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Method Article
우리는 소 혈청 알부민(BSA)에서 Au(III)의 결합 도메인을 연구하기 위한 프로토콜을 제시합니다.
제시된 프로토콜의 목적은 BSA에서 Au(III) 결합의 영역을 결정하는 것입니다. BSA-Au(III) 화합물은 방향족 잔류물에서 발생하는 타고난 UV/청색 형광에 비해 특이한 Stokes shift와 함께 자외선(UV)을 자극하는 적색 발광(λem = 640nm)을 나타냅니다. 적색 발광 복합체는 pH 10 이상의 고알칼리성 조건에서 형성되며 단백질 내에서 형태 변화가 발생해야 합니다. 또한, BSA에서 Cys-Cys 이황화 결합의 보존은 이러한 적색 발광을 얻기 위해 필요합니다. 이 발광의 메커니즘을 이해하려면 발광단을 형성하는 Au(III) 결합 부위의 규명이 필수적입니다. 발광단 형성 부위를 평가하는 손쉬운 방법은 (1) 효소 분해를 통해 단백질을 예측 가능하게 단편화하고, (2) 얻어진 단편을 Au(III)와 반응시킨 다음, (3) 겔 전기영동을 수행하여 잘 분리된 단편 띠를 관찰하고 겔 내 적색 발광을 분석하는 것입니다. 그러나 알칼리성 조건 및 금속 양이온과의 반응으로 인해 새로운 제한된 단백질 가수 분해 기술과 겔 전기 영동 조건을 적용해야 합니다. 특히, 겔 전기영동에서 금속 양이온의 존재는 밴드 분리를 기술적으로 어렵게 만들 수 있습니다. 이 새로운 프로토콜은 BSA에서 적색 발광단을 형성하는 금속 결합 도메인을 식별하기 위한 단계로 설명합니다. 따라서 이 프로토콜은 금속 양이온이 있는 상태에서 비변성 또는 부분적으로 변성된 상태로 남아 있어야 하는 단백질 단편을 분석하는 데 적용할 수 있습니다. 대부분의 단백질이 기능하기 위해서는 금속 양이온이 필요하기 때문에 금속 결합 단백질의 분석이 필요한 경우가 많으며, 이는 문헌의 X선 결정학에 의존해 왔습니다. 다른 한편으로는, 이 방법은 단백질 결정화를 요구하지 않고 그리고 원한 PH 상태에 금속 양이온과 단백질의 상호 작용을 공부하기 위하여 보충교재에서 이용될 수 있었습니다.
고 알칼리성 조건 (pH > 10)에서 반응하여 얻은 소 혈청 알부민 1,2,3 (BSA) - 금 (Au) 복합체는 UV 흥분성 적색 발광 (λem = 640 nm) 4,5,6,7을 나타내는 것으로 알려져 있습니다. 이 화합물의 수많은 응용은 감지, 8,9,10, 이미징 11,12,13 및 나노 의학 14,15,16을 포함하여 제안되고 조사되었습니다. 그러나 발광의 메커니즘은 완전히 이해되지 않았습니다. BSA에서 Au(III) 결합의 위치와 발광단 형성을 확인하는 것은 중요한 단계입니다.
적색 발광(red luminescence)을 산출하기 위해서는 BSA의 pH 제어 동적 형태 변화와 Cys-Cys 이황화 결합에 대한 Au(III) 결합이 필요하다는 것이 최근에 밝혀졌습니다4. 이 발광의 메커니즘에 대한 추가 통찰력을 얻으려면 발광단을 형성하는 Au(III) 결합 부위를 규명하는 것이 필수적입니다. 발광단 형성 부위를 평가하는 쉬운 방법은 효소 분해를 통해 BSA-Au 화합물을 단편화하고 각 단편의 발광을 분석하는 것입니다. 그러나 알칼리성 조건과 금속 양이온의 존재로 인해 새로운 단백질 분해 및 겔 전기영동 프로토콜이 필요합니다.
우리는 단백질 단편 준비 방법으로 제한된 효소 단백질 가수 분해를 사용하면서 Cys-Cys 이황화 결합을 보존했습니다. 기존의 단백질 분해에서는 모든 이황화 결합의 절단과 단백질의 선형화(디티오트레이톨 및 요소와 같은 변성제와 열에 의해)가 필요합니다. 여기에서는 Cys-Cys 결합 보존 단백질 분해를 입증하고 Au(III)와의 반응 후 얻어진 단편과 그 발광을 평가합니다. 구체적인 예로 소화 효소를 위해 트립신을 사용합니다.
프로토콜은 일반적으로 금속 양이온이 있는 상태에서 단백질과 단편의 겔 전기영동을 설명합니다. 단백질의 대다수가 기능하기 위해 금속 양이온을 필요로 하기 때문에17,18, 문헌의 X선 결정학에 의존해 온 금속 결합 단백질의 분석이 종종 필요합니다. BSA의 구조 및 그 단편은 pH > 10을 포함한 비중성 pH 형태에 대해서는 알려져 있지 않습니다. 따라서 Au(III) 배위조건의 구조적 세부 사항은 겔 전기영동만으로는 분석할 수 없습니다. 다른 한편으로는, 이 방법은 단백질 결정화를 요구하지 않고 단백질과 금속 양이온의 상호 작용을 연구하기 위해 보충제에 사용될 수 있으며, 이는 원하는 기능적 pH 조건에서 불가능할 수 있습니다. 금속 양이온의 존재는 겔 밴드의 심각한 "번짐"을 유발할 수 있습니다. 본 논문의 초점은 이러한 기술적 어려움을 극복하고 금속에 의한 밴드 스미어링을 최소화하기 위한 프로토콜을 제시하는 것입니다.
1. BSA-Au 복합 단편의 합성
2. 한정된 proteolysis에 의하여 BSA-Au 복합물 파편의 젤 전기 이동법
3. 제한된 단백질 분해에 의한 BSA-Au 복합 단편 분석
관찰된 12개의 겔 띠는 5개의 예상되는 BSA 단편 [A] - [E]에서 고유하게 재구성되었습니다(그림 1). 결과는 α나선과 β가닥을 포함한 2차 구조가 보존된 문헌과 일치했다 19,20,21,22,23. Band(1) = [<...
본 프로토콜의 목적은 BSA-Au 복합체에서 적색 발광단 형성 도메인을 식별하는 것이었습니다. 우리는 적색 발광을 생성하는 데 필요한 Cys-Cys 결합을 보존하면서 BSA 단편을 얻기 위해 제한된 트립틱 단백질 분해를 사용했습니다. 우리는 Au(III)의 존재 하에서 단백질 분해 및 전기영동을 위한 조건을 최적화했습니다. 동일한 원리가 금속 양이온이 존재하는 상태에서 단편화된...
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S.E.는 PhRMA 재단, 백혈병 연구 재단 및 미국 국립보건원(NIH R15GM129678)의 지원을 인정합니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Ammonium bicarbonate, 99.5% | Sigma-Aldrich | 9830 | |
Azure Biosystems C400 gel imaging system | Azure Biosystems | C400 | |
Bovine Serum Albumin (BSA), 96% | Sigma-Aldrich | A5611 | |
Glycerol, >99.0% | Sigma-Aldrich | G5516 | |
gold (III) chloride trihydrate, 99.9% | Sigma-Aldrich | 520918 | |
NuPAGE 4-12% Bis-Tris Mini Protein Gel | Thermo Fisher | NP0321BOX | |
NuPAGE MES Running Buffer (20X) | Thermo Fisher | NP0002 | |
Sodium Chloride (NaCl), >99.5% | Sigma-Aldrich | S7653 | |
Sodium hydroxide, >98.0% | Sigma-Aldrich | S8045 | |
Tris Hydrochloride (Tris-HCl) | Sigma-Aldrich | 10812846001 | |
Trypsin from Bovine Pancreas (>10,000 BAEE units/mg) | Sigma-Aldrich | T1426 |
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