Name: propagation of homalodisca coagulata virus-01 via homalodisca vitripennis cell culture
Uploaded: 2014-09-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 52 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Propagation of Homalodisca coagulata virus-01 via Homalodisca vitripennis Cell Culture at JoVE.com

We would like to thank the Texas Pierce&#8217;s Disease Research and Education Program and USDA-APHIS for their funding support for this project. We would also like to thank Hema Kothari at the University of Texas Health Science Center at Tyler for her assistance with confocal microscopy.

1 세포 배양 참고 : 미국 농무부 농업 연구 서비스 (. 포트 피어스, FL USA)에서 박사 웨인 헌터 연구소에 의해 설립 Homalodisca vitripennis 세포주 초기 섬유 아세포 및 단일 층을 포함하여 혼합 된 세포 단계로 구성된 실험실 주식을 시작하는 데 사용되었다. <ol><li> 이 25cm 배양 플라스크에 20-24 ℃의 온도 범위에서 유지 무균 실험실 환경에서 다음 절차를 수행한다. </li><li> 육성 및 H2G + 매미충 매체, 수정 WH2의 꿀벌 미디어 10 (표 1)를 사용하여 25cm 두 조직 배양 플라스크에 문화를 유지한다. </li><li> 53 %의 습도 ~로 24 ° C에서 배양 플라스크를 품어. </li><li> , 비정상적인 세포 성장을 확인, 예를 들면 문화의 성장을 모니터링 잠재적 인 오염 물질을 모니터링하고 막에 걸쳐 성장 진행 상황을 확인하기 위해 총 배율 100 배의 (TM)에 거꾸로 현미경을 사용하여진짜야면. </li><li> 문화 표면을 방해하지 않고 10 일 - 매 7 완전한 매체 변화 (~ 플라스크 당 4 ㎖의 배양 배지)를 수행합니다. </li><li> 문화 표면 세포를 해리 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA)를 포함하는 0.25 % 트립신을 사용하여 세포 성장 (합류)에 포함 약 80 % 인 경우에 문화를 전달합니다. 각 배양 플라스크에 3 ㎖ 트립신 및 시간의 짧은 시간 동안 배양 효소 (들)를 노출 - ~ 2 추가 - 완전한 세포 분리를 달성하기 위해 (5-10 분). </li><li> 효소 활동을 중지하고 원심 분리를위한 원뿔 튜브에 전체 솔루션을 전송 - 문화 플라스크 (들) (3 ML ~ 2)에 새로운 배지의 동일한 금액을 추가합니다. </li><li> 350 × g으로 6 분 동안 4 ° C에서 원심 분리하여 펠렛 세포. </li><li> 세포 펠렛을 방해하지 않고 상층 액을 제거하고 각 튜브에 ~ 신선한 매체의 8 ML을 추가합니다. 부드럽게 피펫을 사용하여 세포를 균질화. </li><li> 1에서 분할 문화 : 2 비율 25 센티미터이 플라스크 (~ 셀 soluti의 4 ML플라스크 당에) 떠날 갓 통과 현탁 배양에서 세포가 플라스크의 표면에 확실하게 부착 할 수 있도록하기 위해 48 시간 동안 방해받지. NOTE : 1cm 2의 성장면과 48 웰 멸균 조직 배양 플레이트에서 세포 배양이 가능하다 그들이 ~ 250 μL에 배지의 부피의 감소와 함께 배양 플라스크와 동일하게 유지 될 수있다. </li></ol> 2 전체 바이러스 추출 <ol><li> 바이러스 양성 H.의 몸 전체를 균질화 ~ 10 초 간격에 대한 텍싱 0.02 % 나트륨 디 에틸 삼수화물 (DETCA)와 인산염 완충액에서 vitripennis, 산도 ~ 7.2, 아니 현재 조직의 더 큰 덩어리가 없을 때까지. 4 ° C에서 4 시간 또는 4 ° C에서 16 시간 동안 22,000 XG에 대한 124500 XG에서 슈퍼 스피드 원심 분리를 통해 바이러스의 압축을 풉니 다. 상단에 침전물을 형성하는 경우, 멸균 면봉 (11)를 제거합니다. </li><li> 상층 액을 버린다. </li><li> 펠렛을 수집하고0.4 % 나트륨 데 옥시 콜산-4 % 폴리에틸렌 글리콜 데실 에테르 (BRIJ 52)을 함유하는 5 ㎖의 10 mM의 인산 완충액 (전술 DETCA), pH가 7.2 ~ 녹인다. <ol><li> 잘 섞어 펠릿, 튜브 측으로부터 펠릿을 제거하고, 필요한 경우 용액까지 분쇄. </li><li> 펠릿이 필요한 경우 솔루션에 가서 2 튜브 (11)에 결합 할 수 있도록 ~ 5 ㎖의 단위로 10 개 mM의 인산 버퍼를 추가합니다. </li></ol></li><li> 15 분 11 300 XG에 용액을 원심 분리기. </li><li> 상층 액을 제거하고 0.45 μm의 필터를 통해 솔루션을 전달하고 대규모 수집 관 (11)의 여과를 수집합니다. </li><li> 분자량 투석막에 전송 여액을 10 ㎜의 11 필요한 경우에는 DETCA을 함유하지 않는 인산염 완충액 (pH 7)를 소량 사용하여, 3.5 가와사끼 (MWCO)를 잘라. </li><li> 4 ° C에서 DDH 2 O로 가득 큰 비커에 투석막을 놓습니다. DDH 2 O마다 시간의 F 변경또는 5-6 시간, 멤브레인 (11)의 흰색 침전물이 형성 될 때까지. </li><li> 막 내에서 정제 된 바이러스를 모아 둘 DDH O. 90 μL로 용액 10 μl를 첨가하여 10 배 희석 계열로 100 % 바이러스 용액을 가하지 100000 : 그 후 1의 희석에 도달 할 때까지 DDH 2 O의 또 다른 90 μL로 희석의 10 μl를 추가합니다. </li><li> -80 ° C에서 보관 바이러스 솔루션입니다. </li></ol> 3 바이러스 성 복제 <ol><li> 세포 성장이 (세포가 평균 속도로 성장하는 경우 약 72 시간 후 - 패스) 80 %의 합류 때까지 48 웰 배양 플레이트에서 종자 세포는 모든 행을 성장. </li><li> 세포 성장이 포화 상태에 도달하면 희석시킨 바이러스와 세포의 각 행에 접종, 즉, 1:10 희석 한 행, 하나의 하나의 행 : 위쪽 행 (100)를 제외한 희석 등. 대조군으로 맨 위 행을 사용하여 볼륨 컨트롤로 각 웰에 DDH 2 O의 10 μl를 추가합니다. <ol><li> 종래 바이러스 배양 모든 웰의 초기 접종하여 각 행의 제 1 웰을, 실험 세포 수와 비교 시작 기준선 세포 농도를 확립 해리 및 카운트하기 위해. </li></ol></li><li> 배양 플레이트에게 pH 변화를 나타내는 매체의 모든 색상 변경 및 세포 형태의 변경에 대한 바이러스 접종 후 매 24 시간을 모니터링합니다. </li><li> 100X TM에서 도립 현미경을 이용하여 각 시점에서의 테스트 플레이트의 이미지 한 칼럼. </li><li> 각 24 시간 시점에서 이미지화 된 열에서 모든 매체를 제거하고 -80 ° C에서 RNA 추출 및 바이러스 정량 또는 장기적으로 -20 ° C에 그것을 단기를 저장합니다. </li><li> 셀 PELLE 다시 중단 효소 활성 및 신선한 배지 ~ 250 μl를 중지 0.25 % 트립신 EDTA 및 신선한 배지 만 ~ 250 μl를 사용하여 1.9, - 이전의 단계 1.6에 기재된 바와 같이 매체를 제거한 후 웰로부터 세포를 해리t. </li><li> 일주 이상 각 24 시간 동안 세포 분리 한 후 세포 수를 수행 할 수있는 세포를 포함하는 각각의 튜브에 0.4 %의 트리 판 블루 염색의 10 μl를 추가합니다. 얼룩이 세포 수를 수행하기 전에 10 분 동안 앉아 할 수 있습니다. <ol><li> 얼룩뿐만 아니라 비 가능한 세포 통풍 관을 시작합니다 스테인 노출 또는 가능한 세포의 1 시간 이내에 세포 수를 수행합니다. </li></ol></li><li> 천천히 마이크로 피펫을 사용하여 표준 혈구의 각 측면에 염색 세포 용액 10 μL를 추가한다. 허용 용액을 공기 방울을 방지하기 위해 모세관 현상에 의해 흡수된다. </li><li> 혈구 양쪽 가능한 (착색되지​​ 않은) 셀의 개수 (혈구에서 16 제곱의 4 카운트에 해당)를 카운트. 제거 된 컬럼의 각 웰에 세포 수를 수행합니다. </li><li> 각 열에서 세포 수를 평균 전체 셀 카운트 수 구하는 다음의 공식을 사용 X 희석 인자 (세포 / 4의 평균 수) = X (10)의 셀 수가 <sup는&gt; 4 ML. 이 배양 세포 밀도 또는 생존 세포의 수이다. </li></ol> 세포 배양에서 4 바이러스 추출 <ol><li> 처리 H. 제거 효소 활동을 중지하기 위해 0.25 % 트립신 EDTA와 신선한 매체 만 ~ 250 μl를 사용하여 1.8 - 배양 플라스크에서 vitripennis 세포는 이전 단계 1.6에 설명 된대로. </li><li> 상층 액을 버린다. </li><li> 2.8 - 이전 단계 2.3에 설명 된 프로토콜 다음 배양 세포에서 바이러스의 압축을 풉니 다. </li></ol> 5 RNA 추출 <ol><li> 제조 업체의 프로토콜 당 액체 샘플을 위해 설계된 아니 디늄 티오 시아 네이트 - 페놀 - 클로로포름 추출을 사용하여 각 한 주 바이러스 시험에서 수집 된 매체 샘플에서 RNA를 추출합니다. </li><li> 스토어는 -80 ° C에서 샘플을 추출 하였다. </li></ol> 6 RT-PCR <ol><li> 사용하여 기존의 PCR을 실행하여 RT-PCR을위한 바이러스 성 기준을 설정프라이머 쌍 HoCV RT-PCR 프라이머 1 (정방향 5&#39;-GCTCCCCGGCTTTGCTGGTT-3 &#39;- ACGACGGATCTGCGTGCCAA-3 5&#39;리버스 &#39;) 바이러스가 몸 전체 H.에서 분리 vitripennis. </li><li> 제목 PCR 생성물을 0.1 % 에티 디움 브로마이드를 함유하는 2 % 아가 로즈 젤에서 120 V에서 60 분간 전기 영동 겔. </li><li> 겔에서 밴드를 절제하고 제조자의 프로토콜에 따라 겔 추출 키트를 사용하여 정제. </li><li> 수영장은 모두 절제 젤 정제 제품 또한 기본 에탄올 침전에 의해 정화. 전체 시료 농도를 증가 트리스 EDTA (TE)의 약 30 μL로 침전 생성물을 용출. </li><li> 핵산 검출 용 230분의 260 파장 설정을 사용하여 분광 광도법을 통해 풀링 된 cDNA 샘플에서의 수준을 정량화. </li><li> 57 NG에 이르기까지 정제 된 시료의 10 배 용액을 희석 시리즈를 수행 / 57 AG / μL (10 -18)에 μL. 유사한 직렬 희석 제가 설명 수행N 농도 조건에서의 차이에 대한 조정이 이루어 2.8. </li><li> 미량의 성적 증명서의 신뢰성 정량화와 Q​​RT-PCR 키트를 사용하여 QRT-PCR을 수행하여 희석 시리즈의 검출 한계를 결정합니다. 참고 : 5 × 10 -3 사본보다 바이러스 농도가 낮은는 검출되지 않습니다. </li><li> 단계 5.1에서 전술 한 바와 같이 실험 샘플에서 RNA를 추출하고 분광 광도계를 사용하여 정량화. </li><li> 클리 무료 물을 사용 μL / 5 NG 모든 추출 된 샘플을 정상화. </li><li> 다음과 같이 25 ㎕의 반응이 낮은 사본 번호를 감지 할 수있는 능력을 한 단계 QRT-PCR 키트를 사용하는 것으로, 중복에, 모든 샘플에 QRT-PCR을 수행 : 50 ° C 10 분 동안 유지; 5 분 동안 95 ° C에서 개최; 10 초, 30 초 동안 60 ° C, 95 ° C의 30주기; 각 단계에서 5 초 동안 99 °의 C - 50에서 녹아. <ol><li> 각각의 반응 혼합물은 1X maste 12.5 μl를 포함하도록 마스터 믹스 만들기R 믹스, 앞으로 프라이머의 1.0 μL (0.3 μM), 역방향 프라이머의 1.0 μL (0.3 μM), 역전사 효소 및 표준화 값을 기반으로 템플릿의 변수 금액의 0.25 μL. </li><li> 의 RNase 무료 물 25 μL에 총 반응 볼륨을 가져와. </li><li> 각 PCR에 다섯 표준 농도는 다음 복사본 번호와 함께 실행 같습니다 × 10 -10 5, 5 × 10-8, 5 × 5 × 10 -4 -6 10, 5 × 10 -2 사본. 각 실행의 시작 부분에 초기 취득시 소음을 줄이기 위해 단지 10 배 -2.5의 형광 아래에 각 실행에 대한 임계 값을 설정합니다. </li></ol></li></ol> 7 공 초점 현미경 <ol><li> 물론 각 직경 18mm를 측정 열두 웰 플레이트 포함 유리 커버 슬립에 Homalodisca vitripennis 세포를 성장. </li><li> 단층이 달성되면, 사일 동안 플레이트에 24 시간마다 하나의 칼럼을 접종한다. 각 C 있는지 확인olumn 잘 컨트롤이 포함 낮은 바이러스 희석 (1시 10분)도 높은 바이러스 성 희석 (1 : 100,000) 잘. 단계 2.8에서 얻은 바이러스 솔루션을 사용합니다. </li><li> 다섯째 날에 모든 미디어를 제거하고 두 번 1X PBS (산도 7.4)로 세포를 씻어. </li><li> 30 분 동안 4 ° C에서 차가운 4 % 파라 포름 알데히드로 세포를 고정합니다. </li><li> 1X 인산염의 500 μL은 세포에 생리 식염수 (PBS)를 버퍼에 추가하고 저속에서 로커에 RT에서 10 분 동안 씻어. 세포를 세 번 씻으십시오. </li><li> 그들을 Permeabilize 하시려면하는 세포에 0.1 % 트리톤 X-100의 500 μl를 추가합니다. 실온에서 10 분 동안 앉아 보자. </li><li> 세포를 씻고 다시 같은 이전 단계 7.5에 설명. </li><li> RT에서 세포를 차단하기 위해 5 % 소 혈청 알부민 (BSA) 용액 500 μl를 추가. 2 시간 동안 앉아서 다음 제거하자. </li><li> 1X PBS가 5 % BSA를 포함하는 250와 F-액틴에 대한 얼룩에 각 웰에 희석 250 μl를 추가 : 재고 로다 민 레드 - 복합 phalloidin (RCP) 하나를 희석. </li><li> 알루미늄 f를 커버 플레이트오일은 표백에서 염료를 방지하고 4 ° CO / N에서 세포를 배양한다. </li><li> 배양 12 시간 후 RCP를 제거하고 세포의 핵을 염색하기 위해, 5 % BSA를 함유하는 1X PBS에 희석하여 6-diamidino-2-페닐 인돌 (4)의 250 μL &#39;(DAPI) (250 μg / ㎖)로 대체 . </li><li> 1 시간 동안 RT에서 DAPI를 포함하는 세포를 배양한다. </li><li> 이전 단계 7.5에 설명 된대로 1X PBS로 세포를 세 번 씻으십시오. </li><li> 조심스럽게 우물 된 커버를 제거하고 방지 페이드 시약 장착 미디어를 사용하여 슬라이드를 현미경 마운트합니다. </li><li> 공 초점 현미경으로 볼 때까지 슬라이드 박스 차광에서 건조하도록 허용합니다. 염료가 빠르게 사라질 수로보기는 가능한 한 빨리 슬라이드를 준비했다. </li><li> 63X (오일) 계획 - apochromate 렌즈를 포함하는 현미경 장착 공 초점 영상 시스템을 이용하여 염색 된 세포. <ol><li> 543 ± 10 nm의 여기 및 Rhoadmine 레드 conjucated phalloidin 대 575 ± 10 nm의 방출에 레이저 파장을 설정DAPI 대, 및 369 ± 10 nm의 여기 및 450 ± 30 nm의 방출. </li><li> 모든 이미지를 얻기 위해 감지기 동일한 이득과 오프 설정 설정을 사용합니다. </li><li> 화상 처리에 적합한 소프트웨어를 사용하여 이미지를 관리하는 소프트웨어에 정렬 및 수입 원하는 이미지와 이미지 프로세스. </li></ol></li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

침략 농업 종의 유입에 대한 상승 우려는 새로운 해충과 병원균에 대한 방어 할 수있는 새로운 방법론에 대한 수요 증가로 이어질했다. 질병 예방과 관리의 초점은 병원체 벡터의 관리를 포함하고이 연구의 주된 목표였다. 경제적 실용화가 큰 영역 위에 있지만 저비용 12에서 대량으로 필요하기 때문에 농업용 병원체 경로를 관리하는 생물 농약이 유형을 생성하는 결정에 중요한 역할을?...

유리 날개의 명사수 (Homalodisca vitripennis Germar 1821)는 북미 1, Xylella fastidiosa (X를 fastidiosa)의 지배적 인 벡터로 포도 ​​나무 (PD)의 피어스 병의 인과 에이전트를 확인되었습니다. 곤충 인구 관리는 빨리 캘리포니아와 미국 남부에서 포도 재배 산업이 파괴 문제를 해결하기위한 연구의 초점이되었다. 가족에 속하는 양의 감지, 단일 가닥 RNA 바이러스는 Dicistroviridae, Homalodisca는 coagulata 바이러스-01 (HoCV-01) 야생 H.에서 발견되었습니다 vitripennis 인구와 살충제로 곤충의 저항을 낮추고, 그 인구 2-4에서 사망률이 증가하는 것으로. 방법의 개발을 효과적으로 후방 H. 감염합니다 실험실 환경에서 성년 vitripennis 때문에 어려웠을 <em&gt; H. vitripennis는 기주 식물 5-8의 다양한 요구 다른 단계 별 영양 필요가있다. 특정 시설 후면 라이브 H.에 필요한 미국에서 vitripennis; 따라서, 세포 배양 물은 더 경제적이고 실용적인 대안뿐만 아니라 HoCV-01 검출 및 복제 2,9 점점 중요하다. H.의 세포 배양을위한 기본적인 방법 확립하면서 vitripennis는 바이러스 2로, 이러한 방법은 아직 생물학적 조절제의 상업 생산에 이용되지 않은, 설명되어 있습니다. 다음 절차의 전체적인 목적은 생물학적 방제 제로서 이용하​​기에 적합한 HoCV-0129의 높은 농도를 생성하는 것이다. 바이러스 성 복제는 왜 성공적으로 H. 육성 및 최적화 된 살아있는 세포를 필요로 vitripennis 문화는 바이러스의 수익성 수준을 생산의 발전에 매우 중요합니다.

<table><tbody><tr><td>Corning cell culture flasks</td><td>Sigma Aldrich</td><td>CLS430168</td><td>Surface area 25 cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;, canted neck, cap (plug seal)</td></tr><tr><td>Olympus DP30BW, IX2-SP, IX71</td><td>Olympus</td><td></td><td>Inverted microscope and camera</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA solution</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T4049</td><td>0.25%, sterile-filtered, BioReagent, suitable for cell culture, 2.5 g porcine trypsin and 0.2 g EDTA &amp;bull; 4Na per liter of Hanks&amp;prime; Balanced Salt Solution with phenol red</td></tr><tr><td>Greiner CELLSTAR multiwell culture plates</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M8937</td><td>48 wells (TC treated with lid)</td></tr><tr><td>DETCA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>228680</td><td>Sodium diethyldithiocarbamate trihydrate</td></tr><tr><td>Corning bottle-top vacuum filter system</td><td>Sigma Aldrich</td><td>CLS431206</td><td>Cellulose acetate membrane, pore size 0.45 &amp;mu;m, membrane area 54.5 cm&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;, filter capacity 500 ml</td></tr><tr><td>Brij 52</td><td>Sigma Aldrich</td><td>388831</td><td>Polyethylene glycol hexadecyl ether</td></tr><tr><td>Phosphate buffer solution</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5244</td><td>Received as 100 mM diluted to 10 mM with sterile water</td></tr><tr><td>TRIzol LS</td><td>Life Technologies</td><td>10296-028</td><td></td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A5304</td><td>For electrophoresis</td></tr><tr><td>Ethidium bromide</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E7637</td><td>BioReagent, for molecular biology, powder</td></tr><tr><td>QIAquick</td><td>Qiagen</td><td>28704</td><td></td></tr><tr><td>QuantiTect qRT-PCR kit</td><td>Qiagen</td><td>204243</td><td></td></tr><tr><td>4% paraformaldehyde</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P6148</td><td>Reagent grade, crystalline</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5368</td><td>Phosphate buffered saline</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td>X100</td><td></td></tr><tr><td>Bovine serum albumin (BSA)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Rhodamine red-conjugated phalloidin</td><td>Life Technologies</td><td>R415</td><td>Rhodamine phalloidin is a high-affinity F-actin probe conjugated to the red-orange fluorescent dye, tetramethylrhodamine</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D9542</td><td></td></tr><tr><td>ProLong Gold Antifade Reagent</td><td>Life Technologies</td><td>P36934</td><td></td></tr><tr><td>LSM510 Meta Confocal System</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>LSM Zen 2007 Software</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Grace&amp;rsquo;s Insect medium (supplemented, 1x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G8142</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>L-histidine monohydrate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H8125</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Medium 199 (10x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M4530</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Medium 1066 (1x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C0422</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Hank&amp;rsquo;s Balanced Salts (1x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>51322C</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>L-Glutamine (100x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G3126</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>MEM, amino acid mix (50x)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>56419C</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>1 M MgCl solution</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M8266</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Pen-Strep (w/ glutamine)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G6784</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Nystatin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N6261</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Gentamycin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>46305</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D9434</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F2442</td><td>H2G+ leafhopper medium component</td></tr></tbody></table>

propagation of homalodisca coagulata virus-01 via homalodisca vitripennis cell culture

유리 날개 사격의 명수 (Homalodisca vitripennis)은 미국 남서부에 걸쳐 발견 매우 vagile 및 잡식성 곤충이다. 이 곤충은 Xylella fastidiosa (X를 fastidiosa)의 주된 벡터, 포도 나무의 피어스 병 (PD)의 인과 에이전트 목부 제한 박테리아입니다. 피어스 병은 경제적 피해이고; 따라서 H. vitripennis 병원체 관리 전략의 대상이되고있다. Homalodisca의 coagulata 바이러스-01 (HoCV-01)로 확인 dicistrovirus는 H.의 사망률 증가와 관련이있다 vitripennis 인구. 숙주 세포는 01-HoCV 복제에 필요하기 때문에, 세포 배양 물은 생물 농약과 물류 생산 경제적 가치가 타겟팅 복제 일정한 환경을 제공한다. 이 연구, H. 대규모 전파 시스템 조직 배양을 통해 vitripennis 세포가 개발 한 P바이러스 복제 메커니즘을 roviding. HoCV-01는 몸 전체의 곤충에서 추출하여 배양 된 H. 접종에 사용 된 다양한 수준에서 vitripennis 세포. 배지는 168 시간, RNA 추출 QRT-PCR 분석을위한 매 24 시간을 제거 하였다. 세포는 트리 판 블루로 염색하고 광학 현미경을 이용하여 세포의 생존 성을 정량화하는 계수 하였다. 항목의 바이러스 입자는 전체 세포 배양 붕괴가 발생하기 전에 것으로 결정된 시점이었다 감염 후 96 시간, 최대 추출 하였다. 세포는 형광 염색을 실시하고 F-액틴 및 첨부 핵 무결성에 바이러스 활성을 조사하기 위해 공 초점 현미경을 사용하여 보여졌다. 이 연구의 결론은 있다는 것이다 H. vitripennis 세포 배양 생물 농약의 생산을 허용하기에 적합한 수준으로 HoCV-01의 대량 생산을 위해 사용 가능하다.

세포 부착과 성장은 차 문화와 계속 통로에서, 크고 작은 문화 플라스크에 통과 48 시간 내 보였다. 섬유 아세포의 성장과 발전은이 시간 내에 관찰되었다. 새로 시드 플라스크 48 시간 전에 교란되었을 때,이, 세포 부착에 보이는 감소했다 때로는 느린 성장 문화와 전혀 첨부 파일 또는 성장을 선도. 세포는 전달의 1 주일 이내에 약 80 %의 합류했고, 10~14일 (그림 1)에서 단일 층을 형성했...

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Propagation of Homalodisca coagulata virus-01 via Homalodisca vitripennis Cell Culture

여기에서 우리는 시험 관내에서 Homalodisca vitripennis 세포와 HoCV-1을 전파하는 프로토콜을 제시한다. 중간 HoCV - 한 긍정적 인 문화에서 제거하고 RNA는 168 시간 동안 매 24 시간을 추출 하였다. 세포 생존은 트리 판 블루 염색에 의해 정량 하였다. 전체 바이러스 입자는 감염 후를 추출 하였다. 추출 된 RNA는 QRT-PCR에 의해 정량 하였다.

의 전파<em&gt; Homalodisca의 coagulata 바이러스-01</em&gt;를 통해<em&gt; Homalodisca vitripennis</em&gt; 세포 배양

The glassy-winged sharpshooter (Homalodisca vitripennis) is a highly vagile and polyphagous insect found throughout the southwestern United States. These ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Propagation of Homalodisca coagulata virus-01 via Homalodisca vitripennis Cell Culture

11.7K 조회수.  University of Texas at Tyler.  여기에서 우리는 시험 관내에서 Homalodisca vitripennis 세포와 HoCV-1을 전파하는 프로토콜을 제시한다. 중간 HoCV - 한 긍정적 인 문화에서 제거하고 RNA는 168 시간 동안 매 24 시간을 추출 하였다. 세포 생존은 트리 판 블루 염색에 의해 정량 하였다. 전체 바이러스 입자는 감염 후를 추출 하였다. 추출 된 RNA는 QRT-PCR에 의해 정량 하였다. 

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Detection of Infectious Virus from Field-collected Mosquitoes by Vero Cell Culture Assay

Mosquitoes transmit a number of distinct viruses including important human pathogens such as West Nile virus, dengue virus, and chickungunya virus. Many of these viruses have intensified in their endemic ranges and expanded to new territories, necessitating effective surveillance and control programs to respond to these threats. One strategy to monitor virus activity involves collecting large numbers of mosquitoes from endemic sites and testing them for viral infection. In this article, we describe how to handle, process, and screen field-collected mosquitoes for infectious virus by Vero cell culture assay. Mosquitoes are sorted by trap location and species, and grouped into pools containing &le;50 individuals. Pooled specimens are homogenized in buffered saline using a mixer-mill and the aqueous phase is inoculated onto confluent Vero cell cultures (Clone E6). Cell cultures are monitored for cytopathic effect from days 3-7 post-inoculation and any viruses grown in cell culture are identified by the appropriate diagnostic assays. By utilizing this approach, we have isolated 9 different viruses from mosquitoes collected in Connecticut, USA, and among these, 5 are known to cause human disease. Three of these viruses (West Nile virus, Potosi virus, and La Crosse virus) represent new records for North America or the New England region since 1999. The ability to detect a wide diversity of viruses is critical to monitoring both established and newly emerging viruses in the mosquito population.

We describe a method to process and screen field-collected mosquitoes for a diversity of viruses by Vero cell culture assay. By employing this technique, we have detected 9 different viruses from 4 taxonomic families in mosquitoes collected in Connecticut.

베로 세포 배양 분석하여 필드 수집 모기에서 감염성 바이러스의 검출

Mosquitoes transmit a number of distinct viruses including important human pathogens such as West Nile virus, dengue virus, and chickungunya virus. Many ...

연구

면역학 및 감염병학

Influenza Virus Propagation in Embryonated Chicken Eggs

Influenza infection is associated with about 36,000 deaths and more than 200,000 hospitalizations every year in the United States. The continuous emergence of new influenza virus strains due to mutation and re-assortment complicates the control of the virus and necessitates the permanent development of novel drugs and vaccines. The laboratory-based study of influenza requires a reliable and cost-effective method for the propagation of the virus. Here, a comprehensive protocol is provided for influenza A virus propagation in fertile chicken eggs, which consistently yields high titer viral stocks. In brief, serum pathogen-free (SPF) fertilized chicken eggs are incubated at 37 &#176;C and 55-60% humidity for 10 &#8211; 11 days. Over this period, embryo development can be easily monitored using an egg candler. Virus inoculation is carried out by injection of virus stock into the allantoic cavity using a needle. After 2 days of incubation at 37 &#176;C, the eggs are chilled for at least 4 hr at 4 &#176;C. The eggshell above the air sac and the chorioallantoic membrane are then carefully opened, and the allantoic fluid containing the virus is harvested. The fluid is cleared from debris by centrifugation, aliquoted and transferred to -80 &#176;C for long-term storage. The large amount (5-10 ml of virus-containing fluid per egg) and high virus titer which is usually achieved with this protocol has made the usage of eggs for virus preparation our favorable method, in particular for in vitro studies which require large quantities of virus in which high dosages of the same virus stock are needed.

Fertile chicken eggs are widely used to produce large amounts of human influenza A virus as they provide a convenient and cost-effective system to prove high yields of virus.

인간 백신 닭 계란에 인플루엔자 바이러스 전파

Influenza infection is associated with about 36,000 deaths and more than 200,000 hospitalizations every year in the United States. The continuous ...

A Simple and Efficient Approach to Construct Mutant Vaccinia Virus Vectors

The CRISPR-associated endonuclease Cas9 can edit particular genomic loci directed by a single guide RNA (gRNA). The CRISPR/Cas9 system has been successfully employed for editing genomes of various organisms. Here we describe a protocol for editing the vaccinia virus (VV) genome in the cytoplasm of VV-infected CV-1 cells using the RNA-guided Cas9. RNA-guided Cas9 induces double-stranded DNA breaks facilitating homologous recombination efficiently and specifically in the targeted site of VV and a transgene can be incorporated into these sites by homologous recombination. By using a site-specific homologous vector with transgene(s), a N1L gene-deleted VV with the red fluorescence protein (RFP) gene incorporated in this region was generated with a successful recombination efficiency 10 times greater than that obtained from the conventional homologous recombination method. This protocol demonstrates successful use of RNA-guided Cas9 system to generate mutant VVs with enhanced efficiency.

Vaccinia virus (VV) has been widely used in biomedical research and the improvement of human health. This article describes a simple, highly efficient method to edit the VV genome using a CRISPR-Cas9 system.

간단하고 효율적인 접근 방법은 돌연변이 백시 니아 바이러스 벡터를 구축하기

The CRISPR-associated endonuclease Cas9 can edit particular genomic loci directed by a single guide RNA (gRNA). The CRISPR/Cas9 system has been ...

Adenovirus-mediated Genetic Removal of Signaling Molecules in Cultured Primary Mouse Embryonic Fibroblasts

The ability to genetically remove specific components of various cell signalling cascades has been an integral tool in modern signal transduction analysis. One particular method to achieve this conditional deletion is via the use of the Cre-loxP system. This method involves flanking the gene of interest with loxP sites, which are specific recognition sequences for the Cre recombinase protein. Exposure of the so-called floxed (flanked by loxP site) DNA to this enzyme results in a Cre-mediated recombination event at the loxP sites, and subsequent excision of the intervening gene3. Several different methods exist to administer Cre recombinase to the site of interest. In this video, we demonstrate the use of an adenovirus containing the Cre recombinase gene to infect primary mouse embryonic fibroblasts (MEFs) obtained from embryos containing a floxed Rac1 allele1. Our rationale for selecting Rac1 MEFs for our experiments is that clear morphological changes can be seen upon deletion of Rac1, due to alterations in the actin cytoskeleton2,5. 72 hours following viral transduction and Cre expression, cells were stained using the actin dye phalloidin and imaged using confocal laser scanning microscopy. It was observed that MEFs which had been exposed to the adeno-Cre virus appeared contracted and elongated in morphology compared to uninfected cells, consistent with previous reports2,5. The adenovirus method of Cre recombinase delivery is advantageous as the adeno-Cre virus is easily available, and gene deletion via Cre in nearly 100% of the cells can be achieved with optimized adenoviral infection.

In this video we use an adenovirus carrying the Cre recombinase gene to infect primary mouse embryonic fibroblasts carrying a floxed Rac1 allele.

교양 차 마우스 배아 섬유아 세포의 신호 분자의 아데노 바이러스 - 매개 유전자 제거

The ability to genetically remove specific components of various cell signalling cascades has been an integral tool in modern signal transduction ...

생물학

Generating Recombinant Avian Herpesvirus Vectors with CRISPR/Cas9 Gene Editing

Herpesvirus of turkeys (HVT) is an ideal viral vector for the generation of recombinant vaccines against a number of avian diseases, such as avian influenza (AI), Newcastle disease (ND), and infectious bursal disease (IBD), using bacterial artificial chromosome (BAC) mutagenesis or conventional recombination methods. The clustered regularly interspaced palindromic repeats (CRISPR)/Cas9 system has been successfully used in many settings for gene editing, including the manipulation of several large DNA virus genomes. We have developed a rapid and efficient CRISPR/Cas9-mediated genome editing pipeline to generate recombinant HVT. To maximize the potential use of this method, we present here detailed information about the methodology of generating recombinant HVT expressing the VP2 protein of IBDV. The VP2 expression cassette is inserted into the HVT genome via an NHEJ (nonhomologous end-joining)-dependent repair pathway. A green fluorescence protein (GFP) expression cassette is first attached to the insert for easy visualization and then removed via the Cre-LoxP system. This approach offers an efficient way to introduce other viral antigens into the HVT genome for the rapid development of recombinant vaccines.

Herpesvirus of turkeys (HVT) is widely used as a vector platform for the generation of recombinant vaccines against a number of avian diseases. This article describes a simple and rapid approach for the generation of recombinant HVT-vectored vaccines using an integrated NHEJ-CRISPR/Cas9 and Cre-Lox system.

CRISPR/Cas9와 재조합 조류 Herpesvirus 벡터 생성 편집 진

Herpesvirus of turkeys (HVT) is an ideal viral vector for the generation of recombinant vaccines against a number of avian diseases, such as avian ...

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our knowledge of prevention and treatment of viral infection. The fruit fly Drosophila melanogaster has proven to be one of the most efficient and productive model organisms to screen for antiviral factors and investigate virus-host interaction, due to powerful genetic tools and highly conserved innate immune signaling pathways. The procedure described here demonstrates a nano-injection method to establish viral infection and induce systemic antiviral responses in adult flies. The precise control of the viral injection dose in this method enables high experimental reproducibility. Protocols described in this study include the preparation of flies and the virus, the injection method, survival rate analysis, the virus load measurement, and an antiviral pathway assessment. The influence effects of viral infection by the flies' background were mentioned here. This infection method is easy to perform and quantitatively repeatable; it can be applied to screen for host/viral factors involved in virus-host interaction and to dissect the crosstalk between innate immune signaling and other biological pathways in response to viral infection.

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

This protocol describes how to establish viral infection in vivo in Drosophila melanogaster using the nano-injection method and basic techniques to analyze virus-host interaction.

바이러스 성 감염 및 초파리 Melanogaster 상호 작용 호스트-바이러스의 분석의 설립

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our ...

Production of High-Titer Infectious Influenza Pseudotyped Particles with Envelope Glycoproteins from Highly Pathogenic H5N1 and Avian H7N9 Viruses

The occasional direct transmission of the highly pathogenic avian influenza A virus H5N1 (HPAI H5N1) and H7N9 to humans and their lethality are serious public health issues and suggest the possibility of an epidemic. However, our molecular understanding of the virus is rudimentary, and it is necessary to study the biological properties of its envelope proteins as therapeutic targets and to develop strategies to control infection. We developed a solid viral pseudotyped particle (pp) platform to study avian influenza virus, including the functional analysis of its hemagglutinin (HA) and neuraminidase (NA) envelope glycoproteins, the reassortment characteristics of the HAs and NAs, receptors, tropisms, neutralizing antibodies, diagnosis, infectivity, for the purposes of drug development and vaccine design. Here, we describe an experimental procedure to establish pps with the envelope glycoproteins (HA, NA) from two influenza A strains (HAPI H5N1 and 2013 avian H7N9). Their generation is based on the capacity of some viruses, such as murine leukemia virus (MLV), to incorporate envelope glycoproteins into a pp. In addition, we also detail how these pps are quantified with RT-qPCR, and the infectivity detection of native and mismatched virus pps depending on the origin of the HAs and NAs. This system is highly flexible and adaptable and can be used to establish viral pps with envelope glycoproteins that can be incorporated in any other type of enveloped virus. Thus, this viral particle platform can be used to study wild viruses in many research investigations.

This protocol describes an experimental process to produce high-titer infectious viral pseudotyped particles (pp) with envelope glycoproteins from two influenza A strains and how to determine their infectivity. This protocol is highly adaptable to develop pps of any other type of enveloped viruses with different envelope glycoproteins.

고병원성 H5N1 및 조류 H7N9 바이러스의 엔벨로프 당단백질을 가진 고적퇴력 감염성 인플루엔자 슈도타입 입자 의 생산

The occasional direct transmission of the highly pathogenic avian influenza A virus H5N1 (HPAI H5N1) and H7N9 to humans and their lethality are serious ...

A Cell Culture Model for Producing High Titer Hepatitis E Virus Stocks

Hepatitis E virus is the leading cause of liver cirrhosis and liver failure with increasing prevalence worldwide. The single-stranded RNA virus is predominantly transmitted by blood transfusions, inadequate sanitary conditions and contaminated food products. To date the off-label drug ribavirin (RBV) is the treatment of choice for many patients. Nonetheless, a specific HEV treatment remains to be identified. So far, the knowledge about the HEV life cycle and pathogenesis has been severely hampered because of the lack of an efficient HEV cell culture system. A robust cell culture system is essential for the study of the viral life cycle which also includes the viral pathogenesis. With the method described here one can produce viral titers of up to 3 x 106 focus forming unit/mL (FFU/mL) of non-enveloped HEV and up to 5 x 104 FFU/mL of enveloped HEV. Using these particles, it is possible to infect a variety of cells of diverse origins including primary cells and human, as well as animal cell lines. The production of infectious HEV particles from plasmids poses an infinite source, which makes this protocol exceedingly efficient.

Described here is an effective method on how to produce high viral titer stocks of hepatitis E virus (HEV) to efficiently infect hepatoma cells. With the presented method, both non-enveloped, as well as enveloped viral particles can be harvested and used for inoculating various cell lines.

높은 티더 E 바이러스 주식을 생산하기위한 세포 배양 모델

Hepatitis E virus is the leading cause of liver cirrhosis and liver failure with increasing prevalence worldwide. The single-stranded RNA virus is ...

Mosquito-Associated Virus Isolation from Field-Collected Mosquitoes

With the broad application of sequencing technologies, many novel virus-like sequences have been discovered in arthropods, including mosquitoes. The two main categories of these new mosquito-associated viruses are &#34;mosquito-borne viruses (MBVs)&#34; and &#34;mosquito-specific viruses (MSVs)&#34;. These novel viruses might be pathogenic to both vertebrates and mosquitoes, or they could just be symbiotic with mosquitoes. Entity viruses are essential to confirm the biological characters of these viruses. Thus, a detailed protocol has been described here for virus isolation and amplification from field-collected mosquitoes. First, the mosquito samples were prepared as supernatants of mosquito homogenates. After centrifugation twice, the supernatants were then inoculated into either mosquito cell line C6/36 or vertebrate cell line BHK-21 for virus amplification. After 7 days, the supernatants were collected as the P1 supernatants and stored at -80 &#176;C. Next, P1 supernatants were passaged twice more in C6/36 or BHK-21 cells while the cell status was being checked daily. When cytopathogenic effect (CPE) on the cells was discovered, these supernatants were collected and used to identify viruses. This protocol serves as the foundation for future research on mosquito-associated viruses, including MBVs and MSVs.

Numerous novel virus-like sequences have been found in mosquitoes due to the extensive use of sequencing technologies. We provide an effective procedure for isolating and amplifying viruses using vertebrate and mosquito cell lines, which might serve as the basis for future studies on mosquito-associated viruses, including mosquito-borne and mosquito-specific viruses.

현장에서 채취한 모기로부터 모기 관련 바이러스 분리

With the broad application of sequencing technologies, many novel virus-like sequences have been discovered in arthropods, including mosquitoes. The two ...

Cellular Impedance-Based Survival Kinetics Assay to Assess Virus Survival

Source: Labadie, T. et al., <a href="https://app.jove.com/v/61133">Monitoring Influenza Virus Survival Outside the Host Using Real-Time Cell Analysis.</a> J. Vis. Exp. (2021).
This video describes a cellular impedance-based technique to study the survival kinetics of viruses that induce cytopathic effects. The method measures the electrical impedance of virus-infected adherent cells pre-treated with saline.

바이러스 생존을 평가하기 위한 세포 임피던스 기반 생존 역학 분석

Source: Labadie, T. et al., Monitoring Influenza Virus Survival Outside the Host Using Real-Time Cell Analysis. J. Vis. Exp. (2021).
This video describes ...

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