Name: in vivo imaging and tracking of technetium-99m labeled bone marrow mesenchymal stem cells in equine tendinopathy
Uploaded: 2015-12-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 52 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Imaging and Tracking of Technetium-99m Labeled Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Equine Tendinopathy at JoVE.com

The authors would like to acknowledge funding from the Horserace Betting Levy Board U.K. (grant number 721) and VetCell BioScience Ltd, U.K. and by Consejer&#236;a de Innovaci&#242;n, Ciencia y Empresa, Junta de Andaluc&#236;a, Spain.

여기에 설명 된 경우는 실과 드 Veterinarios 드 말라가, 스페인의 동물 윤리 복지위원회, 왕립 수의과 대학, 노스 Mymms, 영국 말에 사용 된 절차에 의해 부여 윤리 허가 다음을 수행 하였다는 승인 된 프로토콜을 기반으로합니다 이식 후 진정 작용, 골수 흡인, 내 건의 주입, 지역 관​​류, 정맥 주사, 시술 후 치료 및 통증 관리 및 모니터링을 포함 줄기 세포 기반 치료를받는 말에 병원에서 사용. 1. 키 배열은 사전에 수 <ol><li> 기관 윤리 및 동물 복지의 승인을 받아야하고 작업을 시작하기 전에 지역의 법적 요구 사항을 준수. </li><li> 인력의 적절한 수준의 보호와 환경과 CONTAM의 처분을 포함하여 지역 및 법률 규정에 의해 결정으로 이온화 방사선 작업 할 제도적 승인을 받아야inated 폐기물. </li><li> 다음과 같은 포함 기준을 사용 앞다리와 건 내 결함 및 결함의 결과로 병변의 표면 굴곡 디지털 건에 비 외상성 과도한 긴장 부상 (건 병증 또는 desmopathy)와 현재 말하는 것은 그대로 힘줄 및 / 또는 paratenon에 둘러싸여 . 참고 : 이러한 부상과 세포 주입 말의 임상 준비를위한 검사 및 진단은 다른 곳에서 -6,15- 자세한되었습니다. 참고 : 말의 골수에서 유래 BMMSC의 문화의 분리 및 확장 이전 -6,16- 자세히 설명하고있다. 말에 SDFT 부상에 대한 BMMSC를 주입하기위한 현재의 프로토콜은자가 골수 상층 액 (BMS) 16 ml의 4 당 천만 세포를 사용합니다. </li><li> 높은 통로 번호 C와 관련된 잠재적 인 세포 표현형 또는 유전 적 변형을 방지하기 위해 생체 내 이식에 대한 더 이상의 4 구절을 시행하지 않은 세포를 사용하여ELL 학생. </li><li> BMS의 셀을 제공 할 필요 매수 (도 4에서 냉각 상자의 24 시간 이내 - O 8의 C) 세포 주입이 수행 될 수 의학적 클리닉. 주 : 골수 상등액 간엽 줄기 세포를 임상 적으로 사용이 허가를 요구할 수있다 ReCellerate INC (미국) 및 그것의 사용에 의해 소유 특허 절차이다. 참고 : Tc를-99m는 비교적 짧은 반감기를 가진 감마 이미 터 (140 keV의)이다 (6.0058 시간, 따라서 그것의 거의 94 %가 24 시간에서 99 Tc를의 안정적인 형태로 붕괴). 감마 에너지는 말과 ​​동물 취급 담당자 모두 매우 제한된 방사선 노출 시간에 감마 카메라 (신티) 및 짧은 반감기에 의한 검출 결과에 적합한다. 이 프로토콜은 [HMPAO (소디움 퍼 테크네 테이트 등) Tc를-99m로 표지] 테크네튬 99m-HMPAO를 사용하여 세포의 현장 라벨링을 설명한다. </li><li> 이 세포 재치를 라벨에 대한 전달 및 사용되도록 공급 업체 신선한위원회-99m 주문는 TC-99m 발생기로부터 용출의 2 시간을 힌. 는 TC-99m는 1 ml의 용액 (공급 업체의 표준 버퍼)에 1 GBq로 제공되어 있는지 확인합니다. </li><li> 실온에서 모든 버퍼를 사용합니다. 라벨 절차를 수행, 알코올로 세척 모든 장비와 동위 원소 봉쇄 방에있는 세포와 영상 (감마 신티)의 주입은 이전 작업의 시작 정리합니다. </li></ol> 앞다리 힘줄의 말과 초음파 2. 준비 <ol><li> 시점에서 다음 제 (골수 흡인) 부상의 입학 및 기록 초음파 검사는 방사성 표지 된 세포를 주입하는 경우. </li><li> 말은 마구간에 균등하게 무게를 베어링으로​​하고 (오히려 전신 마취보다) 진정 작용을 서에서 초음파 검사 및 세포 이식을 수행합니다. 0.01-0.02 ㎎ / ㎏의 IV에 detomidine HCl 및 타르타르산 부토 르파 놀의 혼합물을 사용하여 각각의 진정 작용을 관리. 참고 : 복구가 신속하고 수술이며 치료가 더 필요합니다특별한 고려 사항. </li><li> 신경초 마취가 영향을받는 사지에서 (단계 2.6)를 적용하면 치료 기간 동안 말의 움직임을 줄이기 위해 진정에 따라 역에서 말을 유지. 시각적으로 인하 머리 위치와 말의 태도에서와 말 세포 주입 및 신티 이미지의 취득시 감마 카메라의 움직임 동안 편안하다고 판단 진정 작용의 적절한 수준을 확인합니다. 참고 :이 때문에 진정 깜박임에서 눈 (건조를 방지하기 위해)에 수의사 연고를 적용 할 영향을받지 않습니다 필요하지 않으며 말은 눈의 수분을 유지 할 수 있습니다. 세포 주입 후 모니터링은 비 침습적 (초음파 감마 신티)이다. </li><li> 클립은 밀접하게 (말 머리 가위와) 힘줄 위에 놓인 머리는 결국 알코올 클로르헥시딘 수술 스크럽의 조합을 사용하여 클리핑 영역을 청소합니다. </li><li> 지역에 음향 커플 링 젤을 적용하고직렬 온 입사 종횡 이미지를 획득하기 위해 선형 변환기 (12 MHz 또는 이와 유사한 것)과, (7) (17) - 완전한 손바닥 장골 영역의 스캔 순차적 표시된 레벨 1을 기록 조직적 스캔. 단면적과 최대 부상 영역 (4)이 화상 해석 소프트웨어의 도움으로 얻어 질 수 있도록 디지털 이미지를 저장한다. </li><li> 건과 표면 디지털 굴근 건을 덮는 피부의 완전한 탈감작을 보장하기 위해 국소 마취제의 무균 주입을위한 손목에 즉시 말초 신경 손바닥 위에 놓인 영역을 준비합니다. mepivicaine 2 ㎖을 피하로하고 (그 서브 근막 위치) 손바닥 신경에 인접 굴근 힘줄 사이에 다리의 양쪽에서 손목 바로 원위 현수 인대 모두를 주입. </li><li> 예비 스캔 클로르헥시딘 외과 영역들로 세정하여 이식 장소 준비를 수행되면crub의 적어도 5 분 솔루션 그리고 마지막으로 알코올 흠뻑 젖은 거즈와. 무균 방식으로 이후의 모든 단계를 수행합니다. </li></ol> 말 중간 엽 줄기 세포의 3 Tc를-99m-표시 주 : 셀 라벨링 단계는 힘줄로 셀 라벨 표지 된 세포의 이식 사이 최소화 동위 원소 붕괴 등의 앞다리 초음파 동안 수행 될 수있다. <ol><li> 이 동위 원소의 흡수 방해로 세포에서 BMS를 제거합니다. 이를 위해서는, 냉각 상자 BMMSC의 바이알 (BMS 1 ㎖에 1000 만 세포)를 검색하고 RT에서 5 분 동안 350 XG에서의 microcentrifuge에서 세포 펠렛. 조심스럽게 세포 재 부유를 돕기 위해 튜브의 작은 방울 (≤0.1 ml)에두고, 18G 또는 (2 ML의 주사기에 부착) 19G 바늘 뜨는을 제거합니다. 멸균 microcentrifuge 관에 뜨는 (BMS)을 저장하고 나중에 다시 사용하기 위해 얼음에 보관하십시오. </li><li> FL하여 상등액의 잔여 액적에서 세포를 재현 탁(오히려 소용돌이보다) 손가락으로 부드럽게 튜브를 icking하고 실온에서 랙에 튜브를 둡니다. 세포가 완전히 재현 탁하고 눈에 보이는 세포 덩어리가 없는지 확인합니다. </li><li> 다음과 같이 Tc를-99m을 준비합니다. 테크네튬의 양도 1 ml를 1 ML의 주사기와 바늘을 사용 HMPAO의 유리 병에 퍼 테크네 테이트. 부드럽게 잘 혼합 납 차폐 뒤 5 분 동안 둡니다. 참고 : 세포 단계 2.1에서 회전하는 동안이 단계를 수행 할 수 있습니다. </li><li> 세포 1 ML의 주사기와 바늘을 사용하여 Tc를-99m-HMPAO 혼합물을 모두 추가하고 부드럽게 섞는다. 납 차폐 뒤에 RT에서 30 분 동안 배양한다. </li><li> 다음 단계는, 동위 원소 (낀)의 엄지 손가락의 오염이어서 다른 장비를 최소화하기 위해 마이크로 원심 튜브의 뚜껑을 여는 집게 (또는 티슈 종이)를 사용한다. 추가하거나 세척 버퍼를 제거하기 위해 2 ML의 주사기와 21 G 바늘을 사용합니다. 주 : 필드 동위체 모니터의 사용 및 장비의 표면의 오염을 모니터링하도록 권장된다. </lI&gt; <li> 뚜껑을 닫고 부드럽게 혼합 스핀 단계 3.1에서와 같이 세포를 펠렛, TC를-99m-HMPAO 세포 혼합물에 1 ml의 PBS를 추가합니다. </li><li> 조심스럽게 새로운 튜브 (W1으로 납 차폐 및 레이블 뒤에이 저장)에 PBS를 제거합니다. 신선한 PBS 1 ml의 세포 펠렛을 재현 탁. 튜브를 원심 분리기와 (W2로이와 라벨을 저장) 위와 같이 뜨는을 제거합니다. </li><li> W1 및 W2 튜브 및 세포 펠렛에 카운트를 측정하여 라벨링의 효율을 계산한다. 잘 동위 원소 선량 교정 기기의 각 튜브를 배치하고 분 (CPM) 당 카운트로 방사능을 기록하여이 작업을 수행합니다. (세포의 CPM 같은 방사능)로서 라벨링 효율을 계산 / (방사능 세포 상등액 +) × 100. </li><li> BMS는 3.1 단계에서 저장 한 추가 후 잔여 PBS로 철저하게 세포를 재현 탁하고. 세포 병변 내 주입에 대한 준비가되어 있습니다. </li></ol> Tc를-99m-HMPAO 표지 세포의 4. 주입 <ol><li> 병변 내 주입초음파지도하에 건에 <ol><li> 천천히 바늘 맞춰 1.5 2 인치 (50mm) 멸균 드레이프에 덮여 초음파 변환기와 길이 방향으로 환부의 최대 부상 구역으로 20 G 바늘을 도입 니들의 길이가 수 있으므로 바늘 정확하게 병변의 중심에있는 경우 ultrasonographically 식별 할 팁. </li><li> 2 mL의 주사기에 세포를 수집, 적절한 차폐를 사용하여 20 G 바늘을 사용하여 (루어 락은 외부 오염의 위험과 리드 실드 커버에 주사기를 최소화하기 위해). 유체를 분실하지 않도록주의 바늘을 폐기​​하십시오. 이제 니들 건에 미리 위치 상에 표시된 세포를 주사기를 연결합니다. </li><li> 조직에 바늘 기관이 명확하게 볼 수 있도록 바늘에서 초음파 프로브를 놓습니다. 병변에 느리지 만 꾸준한 속도로 세포를 주입한다. 주입에 아무 저항이 없음을 확인합니다. 이 발생하는 경우조심스럽게 초음파 유도하에 바늘의 위치를​​ 변경. 병변에 유체 방출이 hyperechogenic 기포를 포함 무반향 유체로 초음파 영상에서 볼 수 있는지 확인합니다. </li><li> 바늘을 인출 즉시 분사 셀의 손실을 방지하고, 사지의 외부 표면에 걸쳐 동위 원소의 확산을 최소화하기 위해 바늘 구멍을 통해 압력을 배치했다. 즉시 autoadhesive 붕대의 한 층으로 사지를 드레스. 말은 지금 감마 신티에 대한 준비가되어 있습니다. 바로이 작업을 수행합니다. 주 : 힘줄로 세포를 주입 한 후, 주사기에 남아있을 수 직접적인 세포 손실을 평가하기 위해 빈 주사기 바늘의 개수를 획득. </li></ol></li><li> Tc를-99m-HMPAO 표지 세포의 지역 관​​류 <ol><li> 2.4 단계를 따릅니다. </li><li> 내측 및 측면에 위치 두 개의 100mm면 롤 거즈 붕대 근위 장부에 100mm 고무 지혈대 붕대를 적용합니다. </li><li> 무균 일을 준비적어도 5 분 동안 수술 스크럽 클로르헥시딘 용액으로 세정하여 영역을 최종적으로 알코올에 적신 거즈 횡 근위 종자 골 뼈의 수준에 좌우 손바닥 정맥을 통해 디지털 전자 피부. 무균 방식으로 이후의 모든 단계를 수행합니다. </li><li> 헤파린 멸균 식염수로 작성하여 정맥 천자에 대한 21 G의 X의 ¾ &quot;(0.8 × 19mm) 나비 바늘 세트 100 mm 확장을 준비하고 측면 손바닥 디지털 정맥에 바늘을 소개합니다. 정맥가 입력되면 혈액이 부분적으로 확장 세트를 채울 것입니다. 루어 록 커넥터에 표시된 세포의 후속 주입을 용이하게하기위한 루어 잠금 고무 캡을 부착합니다. </li><li> 사전로드 PBS 20 ㎖ 주사기로 세포를 수집하여 PBS 19 ㎖ 중의 엽 줄기 세포를 희석. (- 40 초 30) (18) G (1.2 X 40mm) 느리지 만 꾸준한 속도로 피하 주사 바늘을 사용하여 고무 컵을 통해 세포를 적용합니다. syring에 미리로드 PBS 1 ㎖로 카테터를 플러싱이자형. </li><li> 다섯 4 × 4면 거즈 층으로 바늘 구멍을 통해 피부에 압력을 즉시 바늘을 제거하고. 그런 다음 근위 종자 골의 영역에 탄성 접착제 빛 붕대를 배치하고 주입 후 30 분 동안 자리에 지혈대를 둡니다. </li><li> 30 분 후 지혈대를 놓습니다. 말은 지금 감마 신티에 대한 준비가되어 있습니다. 주 : 세포를 주입 한 후, 주사기에 남아있을 수 직접적인 세포 손실을 평가하기 위해 빈 주사기 바늘의 개수를 획득. </li></ol></li></ol> 5. 감마 신티 <ol><li> 신티 이미지 <ol><li> 낮은 에너지, 평행 구멍 조준기를 장착 (20 % 대칭 창을 사용하여 140 KeV의 광전 피크로 설정) 감마 카메라와 평면 신티그라피 이미지를 획득. <ol><li> 단계 2.2에서와 같이 진정 말 서에 시간 0 후 모든 이미지를 얻습니다. 시간 0 scintigram 후, 주입시를 통해 빛 붕대를 교체패딩 붕대 테. 각 신티그라피 시험하기 전에이 붕대를 제거합니다. </li><li> &quot;연구 선택&quot;- - &quot;획득&quot;로 처리 소프트웨어를 사용하여 60 초마다 (256 256 매트릭스)에 대한 정적 인 이미지를 획득 &quot;뼈 정적&quot;옵션을. 이는 정적 모드 옵션 움직임 보정 모듈을 가지고 있지 않기 때문에 말 화상 획득 기간 동안 움직이지 않는 것이 필수적이다. </li><li> 병소 내 주사의 경우, 말단부에 손목에서 병변 영역으로부터 좌우 영상을 구 반대편 다리, 왼쪽 폐야 좌측 갑상선의 등가 영역. 앞다리 이미지 획득 동안 사지 반대측의 화상을 방지하기 위해 다리 사이 리드 화면 위치. 주입 (시간 0) 후의 5 분간의 영상을 획득 한 후 1, 3, 6, 12, 24, 36 및 48 시간에서. </li><li> 지역 관류를 들어, 5.1.1.3에 관해서는 측면과 등의 감마 이미지를 얻을 수 있습니다. 이미지 5 분 AF를 얻습니다터 지혈대 자료. 이 즉시 방출 지혈대 이전에 수를 평가하기 위해 세포를 주입 후에는 사지 이미지에 유용 할 수 있습니다 시간이 0이됩니다. 세포의 투여 후 1, 3, 6, 12, 24, 36 및 48 시간에 감마 영상을 얻었다. </li></ol></li><li> 이미지가 인수 한 후, 프로세스를 수동으로 &quot;Sokoloff&quot;색상 &quot;반전&quot;색상 선택 옵션을 사용하여 소프트웨어의 &quot;처리&quot;옵션을 사용하여 이미지. 이 병변 영역에 걸쳐 선택 마스크와 운동의 재 형성을 허용하는 다음 &quot;관심의 영역&quot;(ROI) 및 &quot;타원&quot;를 선택합니다. &quot;통계에 추가&quot;옵션을 선택하여 투자 수익 (ROI)을 통해 수를 가져옵니다. 관심 (ROI)의 동일 크기의 영역을 서로 다른 시간 지점에서 각 동물에 대한 기록을 확인합니다. </li><li> 이어서, 각 시점에서의 테크네튬의 붕괴에 대한 예측 카운트를 수정한다. 부패를 수정하기 위해 다음의 식을 사용하여= 전자 O를 - (0.693t는 / T 1/2) 붕괴가 시간 제로 방사능 수정 O는 동위 원소의 초기 활동, A는, T는 경과 시간이며, T 1/2 절반 동위 원소의 - 생활. 다음 식을 이용하여, 남은 세포의 비율을 해결하기 위해 시간 0에서 ROI의 백분율로서 각 시점에서의 보정 계수를 표현 : </li></ol></li></ol> 남은 세포 % (t) = 100 - {[(예측 붕괴 (t) - 감쇠 (t)가) / 감쇠 예측 (t)]을} × 100 부패 (T) = 투자 수익 (ROI) (t)는 / 투자 수익 (ROI) (0) × 100.

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Inflammation/Infection Taskgroup of the European Association of Nuclear Medicine.</a> European Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging. 37, 842-848 (2010).</li><li>Trela, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Scintigraphic+comparison+of+intra-arterial+injection+and+distal+intravenous+regional+limb+perfusion+for+administration+of+mesenchymal+stem+cells+to+the+equine+foot.">Scintigraphic comparison of intra-arterial injection and distal intravenous regional limb perfusion for administration of mesenchymal stem cells to the equine foot.</a> Equine Veterinary Journal. 46, 479-483 (2014).</li><li>Barbash, I. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+delivery+of+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cells+to+the+infarcted+myocardium:+feasibility,+cell+migration,+and+body+distribution.">Systemic delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells to the infarcted myocardium: feasibility, cell migration, and body distribution.</a> Circulation. 108, 863-868 (2003).</li><li>Heckl, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Future+contrast+agents+for+molecular+imaging+in+stroke.">Future contrast agents for molecular imaging in stroke.</a> Current Medicinal Chemistry. 14, 1713-1728 (2007).</li></ol>

JD and RKS are Scientific Advisory Board members to ReCellerate Inc.

골수 외에도, 이러한 지방 조직과 같은 소스로부터 격리 줄기 세포는이 프로토콜에 표시하기에 적합하다. 또한, 냉동 상태에서 세포 부활 및 라벨 연구 (12)에 대해 원하는 번호로 문화 확장 할 수있다. BMMSC 레이블의 효율성을 결정하는 중요한 요소는 radiopharmacy에서 몰리브덴 발생기는 TC-99m의 용출 사이의 시간, Tc를-99m-HMPAO의 준비 및 병원에서 방사성 의약품의 사용?...

병에 걸린 또는 손상된 조직의 복구를위한 재생 전략은 영향을받는 영역으로의 다양한 조직으로부터 유도 된 다 능성 및 주입 된 줄기 세포를 기반으로한다. 말의 힘줄 및 인대 손상의 치료를위한자가 BMMSC의 응용 프로그램에서 최근 진보는 모두 실험 1-5에서 개선 된 결과 측정 및 임상 연구 (6)을 보여 주었다. 말은 나이 앓고 및 원위 앞다리의 힘줄에 관련 부상 과도한 긴장, 그것은 운동 동물 때문에 치료 관련 줄기 세포의 효능을 평가하는데 특히 매력적인 모델이며,이 큰 용이 골수 회복이며 정확한 주입. 힘줄 손상은 섬유화와 함께 자연스럽게 치유하지만 치유 건 7 기능적으로 열등하고 다시 부상 (8)의 위험이 있습니다. 이 탄성 에너지의 역할을하도록 진화로 표면 디지털 굴근 건 (SDFT)는 가장 일반적으로 영향을받는상점과 경험을 높은 부하는 에너지 효율과 고속 운동을 달성하기 위해 강조하고있다. 손상 후 기능을 복원 때문에 중요하다. 이 부상은 유사한 기능 (9)을 수행 인간의 아킬레스 건에 영향을 미치는 것과 유사하다. 따라서 세포 기반 재생 전략이 성과를 향상시키고 재 부상을 줄이기 위해 매력적인 기회를 제공, 치료 또는 부상에 대한 좋은 보수를 달성하기 위해 더 좋은 치료 옵션이 없습니다. 대부분의 연구에서 5-20000000자가 BMMSC 보통 따라서 세포 수용기로서 작용 건 본체의 코어 내에서 발생하는 병변에 직접 주입된다. 일단 주입 된 세포의 운명은 세포가 최근 기술되었다 추적 명확하고 다른 세포 표지 방법이 아니다. 형광 태그로 표시된 셀은 상대적으로 적은 수의 (&lt;10 %) 10, 11에서 생존 것으로 나타났다. 형광 라벨이 필요로시간을 소비하고하지 않는 조직 학적 분석을위한 조직 추출 및 단면은 쉽게 큰 동물 모델에서 임상의 경우 시간적 분석을 용이하게한다. 최근 연구에서 우리는 세포 레이블 및 감마 신티그라피 (1)에 의해 자신의 운명을 따라 방사성 동위 원소 99m Tc를 사용했다. 이 방법은 빠른 비교는 12 동맥 또는 정맥 주사를 통한 1,12- 경정맥 1 지역을 통해 정맥 내 관류 병변을 포함한 세포의 다른 전달 경로 사이에서 이루어질 수있다. 세포의 지속성과 분포는 다음 여러 장기의 감마 신티그라피에 의해 촬영 할 수 있습니다. 이것은 세포의 24 %가 24 시간 intralesionally (1)에 의해 병변에 남아 주입이 실험적으로 생성하여 병변과 같은 방사성 표지 (5)를 사용하여 다른 연구에 의해지지되는 것을 보여 주었다. 또한, 세포는 delivere 힘줄 병변으로 가정 제한 능력을 보여정맥 지역 관류 또는 의해 거라고하지만 후자의 노선 (4)에 의해 폐에 분산되어있다. 철 나노 입자로 표지 BMMSC는 앞다리 힘줄 (13)에 이식 된 세포를 추적 할 수있는 또 다른 방법이다. 철 나노 입자 표지 된 세포는 MRI에 의해 생체 내에서 세포의 추적을 허용하지만, 많은 동물 연구는 시간적 마취 MRI 스캔을 수행하기위한 각각의 시점에서 투여 할 수있는 횟수가 제한된다. 또한, 철 나노 입자는 건 본체로 표지화 된 세포의 이동에 대한 정보를 제한 MRI에 hypointense이다. 사용될 수있는 다른 방사성 동위 원소는 인듐-111을 포함하지만 이것 테크네튬 99m보다 더 긴 반감기의 불이익 (VS 2.8 일 6.0 시간) 및 높은 감마선 방사 에너지를 겪고있다. 인듐 - 111 (14)으로 표시 할 때뿐만 아니라, 세포 생존율이 감소 될 것으로보고되었다. TC-99m, 다른 한편으로는, 일상적으로 말 두 인간 핵에 사용약은 말초 혈액 단핵 세포를 라벨 및 신티그라피에 의해 생체 내에서의 분포를 따르십시오. 이것은 비교적 용이 세포, 테크네튬 99m-HMPAO 같은 테크네튬 바인딩 링커 분자로서 HMPAO을 이용하여 상기 셀에 의해 흡수 될 수있다. TC-99m-HMPAO는 BMMSC 좋은 가능성을 보여주고 체외 4에서 증식 할 수 표시. 이 프로토콜은 앞다리의 SDFT에서 자연적으로 발생하는 병변에 주입 라벨과 말자가 BMMSC의 추적을 자세히 설명합니다. 이것은 프로토콜 만 의도 연구 도구로서 이용 될 수 있음을 주목하는 것이 중요하다. 임상 치료 양상으로 그것의 사용은 완전히 해명되지 않은 세포 표현형에 방사성 표지의 효과하지 않는 것이 좋습니다.

<table><tbody><tr><td>Technetium&lt;sup&gt;99m&lt;/sup&gt;&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Please enquire with local ionisation radiation supplier in accordance with legal requirements.&amp;nbsp; The isotope must be used within 2 hr of elution from the molybdenum-99 generator</td></tr><tr><td>Ceretec - Hexamethylpropyleneamine oxime (HMPAO)&amp;nbsp;</td><td>GE HealthCare</td><td></td><td>Please enquire directly with GE HealthCare</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Microfuge, Minispin/Minispin Plus</td><td>Ependorf</td><td>22620100</td><td></td></tr><tr><td>18 G and 19 G Needles</td><td>Terumo Medical</td><td>NN-1838R (18 G);&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp; NN1938R (19 G)</td><td></td></tr><tr><td>Syringes 1 ml and 2 ml</td><td>Scientific Laboratory Supplies Ltd</td><td>SYR6200 (1 ml); SYR6003 (2 ml)</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifuge tubes 1.5 ml</td><td>Greiner Bio-One Ltd</td><td>616201</td><td></td></tr><tr><td>PBS - Phosphate-Buffered Saline</td><td>LifeTechnologies</td><td>14190</td><td></td></tr><tr><td>Sterile Gauze Swabs</td><td>Shermond Ltd</td><td>UNG602</td><td></td></tr><tr><td>CoflexVet self adhering bandage</td><td>Andover Healthcare, Inc.</td><td>3540RB-018</td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound imaging software</td><td>Scion Image, Scion Corporation, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MicasXplus Scintigram processing software</td><td>Bartec Technologies Ltd</td><td></td><td>http://www.bartectechnologies.com/veterinaryscintigraphy.html</td></tr><tr><td>Field isotope counter for monitoring isotope</td><td>John Caunt U.K.</td><td>GMS1800a</td><td>http://www.johncaunt.com/</td></tr><tr><td>Well counter for isotope measurements, dose calibrator</td><td>Capintec Southern Scientific</td><td>CRC-25R</td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo imaging and tracking of technetium-99m labeled bone marrow mesenchymal stem cells in equine tendinopathy

말의 힘줄 및 인대 손상의 치료를위한 골수 중간 엽 줄기 세포 (BMMSC)의 응용 프로그램에서 최근 진보는 실험과 임상 연구 모두에서 결과 측정을 개선하는 것이 좋습니다. BMMSC는 많은 수의 건 병변에 주입되어 있지만 (일반적으로 10-20000000 세포) 만 상대적으로 적은 수의 생존 (&lt;10 %)이가 이식 후 최대 5 개월 동안 지속될 수 있지만. 이 BMMSC 다른 조직으로 이식 된 다른 종의 일반적인 관측이 나타납니다이 손실이 많은 초기 주입 공정에서 살아남을 방법과 세포가 다른 장기로 삭제 여부, 발생했을 때 그것을 이해하는 것이 중요합니다. 세포의 운명을 추적하는 셀 위치 및 세포 수를 정량화의 생체 촬상의 비 침습적으로 허용 주입 BMMSC 전에 방사성 표지에 의해 달성 될 수있다. 이 프로토콜은 셀을 설명 labeli말의 부상 굴근 힘줄에 테크네튬 (TC-99m), 및 주입 다음이 세포의 추적을 사용 NG 절차. TC-99m 감마선을 방출 및 친 유성 화합물 hexamethylpropyleneamine 옥심 (HMPAO)의 존재 하에서 세포에 의해 내재화 될 수 단명 (t 1/2 6.01의 HR) 동위 원소이다. 이러한 속성은 여러 가지 질병의 진단을위한 핵 의학 클리닉에서 사용하기에 이상적이다. 표지 된 세포의 운명은 폐, 갑상선 및 다른 장기에 병변 세포의 분포에 보유 세포의 수를 모두 정량화 감마 신티 의한 단기 (36 시간까지)에 따라 될 수있다. 이 기술은 혈액 백혈구 라벨링 각색 및 다른 장기에 이식 BMMSC 이미지에 이용 될 수있다.

BMMSs에 TC-99m-HMPAO의 통합에 악영향을 조직 배양 플라스틱을 준수 할 수있는 능력에 영향을주지 않습니다 그리고 그들은 (그림 1) 단일 층을 형성하는 확산 능력을 표시하는 동안 우리는 확산 속도 또는 다른 세포 표현형이 영향을 받는지 완전히 결정하지 않았습니다. 이들의 형태는 전형적인 스핀들 모양으로 레이블이 지정되지 않은 세포와 유사하다. 세포의 표지 효율 (즉. 라?...

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In Vivo Imaging and Tracking of Technetium-99m Labeled Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Equine Tendinopathy

This protocol describes the radiolabeling of equine mesenchymal stem cells and their implantation into tendon injuries in the horse in order to determine cell survival and tissue distribution using gamma scintigraphy.

말 건 병증에 골수 중간 엽 줄기 세포를 레이블 테크네튬 99m의 생체 ​​이미징 및 추적에서

Recent advances in the application of bone marrow mesenchymal stem cells (BMMSC) for the treatment of tendon and ligament injuries in the horse suggest ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

In Vivo Imaging and Tracking of Technetium-99m Labeled Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells in Equine Tendinopathy

9.7K 조회수.  The Royal Veterinary College. This protocol describes the radiolabeling of equine mesenchymal stem cells and their implantation into tendon injuries in the horse in order to determine cell survival and tissue distribution using gamma scintigraphy.

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Labeling hESCs and hMSCs with Iron Oxide Nanoparticles for Non-Invasive in vivo Tracking with MR Imaging

In recent years, stem cell research has led to a better understanding of developmental biology, various diseases and its potential impact on regenerative medicine. A non-invasive method to monitor the transplanted stem cells repeatedly in vivo would greatly enhance our ability to understand the mechanisms that control stem cell death and identify trophic factors and signaling pathways that improve stem cell engraftment. MR imaging has been proven to be an effective tool for the in vivo depiction of stem cells with near microscopic anatomical resolution. In order to detect stem cells with MR, the cells have to be labeled with cell specific MR contrast agents. For this purpose, iron oxide nanoparticles, such as superparamagnetic iron oxide particles (SPIO), are applied, because of their high sensitivity for cell detection and their excellent biocompatibility. SPIO particles are composed of an iron oxide core and a dextran, carboxydextran or starch coat, and function by creating local field inhomogeneities, that cause a decreased signal on T2-weighted MR images. This presentation will demonstrate techniques for labeling of stem cells with clinically applicable MR contrast agents for subsequent non-invasive in vivo tracking of the labeled cells with MR imaging.

For the evaluation of new stem cell therapies it is important to non-invasively track the injected cells in vivo. This video will show you how to label human mesenchymal and embryonic stem cells with iron oxide based contrast agents in vivo for subsequent MR imaging in vivo.

이런 산화물로 hESCs과 hMSCs을 라벨링하는 MR 영상과 생체내 추적 비침습에 대한 Nanoparticles

In recent years, stem cell research has led to a better understanding of developmental biology, various diseases and its potential impact on regenerative ...

연구

생물학

Multi-modal Imaging of Angiogenesis in a Nude Rat Model of Breast Cancer Bone Metastasis Using Magnetic Resonance Imaging, Volumetric Computed Tomography and Ultrasound

Angiogenesis is an essential feature of cancer growth and metastasis formation. In bone metastasis, angiogenic factors are pivotal for tumor cell proliferation in the bone marrow cavity as well as for interaction of tumor and bone cells resulting in local bone destruction. Our aim was to develop a model of experimental bone metastasis that allows in vivo assessment of angiogenesis in skeletal lesions using non-invasive imaging techniques.
For this purpose, we injected 105 MDA-MB-231 human breast cancer cells into the superficial epigastric artery, which precludes the growth of metastases in body areas other than the respective hind leg1. Following 25-30 days after tumor cell inoculation, site-specific bone metastases develop, restricted to the distal femur, proximal tibia and proximal fibula1. Morphological and functional aspects of angiogenesis can be investigated longitudinally in bone metastases using magnetic resonance imaging (MRI), volumetric computed tomography (VCT) and ultrasound (US).
MRI displays morphologic information on the soft tissue part of bone metastases that is initially confined to the bone marrow cavity and subsequently exceeds cortical bone while progressing. Using dynamic contrast-enhanced MRI (DCE-MRI) functional data including regional blood volume, perfusion and vessel permeability can be obtained and quantified2-4. Bone destruction is captured in high resolution using morphological VCT imaging. Complementary to MRI findings, osteolytic lesions can be located adjacent to sites of intramedullary tumor growth. After contrast agent application, VCT angiography reveals the macrovessel architecture in bone metastases in high resolution, and DCE-VCT enables insight in the microcirculation of these lesions5,6. US is applicable to assess morphological and functional features from skeletal lesions due to local osteolysis of cortical bone. Using B-mode and Doppler techniques, structure and perfusion of the soft tissue metastases can be evaluated, respectively. DCE-US allows for real-time imaging of vascularization in bone metastases after injection of microbubbles7.
In conclusion, in a model of site-specific breast cancer bone metastases multi-modal imaging techniques including MRI, VCT and US offer complementary information on morphology and functional parameters of angiogenesis in these skeletal lesions.

In the pathogenesis of bone metastasis, angiogenesis is a crucial process and therefore represents a target for imaging and therapy. Here, we present a rat model of site-specific breast cancer bone metastasis and describe strategies to non-invasively image angiogenesis in vivo using magnetic resonance imaging, volumetric computed tomography and ultrasound.

자기 공명 영상, 체적 계산의 Tomography 및 초음파를 이용한 유방암의 뼈 전이의 누드 쥐 모델에서 Angiogenesis의 멀티 모달 이미징

Angiogenesis is an essential feature of cancer growth and metastasis formation. In bone metastasis, angiogenic factors are pivotal for tumor cell ...

의학

In Vivo Tracking of Human Adipose-derived Mesenchymal Stem Cells in a Rat Knee Osteoarthritis Model with Fluorescent Lipophilic Membrane Dye

In order to support the clinical application of human adipose-derived mesenchymal stem cell (haMSC) therapy for knee osteoarthritis (KOA), we examined the efficacy of cell persistence and biodistribution of haMSCs in animal models. We demonstrated a method to label the cell membrane of haMSCs with lipophilic fluorescent dye. Subsequently, intra-articular injection of the labeled cells in rats with surgically induced KOA was monitored dynamically by an in vivo imaging system. We employed the lipophilic carbocyanines DiD (DilC18 (5)), a far-red fluorescent Dil (dialkylcarbocyanines) analog, which utilized a red laser to avoid excitation of the natural green autofluorescence from surrounding tissues. Furthermore, the red-shifted emission spectra of DiD allowed deep-tissue imaging in live animals and the labeling procedure caused no cytotoxic effects or functional damage to haMSCs. This approach has been shown to be an efficient tracking method for haMSCs in a rat KOA model. The application of this method could also be used to determine the optimal administration route and dosage of MSCs from other sources in pre-clinical studies.

In Vivo Tracking of Human Adipose-derived Mesenchymal Stem Cells in a Rat Knee Osteoarthritis Model with Fluorescent Lipophilic Membrane Dye

This protocol describes an efficient way to monitor the cell persistence and biodistribution of human adipose-derived mesenchymal stem cells (haMSCs) by far-red fluorescence labeling in a rat knee osteoarthritis (KOA) model via intra-articular (IA) injection.

Vivo에서 인간 지방 유래 중간 엽 줄기 세포 형광 질 성 막 염료와 쥐 무릎 관절염 모델에서의 추적

In order to support the clinical application of human adipose-derived mesenchymal stem cell (haMSC) therapy for knee osteoarthritis (KOA), we examined the ...

발생학

Tracking Dynamics of Muscle Engraftment in Small Animals by In Vivo Fluorescent Imaging

Muscular dystrophies are a group of degenerative muscle diseases characterized by progressive loss of contractile muscle cells. Currently, there is no curative treatment available. Recent advances in stem cell biology have generated new hopes for the development of effective cell based therapies to treat these diseases. Transplantation of various types of stem cells labeled with fluorescent proteins into muscles of dystrophic animal models has been used broadly in the field. A non-invasive technique with the capability to track the transplanted cell fate longitudinally can further our ability to evaluate muscle engraftment by transplanted cells more accurately and efficiently.
In the present study, we demonstrate that in vivo fluorescence imaging is a sensitive and reliable method for tracking transplanted GFP (Green Fluorescent Protein)-labeled cells in mouse skeletal muscles. Despite the concern about background due to the use of an external light necessary for excitation of fluorescent protein, we found that by using either nude mouse or eliminating hair with hair removal reagents much of this problem is eliminated. Using a CCD camera, the fluorescent signal can be detected in the tibialis anterior (TA) muscle after injection of 5 x 105 cells from either GFP transgenic mice or eGFP transduced myoblast culture. For more superficial muscles such as the extensor digitorum longus (EDL), injection of fewer cells produces a detectable signal. Signal intensity can be measured and quantified as the number of emitted photons per second in a region of interest (ROI). Since the acquired images show clear boundaries demarcating the engrafted area, the size of the ROI can be measured as well. If the legs are positioned consistently every time, the changes in total number of photons per second per muscle and the size of the ROI reflect the changes in the number of engrafted cells and the size of the engrafted area. Therefore the changes in the same muscle over time are quantifiable. In vivo fluorescent imaging technique has been used primarily to track the growth of tumorogenic cells, our study shows that it is a powerful tool that enables us to track the fate of transplanted stem cells.

Tracking Dynamics of Muscle Engraftment in Small Animals by In Vivo Fluorescent Imaging

We describe an in vivo fluorescence imaging protocol to monitor muscle regeneration by GFP-labeled myoblasts after transplantation into skeletal muscles of both healthy and dystrophic mice. This protocol can be adapted to study muscle regeneration by transplantation of other types of cells and in other muscular conditions as well.

작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징

Muscular dystrophies are a group of degenerative muscle diseases characterized by progressive loss of contractile muscle cells. Currently, there is no ...

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in vivo demonstration of such cells has only recently been attained. Here, in vivo imaging techniques to investigate the role of endogenous osteogenic stem/progenitor cells (OSPCs) and their progeny in bone repair are provided. Using osteo-lineage cell tracing models and intravital imaging of induced microfractures in calvarial bone, OSPCs can be directly observed during the first few days after injury, in which critical events in the early repair process occur. Injury sites can be sequentially imaged revealing that OSPCs relocate to the injury, increase in number and differentiate into bone forming osteoblasts. These methods offer a means of investigating the role of stem cell-intrinsic and extrinsic molecular regulators for bone regeneration and repair.

Sequential In vivo Imaging of Osteogenic Stem/Progenitor Cells During Fracture Repair

Quantitative measurement of bone progenitor function in fracture healing requires high resolution serial imaging technology. Here, protocols are provided for using intravital microscopy and osteo-lineage tracking to sequentially image and quantify the migration, proliferation and differentiation of endogenous osteogenic stem/progenitor cells in the process of repairing bone fracture.

순차<em&gt; 생체 내</em&gt; 골절 치료시 골 형성 줄기 / 전구 세포의 이미징

Bone turns over continuously and is highly regenerative following injury. Osteogenic stem/progenitor cells have long been hypothesized to exist, but in ...

Tracking Mouse Bone Marrow Monocytes In Vivo

Real time multiphoton imaging provides a great opportunity to study cell trafficking and cell-to-cell interactions in their physiological 3-dimensionnal environment. Biological activities of immune cells mainly rely on their motility capacities. Blood monocytes have short half-life in the bloodstream; they originate in the bone marrow and are constitutively released from it. In inflammatory condition, this process is enhanced, leading to blood monocytosis and subsequent infiltration of the peripheral inflammatory tissues. Identifying the biomechanical events controlling monocyte trafficking from the bone marrow towards the vascular network is an important step to understand monocyte physiopathological relevance. We performed in vivo time-lapse imaging by two-photon microscopy of the skull bone marrow of the Csf1r-Gal4VP16/UAS-ECFP (MacBlue) mouse. The MacBlue mouse expresses the fluorescent reporters enhanced cyan fluorescent protein (ECFP) under the control of a myeloid specific promoter 1, in combination with vascular network labelling. We describe how this approach enables the tracking of individual medullar monocytes in real time to further quantify the migratory behaviour within the bone marrow parenchyma and the vasculature, as well as cell-to-cell interactions. This approach provides novel insights into the biology of the bone marrow monocyte subsets and allows to further address how these cells can be influenced in specific pathological conditions.

Tracking Mouse Bone Marrow Monocytes In Vivo

Monocytes are key regulators of innate immunity and play a critical role in the renewal of the peripheral mononuclear phagocytic system and in case of inflammation. This manuscript describes the procedure of real time imaging of the mouse calvaria bone marrow to study the monocyte mobilisation mechanism.

마우스 골수 단핵구를 추적<em&gt; 생체</em

Real time multiphoton imaging provides a great opportunity to study cell trafficking and cell-to-cell interactions in their physiological 3-dimensionnal ...

면역학 및 감염병학

Real-Time Imaging of CCL5-Induced Migration of Periosteal Skeletal Stem Cells in Mice

Periosteal skeletal stem cells (P-SSCs) are essential for lifelong bone maintenance and repair, making them an ideal focus for the development of therapies to enhance fracture healing.&#160; Periosteal cells rapidly migrate to an injury to supply new chondrocytes and osteoblasts for fracture healing. Traditionally, the efficacy of a cytokine to induce cell migration has only been conducted in vitro by performing a transwell or scratch assay. With advancements in intravital microscopy using multiphoton excitation, it was recently discovered that 1) P-SSCs express the migratory gene CCR5 and 2) treatment with the CCR5 ligand known as CCL5 improves fracture healing and the migration of P-SSCs in response to CCL5. These results have been captured in real-time. Described here is a protocol to visualize P-SSC migration from the calvarial suture skeletal stem cell (SSC) niche towards an injury after treatment with CCL5. The protocol details the construction of a mouse restraint and imaging mount, surgical preparation of the mouse calvaria, induction of a calvaria defect, and acquisition of time-lapse imaging.

This protocol describes the detection of CCL5-mediated periosteal skeletal stem cell migration in real-time using live animal intravital microscopy.

쥐에 있는 Periosteal 골격 줄기 세포의 CCL5 유도된 이동의 실시간 화상 진찰

Periosteal skeletal stem cells (P-SSCs) are essential for lifelong bone maintenance and repair, making them an ideal focus for the development of ...

Ultrasound-guided Intracardiac Injection of Human Mesenchymal Stem Cells to Increase Homing to the Intestine for Use in Murine Models of Experimental Inflammatory Bowel Diseases

Crohn&#39;s disease (CD) is a common chronic inflammatory disease of the small and large intestines. Murine and human mesenchymal stem cells (MSCs) have immunosuppressive potential and have been shown to suppress inflammation in mouse models of intestinal inflammation, even though the route of administration can limit their homing and effectiveness 1,3,4,5. Local application of MSCs to colonic injury models has shown greater efficacy at ameliorating inflammation in the colon. However, there is paucity of data on techniques to enhance the localization of human bone marrow-derived MSCs (hMSCs) to the small intestine, the site of inflammation in the SAMP-1/YitFc (SAMP) model of experimental Crohn&#39;s disease. This work describes a novel technique for the ultrasound-guided intracardiac injection of hMSCs in SAMP mice, a well-characterized spontaneous model of chronic intestinal inflammation. Sex- and age-matched, inflammation-free AKR/J (AKR) mice were used as controls. To analyze the biodistribution and the localization, hMSCs were transduced with a lentivirus containing a triple reporter. The triple reporter consisted of firefly luciferase (fl), for bioluminescent imaging; monomeric red fluorescent protein (mrfp), for cell sorting; and truncated herpes simplex virus thymidine kinase (ttk), for positron emission tomography (PET) imaging. The results of this study show that 24 h after the intracardiac administration, hMSCs localize in the small intestine of SAMP mice as opposed to inflammation-free AKR mice. This novel, ultrasound-guided injection of hMSCs in the left ventricle of SAMP mice ensures a high success rate of cell delivery, allowing for the rapid recovery of mice with minimal morbidity and mortality. This technique could be a useful method for the enhanced localization of MSCs in other models of small-intestinal inflammation, such as TNF&#916;RE6. Future studies will determine if the increased localization of hMSCs by intra-arterial delivery can lead to increased therapeutic efficacy.

Murine studies in models of colonic inflammation have demonstrated that a small percentage (1 - 5%) of mesenchymal stem cells (MSC) injected intravenously or intraperitoneally home to the inflamed colon1,2. This study shows that ultrasound-guided intracardiac injections of MSCs result in increased localization to the intestine.

초음파 유도 Intracardiac 주입 실험 선 동적인 장 질병의 Murine 모델에 사용 하기 위해 내장을 추적 증가 인간 중간 엽 줄기 세포의

Crohn&#39;s disease (CD) is a common chronic inflammatory disease of the small and large intestines. Murine and human mesenchymal stem cells (MSCs) have ...

Tracking Superparamagnetic Iron Oxide-labeled Mesenchymal Stem Cells using MRI after Intranasal Delivery in a Traumatic Brain Injury Murine Model

Stem cell-based therapies for brain injuries, such as traumatic brain injury (TBI), are a promising approach for clinical trials. However, technical hurdles such as invasive cell delivery and tracking with low transplantation efficiency remain challenges in translational stem-based therapy. This article describes an emerging technique for stem cell labeling and tracking based on the labeling of the mesenchymal stem cells (MSCs) with superparamagnetic iron oxide (SPIO)&#160;nanoparticles, as well as intranasal delivery of the labeled MSCs. These nanoparticles are fluorescein isothiocyanate (FITC)-embedded and safe to label the MSCs, which are subsequently delivered to the brains of TBI-induced mice by the intranasal route. They are then tracked non-invasively in vivo by real-time magnetic resonance imaging (MRI). Important advantages of this technique that combines SPIO for cell labeling and intranasal delivery include (1) non-invasive, in vivo MSC tracking after delivery for long tracking periods, (2) the possibility of multiple dosing regimens due to the non-invasive route of MSC delivery, and (3) possible applications to humans, owing to the safety of SPIO, non-invasive nature of the cell-tracking method by MRI, and route of administration.

Presented here is a protocol for non-invasive mesenchymal stem cell (MSC) delivery and tracking in a mouse model of traumatic brain injury. Superparamagnetic iron oxide&#160;nanoparticles are employed as a magnetic resonance imaging (MRI) probe for MSC labeling and non-invasive in vivo tracking following intranasal delivery using real-time MRI.

외상성 뇌 손상 뮤린 모델에서 비강 내 전달 후 MRI를 사용하여 수퍼 파라마그네틱 철 산화물 표지 메젠키말 줄기 세포 추적

Stem cell-based therapies for brain injuries, such as traumatic brain injury (TBI), are a promising approach for clinical trials. However, technical ...

In Vivo 4-Dimensional Tracking of Hematopoietic Stem and Progenitor Cells in Adult Mouse Calvarial Bone Marrow

Through a delicate balance between quiescence and proliferation, self renewal and production of differentiated progeny, hematopoietic stem cells (HSCs) maintain the turnover of all mature blood cell lineages. The coordination of the complex signals leading to specific HSC fates relies upon the interaction between HSCs and the intricate bone marrow microenvironment, which is still poorly understood[1-2].
We describe how by combining a newly developed specimen holder for stable animal positioning with multi-step confocal and two-photon in vivo imaging techniques, it is possible to obtain high-resolution 3D stacks containing HSPCs and their surrounding niches and to monitor them over time through multi-point time-lapse imaging. High definition imaging allows detecting ex vivo labeled hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs) residing within the bone marrow. Moreover, multi-point time-lapse 3D imaging, obtained with faster acquisition settings, provides accurate information about HSPC movement and the reciprocal interactions between HSPCs and stroma cells.
Tracking of HSPCs in relation to GFP positive osteoblastic cells is shown as an exemplary application of this method. This technique can be utilized to track any appropriately labeled hematopoietic or stromal cell of interest within the mouse calvarium bone marrow space.

In Vivo 4-Dimensional Tracking of Hematopoietic Stem and Progenitor Cells in Adult Mouse Calvarial Bone Marrow

The nature of the interactions between hematopoietic stem and progenitor cells (HSPCs) and bone marrow niches is poorly understood. Custom hardware modifications and a multi-step acquisition protocol allow the use of two-photon and confocal microscopy to image ex vivo labeled HSPCs homed within bone marrow areas, tracking interactions and movement.

성인 마우스 두개골 골수에서 조혈 줄기 및 전구 세포의 생체 내 4 차원 추적에서

Through a delicate balance between quiescence and proliferation, self renewal and production of differentiated progeny, hematopoietic stem cells (HSCs) ...

말 건 병증에 골수 중간 엽 줄기 세포를 레이블 테크네튬 99m의 생체 이미징 및 추적에서

요약

더 많은 비디오 탐색

이 비디오의 챕터

이런 산화물로 hESCs과 hMSCs을 라벨링하는 MR 영상과 생체내 추적 비침습에 대한 Nanoparticles

자기 공명 영상, 체적 계산의 Tomography 및 초음파를 이용한 유방암의 뼈 전이의 누드 쥐 모델에서 Angiogenesis의 멀티 모달 이미징

Vivo에서 인간 지방 유래 중간 엽 줄기 세포 형광 질 성 막 염료와 쥐 무릎 관절염 모델에서의 추적

작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징

순차

마우스 골수 단핵구를 추적

쥐에 있는 Periosteal 골격 줄기 세포의 CCL5 유도된 이동의 실시간 화상 진찰

초음파 유도 Intracardiac 주입 실험 선 동적인 장 질병의 Murine 모델에 사용 하기 위해 내장을 추적 증가 인간 중간 엽 줄기 세포의

외상성 뇌 손상 뮤린 모델에서 비강 내 전달 후 MRI를 사용하여 수퍼 파라마그네틱 철 산화물 표지 메젠키말 줄기 세포 추적

성인 마우스 두개골 골수에서 조혈 줄기 및 전구 세포의 생체 내 4 차원 추적에서

말 건 병증에 골수 중간 엽 줄기 세포를 레이블 테크네튬 99m의 생체 ​​이미징 및 추적에서

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이런 산화물로 hESCs과 hMSCs을 라벨링하는 MR 영상과 생체내 추적 비침습에 대한 Nanoparticles

자기 공명 영상, 체적 계산의 Tomography 및 초음파를 이용한 유방암의 뼈 전이의 누드 쥐 모델에서 Angiogenesis의 멀티 모달 이미징

Vivo에서 인간 지방 유래 중간 엽 줄기 세포 형광 질 성 막 염료와 쥐 무릎 관절염 모델에서의 추적

작은 동물의 근육 Engraftment의 역학에 의해 추적 VIVO에서 형광 이미징

순차

마우스 골수 단핵구를 추적

쥐에 있는 Periosteal 골격 줄기 세포의 CCL5 유도된 이동의 실시간 화상 진찰

초음파 유도 Intracardiac 주입 실험 선 동적인 장 질병의 Murine 모델에 사용 하기 위해 내장을 추적 증가 인간 중간 엽 줄기 세포의

외상성 뇌 손상 뮤린 모델에서 비강 내 전달 후 MRI를 사용하여 수퍼 파라마그네틱 철 산화물 표지 메젠키말 줄기 세포 추적

성인 마우스 두개골 골수에서 조혈 줄기 및 전구 세포의 생체 내 4 차원 추적에서

말 건 병증에 골수 중간 엽 줄기 세포를 레이블 테크네튬 99m의 생체 이미징 및 추적에서