルに25gのスクロースを加えます。よく振とうし、0.2μMのボトル真空フィルターでろ過する。</li>
	</ol></li>
	<li>ポリエチレングリコール(PEG)8000溶液<ol><li>400 g の PEG 8000 と 24 g の NaCl を滅菌蒸留水に溶解し、最終容量が 1000 mL になるように調整します。完全に溶けるまで加熱してかき混ぜます。pHペーパーを使用してpHを7.4に調整します。</li>
		<li>0.2 μMのボトル真空フィルターを使用してフィルター滅菌し、40%PEG 8000溶液を得ます。4°Cでの溶液貯蔵の粘度により、ろ過には時間がかかることに注意してください。</li>
	</ol></li>
</ol>2. HEK293浮遊細胞の培養
<ol><li>クリーニングには、70%エタノールに浸したワイプを使用してください。バイオセーフティフードを洗浄し、細胞の培養に必要なすべての材料を準備して洗浄します。</li>
	<li>30 mLの浮遊細胞培地を50 mLのコニカル培養チューブで37°Cに予温します。液体窒素からウイルス産生細胞を回収します。細胞を37°Cのウォーターバスで速やかに融解します。バイアルが完全に解凍される直前に、70%エタノールに浸したワイプで洗浄し、バイアルをバイオセーフティフードに移します。 注:ここで使用したウイルス産生細胞の詳細は、 材料表に記載されています。</li>
	<li>予熱した50 mLのコニカル培養チューブに細胞を迅速に移します。37°C、湿度80%、CO28%、200回転/分(RPM)、振とう直径50mmの振とうインキュベーターで細胞を培養します。継代細胞は、生存率が90%を超え、細胞密度が1-3 x 106 細胞/mLを超えると、通過細胞になります。 注:使用するインキュベーターの振とう直径は50mmです。培養条件は、振とうの直径が異なるように調整する必要があります。</li>
	<li>融解後3〜4日で継代細胞。培養チューブをチェックして、汚染の兆候がないことを確認します。たとえば、真菌は変色した(黒または緑)リングとして表示されます。</li>
	<li>1 mLのストリペットを使用して、サンプルあたり400 μLの0.4%トリパンブルー溶液を調製します。</li>
	<li>インキュベーターから浮遊細胞をすばやく取り出します。1 mLのストリペットを使用して、チューブから500 μLを直ちに抽出します。ピペットで静かに上下させます。</li>
	<li>調製したトリパンブルーチューブに100μLの細胞懸濁液を加えます。チューブをそっとひっくり返して混ぜます。ピペットで混ぜると細胞死の原因となるため、混ぜないでください。細胞をインキュベーターに戻します。</li>
	<li>トリパンブルー処理した細胞懸濁液50 μLを採取し、血球計算盤スライドに塗布します。生細胞の総数をカウントし、翌日の継代またはトランスフェクションに必要な細胞懸濁液と培地の量を計算します。</li>
	<li>インキュベーターで培地を10〜15分間温めます。温めた培地に細胞懸濁液を加え、インキュベーターに戻します。細胞を 3 日間(つまり、月曜日から木曜日)継代する場合は、0.5 x 106 cells/mL に設定します。細胞を 4 日間(つまり、木曜日から月曜日)継代する場合は、0.3 x 106 cells/mL に設定します。 注:メーカーによると、ウイルス産生細胞は26時間ごとに2倍になり、継代前に3.5 x 106 から5.5 x 106 の間である必要があります。細胞は継代20まで保持できます。</li>
</ol>3. トランスフェクション
<ol><li>1日目<ol><li>トランスフェクションの24時間前に、300 mLの培地で1 x 106 細胞/mLを培養します。</li>
	</ol></li>
	<li>2日目<ol><li>培地、プラスミド、トランスフェクション試薬を室温に温めます。準備する量については、 表1を参照してください。</li>
		<li>簡単に言えば、プラスミドと試薬をボルテックスします。調製した培地、ボルテックスにプラスミドを加えます。トランスフェクション試薬を添加し、ボルテックスを短時間行います。このステップの後、混合物を攪拌しないでください。室温で30分間インキュベートします。</li>
		<li>その間に、1日目に調製した細胞を数えます。細胞は 2 から 2.5 x 106 細胞/ mL で、生存率 95% >必要があります。</li>
		<li>インキュベーション後、チューブを静かに旋回させながら、トランスフェクション混合物を細胞に滴下します。72〜96時間インキュベートします。</li>
	</ol></li>
</ol>4. 細胞の採取
<ol><li>5日目<ol><li>33 mL の 10x 細胞溶解バッファー(500 mM Tris pH 8、10% Tween 20、20 mM MgCl2)を加え、穏やかに振とうして混合し、振とうしながら 37 °C で 1.5 時間インキュベートします。</li>
		<li>3428 x g 、4°C、60分間遠心分離します。0.45 μM PES真空フィルターでろ過して細胞溶解物を清澄化し、清澄化したライセートをフィルターの容器に残します。 注:ろ過後のオプション:定量PCR(Q-PCR)用のサンプルを50 μL採取します。</li>
		<li>ろ過した細胞ライセート360 mLに90 mLの40% PEG 8000溶液を加えます。</li>
		<li>攪拌子を70%エタノールで洗浄し、サンプルに加えます。氷の上または冷蔵室で300RPMで1時間攪拌します。一晩撹拌せずに4°Cでインキュベートします。 注:1時間から72時間のインキュベーション時間がテストされています。インキュベーション時間が長いと、全体的なタンパク質沈殿に悪影響を及ぼします。</li>
	</ol></li>
</ol>5. ヨウオジキサノールの精製
<ol><li>6日目<ol><li>PEG沈殿培養量サンプル全体を清潔で大きなコニカルチューブに移し、2820 x g 、4°Cで15分間遠心分離します。</li>
		<li>上清を廃棄し、PEGペレットをカルシウムおよびマグネシウムを含む15 mLのDPBSに再懸濁します。ペレットは再懸濁が困難です。時間をかけて慎重に行ってください。</li>
		<li>再懸濁した部分を清潔な50 mLチューブに移します。PEGはバイオリアクターチューブの側面に残ります。さらに10 mLを追加し、すべてのPEG沈殿物を集めるように注意します。すべてを50 mLの容器に移し、総容量が25〜30 mLになります。</li>
		<li>40 μLのDNaseI(10 U/μL)を添加します。インキュベーターに1時間37°C置きます。 注:DNaseのインキュベーション後のオプション:Q-PCR用に50 μLのサンプルを採取します。</li>
		<li>PEG沈殿に使用した攪拌子は、塩化物溶液とそれに続く70%エタノールでよく洗浄します。次の実験のために、攪拌剤を70%エタノールに浸しておきます。</li>
		<li>25 mm x 89 mm のポリアロマーチューブに、ガラス製のパスツールピペットを使用して、各チューブに 15.5 mL の濃縮細胞ライセートを充填します。細胞ライセートを添加した後、ガラス製のパスツールピペットを新しいピペットと交換します。</li>
		<li>15%〜60%のヨウジキサノール溶液を添加:15%イオジキサノール溶液9 mLを細胞ライセートの下に穏やかに注入します。次に、5 mLの25%および40%イオジキサノール溶液を加え、最後に5 mLの60%ヨジキサノール溶液を加えます。</li>
		<li>DPBS +/+のシリンジを使用してチューブを補充し、ヨウジキサノール層を乱さないように注意しながら、ほとんどの気泡を取り除きます。電気チューブトッパーを使用してチューブを密封します。</li>
		<li>超遠心分離機で、非スイングローターで1時間10分間、490,000 x g 、16°Cで遠心分離します。超遠心分離機から取り出し、チューブを金属クラスプに組み立て、コレクションチューブを準備します。回転中にこぼれた場合に備えて、フード内のローターを開きます。</li>
		<li>グラジエントごとに、50 mLチューブ1本(ローターチューブ廃棄用)、15 mLチューブ1本(ウイルス収集用)、5 mLシリンジ、30Gおよび19Gニードルを用意します。</li>
		<li>チューブの上部に30Gの針で穴を開けます。針はそのままにしておきます。シリンジに19Gの針を置きます。</li>
		<li>フェノールレッドインジケーターで確認できる40%/60%界面のすぐ下のチューブに慎重に穴を開けます。針の斜角が40%層を向いていることを確認してください。</li>
		<li>利き手ではない方の手を使って、チューブの上部から30Gの針を取り外します。針を斜めにした状態で、ウイルス/ヨウジキサノールをゆっくりと抽出します。目的は、3mLから4.5mLの間で抽出することです。40%/透明層の約半分まで、ベベルのニードルを下向きに回転させ、タンパク質層からの収集を避けるために抽出を続けます。</li>
		<li>利き手ではない方の手で50mLチューブを準備し、チューブを50mLチューブに入れながら針を慎重に引き抜き、廃棄します。AAV/イオジキサノール懸濁液を DPBS で 5 倍に希釈し、最大 15 mL まで充填します。</li>
		<li>遠心フィルターチューブに移し、3428 x g、4°Cで10分間遠心分離します。フロースルーを破棄します。フィルターのホルダーをそっと取り外し、下部の容器をゴミ箱に傾けます。PBS-5%スクロース15 mLを濾過し、再懸濁します。</li>
		<li>3428 x g 、4°C、20分間遠心分離します。バッファ交換を3回以上繰り返します。ウイルス (~150-250 μL) を 4 °C (PHP.Bバリアントは最大3か月)または50 μLのアリコートに分注し、-80°Cで長期間保存します。 注:PHP.Bカプシド変異体は凍結融解に敏感であるため、これは避けるべきです。</li>
		<li>前のプロトコル10に記載されているように滴定を行います。</li>
	</ol></li>
</ol>

HEK293懸濁液培養を使用した簡素化された効率的なAAV生産

<ol>
	<li>Zhou, K., Han, J., Wang, Y., Zhang, Y., Zhu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Routes+of+administration+for+adeno-associated+viruses+carrying+gene+therapies+for+brain+diseases.">Routes of administration for adeno-associated viruses carrying gene therapies for brain diseases.</a> Front Mol Neurosci. 15, 988914 (2022).</li><li>Pietersz, K. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=PhP.B+Enhanced+adeno-associated+virus+mediated-expression+following+systemic+delivery+or+direct+brain+administration.">PhP.B Enhanced adeno-associated virus mediated-expression following systemic delivery or direct brain administration.</a> Front Bioeng Biotechnol. 9, 679483 (2021).</li><li>Zhang, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Several+rAAV+vectors+efficiently+cross+the+blood&#8211;brain+barrier+and+transduce+neurons+and+astrocytes+in+the+neonatal+mouse+central+nervous+system.">Several rAAV vectors efficiently cross the blood&#8211;brain barrier and transduce neurons and astrocytes in the neonatal mouse central nervous system.</a> MolTher. 19 (8), 1440-1448 (2011).</li><li>Deverman, B. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cre-dependent+selection+yields+AAV+variants+for+widespread+gene+transfer+to+the+adult+brain.">Cre-dependent selection yields AAV variants for widespread gene transfer to the adult brain.</a> Nat Biotechnol. 34 (2), 204-209 (2016).</li><li>Chan, K. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineered+AAVs+for+efficient+noninvasive+gene+delivery+to+the+central+and+peripheral+nervous+systems.">Engineered AAVs for efficient noninvasive gene delivery to the central and peripheral nervous systems.</a> Nat Neurosci. 20, 1172-1179 (2017).</li><li>Goertsen, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AAV+capsid+variants+with+brain-wide+transgene+expression+and+decreased+liver+targeting+after+intravenous+delivery+in+mouse+and+marmoset.">AAV capsid variants with brain-wide transgene expression and decreased liver targeting after intravenous delivery in mouse and marmoset.</a> Nat. Neurosci. 25 (1), 106-115 (2022).</li><li>Foust, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravascular+AAV9+preferentially+targets+neonatal+neurons+and+adult+astrocytes.">Intravascular AAV9 preferentially targets neonatal neurons and adult astrocytes.</a> Nat Biotechnol. 27 (1), 59-65 (2008).</li><li>Challis, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+AAV+vectors+for+widespread+and+targeted+gene+delivery+in+rodents.">Systemic AAV vectors for widespread and targeted gene delivery in rodents.</a> Nat Protoc. 14 (2), 379-414 (2019).</li><li>Fripont, S., Marneffe, C., Marino, M., Rincon, M. Y., Production Holt, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=purification,+and+quality+control+for+adeno-associated+virus-based+vectors.">purification, and quality control for adeno-associated virus-based vectors.</a> J Vis Exp. (143), e58960 (2019).</li><li>Fagoe, N. D., Eggers, R., Verhaagen, J., Mason, M. R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+compact+dual+promoter+adeno-associated+viral+vector+for+efficient+delivery+of+two+genes+to+dorsal+root+ganglion+neurons.">A compact dual promoter adeno-associated viral vector for efficient delivery of two genes to dorsal root ganglion neurons.</a> Gene Thr. 21 (3), 242-252 (2014).</li><li>Verhaagen, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+gene+therapy,+methods+and+protocols.">Retinal gene therapy, methods and protocols.</a> Meth Mol Biol. 1715, 3-17 (2018).</li><li>Nasse, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Addgene+AAV+data+hub:+A+platform+for+sharing+AAV+experimental+data.">Addgene AAV data hub: A platform for sharing AAV experimental data.</a> Nat Meth. 20 (9), 1271-1272 (2023).</li><li>Grieger, J. C., Soltys, S. M., Samulski, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Production+of+recombinant+adeno-associated+virus+vectors+using+suspension+HEK293+cells+and+continuous+harvest+of+vector+from+the+culture+media+for+GMP+FIX+and+FLT1+clinical+vector.">Production of recombinant adeno-associated virus vectors using suspension HEK293 cells and continuous harvest of vector from the culture media for GMP FIX and FLT1 clinical vector.</a> Mol Ther. 24 (2), 287-297 (2016).</li><li>Blessing, D., D&#233;glon, N., Schneider, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recombinant+protein+expression+in+mammalian+cells,+methods+and+protocols.">Recombinant protein expression in mammalian cells, methods and protocols.</a> Meth Mol Biol. 1850, 259-274 (2018).</li></ol>

TransITの無料サンプルは、初期テストのためにMirusから提供され、その後、試薬を購入してさらに使用しました。著者らは、報告すべき他の競合する金銭的利害関係を有していない。

AAVの全身投与は、中枢神経系への遺伝子導入のための強力なツールです。しかし、AAVの製造は高価で手間のかかるプロセスです。浮遊細胞を使用することで、15cm2 プレート上のHEK293Tの接着培養と比較して、労力とプラスチックが削減されます。さらに、ここに実装されている円錐形のチューブは取り扱いが簡単で、実験室のスペースを最大限に活用できます。このプロトコルは、2人...

アデノ随伴ウイルス(AAV)は1965年に発見され、それ以来、無数の用途で使用されてきました1。AAVは、遺伝子や神経細胞の機能の研究、神経回路のマッピング、疾患の動物モデルの作成など、神経科学研究に応用されています2。伝統的に、これはほとんどの自然な血清型が血液脳関門を通らないか、またはそうするために高線量を必要とするので、興味のある部位に直接注入することによって行われます1,2,3。
AAVの発見により。PHP.B4 や AAV などの次世代の capsid です。PHP.eB5 と AAV.CAP-B106は、簡易な全身注射を用いて中枢神経系(CNS)を標的とすることができる。空間マッピングにより、AAV の標的となる細胞が明らかになります。PHP.eB(セルラーレベル6,7)。これらのカプシドは、特定のプロモーター/エンハンサーと組み合わせることで、神経科学者が非侵襲的なAAV送達によって遺伝子と脳機能を研究する幅広い機会を提供します4,8。
AAVにはより低い用量が必要ですが。AAV9(4 x 1012 GC/マウス)と比較して、PHP.eB(通常1〜5 x 1011 11ゲノムコピー(GC)/マウス)7は、直接注入戦略(通常1 x 109 GC/μL注入)と比較して、さらに多くのベクターを作製する必要があります。ほとんどの天然血清型は、ヨージキサノール精製9,10,11,12と組み合わせた古典的な接着細胞培養システムを使用して作製できます。AAVの場合。PHP.eB:これは、1回の実験に十分なベクターを得るために、細胞を培養およびトランスフェクションするための労働集約的なプロセスを伴います8。そこで、コニカルチューブでの浮遊細胞培養におけるAAVの生産が開発されました。最大容量300mLのコニカルチューブはコンパクトで、インキュベーターのスペースとプラスチックの両方を節約できます。浮遊細胞は、15 cmプレート上の接着細胞よりも大量に培養および処理がはるかに簡単です。プロトコルのトランスフェクションコンポーネントは変わりません。したがって、以前に接着系で使用されたプラスミドは、浮遊細胞での産生に基づいて、このプロトコルで容易に使用できます。このプロトコルは、研究室の他の研究者への転送に成功し、さまざまなカプシドやコンストラクトに使用されました。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>39 mL, Quick-Seal Round-Top Polypropylene Tube, 25 x 89 mm - 50Pk</td>
			<td>Beckman Coulter</td>
			<td>342414</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adapter 600 mL conical tubes, for rotor S-4x1000,&#160;</td>
			<td>eppendorf</td>
			<td>5920701002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Adapter Plate fits 16 bioreactors of 600 ml</td>
			<td>Infors HT/ TPP</td>
			<td>587633</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Aerosol-tight caps, for 750 mL round buckets</td>
			<td>eppendorf</td>
			<td>5820747005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge 5920 R G, 230 V, 50-60 Hz, incl. rotor S-4x1000, round buckets and adapter 15 mL/50 mL conical tubes</td>
			<td>eppendorf</td>
			<td>5948000315</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Distilled Water</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>15230147</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase I recombinant, RNase-free</td>
			<td>Roche</td>
			<td>4716728001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DNase I recombinant, RNase-free</td>
			<td>Roche</td>
			<td>4716728001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS, calcium, magnesium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14040091</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DPBS, no calcium, no magnesium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>14190144</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand Disposable PES Filter Units 0,2</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>FB12566504</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand Disposable PES Filter Units 0,45</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>FB12566505</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Holder for 50 ml culture tubes also fits falcon tube</td>
			<td>Infors HT/ TPP</td>
			<td>31362</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Holder for 600 ml cell culture tube</td>
			<td>Infors HT/ TPP</td>
			<td>66129</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Incubator Minitron 50 mm</td>
			<td>Infors HT</td>
			<td>500043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LV-MAX Production Medium</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A3583401</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N-Tray Universal</td>
			<td>Infors HT/ TPP</td>
			<td>31321</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>OptiPrep - Iodixanol</td>
			<td>Serumwerk bernburg</td>
			<td>1893</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PEI MAX - Transfection Grade Linear Polyethylenimine Hydrochloride (MW 40,000)</td>
			<td>Poly-sciences</td>
			<td>24765-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenol red solution&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>72420100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Poly(ethylene glycol) 8000</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>89510</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TransIT-VirusGEN</td>
			<td>Mirus</td>
			<td>Mir 6706</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trypan Blue Solution, 0.4%</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>5250061</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TubeSpin Bioreactors-50ml</td>
			<td>TTP</td>
			<td>87050</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TubeSpin Bioreactors-600ml</td>
			<td>TTP</td>
			<td>87600</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Viral Production Cells</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>A35347</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vivaspin 20 MWCO 100 000</td>
			<td>Cytvia</td>
			<td>28932363</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

production of high-yield adeno associated vector batches using hek293 suspension cells

アデノ随伴ウイルスベクター(AAV)は、中枢神経系(CNS)を調査するための優れたツールです。AAVなどの革新的なカプシド。PHP.eBは、マウスの静脈内注射による中枢神経系の広範な形質導入を示しています。同等の形質導入を実現するには、中枢神経系実質への直接注入と比較して、100倍高い力価(最小1 x 1011 ゲノムコピー/マウス)が必要です。私たちのグループでは、AAVを含むAAV生産。PHP.eBは、接着HEK293T細胞とトリプルトランスフェクション法に依存しています。接着細胞でAAVの高収率を達成するには、労力と材料を大量に消費するプロセスが必要です。この制約により、コニカルチューブでの懸濁液ベースの細胞培養のプロトコルが開発されました。接着細胞で生成したAAVを懸濁液製造法と比較しました。トランスフェクション試薬ポリエチレンイミンまたはTransItを用いた懸濁液中での培養を比較しました。AAVベクターは、ヨウジキサノールグラジエント超遠心分離により精製し、その後、バッファー交換および遠心フィルターを用いた濃縮を行いました。アドヒレント法では平均2.6 x 1012 GCを達成したが、懸濁法とポリエチレンイミンでは合計7.7 x 1012 GC、TransItでは合計2.4 x 1013 GCであった。接着液で作製したベクター間の in vivo 形質導入効率は、浮遊細胞系と比較して差はありません。要約すると、懸濁液HEK293細胞ベースのAAV生産プロトコルが導入され、ベクター生産に必要な時間と労力が削減され、研究目的で商用ベンダーから入手可能なコンポーネントを使用して3〜9倍の収率を達成します。

Adeno-associated virus (AAV) was discovered in 1965 and has since been used in a myriad of applications1. AAVs have been applied in neuroscience research to study gene and neuronal function, map neurocircuits, or produce animal models for disease2. Traditionally, this is done by injecting directly at the site of interest, as most natural serotypes do not cross the blood-brain barrier or need a high dose to do so1,2,3.
With the discovery of AAV.PHP.B4 and next-generation capsids such as AAV.PHP.eB5 and AAV.CAP-B106, it is possible to target the central nervous system (CNS) using a simple systemic injection. Spatial mapping reveals the cells targeted by AAV.PHP.eB at cellular level6,7. In combination with specific promoters/enhancers, these capsids offer extensive opportunities for neuroscientists to study genes and brain function by non-invasive AAV delivery4,8.
While a lower dose is needed for AAV.PHP.eB (typically 1 to 5 x 1011 Genome Copies (GC)/mouse) compared to AAV9 (4 x 1012 GC/mouse)7, still more vector needs to be produced compared to direct injection strategies (typically 1 x 109 GC/&#181;L injection). Most natural serotypes can be produced using the classical adherent cell culture system in combination with iodixanol purification9,10,11,12. For AAV.PHP.eB this entails a labor-intensive process to culture and transfect cells to obtain sufficient vectors for one experiment8. Therefore, the production of AAV in suspension cell culture in conical tubes was developed. Conical tubes, with a capacity of up to 300 mL, are compact, saving both incubator space and plastics. Suspension cells are much easier to culture and handle in large amounts than adherent cells on 15 cm plates. The transfection components of the protocol remain the same. Therefore, plasmids previously used with the adherent system can easily be used in this protocol based on production in suspension cells. The protocol was successfully transferred to other researchers in the laboratory and successfully used for various capsids and constructs.

著者スポットライト:HEK293浮遊細胞培養による高収量AAVベクターによる遺伝子治療の進歩

HEK293浮遊細胞を用いた高収率アデノ関連ベクターバッチの作製(英語)

Our lab uses viral vectors as a platform to deliver therapeutic genes to the injured nervous system. Recently, numerous non-invasive viral vectors which are able to cross the blood-brain barrier have been developed. Use of these vectors requires high titers and therefore an improved production process.The implementation of our HEK293 Suspension Cell Procedure makes this AAV protocol less laborious compared to other adherent cell based systems, while at the same time gaining higher yields of AV vectors. There are no treatments to repair the damage in the central nervous system. We aim to use non-invasive viral vectors to stimulate central nervous system repair.The advantage of this protocol is that we can now produce viral vectors at high yield, which allows us to perform non-invasive therapeutic gene delivery to the injured central nervous system. Our current work will pave the way to develop non-invasive gene therapy for multiple neurodegenerative diseases such as multiple sclerosis, Parkinson's and Alzheimer's disease.

ほとんどの学術研究室では、AAV産生に接着性HEK293T細胞を使用しています8,9。これは、直接注入に少量のAAVが必要な場合には比較的うまく機能しますが、AAVなどの全身性キャプシドで同様の形質導入を達成するには、100倍高い力価(最低でも1 x 1011 GC/マウス)が必要です。PHP.eBです。
このプロトコルでは、円錐管で培養し?...

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ここでは、懸濁液HEK293細胞ベースのAAV生産プロトコルを提示し、その結果、商用ベンダーから研究目的で入手可能なコンポーネントを使用してベクターを生産するために必要な時間と労力を削減します。

Adeno-associated viral vectors (AAVs) are a remarkable tool for investigating the central nervous system (CNS). Innovative capsids, such as AAV.PHP.eB, ...

私たちの研究室では、ウイルスベクターをプラットフォームとして、損傷した神経系に治療用遺伝子を送達しています。近年、血液脳関門を通過する非侵襲性ウイルスベクターが数多く開発されています。これらのベクターを使用するには、高力価を必要とするため、製造プロセスの改善が必要です。HEK293 Suspension Cell Procedureの導入により、このAAVプロトコルは、他の接着細胞ベースのシステムと比較して手間がかからず、同時にAVベクターの収率が向上します。中枢神経系の損傷を修復する治療法はありません。私たちは、非侵襲的なウイルスベクターを使用して、中枢神経系の修復を刺激することを目指しています。このプロトコルの利点は、ウイルスベクターを高収率で作製できるようになったことで、損傷した中枢神経系への非侵襲的な治療用遺伝子送達を行うことができるようになったことです。現在の研究は、多発性硬化症、パーキンソン病、アルツハイマー病などの複数の神経変性疾患に対する非侵襲的遺伝子治療の開発への道を開くものです。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Production of High-Yield Adeno Associated Vector Batches Using HEK293 Suspension Cells

1.3K ビュー.  Royal Netherlands Academy of Arts and Sciences (KNAW). 私たちの研究室では、ウイルスベクターをプラットフォームとして、損傷した神経系に治療用遺伝子を送達しています。近年、血液脳関門を通過する非侵襲性ウイルスベクターが数多く開発されています。これらのベクターを使用するには、高力価を必要とするため、製造プロセスの改善が必要です。HEK293 Suspension Cell Procedureの導入により、このAAVプロトコルは、?...