건강 그랜트 DA024009의 국립 연구소, DK046367 및 T32DA007027.

모든 동물 관리 및 실험 절차에 따라이었고, 버지니아 커먼 웰스 대학에서 기관 애니멀 케어 및 사용위원회에 의해 승인. 1. 24 잘 접시에 무균 폴리-D-라이신과 라미닌 코팅 유리 coverslips를 준비 <ol><li> 1 단계의 모든 절차는 무균 조건에서 수행되며, 후드, 멸균 시약. 유리 coverslips를 두 번 탈 이온수 (DDH 2 O)은 사전에 소독해야한다. 접시의 준비는 신경 세포의 분리 2 주 전에까지 수행 할 수 있습니다. </li><li> 후드 아래, 24 - 웰 플레이트의 12 우물 멸균 유리 coverslips는을 배치 멸균 집게를 사용합니다. </li><li> 미리 폴리 - D - 라이신 재고를 준비합니다. 5 MG 폴리 - D - 라이신에 멸균 ddH2O의 50 ML을 추가합니다. -20 ° C.에 소용돌이 3 ML의 분주에 저장 사용하기 전에 분주 해동. </li><li> 피펫 80 μL : 25cm 2 당 1 ML 폴리 - D - 라이신 주식의 최종 농도에 대한각 유리 coverslip을 (2cm 2)의 위에 폴리 - D - 라이신 주식. 솔루션은 10 분 동안 정착하자. </li><li> 폴리 - D - 라이신 사용하여 진공을 제거하고 살균 DDH 2 O와 배의 coverslips을 씻어 </li><li> 플레이트 후드 아래에 적어도 2 시간 동안 건조하도록 허용합니다. </li><li> 접시는 4 ° C 또는에 저장 될 수있다 - 20 ° C 라미닌 코팅을 진행하기 전에. </li><li> 미리 라미닌 주식을 준비합니다. 얼음에 라미닌을 해동하고 사용하는 동안 얼음에 보관하십시오. 50 ㎍ / ㎖의 농도로 희석, 많은 농도에주의를 지불한다; 각이 많이 다릅니다. 부지의 농도에 따라 약 20 ML DDH 2 O는 라미닌의 각 유리 병에 추가됩니다. -80에서 나누어지는 (5 ML) 및 저장 ° C. 사용하기 전에 얼음에 분주 해동. </li><li> 5 ㎍ / cm 2 라미닌과 코트 coverslips는, 각 coverslip에 대한 라미닌 주식의 피펫 200 μL. </li><li> 1 시간 동안의 coverslips에 라미닌 솔루션을 품어. </li><li> 나머지 라미닌 솔루션을 기음과 한 번 coverslips를 씻어DDH 2 O coverslips는 표면을 긁어하지 마십시오. </li><li> 최대 2 주 4 ° C에서 보관 플레이트. </li></ol> 2. 신경 분리 솔루션의 사전 준비 <ol><li> (: 118 염화나트륨, 4.6 KCl을 1.3 2 PO 4, 1.2 황산 마그네슘, 25 NaHCO3를 11 포도당, 2.5 염화칼슘 NaH를 mm 단위) 크렙스 솔루션을 준비합니다. 장소 13.79 g 염화나트륨 (FW 58.44) 0.686 g KCl을 (FW 74.55) 0.312 g의 NaH 2 PO 4 (FW 120), 0.289 g 황산 마그네슘 (FW 120.4), 4.20 g NaHCO3를 (FW 84.01), 3.96 g 포도당 (FW 180.2), 2 L DDH 2 0 0.555 g 염화칼슘 (FW 111). 4 ° C.에 진정 </li><li> 미디어 (10 % 태아 소 혈청 (FBS) 및 항진균 / 항생제 F12 미디어) 씻어 준비 : F12 매체의 500 ML 병으로, 50 ML FBS 및 항진균 / 항생제 100X 액체 (GIBCO) 5 ㎖를 추가합니다. </li><li> 장내 신경 미디어 (Neurobasal B-27와 미디어, 2 mM의 L-글루타민, 1 % FBS, 10 NG / ML, 아교 파생 Neurotr 준비ophic 인자 (GDNF) 및 항진균 / 항생제 100X 액체). GDNF 주식을 만들려면 -80 ° C.에 10 μg의 GDNF에 1 ML ddH2O을 추가하고 50 μl를 분주, 가게에 다시 동결 완전한 신경 세포 미디어 50 ML 유리 병의 경우, 47.5 ML Neurobasal 미디어 1 ML B-27 (50X), 500 μL FBS, 500 μl의 200 mM의 L-글루타민 (GIBCO) 50 μL GDNF 재고, 500 μL 항생제 / 결합 항진균 100X 액체. 미디어 GDNF의 신선도를 보장하기 위해이 비싼 휴대 미디어 혼합물의 대량의 오염을 방지하기 위해 작은 50 ML 일괄 처리에서 이루어집니다. </li></ol> 3. 마우스에서 수확 세로 근육 / Myenteric 신경총 (LMMP) 준비 <ol><li> 동물 실험을 수행하기 전에 해당 국가 및 기관의 윤리 장소에 있어야합니다. 25g (일반적으로 나이 8 주 이상)에 무게 어른 스위스 웹스터 마우스는 이전의 실험 6 그룹으로 보관되어 있습니다. 두 쥐의 조직은 회장 장내 뉴런과 교세포의 분리에 사용되는 세 생쥐에 사용됩니다대장 세포의 분리. </li><li> 수술 영역을 준비합니다. 작은 외과 가위, 직각 집게, 면봉, 3 개의 200 mL 유리 비커와 유리 / 플라스틱 막대 (붓) 수집합니다. 모든 전원이 완전히 세척하고 오염을 최소화하기 위해 사용하기 전에 세척되어 있는지 확인합니다. 이 단계는 실험 하루 전에 수행 할 수 있습니다. </li><li> 산도를 안정화하기 위해 적어도 30 분 동안 carbogen (95 % 산소, 5 % CO 2)에 얼음과 거품에 크렙스 솔루션을 배치합니다. </li><li> 원하는 온도에서 안정화하기 위해 다양한 장비와 따뜻한 화학 물질을 켭니다; 37 열 수조 (들) ° 4 ° C, 장소 행크의 균형 소금 솔루션 (HBSS)와 물 목욕에 0.5 % 트립신 (37 ° C에 C, 차가운 원심 분리기 ). 완전한 신경 세포 미디어와 린스 미디어 냉장 유지해야한다. </li><li> 장소 150 ML 얼음 추위 &#39;더러운&#39;, &#39;깨끗한&#39;및 &#39;LMMP&#39;라는 3 개의 200 ML 유리 비커에 크렙스 포입. 거품 비커 carbogen와 &#39;LMMP&#39;로 분류. </li><li> 윤리위원회, 안락사 m의 승인에 따라자궁 경부 전위 또는 CO 2 질식하여 여러개. </li><li> 70 % 에탄올로 수술 표면에 깨끗한 피부에 지느러미 드러 누움에 마우스를 놓고 집게를 사용하여 복부 피부를 들어 올립니다. 가위, 오픈 복강 내부 소화 기관을 공개 사용. </li><li> 회장의 섹션을 리프팅과 장간막를 공개하여 위장관의 길이를 제거합니다. 가위로 장간막을 통해 싹둑 부드럽게 제거하고 회장 / 결장의 장간막을 끌어 않도록주의하면서, 회장 및 결장을 해명한다. </li><li> 소장의 전체 길이가 풀어 후에는 소장을 통해 맹장에 위 원위부와 근위부 절단하여 회장을 제거합니다. 참고 :이 절차는 근위부에 맹장 원위부에서 결장을 제거하여 대장 조직을 수행 할 수 있습니다 항문. </li><li> 조직은 더욱 근위 및 원위 결장, 그리고 jejenum 및 회장 사이에 나눌 수 있습니다. 이 절차의 나머지는 회장의 분리를 참조합니다; t그 절차는 대장 LMMP의 분리에 대해 동일합니다. 차가운 얼음 크렙스는 &#39;더러운&#39;표시와 함께 유리 용기에 전체 회장을 놓습니다. </li><li> 회장을 청소하는 도구를 작성하고 제출 돌을 사용하여 무딘 큰 20 G 바늘 얼음 차가운 크렙스을 포함하는 큰 주사기 (10 ㎖)에 연결합니다. </li><li> 세 개 이상의 대형 조각으로 회장을 절개하여 회장에서 찌꺼기를 청소합니다. 커에서 회장 섹션을 제거하고 회장 조각의 끝으로 무딘 바늘을 배치합니다. </li><li> 모든 배설물은 별도의 폐기물 용기에 제거 될 때까지 조심스럽게 용기 섹션을 크렙스를 실행합니다. &#39;깨끗한&#39;표시 크렙스의 용기에 세척 섹션을 배치합니다. 전체 회장이 정리 될 때까지 반복합니다. </li><li> LMMP를 제거하려면 약 2 작은 세그먼트로 회장을 잘라 - 4cm입니다. 플라스틱이나 유리 막대에 회장의 세그먼트를 배치, 회장은 snuggly 히 적합하지만 (1 ~ 2 ㎜) 느슨하거나 팽팽해서는 안됩니다. 부드럽게 장간막의 비트를 제거하여 LMMP의 제거를 시작하기는 여전히 첨부집게를 사용하여 위장 (GI) 요로 에드. 부드럽게 엄지 손가락을 사용하여로드에 튜브를 고정하여 막대 주위에 회전하는 GI 기관을 방지합니다. </li><li> 기본 원형 근육에서 LMMP을 분리, 먼저 부드럽게 부드럽게 세로 근육의 차이를 만드는, 정상에서 세그먼트의 아래로 장간막이 붙어 있던 전체 라인을 따라 포셉의 가장자리를 문질러. 그런 다음 부드럽게 크렙스 적신 면봉을 사용하여 세로 근육을 멀리 애타게. </li><li> 세로 근육 갭의 상단에서 시작하고 길이 근육은 단지 원형 근육에서 분리 시작할 때까지 매우 가벼운 압력을 적용하는 동안 가벼운 수평 스트로크를 사용하여 멀리 애타게, 장간막 부착 점을 따라 전체 지구 아래이 작업을 수행합니다. </li><li> 그런 다음 부드럽게 GI 관 해결하기 시작, 세로 근육이 서서히 관의 주위에 원형 근육에서 모든 방법을 분리로 처음부터 끝까지 다시 이동. 완료되면,LMMP 자연스럽게 GI 관의 나머지를 올 것이다. </li><li> &#39;LMMP&#39;표시 비커 세로 근육의 결과 얇은 스트립을 배치합니다. 모든 세그먼트에 대해이 단계를 반복합니다. </li><li> LMMP의 모든 지구가 하나의 마우스에서 수집 한 후, 사용중인 다른 마우스에 대해 절차를 반복합니다. 철저하게 다시 사용하기 전에 &#39;더러운&#39;와 &#39;깨끗한&#39;비커를 씻어. </li><li> 생물학적 오염을 제거하기 위해 배 LMMP을 씻어. 차가운 얼음 크렙스 세 개의 2 ㎖ 에펜 도르프 튜브를 채 웁니다. 원심 분리기 356 XG에 30 초 동안 첫 번째 튜브와 스핀 LMMP 스트립을 배치 4 ° C로 냉각 조심스럽게 피펫으로 뜨는을 제거하고 다음 깨끗한 크렙스 채워진 튜브에 LMMP 스트립을 이동합니다. 나머지 각 튜브에 대해이 절차를 반복합니다. </li></ol> 4. 다이제스트 LMMP <ol><li> 10 ㎖ carbogen - 버블 크렙스 용액에 13 밀리그램 콜라 2 형 및 3 MG BSA를 배치하여 소화 솔루션을 준비합니다. </li><li> 소화 용액을 사용 SCIS에 헹궈 LMMP 장소 세그먼트미안하다이 작은 조각으로 LMMP을 싹둑. </li><li> ° C 물 목욕 셰이커 37 60 분 가볍게 carbogen 함께 부풀어 오른되는 동안의 다이제스트 LMMP. </li><li> 소화가 완료된 후, 원심 분리기 356 XG에서 13 분 동안 원심 분리하여 세포를 수집 4 ° C로 냉각 </li><li> 이 시점에서 모든 절차는 세포 배양 후드에서 무균 조건 하에서 수행되어야합니다! 모든 시약 및 컨테이너를 사용하기 전에 소독해야한다. </li><li> 원심 분리하는 동안, 1 mL를 배치하여 0.05 %의 트립신 용액을 제조 0.25 % 트립신을 따뜻하게하고 4 ML은 멸균 50 ML의 세포 배양 관에 HBSS를 따뜻하게. </li><li> 원심 분리 후 제거하고 상층 액을 버린다. 진공 청소기를 사용하지 마십시오,이 가능성이 낮은 원심 분리 속도에 의한 세포 펠렛을 빨아 것입니다. 조심스럽게 0.05 % 트립신 용액 5ml와 깨​​끗한 튜브에 세포 펠렛과 장소를 제거합니다. </li><li> 37 7 분간 흔들어 ° C의 물을 욕조에 0.05 % 트립신 용액에 세포를 소화. 7 마일을 초과하지 않도록N 총 트립신 치료 나 신경의 멸망. </li><li> 트립신 처리의 7 분 후 차가운 린스 미디어 10 mL로 트립신을 중화. </li><li> 356 X g에서 13 분 동안 세포를 원심 분리기. 제거하고 용지를 버리십시오. </li><li> 원심 분리하는 동안 멸균 15 ML의 세포 배양 튜브의 상단에 살균 Nitex 메쉬 부분을 균형. </li><li> 원심 분리 후 제거하고 상층 액을 버린다. 3 ML 완전한 신경 세포 미디어 triturating으로 부드럽게을 Resuspend 세포 혼합물. 이 단계 세포 혼합물이 분쇄되는 미래의 모든 단계에서 기포가 발생하지 않도록. 모든 triturations 매우 조심스럽게 수행해야합니다. 깨끗한 15 ML 세포 배양 튜브에 Nitex 메쉬를 필터링 셀 솔루션입니다. </li><li> 옵션 : 모자 세포 배양 튜브와 30 분 동안 온화한 회전 및 기울이기와 냉장 훌라 믹서 장소 (또는 회전을 제공하는 믹서). 이 단계는 선택 사항이지만 권장됩니다. </li><li> 선택 사항 : 훌라 믹서 한 후, 세포를 씻어 2 ML 차가운 린스 미디어를 추가 할 수 있습니다. </li><li> 원심 분리하여 세포를 (8 분 356 XG) 수집합니다. 제거하고 상층 액을 버린다. </li><li> 1,200 μL 완전한 신경 미디어 세포를 resuspend을. 부드럽게 1 ML 플라스틱 피펫 팁을 사용하여 세포를 씹다. 공기 방울을 생성하지 않습니다. 대부분의 덩어리가 깨진되고 세포가 액체로 중단 될 때까지 천천히 부드럽게 피펫. </li><li> 미리 코팅 된 유리 커버 슬립을 포함하는 12 우물 각각에 완전한 매체 750 μl를 추가하고 분쇄​​ 세포 용액 100 μL를 추가합니다. </li><li> 5 % CO 2와 37 ° C에서 세포 배양 인큐베이터에서 뉴런을 배양한다. </li><li> 전지 매체 2 일 간격의 절반을 변경합니다. </li><li> 뉴런은 1 일 이후에 전기 생리학 레코딩을위한 준비 - 문화 2 일. </li></ol>

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저자는 더 큰 경쟁 관심이 없는지 선언합니다.

사용 동물 이 프로토콜은 스위스 웹스터 마우스에 최적화되어 있습니다. 그러나,이 방법은 쥐와 같은 다른 작은 포유 동물과 생쥐의 다른 변종에 쉽게 적응할 수있다. 우리는 성공적으로 C57 마우스 및 μ-아편 수용체 녹아웃으로 예비 고립감을 수행했습니다. 그러나 생쥐의 다른 변종 GI 기관의 형태 학적 변화로 인해 문제가 될 수있는 것도 가능하다. 또한, 최종 분리의 뉴런의 ...

장용 신경계 (ENS)는 신경 및 위장 (GI) 요로의 전체 길이를 실행하는 아교 세포의 광대 한 네트워크이다. ENS는 기능적으로 연동, 액체 흡수 / 분비, 자극의 감각 등 (검토를 위해 1 참조) 등의 소화의 모든 측면을 제어합니다. 그것은 척수에있는 이상 만 500 개 이상의 뉴런을 포함하고 뇌에서 발견 된 모든 신경 전달 물질의 클래스가 포함되어 있습니다. 또한, ENS는 중추 신경계 2에서 입력없이 반사적으로 작동 할 수 있다는 점에서 독특합니다. ENS의 이해는 정상적인 생리적 역할을 이해하지만, (의 히 르츠 프룽 질환), 인수 (샤 가스), 질병 상태 (당뇨병 위 마비)에 보조 약 선천성 할 수 있습니다 신경 병증의 다양한의 참여를 이해하기 위해뿐만 아니라 중요하다 유도 (아편 대장 증후군), 부상 (수술 후 장폐색) 1 때문이다. 또한, 장내 뉴런은 다시 할 수 있습니다바이러스 감염 (수두 대상 포진) 3 servoir. 때문에 뇌와 창자에있는 세로토닌의 높은 수준의 유사성, 중추 신경 계통의 결함을 치료 목적으로 약물은 종종 ENS 2 원치 않는 부작용이 있습니다. 그것은 알츠하이머 질환과 파킨슨 병 등 많은 신경 병증은 ENS 이러한 질병 4의 병인을 연구하는 접근 모델을 만들고, 중앙 신경에있는 자신의 모습 오래 전에 장내 신경 세포에서 유사한 세포 변화를 보여주는 것 또한 주목할 만하다. 따라서 ENS의 철저한 이해는 질병 상태를 이해하고 약물 부작용을 예방 / 예측 필요성이다. ENS의 뉴런은 전통적으로 8월 5일에서 7일까지 또는 양식 뉴런 wholemount 준비를 사용하여 기니 돼지에서 공부하고 있습니다. 뉴런이 큰 동물에서 연구 될 수있는 용이함에도 불구하고,이 모델 등 많은 한계가있다유전자 변형 종자,이 종의 특정 시약의 부족, 그리고 이러한 주제를 주문과 주택과 관련된 높은 비용의 부족. 쥐 장용 신경계 모델의 개발 시스템, 세포 배양 기술과 함께 사용할 수있는 다른 설치 방법의 광대 한 배열, 그리고 기니 돼지 모델에 대한 유효성 검사를 제공하는 기능 중 다양한 노크의 고유 한 장점을 가지고 . 창자의 연동 작업을 주로 담당하는 외부 myenteric 신경 얼기 (경도와 원형 근육 사이)뿐만 아니라, 점막과 점막 플렉시 (: ENS는 위장관의 길이를 실행하는 세 가지 플렉시으로 구성되어 있습니다 주로 액체 흡수 / 분비 자극 1의 검출을 제어 점막, 각각) 아래에서 발견. 이 방법은 필링으로 세로 근육 / myenteric 신경 얼기 (LMMP) 준비의 격리로 시작GI 기관의 외부 근육 층 호텔 전문가. 이 극적으로 점막 층이 분리에 관여 할 때 발생하는 오염 문제에 아래로 잘라냅니다. 결과적으로,이 과정은 오히려 ENS의 분비 활동보다 운동성 신경 제어의 연구에 이상적입니다. 방법은 여기에 장내 뉴런과 교세포의 혼합 배양 결과를 발표했다. 뉴런의 적어도 두 가지 유형이 존재 이전의 전기 생리 및 면역 세포 관찰 9를 기준으로합니다. 아교 세포의 존재는 그들이 자신의 권리 연구하는 중요한 세포 유형뿐만 아니라이기 때문에 매우 유익하지만 그들은 장내 신경 (10)의 생존에 기여하고 신경 세포 표면에 11 고유 수용체의 발현을 유지한다. 또한, 장내 아교 세포의 결함은 &#39;신경 gliopathies&#39;12 만들어 낸 이상한 위장 운동성 질환 상태로 이어질 수 있습니다. 따라서 ENS 문화는 여기에 제시된 연구조사 익은 여러 가지 세포 유형의 esults. 이 방법론의 장점은 격리, 저렴한 도구 요구 사항 및 경험 실험실 요원에 의해 기술을 마스터하는 짧은 시간의 용이성이다. 방법의 한계는 전반적으로 낮은 세포 높은 조직 볼륨에서 수율 및 점막 및 점막하 플렉시에서 ENS 뉴런의 배제를 이용하실 수 있습니다. 이 절차는 전기 생리학, 면역, 단일 셀 PCR 및 기타 방법론 전문 학자에 매우 유용 할 것입니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="676">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;"></td>
			<td style="width:171px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:79px;">Reagents</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Fisherbrand Coverglass for Growth Cover Glasses (12 mm diameter)</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">12-545-82</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Poly-D-lysine</td>
			<td style="width:171px;">Sigma</td>
			<td style="width:137px;">P6407- 5 mg</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">24-well cell culture plate</td>
			<td style="width:171px;">CELLTREAT</td>
			<td style="width:137px;">229124</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Laminin</td>
			<td style="width:171px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:137px;">354 232</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:291px;">ddH2O</td>
			<td style="width:171px;"> </td>
			<td style="width:137px;"> </td>
			<td style="width:79px;">Can prepare in lab </td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">15 ml Sterile Centrifuge Tube</td>
			<td style="width:171px;">Greiner Bio-one</td>
			<td style="width:137px;">188261</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">50 ml Sterile Centrifuge Tube</td>
			<td style="width:171px;">Greiner Bio-one</td>
			<td style="width:137px;">227261</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">NaCl</td>
			<td style="width:171px;">Fisher BioReagents</td>
			<td style="width:137px;">BP358-212</td>
			<td style="width:79px;">MW 58.44</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">KCl</td>
			<td style="width:171px;">Fisher BioReagents</td>
			<td style="width:137px;">BP366-500</td>
			<td style="width:79px;">MW 74.55</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:291px;">NaH2PO4 .2H2O</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Chemicals</td>
			<td style="width:137px;">S369-3</td>
			<td style="width:79px;">MW137.99</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:291px;">MgSO4</td>
			<td style="width:171px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:137px;">M7506-500G</td>
			<td style="width:79px;">MW 120.4</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:291px;">NaHCO3</td>
			<td style="width:171px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:137px;">S6014-5KG</td>
			<td style="width:79px;">MW 84.01</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">glucose</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Chemicals</td>
			<td style="width:137px;">D16-1</td>
			<td style="width:79px;">MW 180.16</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">CaCl22H2O</td>
			<td style="width:171px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:137px;">C5080-500G</td>
			<td style="width:79px;">MW 147.02</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">F12 media</td>
			<td style="width:171px;">Gibco</td>
			<td style="width:137px;">11330</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Fetal Bovine Serum</td>
			<td style="width:171px;">Quality Biological Inc.</td>
			<td style="width:137px;">110-001-101HI</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Antibiotic/antimycotic 100x liquid</td>
			<td style="width:171px;">Gibco</td>
			<td style="width:137px;">15240-062</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Neurobasal A media</td>
			<td style="width:171px;">Gibco</td>
			<td style="width:137px;">10888</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">200 mM L-glutamine</td>
			<td style="width:171px;">Gibco</td>
			<td style="width:137px;">25030164</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Glial Derived Neurotrophic Factor (GDNF)</td>
			<td style="width:171px;">Neuromics</td>
			<td style="width:137px;">PR27022</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Sharp-Pointed Dissecting Scissors</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">8940</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Dissecting Tissue Forceps</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">13-812-41</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Cotton-Tipped Applicators</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">23-400-101</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">250 ml Graduated Glass Beaker</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">FB-100-250</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">2 L Glass Erlenmyer flask</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">FB-500-2000</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Plastic rod (child&#39;s paint brush)</td>
			<td style="width:171px;">Crayola</td>
			<td style="width:137px;">05 3516</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="26">
			<td height="26" style="height:26px;width:291px;">Carbogen</td>
			<td style="width:171px;">Airgas</td>
			<td style="width:137px;">UN 3156</td>
			<td style="width:79px;">5% CO2</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">10 ml Leur-lock Syringe</td>
			<td style="width:171px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:137px;">309604</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">21 G x 1 1/2 in. Hypodermic Needle</td>
			<td style="width:171px;">Becton Dickinson</td>
			<td style="width:137px;">305167</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:291px;">Collagenase type 2</td>
			<td style="width:171px;">Worthington</td>
			<td style="width:137px;">LS004174</td>
			<td style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="84" rowspan="2" style="height:84px;width:291px;">Bovine Serum Albumin</td>
			<td rowspan="2" style="width:171px;">American Bioanalytical</td>
			<td rowspan="2" style="width:137px;">AB00440</td>
			<td rowspan="2" style="width:79px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="21">
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">2 ml Microcentrifuge Eppendorf tubes</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">13-864-252</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Nitrex Mesh 500 &#181;M</td>
			<td style="width:171px;">Elko Filtering Co</td>
			<td style="width:137px;">100560</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Pipette Set</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">21-377-328</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:291px;">Sharpeining Stone</td>
			<td style="width:171px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:137px;">NC9681212</td>
			<td style="width:79px;">May use any brand</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="722">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:283px;"></td>
			<td style="width:108px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:195px;">Equipment</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:283px;">LabGard ES 425 Biological Safety Cabinet (cell culture hood)</td>
			<td style="width:108px;">Nuaire</td>
			<td style="width:137px;">NU-425-400</td>
			<td style="width:195px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:283px;">10 L Shaking Waterbath</td>
			<td style="width:108px;">Edvotek</td>
			<td style="width:137px;">5027</td>
			<td style="width:195px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:283px;">Microcentrifuge 5417R</td>
			<td style="width:108px;">Eppendorf</td>
			<td style="width:137px;">5417R</td>
			<td style="width:195px;">May use a single larger centrifuge with size adapters</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:283px;">Allegra 6 Series Centrifuge</td>
			<td style="width:108px;">Beckman Coulter</td>
			<td style="width:137px;">366816</td>
			<td style="width:195px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:283px;">HuluMixer Sample Mixer</td>
			<td style="width:108px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:137px;">15920D</td>
			<td style="width:195px;"> </td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:283px;">AutoFlow Water Jacket CO2 Incubator</td>
			<td style="width:108px;">Nuiare</td>
			<td style="width:137px;">NU-4750</td>
			<td style="width:195px;">May use any brand</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:283px;">Analytical Balance Scale</td>
			<td style="width:108px;">Mettler Toledo</td>
			<td style="width:137px;">XS104</td>
			<td style="width:195px;">May use any brand</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an in-vitro preparation of isolated enteric neurons and glia from the myenteric plexus of the adult mouse

장용 신경계의 기능적 위장 운동성을 제어 위장관의 길이를 실행하는 뉴런과 교세포의 광대 한 네트워크입니다. myenteric 신경 얼기의 신경 세포와 교세포의 혼합 인구의 분리 및 문화에 대한 절차를 설명합니다. 차 문화는 뉴런과 교세포 사이에 개발 연결을 7 일 이상 유지 될 수 있습니다. 첨부 myenteric 신경 얼기와 세로 근육의 스트립 마우스 회장 또는 결장의 기본 원형 근육에서 제거하고 소화 효소를 받게됩니다. 무균 조건에서 분리 된 신경 세포 및 교세포 인구는 펠릿 다음 원심 분리 내에 보존되어 coverslips를에 도금. 24-48 시간 내, 신경 돌기의 가지가 발생하고 신경이 팬의 연결을 마커로 식별 할 수 있습니다. 문화 이틀, 고립 된 뉴런 화재 활동 전위는 패치 클램프 연구에 의해 관찰했다. 또한, 장내 아교 세포는 지문을 확인해 될 수 있습니다GFAP 염색에 의해 IED. 가까운 동격의 뉴런과 교세포의 네트워크는 5 일 안에 형성 - 뛰기. 장내 뉴런은 개별적이어야하며 직접적 면역, 전기 생리학, 칼슘 이미징, 및 단일 세포 PCR 등의 방법을 사용하여 연구 할 수 있습니다. 또한이 절차는 유전자 변형 동물에서 수행 할 수 있습니다. 이 방법은 수행하는 간단하고 저렴합니다. 우리는 더 나은 정상과 질병 상태에있는 ENS의 기능을 발견 할 수 있도록 전반적으로,이 프로토콜은 쉽게 조작 방식 장용 신경계의 구성 요소를 노출합니다.

<html> LMMP - 유래 세포, 뉴런과 다른 세포 유형의 직후 격리 쉽게 분명하지 않습니다. 생활은 불명료 한 표현형의 원형 세포뿐만 아니라 불완전하게 소화 조직 조각과 결합 조직에서 조직 암성로 볼 수 있습니다. 이 표류가없는 관심과 크게 이틀 첫 번째 미디어의 변화와 함께 제거됩니다. 건강한, 생존 세포도 제거되므로이 전에 슬라이드를 청소하지 마십시오. 문화 한 하루 후...

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An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse

우리는 장용 신경계의 신경 세포 및 교세포 구성 요소의 직접적인 연구를위한 세포 배양 프로토콜을 보여줍니다. coverslips는에 신경 / glia의 혼합 문화, 면역 전기 생리학, 개별 신경 세포와 아교 세포 기능을 검사 할 수있는 기능을 제공하는 성인 마우스 myenteric 신경 얼기에서 준비가되어 있습니다<em&gt; 등</em&gt;.

<em&gt; 체외</em성인 마우스 Myenteric 신경총에서 분리 된 장내 뉴런과 교세포의&gt; 준비

The enteric nervous system is a vast network of neurons and glia running the length of the gastrointestinal tract that functionally controls ...

an-vitro-preparation-isolated-enteric-neurons-glia-from-myenteric

Research

JoVE Journal

Neuroscience

An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse

26.7K 조회수.  Virginia Commonwealth University. 우리는 장용 신경계의 신경 세포 및 교세포 구성 요소의 직접적인 연구를위한 세포 배양 프로토콜을 보여줍니다. coverslips는에 신경 / glia의 혼합 문화, 면역 전기 생리학, 개별 신경 세포와 아교 세포 기능을 검사 할 수있는 기능을 제공하는 성인 마우스 myenteric 신경 얼기에서 준비가되어 있습니다 등.

비디오: An In-vitro Preparation of Isolated Enteric Neurons and Glia from the Myenteric Plexus of the Adult Mouse

Studying the Integration of Adult-born Neurons

Neurogenesis occurs in adult mammalian brains in the sub-ventricular zone (SVZ) of the lateral ventricle and in the sub-granular zone (SGZ) of the hippocampal dentate gyrus throughout life. Previous reports have shown that adult hippocampal neurogenesis is associated with diverse brain disorders, including epilepsy, schizophrenia, depression and anxiety (1). Deciphering the process of normal and aberrant adult-born neuron integration may shed light on the etiology of these diseases and inform the development of new therapies.
SGZ adult neurogenesis mirrors embryonic and post-natal neuronal development, including stages of fate specification, migration, synaptic integration, and maturation. However, full integration occurs over a prolonged, 6-week period. Initial synaptic input to adult-born SGZ dentate granule cells (DGCs) is GABAergic, followed by glutamatergic input at 14 days (2). The specific factors which regulate circuit formation of adult-born neurons in the dentate gyrus are currently unknown.
Our laboratory uses a replication-deficient retroviral vector based on the Moloney murine leukemia virus to deliver fluorescent proteins and hypothesized regulatory genes to these proliferating cells. This viral technique provides high specificity and resolution for analysis of cell birth date, lineage, morphology, and synaptogenesis.
A typical experiment often employs two or three viruses containing unique label, transgene, and promoter elements for single-cell analysis of a desired developmental process in vivo. The following protocol describes a method for analyzing functional newborn neuron integration using a single green (GFP) or red (dTomato) fluorescent protein retrovirus and patch-clamp electrophysiology.

A way to study the integration of newborn dentate granule cells in adult animals is described. This technique uses an engineered retrovirus to label newborn neurons, followed by electrophysiological recordings to determine in vivo functional integration.

성인에서 태어난 뉴런의 통합을 공부

Neurogenesis occurs in adult mammalian brains in the sub-ventricular zone (SVZ) of the lateral ventricle and in the sub-granular zone (SGZ) of the ...

연구

신경과학

A Visual Description of the Dissection of the Cerebral Surface Vasculature and Associated Meninges and the Choroid Plexus from Rat Brain

This video presentation was created to show a method of harvesting the two most important highly vascular structures, not residing within the brain proper, that support forebrain function. They are the cerebral surface (superficial) vasculature along with associated meninges (MAV) and the choroid plexus which are necessary for cerebral blood flow and cerebrospinal fluid (CSF) homeostasis. The tissue harvested is suitable for biochemical and physiological analysis, and the MAV has been shown to be sensitive to damage produced by amphetamine and hyperthermia 1,2. As well, the major and minor cerebral vasculatures harvested in MAV are of potentially high interest when investigating concussive types of head trauma. The MAV dissected in this presentation consists of the pial and some of the arachnoid membrane (less dura) of the meninges and the major and minor cerebral surface vasculature. The choroid plexus dissected is the structure that resides in the lateral ventricles as described by Oldfield and McKinley3,4,5,6. The methods used for harvesting these two tissues also facilitate the harvesting of regional cortical tissue devoid of meninges and larger cerebral surface vasculature, and is compatible with harvesting other brain tissues such as striatum, hypothalamus, hippocampus, etc. The dissection of the two tissues takes from 5 to 10 min total. The gene expression levels for the dissected MAV and choroid plexus, as shown and described in this presentation can be found at GSE23093 (MAV) and GSE29733 (choroid plexus) at the NCBI GEO repository. This data has been, and is being, used to help further understand the functioning of the MAV and choroid plexus and how neurotoxic events such as severe hyperthermia and AMPH adversely affect their function.

This video presentation shows a method of harvesting the two most important highly vascular structures that support forebrain function. They are the cerebral surface (superficial) vasculature along with associated meninges (MAV) and the choroid plexus which are necessary for cerebral blood flow and cerebrospinal fluid (CSF) homeostasis.

쥐의 뇌에서 뇌 표면 Vasculature 및 관련 Meninges의 해부 및 맥락막 얼기의 시각적 설명

This video presentation was created to show a method of harvesting the two most important highly vascular structures, not residing within the brain ...

An Isolated Semi-intact Preparation of the Mouse Vestibular Sensory Epithelium for Electrophysiology and High-resolution Two-photon Microscopy

Understanding vestibular hair cells function under normal conditions, or how trauma, disease, and aging disrupt this function is a vital step in the development of preventative approaches and/or novel therapeutic strategies. However, the majority of studies looking at abnormal vestibular function have not been at the cellular level but focused primarily on behavioral assays of vestibular dysfunction such as gait analyses and vestibulo-ocular reflex performance. While this work has yielded valuable data about what happens when things go wrong, little information is gleaned regarding the underlying causes of dysfunction. Of the studies that focus on the cellular and subcellular processes that underlie vestibular function, most have relied on acutely isolated hair cells, devoid of their synaptic connections and supporting cell environment. Therefore, a major technical challenge has been access to the exquisitely sensitive vestibular hair cells in a preparation that is least disrupted, physiologically. Here we demonstrate a semi-intact preparation of the mouse vestibular sensory epithelium that retains the local micro-environment including hair cell/primary afferent complexes.

Analysis of vestibular hair cell function is complicated by their location deep within the hardest part of the skull, the petrous temporal bone. Most functional hair cell studies have used acutely isolated hair cells. Here we describe a semi-intact preparation of mouse vestibular epithelium for electrophysiological and two-photon microscopy studies.

전기 생리학 및 고해상도 두 광자 현미경을위한 마우스 전정 감각 상피의 격리 된 세미 그대로 준비

Understanding vestibular hair cells function  under normal conditions, or how trauma, disease, and aging disrupt this  function is a vital step in the ...

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional afferent fibers monitor other characteristics of the muscle environment, including metabolite buildup, temperature, and nociceptive stimuli. Overall, abnormal activation of sensory neurons can lead to movement disorders or chronic pain syndromes. We describe the isolation of the extensor digitorum longus (EDL) muscle and nerve for in vitro study of stretch-evoked afferent responses in the adult mouse. Sensory activity is recorded from the nerve with a suction electrode and individual afferents can be analyzed using spike sorting software. In vitro preparations allow for well controlled studies on sensory afferents without the potential confounds of anesthesia or altered muscle perfusion. Here we describe a protocol to identify and test the response of muscle spindle afferents to stretch. Importantly, this preparation also supports the study of other subtypes of muscle afferents, response properties following drug application and the incorporation of powerful genetic approaches and disease models in mice.

An In Vitro Adult Mouse Muscle-nerve Preparation for Studying the Firing Properties of Muscle Afferents

Muscle sensory neurons are involved in proprioceptor signaling and also report on metabolic state and injury related events. We describe an adult mouse in vitro muscle-nerve preparation for studies on stretch-activated muscle afferents.

<em&gt; 체외</em근육의 구 심성의 소성 특성을 연구&gt; 성인 마우스 근육 - 신경 준비

Muscle sensory neurons innervating muscle spindles and Golgi tendon organs encode length and force changes essential to proprioception. Additional ...

Environmental Modulations of the Number of Midbrain Dopamine Neurons in Adult Mice

Long-lasting changes in the brain or &#8216;brain plasticity&#8217; underlie adaptive behavior and brain repair following disease or injury. Furthermore, interactions with our environment can induce brain plasticity. Increasingly, research is trying to identify which environments stimulate brain plasticity beneficial for treating brain and behavioral disorders. Two environmental manipulations are described which increase or decrease the number of tyrosine hydroxylase immunopositive (TH+, the rate-limiting enzyme in dopamine (DA) synthesis) neurons in the adult mouse midbrain. The first comprises pairing male and female mice together continuously for 1 week, which increases midbrain TH+ neurons by approximately 12% in males, but decreases midbrain TH+ neurons by approximately 12% in females. The second comprises housing mice continuously for 2 weeks in &#8216;enriched environments&#8217; (EE) containing running wheels, toys, ropes, nesting material, etc., which increases midbrain TH+ neurons by approximately 14% in males. Additionally, a protocol is described for concurrently infusing drugs directly into the midbrain during these environmental manipulations to help identify mechanisms underlying environmentally-induced brain plasticity. For example, EE-induction of more midbrain TH+ neurons is abolished by concurrent blockade of synaptic input onto midbrain neurons. Together, these data indicate that information about the environment is relayed via synaptic input to midbrain neurons to switch on or off expression of &#8216;DA&#8217; genes. Thus, appropriate environmental stimulation, or drug targeting of the underlying mechanisms, might be helpful for treating brain and behavioral disorders associated with imbalances in midbrain DA (e.g. Parkinson&#8217;s disease, attention deficit and hyperactivity disorder, schizophrenia, and drug addiction).

This protocol describes two different environmental manipulations and a concurrent brain infusion protocol to study environmentally-induced brain changes underlying adaptive behavior and brain repair in adult mice.

성인 마우스의 중간 뇌 도파민 뉴런의 수의 환경 변조

Long-lasting changes in the brain or &#8216;brain plasticity&#8217; underlie adaptive behavior and brain repair following disease or injury. Furthermore, ...

The Indirect Neuron-astrocyte Coculture Assay: An In Vitro Set-up for the Detailed Investigation of Neuron-glia Interactions

Proper neuronal development and function is the prerequisite of the developing and the adult brain. However, the mechanisms underlying the highly controlled formation and maintenance of complex neuronal networks are not completely understood thus far. The open questions concerning neurons in health and disease are diverse and reaching from understanding the basic development to investigating human related pathologies, e.g.,&#160;Alzheimer&#39;s disease and&#160;Schizophrenia. The most detailed analysis of neurons can be performed in vitro. However, neurons are demanding cells and need the additional support of astrocytes for their long-term survival. This cellular heterogeneity is in conflict with the aim to dissect the analysis of neurons and astrocytes. We present here a cell-culture assay that allows for the long-term cocultivation of pure primary neurons and astrocytes, which share the same chemically defined medium, while being physically separated. In this setup, the cultures survive for up to four weeks and the assay is suitable for a diversity of investigations concerning neuron-glia interaction.

The Indirect Neuron-astrocyte Coculture Assay: An In Vitro Set-up for the Detailed Investigation of Neuron-glia Interactions

This protocol describes the indirect neuron-astrocyte coculture for compartmentalized analysis of neuron-glia interactions.

간접 신경-성상 세포 공동 배양 분석 일 :<em&gt; 체외</em&gt; 신경 세포 - glia 상호 작용의 상세한 조사를위한 셋업

Proper neuronal development and function is the prerequisite of the developing and the adult brain. However, the mechanisms underlying the highly ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

간단한 한 단계 성인의 전체 마운트 준비에 대한 해부 프로토콜<em&gt; 초파리</em&gt; 두뇌

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Primary Culture of Neurons Isolated from Embryonic Mouse Cerebellum

The use of primary cell cultures has become one of the major tools to study the nervous system in vitro. The ultimate goal of using this simplified model system is to provide a controlled microenvironment and maintain the high survival rate and the natural features of dissociated neuronal and nonneuronal cells as much as possible under in vitro conditions. In this article, we demonstrate a method of isolating primary neurons from the developing mouse cerebellum, placing them in an in vitro environment, establishing their growth, and monitoring their viability and differentiation for several weeks. This method is applicable to embryonic neurons dissociated from cerebellum between embryonic days 12&ndash;18.

Conducting in vitro experiments to reflect in vivo conditions as adequately as possible is not an easy task. The use of primary cell cultures is an important step toward understanding cell biology in a whole organism. The provided protocol outlines how to successfully grow and culture embryonic mouse cerebellar neurons.

The use of primary cell cultures has become one of the major tools to study the nervous system in vitro. The ultimate goal of using this simplified model ...

Cochlear Surface Preparation in the Adult Mouse

Auditory processing in the cochlea depends on the integrity of the mechanosensory hair cells. Over a lifetime, hearing loss can be acquired from numerous etiologies such as exposure to excessive noise, the use of ototoxic medications, bacterial or viral ear infections, head injuries, and the aging process. Loss of sensory hair cells is a common pathological feature of the varieties of acquired hearing loss. Additionally, the inner hair cell synapse can be damaged by mild insults. Therefore, surface preparations of cochlear epithelia, in combination with immunolabeling techniques and confocal imagery, are a very useful tool for the investigation of cochlear pathologies, including losses of ribbon synapses and sensory hair cells, changes in protein levels in hair cells and supporting cells, hair cell regeneration, and determination of report gene expression (i.e., GFP) for verification of successful transduction and identification of transduced cell types. The cochlea, a bony spiral-shaped structure in the inner ear, holds the auditory sensory end organ, the organ of Corti (OC). Sensory hair cells and surrounding supporting cells in the OC are contained in the cochlear duct and rest on the basilar membrane, organized in a tonotopic fashion with high-frequency detection occurring in the base and low-frequency in the apex. With the availability of molecular and genetic information and the ability to manipulate genes by knockout and knock-in techniques, mice have been widely used in biological research, including in hearing science. However, the adult mouse cochlea is miniscule, and the cochlear epithelium is encapsulated in a bony labyrinth, making microdissection difficult. Although dissection techniques have been developed and used in many laboratories, this modified microdissection method using cell and tissue adhesive is easier and more convenient. It can be used in all types of adult mouse cochleae following decalcification.

This article presents a modified cochlear surface preparation method that requires decalcification and use of a cell and tissue adhesive to adhere the pieces of cochlear epithelia to 10 mm round cover slips for immunohistochemistry in adult mouse cochleae.

성인 마우스의 달팽이관 표면 준비

Auditory processing in the cochlea depends on the integrity of the mechanosensory hair cells. Over a lifetime, hearing loss can be acquired from numerous ...

Isolation and Culture of Primary Neurons and Glia from Adult Rat Urinary Bladder

The lower urinary tract has two main functions, namely, periodic urine storage and micturition; these functions are mediated through central and peripheral neuroregulation. Although extensive research on the lower urinary tract nervous system has been conducted, most studies have focused on primary culture. This protocol introduces a method for the isolation and culture of bladder neurons and glia from Sprague&#8211;Dawley rats. In this method, the neurons and glia were incubated in a 37 &#176;C, 5% CO2 incubator for 5&#8211;7 days. As a result, they grew into mature shapes suitable for related subsequent immunofluorescence experiments. Cells were morphologically observed using an optical microscope. Neurons, synaptic vesicles, and glia were identified by &#946;-III-tubulin and MAP-2, Synapsin-1, and GFAP staining, respectively. Meanwhile, immunocytochemistry was performed on several neurotransmitter-related proteins, such as choline acetyltransferase, DYNLL2, and SLC17A9.

This protocol attempts to establish a repeatable protocol for primary neurons and glia isolation from rat bladder for further cellular experiments.