Name: killer artificial antigen presenting cells (kaapc) for efficient in vitro depletion of human antigen-specific t cells
Uploaded: 2014-08-11T19:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Killer Artificial Antigen Presenting Cells KaAPC for Efficient In Vitro Depletion of Human Antigen-specific T Cells at JoVE.com

이 작품은 독일 연구 재단 (DFG) SCHU-2681 / 1-1 (CS) 및 KFO 146 (MF)에 의해 지원 된 국방 보조금 PC의 DOD 부서 040,972 (MO)와 국립 보건 연구소는 RO1 CA108835은 부여 , RO1 Ai44129 (JPS)

HLA-A2-IG 기반 KaAPC의 1 세대 <ol><li> 멸균 붕산 버퍼를 준비합니다. 물에 붕산의 0.1 M 솔루션을 확인하고 7.0으로 pH를 조정합니다. 무균 필터 (0.22 μm의) 버퍼와 4 ° C에서 보관. </li><li> 멸균 비드 세척 버퍼를 준비합니다. 마그네슘과 칼슘없이 인산염 완충 생리 식염수 (PBS)를 사용합니다. 3 % 최종 농도에 대한 인간 AB 혈청을 추가합니다. 2 mM의 최종 농도에 대한 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA)를 추가합니다. 0.01 % 최종 농도에 아 지드 화 나트륨 (NaN의 3)를 추가합니다. 무균 필터 (0.22 μm의) 버퍼와 4 ° C에서 보관. </li><li> 멸균에 재고 에폭시 구슬 (약 100 × 10 6 구슬)의 250 μl를 전송, 최고 유리 병을 조입니다. </li><li> 붕산 버퍼의 250 μl를 추가합니다. </li><li> 자석에 유리 병을 넣어 구슬이 2 분 동안 부착 할 수; 흡인은 버퍼 자석에서 유리 병을 제거합니다. </li><li> 1 ㎖의 붕산 버퍼로 한번 구슬을 씻으십시오. </li><li> 0.018 μg의 550 μL로 재현 탁 비즈/ ㎖ HLA-A2-IG 및 3.64 μg / ml의 항 - 인간 CD95 단클론 항체 (클론 CH11) 부드럽게 흔들어 섞는다. (자세한 내용은 설명 절을 참조하십시오.) </li><li> 24 시간 동안 4 ° C에서, 말을 통해 회 전자 끝에 유리 병을 품어. </li><li> 2 분 동안 300 XG에 구슬을 스핀 다운. </li><li> 2 분 동안 자석에 유리 병을 놓고 &quot;KaAPC 로딩 솔루션을&quot;대기음; 자석에서 유리 병을 제거 비드 세척 버퍼의 1 mL를 넣고 흔들어 조심스럽게 재현 탁. </li><li> 단계를 반복 1.10 배. </li><li> 1 ml의 비드 세척 버퍼에서 24 시간 동안 4 ° C에서 회 전자에 유리 병을 품어. 이 시점에서, 결합 부위의 모든 잔여 단백질 비드 세척 버퍼에 포함 인간 AB 혈청에 의해 차단 될 것이다. </li><li> 2 분 동안 300 XG에 구슬을 스핀 다운. </li><li> 장소 유리는 2 분, 흡인 비드 세척 버퍼위한 자석에 유리 병; 자석에서 유리 병을 제거하고 PBS 1 ㎖의 솔루션을 교체합니다. </li></ol> 2 품질 관리, 펩타이드로드, W애싱, 저장 및 KaAPC의 안정성 <ol><li> FACS 튜브에 1.5 × 10 5 KaAPC를 전송하고 FACS 버퍼를 씻어 1 ㎖로 씻는다. </li><li> 버퍼 및 검출 및 항 - 마우스 IgM 항체 FITC (클론 R6-60.2의 1 μL (HLA-A2-IG의 Fc 부분의 검출) 항 - 마우스의 IgG1 PE의 1 μl를 추가 워시 100 ㎕의 FACS에서 재현 탁 비즈 항 사람 CD95 단클론 항체). </li><li> 버퍼 및 유동 세포 계측법에 의해 염색을 읽을 씻어 250 ㎕의 FACS 1 FACS 버퍼를 씻어 ml의 재현 탁 씻어, 4 ° C에서 15 분 동안 품어. </li></ol><img alt="그림 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51859/51859fig1highres.jpg" width="500" /> 프로토콜 섹션에서 언급 한 바와 같이 만든 KaAPC 배치의 그림 1 QC 얼룩은. 염색은 안티 - 인간 CD95 반면, 2 HLA-A2-IG는 안티 - 마우스의 IgG1 PE 단클론 항체를 사용하여 검출 된 프로토콜 절에 설명 된대로 수행 하였다 (안티는 Fas)는 (자체 프로토콜을 참조 항 - 마우스 IgM 항체-FITC 항체로 검출되었다ction의 2.2) (파란 선). 채워진 검은 색 그래프는 각각 항 - 마우스-IgG1의 PE 단클론 항체 또는 항 - 마우스 IgM 항체 FITC 항체로 염색 빈 구슬을 나타냅니다. 오른쪽 상단 모서리에있는 숫자는 평균 형광 강도 (MFI)를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51859/51859fig1highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="4"><li> 새로운 멸균 유리 병에 펩타이드로드 전송 20 × 10 6 KaAPC를 들어, 2 분 동안 자석에 배치, 5㎍을 펩타이드와 500 ㎕의 신선한 PBS로 흡인 PBS 및 재현 탁 비즈 (명심 만 HLA-A2 제한 펩타이드는 것 이량에 바인딩!). </li><li> 스토어는 HLA-A2-IG 이량 체 상에 충분한 펩타이드 로딩을​​ 할 수 있도록 최소한 3 일 동안 사용할 때까지 4 ° C에서 KaAPC로드. </li><li> 사용하기 직전에, 1.14에 표시된대로 KaAPC로드 펩타이드를 씻어; 이 단계에서 적어도 6 배를 반복합니다. 참고 :이 무료 펩타이드 t이 있는지 확인하는 중요한 단계이다O 위양성 죽이는 결과를 피하기 위해 완전히 제거; 잔류 자유 펩티드 항원 특이적인 T 세포 배양 9에서 아폽토시스를 유도하는 것으로 나타났다. 가용성 펩타이드의 효과를 배제하기 위해,로드 펩타이드의 상층 액을 제어 샘플을 실행하고 KaAPC을 (3.8 참조) 세척 하였다. </li><li> 혈구를 사용하여 구슬을 세어 펩타이드 농도의 날짜, 이름과 레이블을 붙입니다. 참고 :로드 KaAPC 적어도 한 달 동안 4 ° C에서 작동 남아있다. 일개월 후, 동일한 펩타이드와 재로드는 KaAPC는 일년까지 활용 될 수 있습니다. </li></ol> 3 KaAPC 체외 죽이는 분석 <ol><li> 공동 문화 매체를 준비합니다. 3 % 기증자자가 플라즈마 (실험실 6 제) 3 % ​​T 세포 성장 인자 보충 완료 RPMI 매체를 준비합니다. 기증자자가 혈장을 사용할 수없는 경우, 열 불 활성화 된 인간 AB 혈청을 사용합니다. </li><li> AnnexinV 바인딩 버퍼 준비를 준비합니다. 8.12 g 염화나트륨 (NaCl) 및 0.12 g의 석회질을 녹여990 ML의 DDH 2에 윰 클로라이드 (염화칼슘) 10 ㎖의 1M HEPES 버퍼를 O.Add. </li><li> 인간 항원 특이적인 T 세포를 생성한다. (자세한 프로토콜의 인공 항원 제시 세포 (AAPC)를 이용 이전 게시 7 참조). 그 펩타이드 특이 사량 염색에 의해 결정 적어도&gt; 75 % 있는지 확인하십시오. </li><li> 가습 인큐베이터에서 48 시간 동안 KaAPC 1 비율로 37 ℃에서 각 샘플에 대해 2 × 105 항원 특이적인 T 세포 / 웰 (96 웰 둥근 바닥 플레이트의) 하나의 공동 - 배양액 200 μL의 부화 C, 5 % CO 2. </li><li> 수확 샘플 및 FACS 튜브로 전송; , 1 ㎖의 AnnexinV 결합 버퍼로 씻어 5 분 동안 300 XG에 스핀 다운, AnnexinV 결합 완충액 100 ㎕에 뜨는에 resuspend 폐기 </li><li> 1 μL AnnexinV FITC와 실온에서 10 ~ 15 분 동안 5 μL 7-AAD와 얼룩 샘플, 1 ml의 AnnexinV 결합 버퍼로 씻어; 5 분 동안 300 XG에 스핀 다운 뜨는 폐기250 ㎕의 AnnexinV 바인딩 버퍼의 개발에 resuspend </li><li> 흐름에 즉시 샘플을 사이토 읽어보십시오. </li><li> KaAPC에 의해 항원 특이적인 살해를 결정하기 위해 다음과 같은 샘플을 준비 : T 세포 만; + T 세포 용해 안티 CD95; T 세포는 KaAPC 언로드 +; + T 세포에 비 - 동족 펩티드 KaAPC로드; T 세포 + 동족 펩티드 KaAPC로드; 동족 펩티드의 T 세포 상등액 + KaAPC를 적재했다. </li></ol><img alt="그림이" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51859/51859fig2highres.jpg" width="500" /> ., CMVpp65 특정 T 세포 (~ 80 %)와 1 비율 수확 이후 AnnexinV 염색 : 그림 2 KaAPC 죽이는 분석 펩타이드는 1에서 48 시간 동안 배양 KaAPC 또는 제어 구슬 (HLA-A2-IG는 구슬) 하였다로드 및 요오드화 프로피 듐 (PI)는. 유동 세포 계측법 (참조 프로토콜 섹션 3.3-3.7)에 의해 &quot;동족&quot;세포 사멸을 결정이어야합니다 &quot;비 동족&quot;CMVpp65와 함께로드 구슬을 의미합니다마트-1 펩티드로드 광고. 숫자는 각 플롯의 왼쪽 사분면 가능한 T 세포의 비율을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51859/51859fig2highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol start="9"><li> , 십자형 실험을 수행하는 두 개의 다른 특이성의 항원 특이적인 T 세포를 생성한다. </li><li> 또한 이종의 T 세포 집단에서 T 세포의 항원 특이적인 제거의 동시 분석 KaAPC의 항원 특이 플리 능력을 평가한다. (자세한 프로토콜의 쉬츠 외를 참조하십시오. 10). </li></ol>

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CS와 MF는 공개 아무것도 없어. NexImmune와 존스 홉킨스 대학, 박사 부부 사이의 라이선스 계약에 따라. Schneck 및 Oelke는이 문서에서 설명 AAPC 제품의 판매에 대학에서받은 로열티 주에받을 수 있습니다. 또한 대학의 정책에 따라 특정 제한 사항이 적용됩니다 NexImmune 주식을 소유. 박사 Schneck 회사 &quot;의 이사회 및 과학 자문위원회의 일원이다.이 배열의 조항은이자 정책의 충돌에 따라 존스 홉킨스 대학에 의해 관리되고있다.

프로토콜에서 가장 중요한 단계는 신호 1 (펩타이드 MHC)와 신호 2 (안티는 Fas 항체)의 적절한 비율을 보장하는 것입니다. 우리는 신호 1 및 2에 대한 완벽한 비율을 정의하는 데 집중 적정 실험을 수행 한; 인한 HLA-A2 IG 이합체 또는 안티는 Fas 항체 농도 차이에 최소한의 변형 KaAPC의 기능을 방해 할 수있는 것이 분명하게되었다. 따라서, 두 신호의 농도는 항상 확인해야합니다 두 단백질의 품질은 자주가 상용 소스에서 주문 된 경우에도 테스트해야합니다. 다른 검출법은 다른 농도이 있으므로 또한, 농도는 항상 동일한 분석에 의해 결정되어야한다. HLA-A2-IG의 기능은 불완전한 폴딩 및 / 또는 비효율적 인 펩타이드 로딩에 손상 될 수 있습니다. 또한 다이머 분자는 단백질의 기능적 활성에 영향을 미칠 수있는 다른 각도에 모을 수있다. 따라서 ACTU이량 체의 알 금액이 다를 수 있습니다 기능 및 특정 KaAPC의 생성에 필요한. 또한, 우리는 KaAPC에 신호 방지는 Fas 항체를 유도하는 죽음에 대한 이상적인 범위는 매우 엄격한 것으로 나타났습니다. 우리의 손의 양에서 큰 3.64 ㎍ / ㎖의 아래 금액은 복용량에 따라 감소 살인 활동 결과 동안 ML의 Fas 긍정적 인 T 세포의 비 특정 살인으로 이어질 / 3.64 μg. 이러한 조건이 아주 꽉 보이지만, 이러한 세부 사항에주의는 기능과 특정 KaAPC이 발생 할 수 있습니다. 현재 KaAPC 표현형은 순진하거나 휴식 항원 특이 T 세포를 대상으로 활성화 된 항원 특이 T 세포, 초기 실험의 고갈에 대한 기능이지만이 인구와 Fas 발현을 감소 항원 특이적인 면역 세포 사멸의 유의 한 유도를 입증하지 않습니다. 따라서, 하나 만들어 놓을 수 있도록 T 세포 휴식의 FA에 상향 조절을 유도 KaAPC에 동시 자극 신호를 가산 상상할 수도KaAPC의 대상으로. 이 가능하지만 세 가지 신호를주의 깊게 기능 KaAPC 표현형을 보장하기 위해 적정해야합니다. 생체 적합성 또는 생분해 성 매트릭스에 비드 플랫폼을 조정하면 생체 적용에 KaAPC을 향상시킬 것입니다. 최근 쉔 등은. KaAPC가 -TRP2 11 B 안티는 Fas (복제 Jo2) 및 안티 그의 / H2-K에 결합 5 μm의 라텍스 구슬을 이용하여 생체 사용의 성공을보고했다. 우리는 인공 항원 제시 세포 (AAPC)의 일반적인 개념이 성공적으로 나노 크기의 입자 (12)에 크기 μm의에서 전송 될 수 있으며, 해당 기능이 입자 형상 (13)에 의해 영향을 받는다는 보여줄 수 있었다. 따라서, 크기 및 / 또는 미래 KaAPC의 모양을 변화시켜 하나의 장기 특정자가 면역 질환의 성공적인 치료를위한 열쇠가 될 수있는 생체 내 기능과 생체 분포에 영향을 미칠 수있을 디자인입니다. <p c아가씨 = &quot;jove_content은&quot;&gt; KaAPC 기증자 조건 및 전처리 독립적이며, 시간과 비용 효율적인 접근 방식 &quot;기성품&quot;사용하기 쉬운으로 셀 기반의 고갈 전략의 주요 단점을 극복. KaAPC은 자기 또는 주변 분비 살인 신호의 목표와 CTL의 세포 용해 이펙터 기능에 민감하지 않습니다. KaAPC는 관련 질환 항원의 확인을 요구하고 특정 HLA 유형에 의존 할 것이다. 제 1 형 당뇨병에 대한 현재 수많은 적합한 HLA-A2 제한 항원 반면, 이식편 대 숙주 병 및 배수 경화증이, 내가 더 증가의 적용 범위를 확장 할 것입니다 분자뿐만 아니라 새로운자가 면역 관련 항원의 지속적인 식별을 이량 체 추가 HLA 클래스의 개발이 확인 된 KaAPC. 또 하나는 동시에 여러 항원을 대상으로 서로 다른 항원에 지시 KaAPC를 사용하여 생각할 수있다. 요약하면, KaAPC는 유연한 플랫폼을위한 기술을 나타내는tigen 특정 T 세포 고갈. 그들의 &quot;레고 같은&quot;자연은 확대하고 시험관 및 생체 적용에 자신의 후속을 향상시킬 수있는 다양한 행렬에 같은 PD1 또는 TRAIL 등의 추가 공동 자극하거나 억제 신호와 같은 새로운 신호를 포함 할 수 있습니다. 우리는 본원 KaAPC, 상이한 특이성을 가진 T 세포 혼합물로부터 항원 특이적인 T 세포의 제거를위한 제 비드 기반 접근법을 생성하는 단계별 프로토콜을 제시한다. <img alt="그림 3" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51859/51859fig3highres.jpg" width="500" /> 그림 3은 KaAPC는 항원 특이적인 방식으로 CTL을 제거하는 일에의 Fas + 이펙터 메모리 CTL 활성화 PKH26 표지와 혼합하여 동일한 기증자 CMVpp65 특정 CTL PKH67가 표지 :. CMVpp65 KaAPC 1 비율과 공 배양 48 시간 동안. 제어 문화 언로드 KaAPC 또는 1 μg / ml로 처리 하였다의 용해 방지는 Fas-단클론 항체 (클론 CH11). 가능한 세포의 손실을 최소화 처리되지 않은 혼합 CTL 문화 (T 믹스)에서 산출 된 것입니다. T 믹스의 각 CTL 인구에 대한 원본 FACS 데이터가 표시됩니다. 이전 두 T 세포 집단 (10) 상에 별도의 게이팅이 공표 한 세포 사멸을 분석 하였다. 왼쪽 상단 사분면에 묘사 된 숫자는 전체 세포의 %를 나타냅니다. 보여주는 그림은 3 개의 독립적 인 실험에서 대표 한 실험에서 파생됩니다. 이 연구는 원래 혈액에 출판되었다​​. . 쉬츠, C. 외 킬러 인위적인 항원 제시 세포 : 신규 한 전략이 특정 T 세포를 제거하는 피.. 2008, 111, 3546-52. 저작권 혈액의 미국 사회. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51859/51859fig3highres.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

지난 20 년간 많은 진전이자가 면역 질환의 발병 기전을 이해에서했다. 그러나, 가장 일반적인 치료는 여전히 스테로이드뿐만 아니라 퓨린 유사체와 같은 면역 억제제, 알킬화제 및 칼시 뉴린 억제제 하나에 의존한다. 이러한 약물의 사용은 크게 환자의 예후를 개선했다 아직 처리 기본적인 면역 오작동의 치료법을 제공하지 않는다. 또한, 환자는 감염 및 암의 발생에 취약해진다. 따라서, T 세포 매개자가 면역 질환 및 동종 이식 거부 반응의 치료를위한 궁극적 인 목표는 구체적으로, 동시에, 그대로과 면역 질환 싸울 유능한 나머지 면역 체계를 유지하면서 T 세포를 일으키는 유일한 질환을 대상으로하는 것이다. 살린 항원 제시 세포 (APC)는 말초 T 세포 반응을 억제하는 치료제로 제 빠르면 설명한여러 그룹에 의해 1970 년대. 다음 많은 셀 기반 접근법이 개발 되었기 때문에 (쉬츠 외. 2에서 검토). 면역 세포가자가 면역, 동종 이식 거부 반응 및 만성 감염의 치료를위한 치료 가능성을 나타내는 유망한 결과를 켰을 때의 FasL 발현 킬러-APC 사용하는 전략. 그러나, 궁극적으로 임상 적용 가능성을 제한 FasL의 킬러-APC를 활용 전략에 상당한 제한이있다; APC의 (ⅰ) 세대 분리는 시간, 노동 집약적 비용 (II) 혈구 감소증에서 인해 면역 억제로 고통받는 환자는 제한 금액과 세포의 품질을 제공 (III) 등이 높은에서 FasL의 결과로 세포 사멸 유도 신호에 코팅 또는 APC의 전달 가변 표현형 및 (ⅳ) 킬러-APC 결과적으로 그들의 치료 가능성을 감소 T 세포의 효과기 기능을 세포 독성에 민감하다. 따라서, 정의 재현성 킬러-APC의 pheno을 보장하기 어렵다생체 내에서 T 세포 반응의 항원 특이 변조에 이용 될 수있는 타입. 킬러-APC 3-5 인공 항원 제시 세포 (AAPC)를 표현 FasL의 우리의 이전의 연구를 바탕으로 6,7 우리는 자동 반응성 T 세포의 항원 특이적인 억제 또는 제거에 대한 비드 기반 접근 방식 (KaAPC)을 개발 체외. KaAPC는 HLA-A2-IG 이량 체 (신호 1) 공유 4.5 μm의 상자성 라텍스 구슬의 표면에 고정화 방지는 Fas 항체 (세포 사멸 유도 신호)로 구성되어 있습니다. 그들은 항원 특이적인 방법으로 다수의 특이성 T 세포 배양에서의 Fas / FasL의 중재 방식으로 항원 특이적인 T 세포를 고갈 및 활성화 유도 세포사 (AICD) 경로의 독립적. 타겟팅 T 세포에서 농도 의존적 사멸 이미 30 분 후에 8 빠르게 유도된다. KaAPC 용이하게 제어 된 방식으로 생성 될 수는 선반 phenot 오프 정의 확보YPE 셀 기반 공핍 전략의 단점의 대부분을 극복. 따라서, KaAPC는 T 세포 특정 치료 전략의 분야를 발전, T 세포 매개자가 면역 질환 및 이식 거부 반응의 치료에 큰 잠재력을 표시합니다.

<table><tbody><tr><td>PBS</td><td>Corning</td><td>21-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>Human AB serum</td><td>Atlanta biologicals</td><td>S40110</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma/Aldrich</td><td>E5134</td><td></td></tr><tr><td>Sodium azide</td><td>Sigma/Aldrich</td><td>71289</td><td></td></tr><tr><td>M-450 epoxybeads</td><td>Invitrogen/Dynal</td><td>14011</td><td></td></tr><tr><td>MPC-1 magnet</td><td>Invitrogen/Dynal</td><td>12001D</td><td></td></tr><tr><td>Screw top glass vial</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-338AA</td><td></td></tr><tr><td>MACSmix Tube Rotator</td><td>Miltenyi</td><td>130-090-753</td><td></td></tr><tr><td>anti-CD95 (clone CH11)</td><td>Milliore</td><td>05-201</td><td></td></tr><tr><td>HLA-A2-Ig dimer</td><td>BD/Pharmingen</td><td>551263</td><td></td></tr><tr><td>Cryo-tube 2 ml</td><td>Corning</td><td>430488</td><td></td></tr><tr><td>anti-mouse IgG1 PE</td><td>BD/Pharmingen</td><td>559320</td><td></td></tr><tr><td>anti-mouse IgM FITC</td><td>BD/Pharmingen</td><td>553408</td><td></td></tr><tr><td>Sodium chloride</td><td>Merck</td><td>S271-3</td><td></td></tr><tr><td>Calcium chloride</td><td>Sigma/Aldrich</td><td>C5080</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>cellgro/Mediatech</td><td>25-060-CI</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>gibco/life technologies</td><td>11875-085</td><td></td></tr><tr><td>96-well Round bottom plate</td><td>Falcon</td><td>353077</td><td></td></tr><tr><td>AnnexinV FITC</td><td>PromoKine</td><td>PK-CA577-1001-1000</td><td></td></tr><tr><td>7-AAD</td><td>BD/Pharmingen</td><td>51-68981E</td><td></td></tr><tr><td>FACS tubes</td><td>Falcon</td><td>352008</td><td></td></tr></tbody></table>

killer artificial antigen presenting cells (kaapc) for efficient in vitro depletion of human antigen-specific t cells

T 세포 매개 된자가 면역 질환의 치료 전류는 감염 또는 악성 종양을 제어하는​​ 능력의 감소로 장기적으로, 부작용을 동반 글로벌 면역의 전략에 주로 의존한다. 따라서, 새로운 접근법은 질병 표적 세포 매개 그대로 남아 면역 체계를 남겨이 개발 될 필요가있다. 지난 10 년간 세포 면역 요법 전략 다양한 T 세포 매개 성 면역 반응이 개발되었다 변조. 이러한 방법의 대부분은 허용 오차를 유발하는 항원 제시 세포 (APC)에 의존하고있다. 그러나, 기술적으로 어렵고 복잡 할뿐만 아니라, 그러한 셀 기반 접근법은 치료 용량을 제한 세포 독성 T 세포 반응에 매우 민감하다. 여기서 우리는 재를 남기고 병적 T 세포의 고갈을 허용 비 셀룰러 킬러 인공 항원 제시 세포의 세대 (KaAPC)에 대한 프로토콜을 제시maining 면역 체계의 손길이 닿지 않은 및 기능. KaAPC는 항원 특정 방식으로 바람직하지 않은 T 세포 반응을 조절함으로써 면역 질환 및 이식 거부의 치료에 잠재적 인 세포 면역 요법을 갖는 대안이다.

이 프로토콜의 특징은 셀 기반 방식에 비해 도포에 의해 변경되지 않는 동시에 HLA-A2-IG (신호 1)와 안티는 Fas 항체 (세포 사멸 신호)를, 표시 KaAPC 표현형의 정의 생성을 포함 또는 전달 효능 및 쉽게 제작 (그림 1) 중 변조 할 수 있습니다. 또한, KaAPC은 T 세포의 세포 독성 이펙터 기능에 민감하지 않으며 그들의 기능 시험관 조작에 전후자가 항원 제시 세포의 품질에 의존하지 않는다. KaAPC 비는 동족 KaAPC이 T 세포 (도 2)이 소모하지 않을 로딩 동안, 동족의 펩티드와 함께로드 될 때 시험 관내에서 항원 특이적인 T 세포를 파괴 할 수있다. 따라서 KaAPC은 항원 특이적인 방식으로 T 세포의 사멸을 유도한다. 다음으로, 우리는 서로 다른 T 세포 SPE의 혼합물로부터 항원 특이적인 T 세포를 선택적으로 고갈 KaAPC 위해 사용최소한의 세포 독성 이웃 T 세포로 누출되는 것을 보여 cificities (그림 3). 따라서 KaAPC은자가 면역 질환 및 이식 거부의 치료를위한 잠재적 임상 적용 가능성을 가진 인간 활성화 항원 특이적인 T 세포의 시험 관내 항원 특이 고갈위한 정교한 도구를 나타낸다.

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Killer Artificial Antigen Presenting Cells KaAPC for Efficient In Vitro Depletion of Human Antigen-specific T Cells

지침을 제시 세포 킬러 인공 항원의 생성을 위해 제시되고, KaAPC 인간 항원 특이적인 T 세포의 생체 외 고갈과 항원에 T 세포 - 매개자가 면역 질환의 치료를위한 세포 면역 요법에 대한 대안을위한 효율적인 도구 나머지 면역 체계를 손상시키지 않고 특정 패션.

효율적인위한 킬러 인공 항원 제시 세포 (KaAPC)<em&gt; 체외</em&gt; 인간의 항원 특이 T 세포의 고갈

Current treatment of T cell mediated autoimmune diseases relies mostly on strategies of global immunosuppression, which, in the long term, is accompanied ...

killer-artificial-antigen-presenting-cells-kaapc-for-efficient-vitro

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Killer Artificial Antigen Presenting Cells (KaAPC) for Efficient In Vitro Depletion of Human Antigen-specific T Cells

9.7K 조회수.  Johns Hopkins University.  지침을 제시 세포 킬러 인공 항원의 생성을 위해 제시되고, KaAPC 인간 항원 특이적인 T 세포의 생체 외 고갈과 항원에 T 세포 - 매개자가 면역 질환의 치료를위한 세포 면역 요법에 대한 대안을위한 효율적인 도구 나머지 면역 체계를 손상시키지 않고 특정 패션. 

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Induction of Alloantigen-specific Anergy in Human Peripheral Blood Mononuclear Cells by Alloantigen Stimulation with Co-stimulatory Signal Blockade

Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (AHSCT) offers the best chance of cure for many patients with congenital and acquired hematologic diseases. Unfortunately, transplantation of alloreactive donor T cells which recognize and damage healthy patient tissues can result in Graft-versus-Host Disease (GvHD)1. One challenge to successful AHSCT is the prevention of GvHD without associated impairment of the beneficial effects of donor T cells, particularly immune reconstitution and prevention of relapse. GvHD can be prevented by non-specific depletion of donor T cells from stem cell grafts or by administration of pharmacological immunosuppression. Unfortunately these approaches increase infection and disease relapse2-4. An alternative strategy is to selectively deplete alloreactive donor T cells after allostimulation by recipient antigen presenting cells (APC) before transplant. Early clinical trials of these allodepletion strategies improved immune reconstitution after HLA-mismatched HSCT without excess GvHD5, 6. However, some allodepletion techniques require specialized recipient APC production6, 7and some approaches may have off-target effects including depletion of donor pathogen-specific T cells8and CD4 T regulatory cells9.One alternative approach is the inactivation of alloreactive donor T cells via induction of alloantigen-specific hyporesponsiveness. This is achieved by stimulating donor cells with recipient APC while providing blockade of CD28-mediated co-stimulation signals10.This "alloanergization" approach reduces alloreactivity by 1-2 logs while preserving pathogen- and tumor-associated antigen T cell responses in vitro11. The strategy has been successfully employed in 2 completed and 1 ongoing clinical pilot studies in which alloanergized donor T cells were infused during or after HLA-mismatched HSCT resulting in rapid immune reconstitution, few infections and less severe acute and chronic GvHD than historical control recipients of unmanipulated HLA-mismatched transplantation12. Here we describe our current protocol for the generation of peripheral blood mononuclear cells (PBMC) which have been alloanergized to HLA-mismatched unrelated stimulator PBMC. Alloanergization is achieved by allostimulation in the presence of monoclonal antibodies to the ligands B7.1 and B7.1 to block CD28-mediated costimulation. This technique does not require the production of specialized stimulator APC and is simple to perform, requiring only a single and relatively brief ex vivo incubation step. As such, the approach can be easily standardized for clinical use to generate donor T cells with reduced alloreactivity but retaining pathogen-specific immunity for adoptive transfer in the setting of AHSCT to improve immune reconstitution without excessive GvHD.

This paper describes a simple technique to induce alloantigen-specific anergy in human peripheral blood mononuclear cells. The technique can be applied clinically to generate non-alloreactive donor cells. Infusion of these cells could improve immune reconstitution and reduce toxicity after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation.

공동 stimulatory 신호 봉쇄와 Alloantigen 자극에 의​​해 사람 말초혈 Mononuclear 세포 Alloantigen 특정 Anergy의 유도

Allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (AHSCT) offers the best chance of cure for many patients with congenital and acquired hematologic ...

연구

면역학 및 감염병학

HLA-Ig Based Artificial Antigen Presenting Cells for Efficient ex vivo Expansion of Human CTL

CTL with optimal effector function play critical roles in mediating protection against various intracellular infections and cancer. However, individuals may exhibit suppressive immune microenvironment and, in contrast to activating CTL, their autologous antigen presenting cells may tend to tolerize or anergize antigen specific CTL. As a result, although still in the experimental phase, CTL-based adoptive immunotherapy has evolved to become a promising treatment for various diseases such as cancer and virus infections. In initial experiments ex vivo expanded CMV (cytomegalovirus) specific CTL have been used for treatment of CMV infection in immunocompromised allogeneic bone marrow transplant patients. While it is common to have life-threatening CMV viremia in these patients, none of the patients receiving expanded CTL develop CMV related illness, implying the anti-CMV immunity is established by the adoptively transferred CTL1. Promising results have also been observed for melanoma and may be extended to other types of cancer2. 
While there are many ways to ex vivo stimulate and expand human CTL, current approaches are restricted by the cost and technical limitations. For example, the current gold standard is based on the use of autologous DC. This requires each patient to donate a significant number of leukocytes and is also very expensive and laborious. Moreover, detailed in vitro characterization of DC expanded CTL has revealed that these have only suboptimal effector function 3. 
Here we present a highly efficient aAPC based system for ex vivo expansion of human CMV specific CTL for adoptive immunotherapy (Figure 1). The aAPC were made by coupling cell sized magnetic beads with human HLA-A2-Ig dimer and anti-CD28mAb4. Once aAPC are made, they can be loaded with various peptides of interest, and remain functional for months. In this report, aAPC were loaded with a dominant peptide from CMV, pp65 (NLVPMVATV). After culturing purified human CD8+ CTL from a healthy donor with aAPC for one week, CMV specific CTL can be increased dramatically in specificity up to 98% (Figure 2) and amplified more than 10,000 fold. If more CMV-specific CTL are required, further expansion can be easily achieved by repetitive stimulation with aAPC. Phenotypic and functional characterization shows these expanded cells have an effector-memory phenotype and make significant amounts of both TNF&alpha; and IFN&gamma; (Figure 3).

HLA-Ig Based Artificial Antigen Presenting Cells for Efficient ex vivo Expansion of Human CTL

A new DC independent method for induction and expansion of antigen-specific T cells is described. HLA A2-Ig based artificial Antigen Presenting Cells (aAPC) are loaded with HLA-A2 restricted peptides to efficiently expand CTL of diverse antigen specificity. This technology holds great potential for CTL-based adoptive immunotherapy.

효율에 대한 HLA - IG 기반 인공 항원 제시 세포 예 생체내</em인간 CTL의> 확장

CTL with optimal effector function play critical roles in mediating protection against various intracellular infections and cancer. However, individuals ...

Human In Vitro Suppression as Screening Tool for the Recognition of an Early State of Immune Imbalance

Regulatory T cells (Tregs) are critical mediators of immune tolerance to self-antigens. In addition, they are crucial regulators of the immune response following an infection. Despite efforts to identify unique surface marker on Tregs, the only unique feature is their ability to suppress the proliferation and function of effector T cells. While it is clear that only in vitro assays can be used in assessing human Treg function, this becomes problematic when assessing the results from cross-sectional studies where healthy cells and cells isolated from subjects with autoimmune diseases (like Type 1 Diabetes-T1D) need to be compared. There is a great variability among laboratories in the number and type of responder T cells, nature and strength of stimulation, Treg:responder ratios and the number and type of antigen-presenting cells (APC) used in human in vitro suppression assays. This variability makes comparison between studies measuring Treg function difficult. The Treg field needs a standardized suppression assay that will work well with both healthy subjects and those with autoimmune diseases. We have developed an in vitro suppression assay that shows very little intra-assay variability in the stimulation of T cells isolated from healthy volunteers compared to subjects with underlying autoimmune destruction of pancreatic &beta;-cells. The main goal of this piece is to describe an in vitro human suppression assay that allows comparison between different subject groups. Additionally, this assay has the potential to delineate a small loss in nTreg function and anticipate further loss in the future, thus identifying subjects who could benefit from preventive immunomodulatory therapy1. Below, we provide thorough description of the steps involved in this procedure. We hope to contribute to the standardization of the in vitro suppression assay used to measure Treg function. In addition, we offer this assay as a tool to recognize an early state of immune imbalance and a potential functional biomarker for T1D.

Human In Vitro Suppression as Screening Tool for the Recognition of an Early State of Immune Imbalance

Tregs are potent suppressors of the immune system. There is a lack of unique surface markers to define them, hence, definitions of Tregs are primarily functional. Here we describe an optimized in vitro assay capable of identifying immune imbalance in subjects at risk to develop T1D.

사람의 체외에서</em면역 불균형의 초기 국가의 인정을위한 심사 도구를> 억제

Regulatory T cells (Tregs) are critical mediators of immune tolerance to self-antigens. In addition, they are crucial regulators of the immune response ...

Fabrication of Anisotropic Polymeric Artificial Antigen Presenting Cells for CD8+ T Cell Activation

Artificial antigen presenting cells (aAPC) are a promising platform for immune modulation due to their potent ability to stimulate T cells. Acellular substrates offer key advantages over cell-based aAPC, including precise control of signal presentation parameters and physical properties of the aAPC surface to modulate its interactions with T cells. aAPC constructed from anisotropic particles, particularly ellipsoidal particles, have been shown to be more effective than their spherical counterparts at stimulating T cells due to increased binding and larger surface area available for T cell contact, as well as reduced nonspecific uptake and enhanced pharmacokinetic properties. Despite increased interest in anisotropic particles, even widely accepted methods of generating anisotropic particles such as thin-film stretching can be challenging to implement and use reproducibly.
To this end, we describe a protocol for the rapid, standardized fabrication of biodegradable anisotropic particle-based aAPC with tunable size, shape, and signal presentation for T cell expansion ex vivo or in vivo, along with methods to characterize their size, morphology, and surface protein content, and to assess their functionality. This approach to fabricating anisotropic aAPC is scalable and reproducible, making it ideal for generating aAPC for &#34;off-the-shelf&#34; immunotherapies.

Here, we present a protocol to quickly and reproducibly generate biologically inspired, biodegradable articifical antigen presenting cells (aAPC) with tunable size, shape, and surface protein presentation for T cell expansion ex vivo or in vivo.

이방성 고분자 인공 항 원 제시 세포 CD8 + T 세포 활성화의 제조

Artificial antigen presenting cells (aAPC) are a promising platform for immune modulation due to their potent ability to stimulate T cells. Acellular ...

환경과학

Using Human Induced Pluripotent Stem Cells for the Generation of Tumor Antigen-specific T Cells

The generation and expansion of functional T cells in vitro can lead to a broad range of clinical applications. One such use is for the treatment of patients with advanced cancer. Adoptive T cell transfer (ACT) of highly enriched tumor antigen-specific T cells has been shown to cause durable regression of metastatic cancer in some patients. However, during expansion, these cells may become exhausted or senescent, limiting their effector function and persistence in vivo. Induced pluripotent stem cell (iPSC) technology may overcome these obstacles by leading to in vitro generation of large numbers of less differentiated tumor antigen-specific T cells. Human iPSC (hiPSC) have the capacity to differentiate into any type of somatic cell, including lymphocytes, which retain the original T cell receptor (TCR) genomic rearrangement when a T cell is used as a starting cell. Therefore, reprogramming of human tumor antigen-specific T cells to hiPSC followed by redifferentiation to T cell lineage has the potential to produce rejuvenated tumor antigen-specific T cells. Described here is a method for generating tumor antigen-specific CD8&#945;&#946;+ single positive (SP) T cells from hiPSC using OP9/DLL1 co-culture system. This method is a powerful tool for in vitro T cell lineage generation and will facilitate the development of in vitro derived T cells for use in regenerative medicine and cell-based therapies.

This article describes a method to generate functional tumor antigen-specific induced pluripotent stem cell-derived CD8&#945;&#946;+ single positive T cells using OP9/DLL1 co-culture system.

종양 항원 특이적 T 세포의 생성을 위한 인간 유도 만능 줄기 세포를 사용하여

The generation and expansion of functional T cells in vitro can lead to a broad range of clinical applications. One such use is for the treatment of ...

암 연구학

Artificial Antigen Presenting Cell (aAPC) Mediated Activation and Expansion of Natural Killer T Cells

Natural killer T (NKT) cells are a unique subset of T cells that display markers characteristic of both natural killer (NK) cells and T cells1. Unlike classical T cells, NKT cells recognize lipid antigen in the context of CD1 molecules2. NKT cells express an invariant TCR&alpha; chain rearrangement: V&alpha;14J&alpha;18 in mice and V&alpha;24J&alpha;18 in humans, which is associated with V&beta; chains of limited diversity3-6, and are referred to as canonical or invariant NKT (iNKT) cells. Similar to conventional T cells, NKT cells develop from CD4-CD8- thymic precursor T cells following the appropriate signaling by CD1d 7. The potential to utilize NKT cells for therapeutic purposes has significantly increased with the ability to stimulate and expand human NKT cells with &alpha;-Galactosylceramide (&alpha;-GalCer) and a variety of cytokines8. Importantly, these cells retained their original phenotype, secreted cytokines, and displayed cytotoxic function against tumor cell lines. Thus, ex vivo expanded NKT cells remain functional and can be used for adoptive immunotherapy. However, NKT cell based-immunotherapy has been limited by the use of autologous antigen presenting cells and the quantity and quality of these stimulator cells can vary substantially. Monocyte-derived DC from cancer patients have been reported to express reduced levels of costimulatory molecules and produce less inflammatory cytokines9,10. In fact, murine DC rather than autologous APC have been used to test the function of NKT cells from CML patients11. However, this system can only be used for in vitro testing since NKT cells cannot be expanded by murine DC and then used for adoptive immunotherapy. Thus, a standardized system that relies on artificial Antigen Presenting Cells (aAPC) could produce the stimulating effects of DC without the pitfalls of allo- or xenogeneic cells12, 13. Herein, we describe a method for generating CD1d-based aAPC. Since the engagement of the T cell receptor (TCR) by CD1d-antigen complexes is a fundamental requirement of NKT cell activation, antigen: CD1d-Ig complexes provide a reliable method to isolate, activate, and expand effector NKT cell populations.

Artificial Antigen Presenting Cell aAPC Mediated Activation and Expansion of Natural Killer T Cells

Here we describe a method for activating and expanding human NKT cells from bulk T cell populations using artificial antigen presenting cells (aAPC). The use of CD1d-based aAPC provides a standardized method for generating high numbers of functional NKT cells.

인공 항원은 세포 (aAPC) 중재의 활성화와 자연 킬러 T 세포의 확장을 제시

Natural killer T (NKT) cells are a unique subset of T cells that display markers characteristic of both natural killer (NK) cells and T cells1. Unlike ...

Enrich and Expand Rare Antigen-specific T Cells with Magnetic Nanoparticles

We have developed a tool to both enrich and expand antigen-specific T cells. This can be helpful in cases such as to A) detect the existence of antigen-specific T cells, B) probe the dynamics of antigen-specific responses, C) understand how antigen-specific responses affect disease state such as autoimmunity, D) demystify heterogeneous responses for antigen-specific T cells, or E) utilize antigen-specific cells for therapy. The tool is based on a magnetic particle that we conjugate antigen-specific and T cell co-stimulatory signals, and that we term as artificial antigen presenting cells (aAPCs). Consequently, since the technology is simple to produce, it can easily be adopted by other laboratories; thus, our purpose here is to describe in detail the fabrication and subsequent use of the aAPCs. We explain how to attach antigen-specific and co-stimulatory signals to the aAPCs, how to utilize them to enrich for antigen-specific T cells, and how to expand antigen-specific T cells. Furthermore, we will highlight engineering design considerations based on experimental and biological information of our experience with characterizing antigen-specific T cells.

Antigen-specific T cells are difficult to characterize or utilize in therapies due to their extremely low frequency. Herein, we provide a protocol to develop a magnetic particle which can bind to antigen-specific T cells to enrich these cells and then to expand them several hundred-fold for both characterization and therapy.

풍부 하 고 확장 하는 자성 나노 입자와 희귀 한 항 원 특정 T 세포

We have developed a tool to both enrich and expand antigen-specific T cells. This can be helpful in cases such as to A) detect the existence of ...

공학

Generation of Human Alloantigen-specific T Cells from Peripheral Blood

The study of human T lymphocyte biology often involves examination of responses to activating ligands. T cells recognize and respond to processed peptide antigens presented by MHC (human ortholog HLA) molecules through the T cell receptor (TCR) in a highly sensitive and specific manner. While the primary function of T cells is to mediate protective immune responses to foreign antigens presented by self-MHC, T cells respond robustly to antigenic differences in allogeneic tissues. T cell responses to alloantigens can be described as either direct or indirect alloreactivity. In alloreactivity, the T cell responds through highly specific recognition of both the presented peptide and the MHC molecule. The robust oligoclonal response of T cells to allogeneic stimulation reflects the large number of potentially stimulatory alloantigens present in allogeneic tissues. While the breadth of alloreactive T cell responses is an important factor in initiating and mediating the pathology associated with biologically-relevant alloreactive responses such as graft versus host disease and allograft rejection, it can preclude analysis of T cell responses to allogeneic ligands. To this end, this protocol describes a method for generating alloreactive T cells from naive human peripheral blood leukocytes (PBL) that respond to known peptide-MHC (pMHC) alloantigens. The protocol applies pMHC multimer labeling, magnetic bead enrichment and flow cytometry to single cell in vitro culture methods for the generation of alloantigen-specific T cell clones. This enables studies of the biochemistry and function of T cells responding to allogeneic stimulation.

This article describes a method for the generation and propagation of human T cell clones that specifically respond to a defined alloantigen. This protocol can be adapted for cloning human T cells specific for a variety of peptide-MHC ligands.

말초 혈액에서 인간 Alloantigen 특정 T 세포의 생성

The study of human T lymphocyte biology often involves examination of responses to activating ligands. T cells recognize and respond to processed peptide ...

High-Efficiency Generation of Antigen-Specific Primary Mouse Cytotoxic T Cells for Functional Testing in an Autoimmune Diabetes Model

Type 1 Diabetes (T1D) is characterized by islet-specific autoimmunity leading to beta cell destruction and absolute loss of insulin production. In the spontaneous non-obese diabetes (NOD) mouse model, insulin is the primary target, and genetic manipulation of these animals to remove a single key insulin epitope prevents disease. Thus, selective elimination of professional antigen presenting cells (APCs) bearing this pathogenic epitope is an approach to inhibit the unwanted insulin-specific autoimmune responses, and likely has greater translational potential.
Chimeric antigen receptors (CARs) can redirect T cells to selectively target disease-causing antigens. This technique is fundamental to recent attempts to use cellular engineering for adoptive cell therapy to treat multiple cancers. In this protocol, we describe an optimized T-cell retrovirus (RV) transduction and in vitro expansion protocol that generates high numbers of functional antigen-specific CD8 CAR-T cells starting from a low number of naive cells. Previously multiple CAR-T cell protocols have been described, but typically with relatively low transduction efficiency and cell viability following transduction. In contrast, our protocol provides up to 90% transduction efficiency, and the cells generated can survive more than two weeks in vivo and significantly delay disease onset following a single infusion. We provide a detailed description of the cell maintenance and transduction protocol, so that the critical steps can be easily followed. The whole procedure from primary cell isolation to CAR expression can be performed within 14 days. The general method may be applied to any mouse disease model in which the target is known. Similarly, the specific application (targeting a pathogenic peptide/MHC class II complex) is applicable to any other autoimmune disease model for which a key complex has been identified.

This article describes a protocol for the generation of antigen-specific CD8 T cells, and their expansion in vitro, with the aim of yielding high numbers of functional T cells for use in vitro and in vivo.

자가 면역 당뇨병 모델에서 기능 테스트를 위한 항원 특이적 원발성 원발성 T 세포의 고효율 생성

Type 1 Diabetes (T1D) is characterized by islet-specific autoimmunity leading to beta cell destruction and absolute loss of insulin production. In the ...

Generation of Human Regulatory T Cell Clones

Human regulatory T cells (Treg) are notoriously difficult to isolate in high purity given the current methods of Treg enrichment. These methods are based on the identification of Treg through several activation-dependent cellular surface markers with varying expression levels in different physiologic and pathologic conditions. Populations isolated as &#8220;Treg&#8221; therefore often contain considerable numbers of non-Treg effector cells (i.e., Teff) which hamper the precise phenotypic and functional characterization of these cells, their genomic and proteomic characterization, their reliable enumeration in different states of health and disease, as well as their isolation and expansion for therapeutic purposes. The latter, in particular, remains a major hurdle, as the inadvertent expansion of effector cells homing in Treg-relevant cellular compartments (e.g., CD4+CD25+ T cells) may render Treg-based immunotherapy ineffective, or even harmful. This work presents a method that circumvents the problems associated with population-based isolation and expansion of Treg and shows that the generation of Treg candidate clones with the subsequent selection, culture, and expansion of only carefully vetted, monoclonal cells, enables the generation of an ultrapure Treg cell product that can be kept in culture for many months, enabling downstream investigation of these cells, including for possible therapeutic applications.

This protocol describes the cloning and expansion of human regulatory T cells for the generation of ultra-high purity viable human Treg with stable demethylation at the Treg-specific demethylated region (TSDR) and Treg-specific phenotypic features.

Human regulatory T cells (Treg) are notoriously difficult to isolate in high purity given the current methods of Treg enrichment. These methods are based ...

효율적인위한 킬러 인공 항원 제시 세포 (KaAPC)

요약

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이 비디오의 챕터

공동 stimulatory 신호 봉쇄와 Alloantigen 자극에 의해 사람 말초혈 Mononuclear 세포 Alloantigen 특정 Anergy의 유도

효율에 대한 HLA - IG 기반 인공 항원 제시 세포 예 생체내 확장

사람의 체외에서 억제

이방성 고분자 인공 항 원 제시 세포 CD8 + T 세포 활성화의 제조

종양 항원 특이적 T 세포의 생성을 위한 인간 유도 만능 줄기 세포를 사용하여

인공 항원은 세포 (aAPC) 중재의 활성화와 자연 킬러 T 세포의 확장을 제시

풍부 하 고 확장 하는 자성 나노 입자와 희귀 한 항 원 특정 T 세포

말초 혈액에서 인간 Alloantigen 특정 T 세포의 생성

자가 면역 당뇨병 모델에서 기능 테스트를 위한 항원 특이적 원발성 원발성 T 세포의 고효율 생성

Generation of Human Regulatory T Cell Clones

효율적인위한 킬러 인공 항원 제시 세포 (KaAPC)

요약

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공동 stimulatory 신호 봉쇄와 Alloantigen 자극에 의​​해 사람 말초혈 Mononuclear 세포 Alloantigen 특정 Anergy의 유도

효율에 대한 HLA - IG 기반 인공 항원 제시 세포 예 생체내 확장

사람의 체외에서 억제

이방성 고분자 인공 항 원 제시 세포 CD8 + T 세포 활성화의 제조

종양 항원 특이적 T 세포의 생성을 위한 인간 유도 만능 줄기 세포를 사용하여

인공 항원은 세포 (aAPC) 중재의 활성화와 자연 킬러 T 세포의 확장을 제시

풍부 하 고 확장 하는 자성 나노 입자와 희귀 한 항 원 특정 T 세포

말초 혈액에서 인간 Alloantigen 특정 T 세포의 생성

자가 면역 당뇨병 모델에서 기능 테스트를 위한 항원 특이적 원발성 원발성 T 세포의 고효율 생성

Generation of Human Regulatory T Cell Clones

공동 stimulatory 신호 봉쇄와 Alloantigen 자극에 의해 사람 말초혈 Mononuclear 세포 Alloantigen 특정 Anergy의 유도