설치류에서 대동맥 탈밴드에 의해 왼쪽 심실 역 리모델링 공부

요약

여기서 우리는 대동맥 수축의 잘 확립 된 마우스 모델에서 탈밴드 수술 대동맥의 단계별 프로토콜을 설명합니다. 이 절차는 비대의 좌심실 역 리모델링 및 회귀의 근본적인 메커니즘을 연구할 뿐만 아니라 심근 회복을 가속화할 수 있는 새로운 치료 옵션을 테스트할 수 있습니다.

초록

좌심실(LV) 역리모델링(RR)을 더 잘 이해하기 위해, 대동맥 밴딩 유도 LV 리모델링 후 마우스가 대동맥 수축을 제거하면 RR을 겪는 설치류 모델을 설명한다. 이 논문에서, 우리는 마우스에 있는 최소 침습적인 외과 대동맥 탈역을 능력을 발휘하기 위하여 단계별 절차를 기술합니다. 에코카르디모그래피는 LV 리모델링 및 RR 동안 심장 비대및 기능 장애의 정도를 평가하고 대동맥 탈장을 위한 최상의 타이밍을 결정하는 데 사용되었습니다. 프로토콜의 끝에서, 심장 기능의 말단 혈역학 적 평가를 실시하고, 샘플은 조직학 연구를 위해 수집되었다. 우리는 탈대하는 70-80%의 외과 생존율과 연관된다는 것을 보여주었습니다. 또한, 탈장 후 2 주, 심실 후부하의 상당한 감소는 심실 비대의 회귀를 트리거 (~20%) 및 섬유증 (~26%), 좌심실 충진 및 말기 확장기 압력(E/e 및 LVEDP)의 정상화에 의해 평가된 확장기 기능 장애의 회복. 대동맥 탈밴드는 설치류에서 LV RR을 연구하는 데 유용한 실험 모델입니다. 심근 회복의 정도는 대동맥 판막 교체와 같은 임상 맥락에서 발생하는 RR의 다양성을 모방하여 피험자 들 사이에 가변적이다. 우리는 대동맥 밴딩 / 탈밴드 모델이 RR의 메커니즘, 즉 심장 비대의 회귀와 확장기 기능 장애의 회복에 대한 새로운 통찰력을 해명하는 귀중한 도구를 나타낸다고 결론을 내립니다.

서문

마우스내 의 횡방향 또는 오름차순 대어타수축은 압력 과부하 유발 심장 비대, 확장기 및 수축기 기능 장애 및 심부전^1,2,3,4에널리 사용되는 실험 모델이다. 대동맥 수축은 처음에 벽 응력^1을정상화하기 위해 보상된 좌심실(LV) 동심 비대로 이어집니다. 그러나, 장기간 된 심장 과부하와 같은 특정 상황에서,이 비대는 벽 스트레스를 감소시키기에 충분하지 않습니다, 확장기 및 수축기 기능 장애를 트리거 (병리학 비대)^5. 병렬로, 세포외 매트릭스 (ECM)의 변화는 대체 섬유증 및 반응성 섬유증으로 세분화 될 수있는 섬유증으로 알려진 과정에서 콜라겐 증착 및 교차 링크로 이어질. 섬유증은, 대부분의 경우, 돌이킬 수 없고 과부하 완화 후 심근 회복을^타협6,7. 그럼에도 불구하고, 최근 심장 자기 공명 영상 연구 결과는 반응성 섬유증이 장기^8에서회귀할 수 있다는 것을 밝혔습니다. 전부, 섬유증, 비대 및 심장 기능 장애는 심부전으로 급속하게 진행되는 심근 리모델링으로 알려져 있는 프로세스의 일부입니다 (HF).

심근 리모델링의 특징을 이해하는 것은 역 리모델링(RR)으로 알려진 후자는 진행을 제한하거나 되돌리는 주요 목표가 되었습니다. RR이라는 용어는 주어진 개입에 의해 만성적으로 반전된 심근 변경, 이러한 약리치료(예를 들어, 항고혈압제), 판막 수술(예를 들어, 대동맥 협착증) 또는 심실 보조 장치(예를 들어, 만성 HF)를 포함한다. 그러나, RR은 종종 지배적인 비대 또는 수축기/확장기 기능 장애 때문에 불완전합니다. 따라서, RR 기본 메커니즘및 새로운 치료 전략의 설명은 여전히 누락, 이는 주로 액세스 하고 이러한 환자의 대부분에서 RR 동안 인간의 심근 조직을 연구 할 수 없기 때문이다.

이러한 한계를 극복하기 위해 설치류 모델은 HF 진행과 관련된 신호 경로에 대한 이해를 높이는 데 중요한 역할을 했습니다. 구체적으로, 대동맥 수축을 가진 마우스의 대동맥 탈밴드는 이들 2상에서 상이한 시점에서 심근 시료의 수집을 허용하기 때문에 불리한 LV 리모델링⁹ 및 RR^10,11의 근간 기전을 연구하는 유용한 모델을 나타낸다. 또한 RR을 홍보/가속할 수 있는 잠재적인 신규 대상을 테스트하는 우수한 실험 설정을 제공합니다. 예를 들어, 대동맥 협착 성 맥락에서,이 모델은 RR^6,12의완전성 (in)의 완전성뿐만 아니라 현재 지식의 주요 단점을 나타내는 밸브 교체를위한 최적의 타이밍의 근간 반응의 광대 한 다양성에 관련된 분자 메커니즘에 대한 정보를 제공 할 수 있습니다. 실제로, 이 개입에 대한 최적의 타이밍은 주로 대동맥 그라데이션의 크기에 따라 정의되기 때문에 논쟁의 대상이됩니다. 몇몇 연구 결과는 섬유증과 확장기 역기능 이 수시로 이미^12로이 시간 지점이 심근 복구를 위해 너무 늦을 지도 모르다는 것을 옹호합니다.

우리의 지식에, 이것은 각각 판막 교체 전후에 대동맥 협착증 또는 고혈압과 같은 조건에서 일어나는 심근 리모델링 및 RR의 과정을 각각 재구성하는 유일한 동물 모델입니다.

위에서 요약된 도전을 해결하기 위하여, 우리는 이 두 종 사이 다름을 해결하는 마우스와 쥐 둘 다에 있는 실행될 수 있는 외과 동물 모형을 기술합니다. 우리는 이러한 수술을 수행 할 때 관련된 주요 단계와 세부 사항을 설명합니다. 마지막으로, 우리는 RR 직전과 전반에 걸쳐 LV에서 일어나는 가장 중요한 변화를보고합니다.

프로토콜

모든 동물 실험은 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드 (NIH 출판 번호 85-23, 개정 2011) 및 동물 복지에 대한 포르투갈법 (DL 129/92, DL 197/96)을 준수합니다. P 1131/97). 유능한 지방 당국은이 실험 프로토콜 (018833)을 승인했습니다. 7주된 남성 C57B1/J6 마우스는 정기적인 12/12h 광암 사이클 환경, 22°C의 온도, 60% 습도가 있는 적절한 케이지에서 유지되었으며, 물과 표준 다이어트 광고 리비토움에 접근할 수 있는 습도가 60% 상승했습니다.

1. 수술장 준비

1. 수술 부위를 70%의 알코올로 소독하고 일회용 수술실 테이블 커버를 수술 부위에 놓습니다.
2. 수술 전에 모든 기기를 살균하십시오.
   참고:이 절차는 마이크로 수술 가위, 2 미세 곡선 집게, 3 미세 직선 집게, 메스, 작은 집게, 각진 분리 가위, 바늘 홀더, 초미세 결찰 보조, 2 hemostats 및, 마지막으로 자기 고정기 회수 시스템이 매우 권장됩니다(그림 1A).
3. 대어타에 쉽게 접근하기 위해 26 G 무딘 바늘의 끝을 90 °로 곡선합니다. 26 G 바늘은 0.45mm 직경 대동맥 협각(도1B)을생성합니다.
4. 가열 패드 온도를 37 ± 0.1 °C로 조정합니다.

2. 마우스 준비 및 삽관

1. 젊은 C57B1/J6 마우스(20-25g)를 콘 튜브에서 0.5-1.0 L/min 100% O_2로 8% 세보플루란을 흡입하여 마취한다.
2. 발가락 핀치 인출 반사를 사용하여 마취 깊이를 확인하십시오.
3. 경사 접시에 등소 침구에 마우스를 배치하고 오로트라세이션 삽관으로 진행합니다.
4. 마우스를 가열 패드로 이동하고 신속하게 기계 환기를 시작하기 위해 인공 호흡기에 오로트라세이션 튜브를 연결합니다.
5. 인공 호흡기 매개 변수를 160 호흡/분 및 10mL/kg의 조수 부피로 조정합니다.

3. 수술 준비 (밴딩 및 탈밴드 수술 모두)

1. 목을 면도하고 목선에서 마우스의 중간 가슴 수준까지 디필 크림을 바하십시오.
2. 각막에서 건조를 방지하기 위해 동물의 눈에 안과 젤을 적용합니다.
3. 각각 온도와 혈액 산소, 심박수를 모니터링하기 위해 직장 프로브와 소시미터를 발 또는 꼬리에 놓습니다.
   참고: 마취는 상당한 저체온증을 유도하므로 수술 중 정상적인 체온을 유지하여 심박수의 급격한 감소를 피하는 것이 중요합니다.
4. 세보플루란(2.0 ~3.0%)으로 마취를 유지한다. 발가락 핀치 반사의 부족으로 마취의 정확한 수준을 확인합니다.
5. 마우스를 가열 패드에 오른쪽 측면 탈구에 놓고 수술 중 올바른 위치에 동물을 유지하기 위해 테이프로 자기 고정기 회수 시스템에 사지를 고정시(도2, 도 3A).
6. 마우스 가슴을 70% 알코올로 소독한 다음 providone-요오드 용액을 제거합니다.

4. 오름차순 대동맥 밴딩 수술

참고: 자세한 프로토콜 설명은 ^2,3,4,13을참조하십시오.

1. 일회용 블레이드를 사용하면 왼쪽에 작은 피부 절개를 도끼 수준 바로 아래에 수행하고 피부를 해부합니다.
2. 갈비뼈가 보일 때까지 가슴 근육과 다른 근육 층을 부드럽게 해부하고 분리합니다. 미세 한 집게를 사용 하 고 근육을 절단 하지 마십시오.
3. 현미경으로, 늑간 공간을 식별하고 미세 한 집게와 2^nd와 3^rd 늑간 공간 사이의 작은 절개를 엽니 다.
4. 가슴 리트랙터(그림2A)를배치하여 갈비뼈를 철회합니다.
5. 작은 집게를 사용하여 오름차순 대자가 보일 때까지 흉부와 흉엽을 부드럽게 해부하고 분리합니다.
   참고: 면 어플리케이터는 출혈의 경우에 편리해야합니다. 따뜻한 멸균 식염수는 상당한 출혈 (예 : 유방 동맥)의 경우 피하로 주어져야합니다.
6. 작은 집게를 사용하여 대어를 부드럽게 해부합니다.
   참고: Aorta는 주변에 지방이나 기타 유착이 없을 때 해부된 것으로 간주되며 작은 곡선 집게로 용기를 쉽게 둘러싸일 수 있습니다.
7. 대동맥 해부 후, 결찰 보조제와 곡면집(도2B)을사용하여 대동맥 주변에 7-0 폴리프로필렌 합자를 배치한다.
8. 무딘 26 G 바늘을 대어타에 평행하게 배치(마우스 헤드를 가리키는 팁)(도2B). 20-25g의 마우스의 경우, 이 바늘은 재현 가능한 65-70% 대동맥 수축을 유도합니다.
9. 대어주위에 2개의 느슨한 매듭을 만들고 2개의 집게(그림 2B)의도움으로 26G 바늘을 만듭니다.
10. 1^st 매듭을 조이고, 빨리 2^nd 매듭 후. 간략하게 수축의 올바른 위치를 확인하고 신속하게 대동맥 혈류를 복원하는 바늘을 제거합니다. 마지막으로, 3^rd 노트 (BA 그룹)를 확인합니다.
11. 흉선과 근육을 초기 위치로 재배치합니다.
12. 수축 절차와 동일한 가짜 절차를 수행하지만 대어타 (SHAM 그룹) 주위에 봉합사를 느슨하게 유지합니다.
13. 봉합사의 끝을 잘라 가슴 리트랙터를 제거합니다.
    참고: 짧은 봉합사 끝은 대동맥 압력으로 매듭이 느슨해질 확률을 증가시킬 수 있으며, 긴 끝은 봉합사와 좌심방 사이에 접착이 발생할 수 있기 때문에 탈착 절차를 더 위험하게 만듭니다.
14. 가능한 바늘의 가장 낮은 수를 사용하여 간단한 중단 또는 연속 봉합사6-0 폴리 프로필렌 봉합사를 사용하여 가슴 벽을 닫습니다. 폐를 다시 팽창시키기 위해 2s에 대한 인공 호흡기의 유출을 꼬집어 마지막 영감에 팽창 폐와 마지막 가슴 매듭을 조입니다.
15. 연속 봉합사 패턴으로 6-0 실크/폴리프로필렌 봉합사로 피부를 닫습니다.
    참고: 최신 인공호흡기를 사용하는 경우 영감을 일시 중지하도록 프로그래밍할 수 있습니다(설정-고급 일시 중지-영감)

5. 수술 후 치료

1. 피부 봉합사 부위에 프로비도 요오드 솔루션을 적용하십시오.
2. 적절한 진통을 위해, 동물이 완전히 회복 될 때까지, 피하 0.1 mg / kg, 두 번, (일반적으로 2-3 수술 후 일)를 관리합니다.
3. 수술 중 상당한 출혈의 경우 탈수를 방지하기 위해 불임 식염수를 인트라이상적으로 주입하십시오.
4. 마취를 끄고 (마우스를 손상시키지 않고) 동물이 반사 신경을 회복 할 때까지 기다립니다 (수염 의 움직임은 각성 신호입니다) 자발적으로 호흡하기 시작합니다.
5. 기관 캐뉼라를 제거합니다.
6. 동물이 37 °C에서 인큐베이터에서 회복하도록하십시오.
7. 동물을 완전한 회복 후 12h 의 빛 /어두운 사이클 룸으로 되돌보겠습니다.

6. 대동맥 탈역 수술

1. 7주 후, BA 동물의 절반에 대어타를 해체하고 SHAM 마우스의 절반에서 느슨한 봉합사를 제거하여 각각 해체(DEB) 및 탈밴드 샤마(DESHAM)라는 2개의 새로운 그룹을 발생시합니다. DESHAM은 DEB 그룹에 대한 제어를나타냅니다(도 4).
2. 위에서 언급한 모든 단계 2.1에서 3.6단계를 반복합니다.
3. 수축이 보일 때까지 조직, 유착 및 대마 주위의 섬유증을 부드럽게 해부합니다.
4. 대자를 조심스럽게 해부하고 봉합사를 대어에서 분리합니다. 각진 한 프로브 스프링 가위로 봉합사를 자른다(그림3B).
5. 가능한 바늘의 최소 수를 사용하여 간단한 중단 또는 연속 봉합사와 6-0 폴리 프로필렌 봉합사를 사용하여 가슴 벽을 닫습니다.
   참고: 폐가 팽창하여 폐렴을 피하기 위해 마지막 가슴 봉합사를 조여보십시오.
6. 연속 봉합사 패턴으로 6-0 실크/폴리프로필렌 봉합사로 피부를 닫습니다.
7. 5에서 언급 한 바와 같이 모든 수술 후 치료 절차를 수행하십시오.
8. 2 주 후 동물을 희생.

7. 심장 기능을 평가하고 생체 내에서 심실 비대증을 왼쪽에 있는 에코카르디노피그래피

1. 비대와 심장 기능의 진행을 따르기 위해 2-3 주마다 심초음파 검사를 수행하십시오.
2. 설명한 대로 코 콘으로 5% 세보플루란을 흡입하여 동물을 마취시킵니다. 마취 수준을 2.5%로 줄임으로써 조정합니다.
3. 네크라인에서 가슴 중간 수준으로 탈모 크림을 면도하고 발라주세요.
4. 동물을 가열 패드에 놓고 심전도 전극을 배치합니다. 좋은 심전도 추적을 보장하고 300에서 350 비트 / 분 사이의 심박수를 유지합니다.
5. 온도(~37°C)를 모니터링합니다.
6. 에코 젤을 바르고 동물을 왼쪽 측면 디큐비투스에 배치합니다.
7. 심초음파를 시작하고 설정을 조정합니다.
8. 흉부 위에 초음파 프로브를 배치합니다.
9. 밴딩 및 탈밴드 수술 후 7주와 2주 동안 밴딩을 통해 압력 그라데이션을 각각 평가합니다. 프로브를 LV 긴 축에 배치하고 대어에 빔을 배치합니다. 버튼 PW를 눌러 펄스 웨이브 도플러 에코카르디그래피를 활성화합니다. 7주 간의 밴딩 후 대동맥 그라데이션은 줄무늬 동물에서 >25mmHg가 됩니다.
10. 타오르타의 2차원 유도 이미지를 기록하여 타오르는 대오르타 수축의 존재 또는 부재를 보여 주어 밴딩 및 탈장의 효능을 해부학적으로 시각화한다.
    참고: 색상 모드를 사용할 수 있는 경우 수축 수준에서 난류 흐름을 시각화할 수 있습니다.
11. 프로브를 LV 짧은 축, 유두 근육 수준에서 배치하여 비대기를 평가하고 M 모드 추적을 눌러 디아스톨(D) 및 슬롭(S)에서 LV 전방 벽(LVAW), LV 직경(LVD) 및 LV 후방 벽(LVPW)을시각화합니다.
12. 수축기 기능을 평가하고, 이전에 설명한^14,15와같이 배출 분수 및 분수 단축을 계산한다.
13. 1) 승모 전단지 바로 위에 정량형 4 챔버 정맥 을 사용하여 조기 및 후기 승량 흐름 속도(E 및 A 파)의 펄스 파도플러의 피크를 결정하는 다이스톨릭 기능을 평가한다. 2) 펄스-TDI 및 정맥 4 챔버 어포타임뷰(그림 5)를사용하여 측면 형발성 심근 조기 확장기(E)와 피크 수축기(S)를 기록한다.
14. 각 매개 변수 평가에 적어도 세 번 연속 하트 비트를 기록합니다. 이러한 값은 이후에 평균화됩니다.

8. 혈역학 평가

1. 프로토콜의 끝에서(도 4),최종 에코카디그래피를 수행, 7에 설명 된 바와 같이, 말단 혈역학 평가 전에.
2. 2.1 ~ 3.6 단계를 반복합니다.
3. 오른쪽 경정맥을 캔누레이하고 64mL/kg/h에서 멸균 식염수식을 퍼퓨즈합니다.
4. 동물을 왼쪽으로 살짝 회전시키고 xiphoid 부록의 수준에서 피부 절개를 합니다.
5. 집게 또는 가위로 근육에서 피부를 분리합니다.
6. xiphoid 부록 수준에서 왼쪽 갈비뼈 사이에 측면 절개를 합니다.
7. 왼쪽 측면 흉부 절제술을 수행하여 심장을 완전히 노출시하십시오.
   참고: 출혈과 폐 손상을 방지하기 위해 목면면면을 흉부 구멍에 삽입하고 절단할 장소의 오른쪽과 왼쪽에 두 개의 헤모트를 삽입하면서 폐를 부드럽게 밀어 넣습니다.
8. 37°C에서 수조에서 P-V 루프 카테터를 예열합니다.
9. 카테터를 보정합니다(설정, 채널 설정, 압력 및 볼륨, 단위에 대한 올바른 채널을 선택했습니다).
10. 카테터를 LV에 정량적으로 삽입하고 대동맥 밸브와 정점 사이에 볼륨 센서가 배치되도록 합니다. 부피는 에코카디그래피(그림5)에의해 평가될 수 있다. 압력 볼륨 루프의 시각화는 카테터의 올바른 위치를 확인하는 데 도움이됩니다(도 6).
11. 압력 볼륨 루프의 모양에 큰 변화없이 동물이 20-30 분 안정화 할 수 있습니다.
12. 종료 만료 시 환기가 일시 중단되면 기준기록(그림 6)을획득합니다. 1,000Hz에서 지속적으로 데이터를 수집하여 적절한 소프트웨어로 오프라인으로 분석할 수 있습니다.
13. 고토닉 식염수 볼러스(10%, 10 μL) 후 병렬 전도도를 계산합니다.
14. 마취하는 동안, 멸종에 의해 동물을 희생, 수집하고 혈액을 원심 분리.
15. 마지막으로, 흥분하고 마음을 수집합니다. 심장, 왼쪽 및 오른쪽 심실의 무게를 별도로 가중치를 가하고 후속 분자 또는 조직학적 연구를 위해 액체 질소 또는 포르말린에 샘플을 즉시 저장합니다.

9. 쥐의 대동맥 밴딩/탈장 절차

1. 22G 바늘과 6-0 폴리프로필렌 합자를 사용하여 젊은 Wistar(70-90 g)에서 대동맥 밴딩을 수행하여 대동맥을 수축시다.
2. 세보플루란3-4%와 부프레노르핀 0.05 mg/kg의 적절한 마취 및 진통 절차를 보장하십시오.
3. 에코카르디그래피 동안 심박수가 항상 300 속도 /min (이상적으로 300과 350 사이)를 초과해야합니다.
4. 8.9 단계 전에 쥐 대어를 부드럽게 해부하고 주위의 유동 프로브를 배치하여 심장 출력을 측정합니다. 대동맥 유량 프로브의 사용은 쥐에 대한 금 표준 절차입니다.
5. 혈역학적 평가를 위해 유체 투여용 경구 또는 대퇴정맥(32mL/kg/h)을 투여한다.
6. SPR-847 또는 SPR-838에 의해 압력 볼륨 카테터 SPR-1035를 대체하십시오.

결과

수술 후 및 후기 생존
밴딩 절차의 perioperative 생존은 80%이고 첫번째 달 도중 사망은 전형적으로 <20%입니다. 앞서 언급했듯이, 탈장 수술의 성공은 이전 수술이 얼마나 침습적였는지에 매우 의존합니다. 학습 곡선 후, 탈장 절차 중 사망률은 약 25 %입니다. 이 사망에 대 동맥 또는 왼쪽 아트리움 파열을 포함 하 여 수술 시 동안 주로 사망 계정 (쥐에서, 생존율은 두 수술 절차에서 더 ?...

토론

본 명세서에서 제안된 모델은 대동맥 밴딩 및 탈밴드 후 LV 리모델링 및 RR의 과정을 각각 모방한다. 따라서, 불리한 LV 리모델링에 관여하는 분자 메커니즘에 대한 우리의 지식을 발전시키고 이들 환자의 심근 회복을 유도할 수 있는 새로운 치료 전략을 시험하는 우수한 실험 모델을 나타낸다. 이 프로토콜은 외과 외상을 줄이기 위해 최소 침습적이고 매우 보수적 인 수술 기술로 대동맥 밴딩 및 탈...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Absorption Spears	F.S.T	18105-03	To absorb fluids during the surgery
Blades	F.S.T	10011-00	To perform the skin incision
Buprenorphine	Buprelieve		Analgesia drug
Catutery	F.S.T	18010-00	To prevent exsanguination
Catutery tips	F.S.T	18010-01	To prevent exsanguination
cotton swab	Johnson's		To absorb fluids during the surgery
Depilatory cream	Veet		To delipate the animal
Disposable operating room table cover	MEDKINE	DYND4030SB	To cover the surgical area
Echo probe	Siemens	Sequoia 15L8W	Ultrasound signal aquisition
Echocardiograph	Siemens	Acuson Sequoia C512	Ultrasound signal aquisition
End-tidal CO2 monitor	Kent Scientific	CapnoStat	To control expiration gas saturation
Forcep/Tweezers	F.S.T	11255-20	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11272-30	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11151-10	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11152-10	To dissect the tissues and aorta
Gas system	Penlon Sigma Delta		To anesthesia and mechanical ventilation
Hemostats	F.S.T	13010-12	To hold the suture before tight the aorta
Hemostats	F.S.T	13011-12	To hold the suture before tight the aorta
Ligation aids	F.S.T	18062-12	To place a suture around the aorta
Magnetic retractor	F.S.T	18200-20	To help keep the animal in a proper position
Needle holder	F.S.T	12503-15	To suture the animal
Needle 26G	B-BRAUN	4665457	To serve as a molde of aortic constriction diameter
Oxygen	Air Liquide		To anesthesia and mechanical ventilation
Polipropilene suture	Vycril	W8304/W8597	To suture the animal and to do the constriction
Povidone-iodine solution	Betadine®		Skin antiseptic
PowerLab	Millar instruments	ML880 PowerLab 16/30	PV loop Signal Aquisition
Pulse oximeter	Kent Scientific	MouseStat	To control heart rate and blood saturation
PVAN software	Millar Instruments		To analyse the haemodynamic data
PV loop cathether	Millar instruments	SPR-1035. 1.4 F	PV loop Signal Aquisition
Retractor	F.S.T	17000-01	To provide a better overview of the aorta
Scalpet handle	F.S.T	10003-12	To perform the skin incision
Scissors	F.S.T	15070-08	To cut the suture in debanding surgery
Scissors	F.S.T	14084-09	To cut other material during the surgery e.g. suture, papper
Sevoflurane	Baxter	533-CA2L9117
Temperature control module	Kent Scientific	RightTemp	To control animal corporal temperature
Ventilator	Kent Scientific	PhysioSuite	To ventilate the animal
Water-bath	Thermo Scientific™	TSGP02	To maintain water temperature adequate to heat the P-V loop catethers