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요약

이 작품에서는, 우리는 하이브리드 β-lactamase 기술에 따라 conductimetric 바이오 센서를 사용 하 여 단백질 단백질 상호 작용을 공부 하는 새로운 방법을 보고 합니다. 이 메서드는 β-lactams의 가수분해 시 양성자의 출시에 의존합니다.

초록

바이오 센서 병원 체 검출, 분자 진단, 환경 모니터링, 식품 안전 관리 등 다양 한 분야에서 점점 더 중요 하 고 구현 되 고 있다. 이러한 맥락에서 우리는 효율적인 기자 효소가 여러 단백질 단백질 상호 작용 연구로 β-lactamases를 사용. 또한, 강하게 펩 티 드 또는 구조적된 단백질/도메인의 삽입을 허용 하도록 그들의 능력 공상 단백질을 생성 하는이 효소의 사용을 권장 합니다. 최근 연구에서 우리 균 licheniformis BlaP β-lactamase에 단일 도메인 항 체 단편을 삽입. Nanobodies, 라고도 하는 이러한 작은 도메인 camelids에서 단일 체인 항 체의 항 원 묶는 도메인으로 정의 됩니다. 일반 이중 체인 항 체 처럼 그들은 높은 화력과 특이성 그들의 목표에 대 한 표시. 결과 공상 단백질 β-lactamase 활동을 유지 하면서 대상에 대 한 높은 선호도 전시. 이 nanobody 및 β-lactamase moieties 유지 기능 제안 합니다. 현재 작업에서 우리는 우리의 하이브리드 β-lactamase 시스템 바이오 센서 기술에 결합 하 여 상세한 프로토콜을 보고 합니다. 특정 바인딩 대상에 nanobody의 효소의 촉매 활동 발표 양성자의 conductimetric 측정 덕분에 검색할 수 있습니다.

서문

바이오 센서는 바이오 분자 상호 변환기1이라고 하는 물리적 또는 화학적 신호 장치를 결합 하는 분석 장치. 기록 된 신호 다음 해석 하 고 고정 및 무료 파트너 간의 상호 작용을 모니터링 변환할 수 있습니다. 바이오 센서의 대부분은 호르몬 등 다른 병원 체 마커2analytes를 검출 하는 항 체의 사용을 포함. 다른 센서 형식을 사용할 수 있습니다 하 고 질량, 자석, 광학 또는 전기 화학 바이오 센서를 포함 합니다. 후자는 가장 일반적으로 사용 되는 센서, 그리고 바인딩 이벤트를 전기 신호로 변환 하 여 작동. 공연 및 모든 항 체 기반 바이오 센서의 감도 기본적으로 두 개의 매개 변수에 강하게 의존: i)는 항 체와 ii)2신호 생성 하는 데 사용 하는 시스템의 속성의 품질.

항 체는 2 개의 무거운 사슬과 2 개의 가벼운 사슬 구성 높은 분자 질량 dimeric 단백질 (150-160 kDa). 빛과 무거운 사슬 사이 상호 작용은 주로 소수 성 상호 작용 보존된 이황화 결합에 의해 안정 된다. 각 체인에는 본질적으로 보완 결정 영역 (CDR1-2-3) 라는 3 하이퍼 영역을 통해 항 원와 상호 작용 하는 변수 도메인 포함 되어 있습니다. 필드, 낮은-비용 식 시스템 (예를 들면, 대장균) 전체 길이 항 체의 대규모 식에서에서 수많은 진보에도 불구 하 고 종종 불안정 하 고 집계 된 단백질의 생산에 지도 한다. 이 때문에 단일 체인 변수 조각3 (ScFvs ≈ 25 kDa)와 같은 다양 한 항 체 파편을 설계 되었습니다 있다. 그들은 각각 한 중 고 covalently는 합성 아미노산 서 열에 의해 연결 된 1 개의 경 쇄의 가변 도메인 구성 됩니다. 그러나,이 파편은 종종 가난한 안정성 표시 하 고 집계, 때문에 그들은 그들의 소수 성 영역 용4의 큰 부분을 노출 하는 경향이 있다. 이러한 맥락에서 단일 체인 camelid 항 체 단편, nanobodies 또는 VHHs, ScFvs에 대 한 우수한 대안을 것 같다. 이러한 도메인 camelid 단일 체인 항 체의 가변 도메인에 해당합니다. 기존의 항 체, 달리 camelid 항 체 경 쇄가 없는 고 두 무거운 체인5포함. 따라서, nanobodies는 가장 작은 단위체 항 체 파편 (12 kDa) 기존의 항 체6의 선호도와 항 원에 바인딩할 수 있습니다. 또한, 그들은 향상 된 안정성과 가용성 다른 전장 항 체 또는 항 체 파편에 비해 제시. 마지막으로, 그들의 작은 크기와 그들의 확장된 CDR3 루프 그들이 이상한 epitopes를 인식 하 고 효소 활성 사이트7,8바인딩할 수 있습니다. 요즘, 이러한 도메인 상당한 관심을 받고 있다 고 바이오 센서 기술에 결합 되었습니다. 예를 들어 황은 . 탐지 및 정량화 인간 전립선 특정 항 원 (PSA)9의 nanobody 기반 바이오 센서를 개발 했습니다.

언급-위, 바이오 센서 분석에 중요 한 매개 변수는 전기 신호를 생성 하는 데 사용 하는 시스템의 효율성. 이러한 이유로, 효소 기반 전기 화학 바이오 센서 증가 관심을 받고 있다 고 건강 관리, 식품 안전, 환경 모니터링 등 다양 한 응용 프로그램에 대 한 널리 사용 되었습니다. 이 바이오 센서는 전기 신호를 생성 하는 효소에 의해 기판의 촉매 가수분해에 의존 합니다. 이러한 맥락에서 β-lactamases 더 구체적인, 더 과민 하 고 알칼리 성 인산 가수분해 효소 또는 양 고추냉이 과산화 효소10같은 많은 다른 효소 보다 실험적으로 구현 하기 더 쉬운 것 표시 했다. Β-lactamases 효소 그들을 hydrolyzing 하 여 β-락탐 항생제를 세균성 저항에 대 한 책임은 있습니다. 그들은 작은 크기의 단위체, 매우 안정, 효율적인, 그리고입니다. 또한, β-lactamases에 도메인/펩 티 드 삽입 생성 bi 기능 공상 단백질 단백질-리간드 상호작용을 연구 하는 효율적인 도구 표시 했다. 실제로, 최근 연구의 대상 항 원에 높은 선호도와 바인딩할 수 남아 공상 단백질에서 TEM1 β-lactamase 결과 항 체 변수 조각의 그 삽입을 나타났습니다. 흥미롭게도, 항 원 바인딩 TEM1 촉매 활동11,12의 allosteric 규칙 유도 표시 했다. 또한, 우리는 단백질 도메인 삽입 허용 루프에 균 licheniformis BlaP β-lactamase 단백질-리간드 상호작용13 모니터링 하는 기능 공상 단백질 생성 여러 연구에서 보였다 ,14. 우리는 최근 택시-Lys3, BlaP15이 허용 삽입 사이트에 명명 하는 nanobody를 삽입. 이 nanobody 암 탉 달걀 흰 lysozyme (HEWL)에 바인딩할 및16의 효소 활동 억제 하기 위해 표시 했다. 우리는 생성 된 하이브리드 단백질, BlaP-택시-Lys3, 라는 높은 특이성을 유지 / HEWL β-lactamase 활동 동안에 대 한 선호도 그대로 보였다. 그럼 우리가 성공적으로 β-lactamase 기술 하이브리드는 전기 화학 바이오 센서를 결합 하 여 생성 된 전기 신호 양을 했다 BlaP-택시-Lys3와 HEWL는 전극에 움직일 수 간의 상호 작용에 따라 다릅니다. 실제로, BlaP에 의해 β 락탐 항생제의 가수분해 양성자 방출 양적 전기 신호로 변환할 수 있는 유도 합니다. 이 조합은 전기 화학 바이오 센서와 하이브리드 β-lactamase 기술의 빠른, 민감한, 양적, 이며 생성 된 신호의 실시간 측정을 수 있습니다. 이 방법론은 여기 설명 되어 있습니다.

프로토콜

1. 단백질 샘플 준비

  1. 고 정화 하이브리드 단백질 BlaP-택시-Lys3로 우리의 이전 연구15에 보고 합니다. 50 m m 인산 버퍼 pH 7.4 다음 구성에서에서 단백질을 저장: 8 g의 NaCl, KCl의 0.2 g, 나2HPO4 의 1.44 g, KH24 증류수 800 mL에 용 해의 0.24 g 수정 전에 7.4 해결책의 pH 1 솔루션의 최종 볼륨을 조정 L. 필터 단백질 해결책 소독.
  2. 암 탉 달걀 흰 lysozyme (HEWL) 재고 솔루션을 준비 합니다. 인산 염 버퍼 식 염 수 (PBS 단계 2.1.1 참조) 10 mL에 상업적으로 구입한 HEWL의 100 밀리 그램 (40000 단위/mg)을 분해. 0.22 μ m 휴즈와 필터를 사용 하 여 여과 하 여 단백질 해결책 소독.

2. 바이오 센서 분석 실험

  1. 솔루션 및 버퍼 준비
    1. 8 g의 NaCl, KCl의 0.2 g, 나2HPO4, 1.44 g 및 KH24 증류수 800 ml에서의 0.24 g을 용 해 하 여 50 mM PBS를 준비 합니다. 1 나 필터를 소독 및 4 ° c.에 저장 솔루션의 볼륨을 조정 하기 전에 pH 7.4 1에 N HCl 또는 1 N NaOH 조정
    2. 카 제인의 위에서 설명한 대로 준비 하는 PBS의 100 ml에서의 3 g을 용 해 하 여 채도/차단 솔루션을 준비 (2.1.1 단계 참조). 필터를 소독 및 4 ° c.에 저장
    3. 카 제인의 위에서 설명한 대로 준비 하는 PBS의 100 ml에서의 1 g을 용 해 하 여 바인딩 솔루션 준비 (2.1.1 단계 참조). 필터를 소독 및 4 ° c.에 저장
    4. 세척 솔루션 준비 (0.1% 트윈-PBS) 위에서 설명한 대로 준비 하는 PBS의 100 mL에 트윈 20 (100%)의 100 μ를 추가 하 여 (2.1.1 단계 참조). 4 ° c.에 게
    5. 전극 준비 솔루션 준비 (1% 트라이 톤 X-100-PBS) 100 ml PBS 준비 위에서 설명한 대로의 트라이 톤 X-100 (100%)의 1 mL을 추가 하 여 (2.1.1 단계 참조). 4 ° c.에 게
    6. 최종 볼륨을 증류수에 KCl의 26 g을 용 해 하 여 전극 재생 솔루션 (3.5 M KCl) 준비 100 mL. 살 균 필터와 4 ° c.에 게
    7. 1 나 필터를 소독 및 4 ° c.에 저장의 최종 볼륨을 증류수에 NaCl의 0.29 g를 용 해 하 여 5 mM NaCl 솔루션을 준비 그런 다음, 5 mM NaCl 솔루션의 20 mL에 benzylpenicillin의 26.7 mg를 용 해 하 여 탐지 솔루션 (4 m m benzylpenicillin)를 준비 합니다. 필터를 소독 하 고-20 ° c.에 저장
  2. 센서 준비 및 재생
    참고:는 폴리아닐린 코팅 센서 칩 개발 하 고 친절 하 게 박사 P. Bogaerts, 닥터 미 유 누스 교수부터 Y. Glupczynski의 (가톨릭 대학교의 루 베인 라-브-추 몽-Godinne)에 의해 제공 되었다. 폴리아닐린 전기 합 프로토콜 이러한 센서를 합성 하는 데 사용 되는 센서의 설명 그들의 이전 일17에 자세히 나와 있습니다. 간단히,이 시스템은 고전 인쇄 회로 기판 (PCB) 기술에 의해 제조 된 8 개의 개별 칩의 재사용 가능한 센서를 사용 합니다. 개별 칩 3 개의 전극으로 구성 된 라운드 명소. 상위 1은 작업 전극은 폴리아닐린에 전기 합성 했다. 중간에 한 참조 전극 이며 하단 전극 구성 카운터 전극. 둘 다, 참조 및 카운터 전극은 기능성 탄소 레이어 위에 단단한 Ag/AgCl 혼합을 사용 하 여.
    1. 3 세척 전극의 전극 준비 솔루션의 300 µ L/잘을 포함 하는 96 잘 접시의 우물에는 팁을 찍기 여 수행 (1% 트라이 톤 X-100-PBS, 참조 단계 2.1.5.). 실 온에서 부드러운 혼합으로 2 분 동안 각 세척을 수행 합니다.
    2. 실 온에서 부드러운 혼합으로 2 분 증류수의 300 µ L/잘을 포함 하는 96 잘 접시의 우물에는 팁을 찍기 하 여 전극 린스.
    3. 포함 하는 재생 솔루션의 300 µ L/잘 96 잘 접시의 우물으로 팁을 찍기 여 전극을 다시 생성 (3.5 M KCl, 단계 2.1.6 참조) 4 ° C 또는 실 온에서 1 h에서 하룻밤.
    4. 인산 염 버퍼 염 분의 300 µ L/잘을 포함 하는 96 잘 접시의 우물에는 팁을 찍기 하 여 전극의 3 세척을 수행 (2.1.1 단계를 참조 하십시오.). 실 온에서 부드러운 혼합으로 2 분 동안 각 세척을 수행 합니다.
  3. 센서에 수행 분석 결과 바인딩
    1. 40 µ g/mL PBS에서 준비 하는 전극 표면에 HEWL의 15 µ L 드롭 입금 하 여 전극의 PANI (폴리아닐린) 표면 코트 HEWL. 4 ° C 또는 실 온에서 1 시간에서 밤새 품 어.
    2. 인산 염 버퍼 식 염 수와 전극의 3 개의 세척을 수행 (2.1.1 단계 참조) 포함 하는 인산 염 버퍼 염 분의 300 µ L/잘 96 잘 접시의 우물으로 센서 칩의 전극 부분을 찍기로. 실 온에서 부드러운 혼합으로 2 분 동안 각 세척을 수행 합니다.
    3. 50 µ L 방울 차단 솔루션을 추가 하 여 전극 포화 (단계 2.1.2 참조) 전극 표면에. 실 온에서 1 h에 품 어. 다음 단계 (단계 2.3.2 참조)는 이전에 설명 된 대로 세 번 세척.
    4. BlaP-택시-Lys3 솔루션 바인딩 솔루션에서 20 µ g/mL를 희석 (단계 2.1.3 참조) 15 µ L 방울 전극에 희석된이 솔루션을 적용. 실 온에서 10 분 동안 품 어. 항 원-nanobody 반응 후 세척 솔루션을 사용 하 여 이전 단계에서 세척을 3 번으로 설명 (2.1.4 단계 참조). 다음 한 번 PBS와 전극 린스 (2.1.1 단계 참조).
    5. 검색, 디지털 멀티 미터에 구리 회로 부분을 통해 센서 칩을 연결 합니다. 그런 다음 50 µ L 방울 탐지 솔루션을 적용 하 여 센서 응답 시작 (단계 2.1.7 참조) 긍정적인 전극에 적용 (단계 2.1.7 참조) 부정적인 전극에 NaCl 5mm 솔루션의 50 µ L 드롭. 실 온에서 30 분 동안 품 어. 디지털 멀티 미터와는 전도성을 모니터링 합니다.
      참고:는 멀티 미터 박사 P. Bogaerts, 닥터 미 유 누스 교수부터 Y. Glupczynski의 (가톨릭 대학교의 루 베인 라-브-추 몽-Godinne에 의해 제공 된. 이 potentiostat 컴퓨터 USB 포트를 통해 제어 하 고 동시에 센서의 8 개의 서로 다른 칩을 분석 합니다. 유 누스와 동료17 에 의해 만들어진 소프트웨어는 실시간 플롯 시간에 대 한 참조 및 샘플 전극의 전도도 차이의 측정을 나타내는 만듭니다.

결과

설계 및 엔지니어링의 공상 단백질 BlaP-택시-Lys3

그림 1 균 licheniformis에서 BalP 클래스 A β-lactamase의 관대 한 루프에 택시 Lys3의 삽입을 나타냅니다. 삽입은 잔류물 Asp198와 Lys199 사이 수행 되었다. 트 롬 빈 분열 사이트 택시-Lys3의 각 측면에 도입 되었다. BlaP-택시-Lys3 공상 단백질 인코딩 구성 식 플라스 미드와 변형 세포 암 ?...

토론

이 작품에서는 캐리어 단백질으로 BlaP β-lactamase를 사용 하 여 nanobody를 functionalize 하는 방법을 소개 하 고 우리는 우리가 성공적으로 구현할 수 결과 하이브리드 단백질 potentiometric 센서 분석 결과 보여. 다른 바이오 센서 분석 실험에 비해 우리의 작업의 주요 혁신 측면은 전기 신호를 생성 하는 효소 활동을 항 체 부분의 공유 결합. 이 소위 단백질 삽입 기술 선물 장점과 한계가이 섹션의 주요 초?...

공개

저자는 공개 없다.

감사의 말

저자는 SENSOTEM 및 NANOTIC 연구 프로젝트의 프레임 워크 내에서 벨기에의 왈 롱 지역 뿐만 아니라 국가 자금에 대 한의 과학 연구 (F.R.S.-F.N.R.S) 그들의 재정 지원에 대 한 인정합니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
KH2PO4Sigma-AldrichtV000225 
K2HPO4Sigma-Aldricht1551128
NaClSigma-AldrichtS7653
Tris–HClRoche10812846001
EDTA Sigma-AldrichtE9884
KClSigma-AldrichtP9541
Na2HPO4 Sigma-AldrichtNIST2186II
2-mercaptoethanolSigma-AldrichtM6250
alanineSigma-AldrichtA7627
HClO4Fluka342881M HClO4 solution, distributor : Sigma-Aldricht
casein hydrolysateSigma-Aldricht22090
benzylpenicillin sodiumSigma-AldrichtB0900000
hen egg white lysozymeRoche10837059001
heptaneSigma-Aldricht246654
methanolSigma-Aldricht322415
ammonium hydroxide solutionSigma-Aldricht38053928% NH3 in H2O, purified by double-distillation (concentrated?)
Laboratory consumables
6-well plate Greiner Bio-One657165CELLSTAR 6-Well Plate
Equipment
pH meterWTW1AA110Lab pH meter inoLab pH 7110
vacuum and filtration systemNalgeneNALG300-4100Filter holders with receiver, distributor : VWR
potentiometric sensor chipsmanufactured by Yunus and colleagues (ref 16)
PGSTAT30 AutolabMetrohm Autolabdiscontinued, succesor Autolab PGSTAT302N
digital multimeter, METRAHit 22MGossen Metrawattdiscontinued, successor Metrahit Base

참고문헌

  1. Higgins, I. J., Lowe, C. R. Introduction to the principles and applications of biosensors. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 316, 3-11 (1987).
  2. Byrne, B., Stack, E., Gilmartin, N., O'Kennedy, R. Antibody-based sensors: principles, problems and potential for detection of pathogens and associated toxins. Sensors (Basel). 9, 4407-4445 (2009).
  3. Huston, J. S., et al. Protein engineering of antibody binding sites: recovery of specific activity in an anti-digoxin single-chain Fv analogue produced in Escherichia coli. Proc Natl Acad Sci U S A. 85, 5879-5883 (1988).
  4. Mechaly, A., Zahavy, E., Fisher, M. Development and implementation of a single-chain Fv antibody for specific detection of Bacillus anthracis spores. Appl Environ Microbiol. 74, 818-822 (2008).
  5. Hamers-Casterman, C., et al. Naturally occurring antibodies devoid of light chains. Nature. 363, 446-448 (1993).
  6. Sheriff, S., Constantine, K. L. Redefining the minimal antigen-binding fragment. Nat Struct Biol. 3, 733-736 (1996).
  7. Stijlemans, B., et al. Efficient targeting of conserved cryptic epitopes of infectious agents by single domain antibodies. African trypanosomes as paradigm. J Biol Chem. 279, 1256-1261 (2004).
  8. Thanongsaksrikul, J., et al. A V H H that neutralizes the zinc metalloproteinase activity of botulinum neurotoxin type A. J Biol Chem. 285, 9657-9666 (2010).
  9. Huang, L., et al. Prostate-specific antigen immunosensing based on mixed self-assembled monolayers, camel antibodies and colloidal gold enhanced sandwich assays. Biosens. Bioelectron. 21, 483-490 (2005).
  10. Yolken, R. H., Wee, S. B., Van Regenmortel, M. The use of beta-lactamase in enzyme immunoassays for detection of microbial antigens. J Immunol Methods. 73, 109-123 (1984).
  11. Kojima, M., et al. Activation of circularly permutated beta-lactamase tethered to antibody domains by specific small molecules. Bioconjug Chem. 22, 633-641 (2011).
  12. Iwai, H., Kojima-Misaizu, M., Dong, J., Ueda, H. Creation of a Ligand-Dependent Enzyme by Fusing Circularly Permuted Antibody Variable Region Domains. Bioconjug Chem. 27, 868-873 (2016).
  13. Vandevenne, M., et al. The Bacillus licheniformis BlaP beta-lactamase as a model protein scaffold to study the insertion of protein fragments. Protein Sci. 16, 2260-2271 (2007).
  14. Vandevenne, M., et al. Rapid and easy development of versatile tools to study protein/ligand interactions. Protein Eng Des Sel. 21, 443-451 (2008).
  15. Crasson, O., et al. Enzymatic functionalization of a nanobody using protein insertion technology. Protein Eng Des Sel. 28, 451-460 (2015).
  16. Yunus, S., Attout, A., Vanlancker, G., Bertrand, P., Ruth, N., Galleni, G. A method to probe electrochemically active material state in portable sensor applications. Sensors and Actuators B: Chemical. 156, 35-42 (2011).
  17. Bogaerts, P., Yunus, S., Massart, M., Huang, T. D., Glupczynski, Y. Evaluation of the BYG Carba Test, a New Electrochemical Assay for Rapid Laboratory Detection of Carbapenemase-Producing Enterobacteriaceae. J Clin Microbiol. 54, 349-358 (2016).
  18. Wang, L. P., Wang, W., Di, L., Lu, Y. N., Wang, J. Y. Protein adsorption under electrical stimulation of neural probe coated with polyaniline. Colloids Surf B Biointerfaces. 80, 72-78 (2010).
  19. Piletsky, S., Piletska, E., Bossi, A., Turner, N., Turner, A. Surface functionalization of porous polypropylene membranes with polyaniline for protein immobilization. Biotechnol. Bioeng. 82, 86-92 (2003).
  20. Khatkhatay, M. I., Desai, M. A comparison of performances of four enzymes used in ELISA with special reference to beta-lactamase. J Immunoassay. 20, 151-183 (1999).
  21. Worn, A., et al. Correlation between in vitro stability and in vivo performance of anti-GCN4 intrabodies as cytoplasmic inhibitors. J Biol Chem. 275, 2795-2803 (2000).
  22. Ostermeier, M. Engineering allosteric protein switches by domain insertion. Protein Eng Des Sel. 18, 359-364 (2005).
  23. Choi, J. H., Laurent, A. H., Hilser, V. J., Ostermeier, M. Design of protein switches based on an ensemble model of allostery. Nat Commun. 6, 6968 (2015).
  24. Collinet, B., et al. Functionally accepted insertions of proteins within protein domains. J Biol Chem. 275, 17428-17433 (2000).
  25. Betton, J. M., Jacob, J. P., Hofnung, M., Broome-Smith, J. K. Creating a bifunctional protein by insertion of beta-lactamase into the maltodextrin-binding protein. Nat Biotechnol. 15, 1276-1279 (1997).
  26. Ay, J., Gotz, F., Borriss, R., Heinemann, U. Structure and function of the Bacillus hybrid enzyme GluXyn-1: native-like jellyroll fold preserved after insertion of autonomous globular domain. Proc Natl Acad Sci U S A. 95, 6613-6618 (1998).
  27. Ruth, N., et al. DNA vaccination for the priming of neutralizing antibodies against non-immunogenic STa enterotoxin from enterotoxigenic Escherichia coli. Vaccine. 23, 3618-3627 (2005).
  28. Zervosen, A., et al. Characterization of the cattle serum antibody responses against TEM beta-lactamase and the nonimmunogenic Escherichia coli heat-stable enterotoxin (STaI). FEMS Immunol Med Microbiol. 54, 319-329 (2008).
  29. Chevigne, A., et al. Use of bifunctional hybrid beta-lactamases for epitope mapping and immunoassay development. J Immunol Methods. 320, 81-93 (2007).
  30. Ke, W., et al. Structure of an engineered beta-lactamase maltose binding protein fusion protein: insights into heterotropic allosteric regulation. PloS One. 7, 39168 (2012).
  31. Saeedfar, K., Heng, L. Y., Ling, T. L., Rezayi, M. Potentiometric urea biosensor based on an immobilised fullerene-urease bio-conjugate. Sensors (Basel). 13, 16851-16866 (2013).
  32. D'Orazio, P. Biosensors in clinical chemistry. Clin Chim Acta. 334, 41-69 (2003).
  33. Szucs, J., Pretsch, E., Gyurcsanyi, R. E. Potentiometric enzyme immunoassay using miniaturized anion-selective electrodes for detection. Analyst. 134, 1601-1607 (2009).
  34. Ding, J., Wang, X., Qin, W. Pulsed galvanostatic control of a polymeric membrane ion-selective electrode for potentiometric immunoassays. ACS Appl Mater Interfaces. 5, 9488-9493 (2013).
  35. Wang, X., et al. A polymeric liquid membrane electrode responsive to 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine oxidation for sensitive peroxidase/peroxidase mimetic-based potentiometric biosensing. Anal Chem. 86, 4416-4422 (2014).
  36. Grieshaber, D., MacKenzie, R., Voros, J., Reimhult, E. Electrochemical Biosensors - Sensor Principles and Architectures. Sensors (Basel). 8, 1400-1458 (2008).
  37. Bakker, E., Pretsch, E. Nanoscale potentiometry. Trends Analyt Chem. 27, 612-618 (2008).
  38. Zhang, D., Liu, Q. Biosensors and bioelectronics on smartphone for portable biochemical detection. Biosens Bioelectron. 75, 273-284 (2016).
  39. Nemiroski, A., et al. Universal mobile electrochemical detector designed for use in resource-limited applications. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, 11984-11989 (2014).
  40. . . Socio-economic impact of mHealth- An assessment report for the European Union. , (2013).

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