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Method Article
여기에서 우리는 들판을 가로 질러이 기술의 표준화를 장려하기 위해 사망률없이 재현 부상 결과 생쥐의 장 허혈 - 재관류의 상세 절차를 설명합니다. 창자 허혈 재관류 손상이 모델은 부상 및 재생의 세포 및 분자 기전을 연구하기 위해 이용 될 수있다.
장 허혈은 동맥 경화증, 혈전증, 저혈압, 괴사 성 장염, 장 이식, 외상 및 만성 염증을 포함하여 임상 조건의 넓은 범위와 관련된 생명을 위협하는 상태이다. 창자 허혈 재관류 (IR) 부상 장내 손상 얻어진 장간막 혈관 통해 불충분 한 혈류로 인한 급성 장간막 허혈 결과적이다. 재관류 다음 허혈은 또한 소장의 손상을 악화시킬 수 있습니다. IR 손상 메커니즘은 복잡하고 잘못 이해된다. 따라서, 작은 동물 실험 모델 IR 손상의 병태 생리학 및 신규 한 치료제의 개발을 이해하는데 중요하다.
여기에서 우리는 사망하지 않고 소장의 재현성 부상을 제공 급성 장 IR 부상의 마우스 모델에 대해 설명합니다. 이것은 시간적으로 occludin은 원위 회장의 영역 허혈 유도함으로써 달성된다g 미세 혈관 클립을 사용하여 60 분 동안 상 장간막 동맥 및 주변 단자 담보 가지. 1 시간, 또는 조직 학적 분석에 의해 조사 된 소장의 재현 상해에서 상해 결과 후 2 시간 동안 재관류. 미세 혈관 클립의 적절한 위치는 프로 시저에 대한 중요하다. 따라서, 동화상이 기술의 상세한 시각 단계별 설명을 제공한다. 장내 IR 손상이 모델은 부상 및 재생의 세포 및 분자 기전을 연구하기 위해 이용 될 수있다.
소장은 허혈 및 상피 손상의 원인 혈액 흐름의 중단에 매우 민감하다. 허혈 후 재관류는 조직의 재 산소를 제공하고, 더 병리학을 홍보 할 수 있습니다. 따라서, 장 허혈 재관류 손상은 괴사 성 장염, 소장 이식의 이식 거부, 복부 대 동맥류 수술, 심폐 바이 패스, 및 염증성 장 질환의 1,2- 합병증 포함 병리의 넓은 범위와 관련된다. 장 IR 부상, 특히 급성 장간막 허혈는 이환율과 사망률 3의 결과로 생명을 위협하는 상태이다.
잘 이해되지 않지만, 장 허혈 재관류 (IR) 상처는 장내 미생물의 변화뿐만 아니라, 반응성 산소 종 및 염증성 사이토 카인 및 케모카인 1,4-6의 생산과 관련된 것으로 생각된다. 이 둘의 활성화에 리드네이트 및 염증과 조직 손상 -1,7,8,8-을 촉진 적응 면역 메커니즘.
그들은 쉽게 이득 - 및 기능 상실 유전자 실험을 허용하는 동물 모델은 IR 손상의 메카니즘을 이해하는 데 중요하다. IR의 여러 동물 모델은 전체 혈관 폐색, 저 유량 허혈을 포함하는 개발 및 (최근의 종합적인 검토 9에 요약) 혈관 폐색을 분할하고있다. 장간막 동맥 (SMA)의 완전한 혈관 폐색에 의한 장 허혈 큰 동물과 설치류 9-11에서 IR의 쉽고 일반적으로 사용되는 모델입니다. 그러나, 창자의 다른 영역은 부상에 서로 다른 감수성이있다. 또한, 부상의 변수도에서 허혈 손상 및 복구 결과의 기간에 다양한 마취제, 진통제, 동맥 폐쇄 기술의 범위뿐만 아니라 불일치 여러 STUDIE에서 IR의 생물학에 대한 우리의 이해를 교란의. 표 1은 쥐의 IR 연구에서 이러한 불일치를 보여줍니다. 짧은 허혈 시간 (30-45 분)을 사용하는 가장 큰 단점은 케이스 및 컨트롤 간의 뚜렷한 차이가 관찰 될 수있는 복구 창을 대상으로한다. 상피에 가벼운 부상 따라서, 재관류 후 시간을 해결 병리학 적 지표가 상피 손해 배상의 차이를 발견해야 할 수 있습니다 전문 될 수있다. 반대로, 과도한 손상, 허혈성 손상을 100 분으로 본 사망률의 속도 및 복구 시간을 증가 반발이 더 이상 가능하지 않다 상피의 완전한 denudement 초래할 수있다. 따라서, 우리가 우리의 분야에서이 기술의 표준화를 장려하기 위해 사망률없이 재현 부상 결과 생쥐의 장내 IR의 상세 절차를 설명합니다. 장내 IR 손상이 모델은 부상 및 재생의 세포 및 분자 기전을 연구하기 위해 이용 될 수있다.
동물 연구는 건강 지침의 국립 연구소에 따라 수행하고, 기관 동물 관리의 승인을하고, 트뤼도 학회의위원회를 사용합니다. 8~12주 오래 C57BL / 6 마우스를이 연구에 사용 하였다.
수술 1. 준비
2. 마취
3. 수술
4. 재관류 단계
6. 점수
우리는 쥐의 회장의 재현 IR 유도 부상을 얻기 위해 IR 수술의 실험 프로토콜을 최적화. 대표 결과이 절에서 설명한다.
도 1은 회장의 허혈을 유도하는 미세 혈관 클립 위치의 예를 도시한다. 검은 색 화살표는 장간막 동맥의 첫 번째 순서 가지를 폐색 메인 클립의 위치를 보여줍니다. 녹색 화살표 담보 혈관으?...
장내 IR 부상의 마우스 모델의 개발이 크게 조직 손상의 메카니즘에 대한 이해를 향상 7,9,11,34 조직 손상을 최소화하기 위해 잠재적 인 치료 전략의 개발에 도움을했다. 이 프로토콜의 중요한 단계는 미세 혈관 클립의 적절한 위치, IR 부상의 허혈 및 적절한 조직 학적 평가의 정확한 타이밍이다.
허혈 시간은 후속 상피 손상에 대해 매우 중요하다. 이환율과 실...
The authors declare no conflict of interest
러시아어 과학 재단의 지원이 작품은, 아니 부여합니다. 14-50-00060 및 LLC RUSCHEMBIO. 이 작품은 또한 (CJ에) 294083 (AVT에), 그리고 NIH 부여 RO1 DK47700에 의해 부여 미국의 크론과 대장염 재단에 의해 지원되었다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Heated Pad | Sunbeam | E12107-819 | Alternative: Braintree Scientific heated pad |
Table top research anesthesia Machine | Vasco | UCAP 0001-0000171 | Alternative: Parkland Scientific, V3000PS |
Nose Cone | Parkland Scientific | ARES500 | |
Scavenger canister and replacement cartridge | Parkland Scientific | 80000, 80120 | |
Induction Chamber | Surgivet | V711802 | |
Isoflurane | Piramal Healthcare | NDC 66794-013-10 | Controlled substance, contact IACUC |
Animal clipper | Oster | Oster Golden A5 078005-050-003 | |
Ophthalmic ointment | Webster | 8804604 | |
Buprenorphine | McKesson | 562766 | Controlled substance,contact IACUC |
Ketaset (Ketamine HCl) | Pfizer | NADA 45-290 | Controlled substance, contact IACUC |
Cotton tips | Puritan medical products | 806-WC | Autoclave before use |
Betadine | Purdue Products | 67618-150-17 | 10% Povidone-Iodine |
Sterile saline solution | Aspen | 46066-807-60 | Adjust to room temperature before use |
IR rodent thermometer | BIOSEB | BIO-IRB153 | |
Micro vascular clips, 70 g | Roboz Surgical | RS5424, RS5435 | Alternative: WPI 14121, for SMA occlusion |
Micro vascular clips, 40 g | Roboz Surgical | RS6472 | Alternative:WPI 14120, for collateral vessels occlusion |
Clip applying forceps | World Precision Instruments | 14189 | Alternative: Roboz #RS-5410 or #RS-5440 |
Gill's 3 hematoxylin | Thermo Scientific | 14-390-17 | |
Surgical staples, Reflex 9 mm | Cell Point Scientific | 201-1000 | |
Autoclip applier | Beckton Dickinson | 427630 | |
Byopsy foam pad | Simport | M476-1 | |
Tissue cassette | Fisher Healthcare | 15182701A | Histosette II combination lid and base |
10% buffered formalin | Fisher Scientific | 245-684 | |
Surgical iris scissors | World Precision Instruments | 501263-G SC | Alternative: Roboz RS6816 |
Operating scissors | World Precision Instruments | 501219-G | Alternative: Roboz RS6814 |
Dressing forceps | Roboz Surgical | RS-5228, RS-8122 | Alternative: World Precision Instruments 1519-G |
Heparin, endotoxin free, 300 USP units/vial, 50 mg | Sigma | 2106 | |
Reflex wound clip removing forceps | Roboz Surgical | RS-9263 | Alternative: World Precision Instruments: 500347 |
Mice C57BL/6J mice | Jackson Laboratory | Stock No 0664 | |
Telfa non-adherent dressings, 3 x 4, sterile | Coviden | 1050 | |
Fisherbrand transfer pipets | Fischer Scientific | 13-711-5AM | Use pipets to dropwise add saline |
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