Name: comparison of tobacco host cell protein removal methods by blanching intact plants or by heat treatment of extracts
Uploaded: 2016-08-08T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 6 s
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We would like to acknowledge Dr. Thomas Rademacher, Alexander Boes and Veronique Bei&#223; for providing the transgenic tobacco seeds, and Ibrahim Al Amedi for cultivating the tobacco plants. The authors wish to thank Dr. Richard M. Twyman for editorial assistance as well as G&#252;ven Edg&#252; for providing the MSP1-19 reference. This work was funded in part by the European Research Council Advanced Grant ''Future-Pharma'', proposal number 269110, the Fraunhofer-Zukunftsstiftung (Fraunhofer Future Foundation) and Fraunhofer-Gesellschaft Internal Programs under Grant No. Attract 125-600164.

1. 담배 식물 육성 <ol><li> 0.1 % [w / V] 비료 용액을 1 L로 1 탈 이온수 2 L이어서 각 미네랄 울 블록 플러시. 하나 담배 각 미네랄 울 블록의 씨앗과 씨앗 (16)을 멀리 세척하지 않고 비료 용액 0.25 L와 부드럽게 높이를 놓습니다. </li><li> 70 %의 상대 습도와 온실에서 16 시간의 광주 칠주에 대한 담배 식물 육성 (- 1m - 180 μmol 초 2, λ = 400-700 nm의)과 22분의 25 ℃로 빛 / 어둠 온도 정권. </li><li> 식물 줄기의 기지에있는 네 개의 자엽 잎을 제외한 모든 잎을 수확. </li></ol> 2. 선택 사항 : 열 강수량 표백제로 참고 : 창백하여 담배 HCP가 석출하기 위해 2.12에 단계 2.1 설명 된 단계를 수행합니다. HCP가이 침전 될 경우, 전체 섹션이 건너 뛰기가열 된 용기 (4 절) 또는 열교환 기 (섹션 5)를 사용한다. <ol><li> 식물 재료의 옆 50g을 설정하고 (3 장)를 희게하지 않고 추출을 실시한다. 이후 분석 (7) 동안 내부 통제로이 추출물의 샘플을 가져 가라. </li><li> 열 절연 발포 폴리스티렌 통 또는 이와 유사한의 8 L 작업 볼륨 수조, 예를 들면, 50 X 40 X 40cm를 설정합니다. 이후의 온도 제어 (단계 2.7)의 물을 욕조에 조정 가능한 온도 조절기를 탑재합니다. </li><li> 자기 볶음 접시에 전체 어셈블리를 전송하고 수조에서 자기 교반 막대를 배치합니다. 자기장은 교반 막대를 회전하기에 충분히 강한 지 확인합니다. </li><li> 폴리 프로필렌 바구니 (단계 2.6)이 창백 과정에서 나중에 배치 될 때 적어도 네 개의 지원 타일로 교반 막대를 둘러싸고 있습니다. 서포트 타일은 비자 성 재료 (예를 들어, 스테인리스 스틸 합금, 니켈 함유)로 제조되어 있는지, 그들이스터 바 (그림 2)보다 높다. </li><li> 수조에 탈 이온수 8 L을 추가합니다. 주 :. 낮은 pH 석출이 문제가되는 경우, 버퍼를 사용하여 예를 들어, 50 mM 인산 나트륨 (PH 7.5), 표적 단백질의 수율을 향상시킬 수있다. </li><li> 지원 타일에 23 X 23 X 23cm 폴리 프로필렌 바구니를 놓고 바구니가 교반 막대 회전을 방해하지 않도록하고 완전히 액체에 잠긴된다. 필요한 경우, 상기 바스켓이 완전히 잠길 때까지, 다시 바스켓을 제거 부가 물 / 버퍼를 추가한다. 주의 : 2.12까지 이후의 모든 단계는 뜨거운 액체의 처리를 포함한다. 열 절연 장갑을 포함하여 적절한 개인 보호 장비를 착용하십시오. </li><li> 70 ° C (또는 실험에 필요한 온도)에 수조를 가지고 조정 가능한 온도 조절기를 사용합니다. 원하는 온도가 화력에 도달 전체 조립을 보장하기 위해 도달 한 후 적어도 15 분을 기다립니다리터 평형. </li><li> 수확 된 담배 잎에서 150g 씩 준비. 찢어에 의해, 예를 들면 돌이킬 수없는 압축 및 잎의 손상을 피하면서 바구니에 하나 나누어 놓습니다. 식물 재료 또는 후자의 조밀 한 포장 바구니를 과도하게 채워지지 않도록합니다. </li><li> 조심스럽게하지만 빠르게 뜨거운 액체에 바구니 잠수함과 지원 타일에 놓습니다. 부상을 방지하기 위해 바스켓의 상부에 스테인레스 스틸 블록을 놓는다. </li><li> 창백 유체의 5 분의 잎을 품어, 또는 시간 실험 설계를 양복지를 선택합니다. 전 배양 기간 동안 상기 액체의 온도를 모니터한다. </li><li> 조심스럽게 창백 유체에서 바구니를 제거하고 30 초 동안 잎에서 잔류 액의 배출을 할 수 있습니다. 그런 식물이 바구니의 잎 걸릴 블렌더로 전송하고 즉시 추출 (3 절)를 시작합니다. 주 : 식물 희게 후 번째의 개시 전에 장시간 동안 유지 될 수있다전자 추출, 예를 들어, 30 개 이상의 얼음에 분 또는 몇 주 동안 -20 ℃에서 냉동이 성공적으로 테스트되었습니다. 그러나, 제품의 안정성은 저장 시간을 증가시키고, 따라서 즉시 처리가 권장으로 거부 할 수 있습니다. </li><li> 전체 수확 바이오 매스가 처리 될 때까지 반복 신선한 잎 재료로 2.11-2.8 단계를 반복합니다. </li></ol> 담배 잎 3. 단백질 추출 주의 : 다음 단계는 블레이드를 회전 믹서를 포함한다. 이 믹서 모터에 장착되는 동안 믹서 통에 작동하지 않습니다. <ol><li> 수확 (단계 1.3) 또는 연한 (단계 2.11)의 150g (젖은 질량)을 배치 믹서 잎 추출 완충액 (50 mM의 인산 나트륨, 500 mM 염화나트륨, 10 mM의 나트륨 디술, 산도 8.0) 450 ml에 추가 할 수 있습니다. 참고 : 추출 버퍼 조성물을 추출 할 수있는 단백질에 의존하여 다른 pH를 예를 들어, 조정, 사용을 필요로하거나 TR로 구성 요소를 버퍼링 할 수 있습니다이다. </li><li> 30 초는 휴식을 산재로 3 × 30 초 펄스의 잎을 균질화. 잎이 균질화하고 블렌더 버킷을 방해하지 않도록해야합니다. 믹서기를 중지하고 필요한 경우 막힘을 방지하기 위해 잎을 들어 올린 다음 균질화를 계속합니다. </li><li> 이후 분석 (7) 용으로 제작 된 각 추출물의 1 ml의 샘플을 가져 가라. 식물 재료를 희게하는 경우, 그렇지 않으면 선택한 실험 방법에 따라 용기에 열 강수량 (4 장) 또는 열교환 기 (섹션 5) 계속 부 (6)를 계속합니다. </li></ol> 4. 선택 사항 : 열 강수량 교반 용기에 주 : 교반 용기에 담배 HCP가 석출하기 위해 4.11에 섹션 4.2에 설명 된 단계를 실시한다. HCP가가 (2 절)를 희게하여 침전 된 또는 열교환 기 (섹션 5)을 사용하여 침전 될 경우, 전체 부 (4)를 건너 뜁니다. <ol><li> 2 개의 8-L 작업 다량의 물을 설정화장실, 예를 들어, 단열 스티로폼 또는 유사한 50 X 40 X 40cm. 첫 번째 목욕, 이후의 온도 제어 (단계 4.6)에 대한 조정 가능한 온도 조절기를 탑재합니다. 두 번째에서, 탈 이온수 5 L 이후 냉각 (단계 4.9) 얼음의 2kg을 추가합니다. </li><li> 자기 교반 플레이트 위에 제 수조로 이동하고, 용기의 중심이 교반 판의 중앙에 정렬되도록 수조에 2 L 스테인레스 스틸 용기를 배치했다. </li><li> 스테인레스 스틸 용기에 자기 교반 막대를 놓습니다. 자기장은 교반 막대를 회전하기에 충분히 강한 지 확인합니다. </li><li> 스테인레스 강 용기의 상부 에지 아래 5cm 탈 이온수로 물 중탕을 채운다. 그런 다음 추출 버퍼 용기를 입력합니다. 용기에 스티로폼 뚜껑을 놓습니다. 주의 : 4.9까지 이후의 모든 단계는 뜨거운 액체의 처리를 포함한다. 열 기능을 포함하여 적절한 개인 보호 장비를 착용ulated 장갑. </li><li> 폴리스티렌 발포체 뚜껑의 구멍을 통해 양복지 스테인리스 용기 내로 체온계를 삽입한다. 78 ° C의 물 중탕 온도를 설정하고, 열 평형에 도달하기 위해 15 분 동안 전 배양 한 조립체. 용기의 온도가 70 ° C의 물을 욕조의 세트 포인트 아래 약 8 °의 C 있는지 확인하십시오. </li><li> 스테인레스 강 용기의 온도가 70 ° C 다르면, 수조의 온도를 적절하게 조절하고 시스템이 또 다른 15 분 동안 평형을 보자. 용기의 온도가 70 ℃가 될 때까지 또는,​​ 실험에 필요한이 단계를 반복하고, 스테인리스 용기를 비우고. </li><li> 이 수조에있는 동안 스테인레스 스틸 용기로 추출한다 (단계 3.2) 300 ㎖에 붓고 타이머를 시작한다. 150 rpm에서 추출물을 약동하고 5 분 동안 품어. 추출물이 배양 기간 동안 적어도 2 분, 70 ° C의 온도에 도달 할 것을 보장한다. </li><li>, 자석 교반기에서 온수 목욕을 제거 스테인레스 스틸 용기를 꺼내 얼음처럼 차가운 통에 넣습니다. 자석 교반기에 후자를 놓고 스티로폼 뚜껑을 제거합니다. </li><li> 식물 파쇄 잘 150 rpm에서 교반되는 것을 확인 추출물에 온도계를 배치하고 20 ° C의 온도 또​​는 실험 디자인에 의해 특정 온도에 도달 할 때까지 배양한다. </li><li> 반복 4.7 모든 분취 4.9 단계를. 각 열을 1 ml의 샘플을 취하면 다음 섹션 6을 진행, 최종 온도에 도달하면 추출 침전. </li></ol> 5. 선택 사항 : 열교환 기에서 열 강수량 주 : 열 교환기를 사용하여 담배 HCP가 석출하기 위해 5.2 5.12 절에 설명 된 단계를 실시한다. HCP가가 (2 절)를 희게하거나 가열 된 용기 (4 절)에 침전 된 경우, 전체 섹션 5를 건너 뜁니다. <ol><li> 2 개의 8-L 가공 볼륨을 설정합니다물 목욕, 예를 들어, 열 절연 발포 폴리스티렌 버킷 또는 유사한 50 X 40 X 40cm. 첫 번째 목욕, 이후의 온도 제어 (단계 5.3)에 대한 조정 가능한 온도 조절기를 탑재합니다. 두 번째에서, 탈 이온수 5 L 이후 냉각 (단계 5.10) 얼음의 2kg을 추가합니다. 주의 : 5.9까지 이후의 모든 단계는 뜨거운 액체의 처리를 포함한다. 열 절연 장갑을 포함하여 적절한 개인 보호 장비를 착용하십시오. </li><li> 8 L 탈 이온수로 첫 번째 수조를 입력합니다. 온도 조절 장치를 사용하여 74.5 ° C로 온도를 설정합니다. 열 평형에 도달하는 15 분 동안 어셈블리를 품어. </li><li> 1-L 플라스틱 비커에 0.5 L 플라스틱 비커를 배치하여 절연 된 저장 용기를 준비하고 탈지면과 격차를 입력합니다. 또한, 0.5 L의 작업 볼륨으로 전용 단열 용기를 사용합니다. </li><li> 일단과 인접 콘센트 호스 연동 펌프에 열 교환기를 연결R L / S (24) 튜브를 사용하여 종료. 두 튜브는 절연 된 저장 용기에 온도계와 함께 종료 놓고 300 ml의 추출 버퍼 (그림 2)와 함께 입력합니다. </li><li> 온수 욕에 열교환기를 배치하고 300 mL의 분 -1의 속도로 연동 펌프를 시작한다. 선박의 결과 온도가 3 분 후, 70 ° C, 수조의 세트 포인트 아래 약 4.5 ° C인지 확인합니다. </li><li> 절연 된 - 용기의 온도가 70 ° C 다르면 그에 따라 수조의 온도를 조정하고, 시스템을 15 분 동안 평형을 보자. 이하의 3 분에서 70 ° C로 주위에서 추출 완충액의 온도가 증가 될 때까지이 단계를 반복하거나, 실험에 필요한 것 같다 및 스테인리스 용기를 비우고. </li><li> 절연 용기로부터 추출 버퍼를 취소하고 식물 추출물의 300 ml의 분취 량을 준비합니다. 하나 나누어으로 절연 용기를 입력합니다. </li><li> 5 분 동안 분 -1에서 300㎖의 열교환을 통해 식물 추출물 (3.3) 펌프. 추출 온도가 3 분 후 70 ° C, 또는 실험 설계에 정의 된 온도에 해당하는지 확인하십시오. </li><li> 추출액을 계속 펌핑되는 동안 5 분 후, 얼음 냉수 조 내에 열 교환기를 배치했다. 온도가 정확히 20 ° C에 도달하거나, 실험 설계에서 정의 된 온도까지이 설정 부화. </li><li> 절연 된 용기로부터 연동 펌프에 접속되는 급수 호스를 분리하고 열교환 기 내에서 잔열 침전 식물 추출물을 수집하기 위해 펌핑 계속한다. 그런 다음 펌프를 중지합니다. </li><li> 반복 5.7 모든 분취 5.10에 단계를 반복합니다. 그 다음 가방 여과 (6 절)에 추출물에 통과, 최종 온도에 도달하면 각 열 침전 추출물의 1 ml의 샘플을 가져 가라. 참고 : 첫 번째 사이클을 통해 5.10에 5.7 단계 이후에는 추출 버퍼가 없을 것단계 5.7에서 폐기하십시오. </li></ol> 플랜트 추출 6. 가방 여과 <ol><li> 필터 하우징 내로 끼워가요 필터 재료에 대한 기계적지지를 제공하는 대응하는지지 바스켓에 백 필터를 탑재. 바구니 아래에 1 L 용기를 놓고 150 ml의 분 -1의 속도로 가방 (선택한 열처리에 따라 3.3, 4.10 또는 5.11) 추출물의 분취 량을 적용합니다. </li><li> 여과 후, 탁도계를 사용하여 추출 완충액 여액 1:10 희석의 탁도를 측정한다. </li><li> 예를 들면, 깊이 여과 및 크로마토 그래피 7,10를 1 ml의 샘플을 가지고 실험 설계에 정의 된 가방 여과 액을 처리합니다. </li></ol> 7. 샘플 분석 <ol><li> 브래드 포드 (Bradford) 방법 (24, 25)를 사용하여 총 가용성 단백질 (TSP)의 양을 측정한다. <ol><li> 삼중에서, 하나의 웰에 각 샘플 2.5 μL 피펫96 웰 플레이트. 2,000 μg의 ml의 -1 - 범위 0을 포함 세중의 팔 소 혈청 알부민 (BSA) 표준을 포함합니다. </li><li> 거품을 형성하지 않도록 부드럽게 충분히 각 웰에 200 ㎕의 브래드 포드 시약을 추가하고 아래로 pipetting에 의해 철저하게 혼합하지만. </li><li> 22 ° C에서 10 분 동안 품어 분광 광도계로 595 nm에서 흡광도를 측정한다. BSA에 기준점을 통해 표준 곡선에 기초하여 샘플 내의 TSP 농도를 계산한다. </li></ol></li><li> 표면 플라스 몬 공명 분광기 (26)에 의해 정량화 Vax8. <ol><li> 설치 4- (2- 히드 록시 에틸) -1- 피페 라진 에탄 술폰산 (HEPES)을 실행 완충액으로 표면 플라즈몬 공명 기기 (10 mM의 HEPES, 3mM의 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 (EDTA), 1,500 mM 염화나트륨, 0.05 % V / V 폴리 소르 베이트 20, 산도 7.4) 장치로 카르복시 덱스 트란 표면에 칩을 탑재합니다. 시스템 플러시 주요한 기능을 사용하고 (30)의 유량을 갖는 수동 실행을 시작할μL 분 -1 플로우 셀 (1) 및 25 mM의 수산화 나트륨 60 초 산재 분사 회 60 초 2.를 주입 30mm의 염화수소 위에. </li><li> 500 μg의 용액 200 ㎕를 -1 단클론 항체 5.2 10 MM의 아세트산 나트륨 (산도 4.0)에서 솔루션을 준비합니다. 해동 1- 에틸 -3- (3- 디메틸 아미노 프로필 ) 카 보디이 미드 히드로 클로라이드 (EDC) 및 N의 -hydroxysuccinimide (NHS) 바이알 1 분 동안 16,000 × g으로 원심 분리하여 그들을. NHS의 70 μL와 EDC의 70 μl를 혼합하고 7 mm 플라스틱 병에 전송할 수 있습니다. </li><li> 10 ㎕의 분 -1의 유속으로 10 분 동안 EDC / NHS 유동 세포 하나 이상의 혼합물이 주사하여 카르복시 메틸화 된 덱스 트란 표면 칩 표면을 활성화. </li><li> 셀 2 만 흐름 흐름 경로를 설정합니다. 10 ㎕의 분 -1의 속도로 15 분 동안 주입하여 그것을 몇 단클론 5.2. </li><li> 전지 1 및 2를 흘러 분 -1 표면을 비활성화 5 μL의 속도로 7 분 동안 에탄올을 주입하는 유로 전환. 티암탉 25 mM의 수산화 나트륨 60 초 산재 주입 60 초 동안 두번 30mm의 염화 수소를 주입. </li><li> 30 μL 분의 속도로 19 기준 -1 180 초 - 샘플 및 MSP1을 주입한다. 1000 NG ml의-1 - Vax8 농도가 50 있는지 확인하십시오. HEPES에 미리 희석하여 준비가 필요 EDTA 및 폴리 소르 베이트 20 (HBSEP)를 포함하는 완충 식염수. </li><li> 플로우 셀 (2)의 그것과 플로우 셀 (1)의 피크 신호를 빼고 MSP (1)의 신호에 기초하여 샘플 내의 Vax8 농도 계산의 차이를 사용하여 500 - NG 용액 -1 알려진 단백질 농도 19 주사. </li><li> 30 ㎕의 분의 유속으로 60 초 동안 30mm의 염화 수소에 노출 19 주입 -1 - 각 시료 또는 MSP 한 후의 칩 표면을 재생성. </li></ol></li><li> 형광 분석법으로 정량을 DsRed <ol><li> 세중에서, 검은 반 아칸소의 단일 우물에 각 시료의 피펫 50 μL개 96 웰 플레이트. 225 μg의 ml의 -1 - 범위는 0 다루는 육을 DsRed 기준을 포함합니다. </li><li> 530 ± 30 nm의 여기 필터와, 분광 광도계의 590 ± 35 nm의 방출 필터를 사용하여 중복에서 형광을 측정한다. 을 DsRed 기준점 통해 표준 곡선에 기초하여 상기 샘플을 DsRed의 농도를 계산한다. </li></ol></li><li> 입도 분포의 측정 <ol><li> 1 ml의 이소프로판올로 큐벳을 세척 한 후 탈 이온수 2 ml의 먼지 입자를 제거 할 수 있습니다. 큐벳에 시료 850 μl를 피펫. </li><li> 제타 전위 및 입자 크기 분석기로 큐벳을 놓습니다. &quot;소프트웨어&quot;를 열고 재료로 &quot;단백질&quot;및 분산제와 같은 &quot;PBS&quot;와 수동 측정을 시작합니다. 25 ° C의 온도 및 180 초의 평형 시간을 선택합니다. </li><li> 173 °의 후방 산란에서 &quot;DTS0012&quot;셀 측정을 선택합니다. &quot;자동&quot;(SECURITY) 기능을 비활성화 확인측정 기간 동안 이온없이 산재 지연 3 회 측정을 선택합니다. </li><li> 측정 실험 뷰 샘플의 3 회 측정을 선택하여 완료되면 입도 분포 피크 프로파일을 조사한다. 은 &quot;볼륨 PSD&quot;탭을 선택합니다. </li></ol></li></ol>

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M., Boes, A., Fischer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rational+design+of+a+host+cell+protein+heat+precipitation+step+simplifies+the+subsequent+purification+of+recombinant+proteins+from+tobacco.">Rational design of a host cell protein heat precipitation step simplifies the subsequent purification of recombinant proteins from tobacco.</a> Biochem. Eng. J. 88, 162-170 (2014).</li><li>Buyel, J. F., Fischer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+juice+extractor+can+simplify+the+downstream+processing+of+plant-derived+biopharmaceutical+proteins+compared+to+blade-based+homogenizers.">A juice extractor can simplify the downstream processing of plant-derived biopharmaceutical proteins compared to blade-based homogenizers.</a> Process Biochem. 50, 859-866 (2014).</li><li>Beiss, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heat-precipitation+allows+the+efficient+purification+of+a+functional+plant-derived+malaria+transmission-blocking+vaccine+candidate+fusion+protein.">Heat-precipitation allows the efficient purification of a functional plant-derived malaria transmission-blocking vaccine candidate fusion protein.</a> Biotechnol. Bioeng. 112, 1297-1305 (2015).</li><li>Ma, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regulatory+approval+and+a+first-in-human+phase+I+clinical+trial+of+a+monoclonal+antibody+produced+in+transgenic+tobacco+plants.">Regulatory approval and a first-in-human phase I clinical trial of a monoclonal antibody produced in transgenic tobacco plants.</a> Plant Biotechnol. J. 13, 1106-1120 (2015).</li><li>Mahajan, P. V., Caleb, O. J., Singh, Z., Watkins, C. B., Geyer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Postharvest+treatments+of+fresh+produce.">Postharvest treatments of fresh produce.</a> Philos T R Soc A. 372, (2014).</li><li>Menzel, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimized+blanching+reduces+the+host+cell+protein+content+and+substantially+enhances+the+recovery+and+stability+of+two+plant+derived+malaria+vaccine+candidates.">Optimized blanching reduces the host cell protein content and substantially enhances the recovery and stability of two plant derived malaria vaccine candidates.</a> Front. Plant Sci. , (2015).</li><li>Buyel, J. F., Fischer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+complex+systems+using+the+design+of+experiments+approach:+transient+protein+expression+in+tobacco+as+a+case+study.">Characterization of complex systems using the design of experiments approach: transient protein expression in tobacco as a case study.</a> J. Vis. Exp. , e51216 (2014).</li><li>Buyel, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Procedure+to+evaluate+the+efficiency+of+flocculants+for+the+removal+of+dispersed+particles+from+plant+extracts.">Procedure to evaluate the efficiency of flocculants for the removal of dispersed particles from plant extracts.</a> J. Vis. Exp. , e53940 (2016).</li><li>Simonian, M. H., Smith, J. 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F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Numeric+simulation+can+be+used+to+predict+heat+transfer+during+the+blanching+of+leaves+and+intact.">Numeric simulation can be used to predict heat transfer during the blanching of leaves and intact.</a> Biochem. Eng. J. , (2015).</li><li>Mandal, M. K., Fischer, R., Schillberg, S., Schiermeyer, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibition+of+protease+activity+by+antisense+RNA+improves+recombinant+protein+production+in+Nicotiana+tabacum+cv.+Bright+Yellow+2+(BY-2)+suspension+cells.">Inhibition of protease activity by antisense RNA improves recombinant protein production in Nicotiana tabacum cv. Bright Yellow 2 (BY-2) suspension cells.</a> Biotechnol. J. 9, 1065-1073 (2014).</li><li>Welty, J. R., Wicks, C. E., Wilson, R. 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Characterization of the insolubilization of the interferon-induced p68 kinase.</a> J. Biol. Chem. 266, 9707-9711 (1991).</li></ol>

저자는 공개 할 관심의 충돌이 없습니다.

상기 열 강수량의 세 가지 방법을 효과적으로 모든 크로마토 그래피 정제 단계 (16, 17) 이전에 담배 HCP가 제거 할 수 있습니다. 그들은 예를 들어, 초기 제품 순도, guttation (29), 분비 단백질로 제한됩니다 모두 rhizosecretion 30 원심 추출 (31, 32)을, 증가하는 것을 목표로 다른 전략을 보완합니다. 표적 단백질은 1 개 이상의 분 ~ 60 ° C의 최소의 석출 온도를 ?...

현대 의료 시스템은 점점 바이오 단백질 (1)에 따라 달라집니다. 식물에서 이들 단백질을 생산하는 통상의 발현 시스템 2-4에 비해 낮기 때문에 병원체 부담 더 확장하는 것이 유리하다. 파괴적 추출 절차 탁도 5,000 혼탁 탁도 유닛 (NTUs)를 초과하고, 숙주 세포 단백질 (HCP)의 농도는 종종 95을 초과하는, 높은 입자 부담을 초래하기 때문에, 식물 유래 의약품의 하류 처리 (DSP)가 어려울 수 %의 [m / m] 5,6. 정교한 정화 절차 분산 입자 7-9를 제거하기 위해 필요하지만 크로마토 그래피 장비 HCP에 10,11의 효율적인 제거에 대한 이전 단계가있는 경우 초기 생성물 회수 중에 바인드 - 및 - 용출 모드로 동작하도록 저렴된다. 이것은 floccul를 이용하여 표적 단백질을 침전에 의해 하나를 달성 할 수있다개미 12 낮은 pH 13, 14,뿐만 아니라 HCP가 집계하도록하여. 불로 오스 -1,5- 비스 포스페이트 카르 복실 / 시게나 (RUBISCO), 담배 (된 담배)으로 녹색 식물에서 가장 풍부한 HCP의 선택적 응집은 폴리에틸렌 글리콜 (15)을 첨가하여 촉진하지만, 이것은 고가이고 대형과 양립 할 수있다 -scale 제조. 열처리는 예컨대 Vax8 같은 단백질 말라리아 백신 후보 솔루션 16-18에서 안정적으로 유지하면서, 변성 및 담배 HCP가 95 % 이상을 침전하는 것으로 나타났다. 온도 조절은 혈관을 교반 (II) (I) 희게, 즉 고온의 액체는 그대로 잎의 침지, 및 (iii) 열교환 기 (세 가지 접근법은 담배 HCP에의 열 유도 된 침전을 달성하기 위해 사용 된 그림 1) 16. 그대로 잎의 경우, HCP가의 신속하고 효율적인 침전을 달성하고도 쉬웠다 희게확장 및 식물 바이오 매스 (19)를 세척하는 초기 단계를 포함 기존의 대규모 제조 공정과 호환합니다. 대조적으로, 온도 조절 용기 이미 일부 공정에 사용할 수 있으며 탱크의 표면 대 부피 비율이 점차 감소되기 때문에 식물의 열처리 (20)를 추출하지만, 그 확장 성 및 에너지 전송 속도가 제한되어 사용될 수 있으며 프로세스 규모에 적합하게된다. 열교환 교반 용기를 가열 할 수있는 기술적으로 잘 정의 된 대안이지만 가열 및 냉각 매체, 예를 들면 증기와 냉수의 풍부한 공급뿐만 아니라, 열 ​​교환기 형상에 적응되는 엄격하게 제어 체적 유량을 필요 매체 특성, 예를 들면., 비열. 이 문서는 세 가지 방법이 일반적으로 담배 HCP가, 식물 HCP가의 가열에 의한 침전에 사용할 수있는 방법을 보여줍니다. 설립 및 EAC의 동작실험실 환경에서 H 방식은 대규모 프로세스의 적합성을 평가하기 위해 사용될 수있다. 주요 과제는 공정 규모의 제조시 사용되는 장치 및 조건을 닮은 각 작업에 대한 적절한 스케일 다운 모델과 실행 조건을 확인하는 것입니다. 여기에 제시된 데이터는 DsRed 16 말라리아 백신 후보 Vax8 형광 단백질을 발현하는 형질 전환 담배 식물 실시한 실험을 참조하지만,이 방법은 성공적 N.에 적용된 benthamiana 식물 일시적 다른 바이오 21 단백질 발현. 디자인의-실험 (DOE는) 공정 개발을 용이하게 할 수있다 (22)에 접근, 이전 8 설명한 바와 같이 (23)는이 상황에서 도움이 될 수 있습니다 응집제. 창백 가열 용기 및 열교환 기의 주요 차이점은 창백 구약 반면 프로세스 초기에 그대로 잎에 적용된다그녀는 식물 추출물 (그림 1)에 적용됩니다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54343/54343fig1.jpg" /> 그림 1 :. 담배 HCP 열 강수량에 대한 세 가지 다른 방법의 구현을 설명 프로세스 흐름 방식은 식물 재료 세척 및 정화 및 정화 전에 균질화한다. 희게 단계 (적색) 용 장비를 쉽게 기존의 장치에 추가 될 수있다. 대조적으로, 교반 용기 (오렌지) 특히 열교환 기 (파란색)를 사용하여 하나 또는 여러 개의 추가 장치 및 배관을 필요로한다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54343/54343fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

<table><tbody><tr><td>2100P Portable Turbidimeter</td><td>Hach</td><td>4650000</td><td>Turbidimeter</td></tr><tr><td>Amine Coupling Kit</td><td>GE Healthcare</td><td>BR100050&amp;nbsp;</td><td>SPR chip coupling kit</td></tr><tr><td>Autoclaving basket</td><td>Nalgene</td><td>6917-0230</td><td>Basket for leaf blanching</td></tr><tr><td>Biacore T200</td><td>GE Healthcare</td><td>28-9750-01</td><td>SPR device</td></tr><tr><td>Bio Cell Analyser BCA 003 R&amp;amp;D with 3D ORM</td><td>Sequip</td><td>n.a.</td><td>Particle size analyzer</td></tr><tr><td>Blender</td><td>Waring</td><td>800EG</td><td>Blender</td></tr><tr><td>BP-410</td><td>Furh</td><td>2632410001</td><td>Bag filter</td></tr><tr><td>Centrifuge 5415D</td><td>Eppendorf</td><td>5424 000.410</td><td>Centrifuge</td></tr><tr><td>Centrifuge tube 15 ml</td><td>Labomedic</td><td>2017106</td><td>Reaction tube</td></tr><tr><td>Centrifuge tube 50 ml self-standing</td><td>Labomedic</td><td>1110504</td><td>Reaction tube</td></tr><tr><td>CM5 chip</td><td>GE Healthcare</td><td>BR100012&amp;nbsp;</td><td>Chip for SPR measurements</td></tr><tr><td>Cuvette 10 x 10 x 45</td><td>Sarsted</td><td>67.754</td><td>Cuvette for Zetasizer Nano ZS</td></tr><tr><td>Design-Expert(R) 8</td><td>Stat-Ease, Inc.</td><td>n.a.</td><td>DoE software</td></tr><tr><td>Disodium phosphate</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>&amp;nbsp;4984.3&amp;nbsp;</td><td>Media component</td></tr><tr><td>Ferty 2 Mega</td><td>Kammlott</td><td>5.220072</td><td>Fertilizer</td></tr><tr><td>Forma -86C ULT freezer</td><td>ThermoFisher</td><td>88400</td><td>Freezer</td></tr><tr><td>Greenhouse</td><td>n.a.</td><td>n.a.</td><td>For plant cultivation</td></tr><tr><td>Grodan Rockwool Cubes 10 x 10 cm</td><td>Grodan</td><td>102446</td><td>Rockwool block</td></tr><tr><td>Twentey-loop heat exchanger (4.8 m length)</td><td>n.a. (custom design)</td><td>n.a.</td><td>Heat exchanger</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>9105.3</td><td>Media component</td></tr><tr><td>K200P 60D</td><td>Pall</td><td>5302303</td><td>Depth filter layer</td></tr><tr><td>KS50P 60D</td><td>Pall</td><td>B12486</td><td>Depth filter layer</td></tr><tr><td>Lauda E300</td><td>Lauda Dr Wobser GmbH</td><td>Z90010</td><td>Water bath thermostat</td></tr><tr><td>L/S 24</td><td>Masterflex</td><td>SN-06508-24</td><td>Tubing</td></tr><tr><td>mAb 5.2</td><td>American Type Culture Collection</td><td>HB-9148</td><td>Vax8 specific antibody</td></tr><tr><td>Masterflex L/S</td><td>Masterflex</td><td>HV-77921-75</td><td>Peristaltic pump</td></tr><tr><td>Miracloth</td><td>Labomedic</td><td>475855-1R</td><td>Filter cloth</td></tr><tr><td>MultiLine Multi 3410 IDS</td><td>WTW</td><td>WTW_2020</td><td>pH meter / conductivity meter</td></tr><tr><td>Osram cool white 36 W</td><td>Osram</td><td>4930440</td><td>Light source</td></tr><tr><td>Phytotron</td><td>Ilka Zell</td><td>n.a.</td><td>For plant cultivation</td></tr><tr><td>Sodium disulfite</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>8554.1</td><td>Media component</td></tr><tr><td>Sodium chloride</td><td>Carl Roth GmbH</td><td>P029.2</td><td>Media component</td></tr><tr><td>Stainless-steel vessel; 0.7 kg 2.0 L; height 180 mm; diameter 120 mm</td><td>n.a. (custom design)</td><td>n.a.</td><td>Container for heat precipitation</td></tr><tr><td>Synergy HT</td><td>BioTek</td><td>SIAFRT</td><td>Fluorescence and spectrometric plate reader</td></tr><tr><td>VelaPad 60</td><td>Pall</td><td>VP60G03KNH4</td><td>Filter housing</td></tr><tr><td>Zetasizer Nano ZS</td><td>Malvern</td><td>ZEN3600</td><td>DLS particle size distribution measurement</td></tr><tr><td>Zetasizer Software v7.11</td><td>Malvern</td><td>n.a.</td><td>Software to operate the Zetasizer Nano ZS device</td></tr></tbody></table>

comparison of tobacco host cell protein removal methods by blanching intact plants or by heat treatment of extracts

식물은 인간 식품, 사료 원료를 제공 할뿐만 아니라, 항체, 백신 후보로서 바이오 효소 단백질에 대한 경제적 인 생산 시스템으로 개발되었다 아닙니다. 이들은 식물 바이오 매스로부터 정제해야하지만, 크로마토 그래피 단계는 식물 추출물의 숙주 세포 단백질 (HCP가)의 높은 농도에 의해 방해된다. 그러나, 대부분의 HCP가 비가 역적 목적 단백질의 정제를 용이 이후 60 ° C 이상의 온도에서 응집. 여기에, 세 가지 방법은 그대로 잎 또는 추출물 중 하나에서 담배 HCP가의 열 침전을 달성하기 위해 제공됩니다. 그대로 잎의 창백 쉽게 기존 프로세스에 통합 될 수 있지만, 이후 여과 단계에 부정적인 영향을 미칠 수있다. 반대의 경우와 같은 처리 장치의 설계에 큰 변화 불구 하류 작업의 성능을 향상시킬 수있는 교반 용기 잎 추출물의 열 침전 사실이다균질 형상. 마지막으로, 열교환 기 설치 잘 열전달 조건의 관점에서 특성화 스케일 쉽지만 세정 어려울 수 있고, 필터의 용량에 부정적인 영향이있을 수있다. 디자인 수준의 실험 방법을 HCP 제거 및 생성물 회수에 영향을 미치는 가장 중요한 공정 매개 변수를 식별하는데 사용될 수있다. 이것은 다른 식 플랫폼의 각 방법 및 주어진 정제 전략을위한 최적의 방법의 식별의 적용을 용이하게한다.

치면 담배 숙주 세포 단백질의 열 침전 제 2 항에 기재된 희게 절차가 성공적으로 담배는 96 ± 1 %까지 TSP를 감소 70 ° C로 나뭇잎 HCP가 석출 하였다 (N = 3) 따라서, Vax8 표적 단백질의 51 %까지 회복은 증가하면서 크로마토 그래피 분리 16 이전에 0.1 % ~ 1.2에서 순도. 이 64.1 %로 3.3 %에서 순도를 증가 형광 단백질을 DsRed 83 ± 1 % (N = 3)를 복구하는 것이 가능했다...

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Comparison of Tobacco Host Cell Protein Removal Methods by Blanching Intact Plants or by Heat Treatment of Extracts

효과적으로 담배에서 숙주 세포 단백질 (HCP가)의 90 % 이상을 제거 침전 방법 나타난 세 개의 열은 다른 정제 단계 이전에 추출한다. 공장 HCP가이 비가 역적으로 60 ° C 이상의 온도에서 집계.

본래 식물을 표백제로 또는 추출물의 열처리에 의한 담배 숙주 세포 단백질 제거 방법의 비교

Plants not only provide food, feed and raw materials for humans, but have also been developed as an economical production system for biopharmaceutical ...

comparison-tobacco-host-cell-protein-removal-methods-blanching-intact

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Biology

9.0K 조회수.  Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e. V..  효과적으로 담배에서 숙주 세포 단백질 (HCP가)의 90 % 이상을 제거 침전 방법 나타난 세 개의 열은 다른 정제 단계 이전에 추출한다. 공장 HCP가이 비가 역적으로 60 ° C 이상의 온도에서 집계. 

비디오: Comparison of Tobacco Host Cell Protein Removal Methods by Blanching Intact Plants or by Heat Treatment of Extracts

A Robotic Platform for High-throughput Protoplast Isolation and Transformation

Over the last decade there has been a resurgence in the use of plant protoplasts that range from model species to crop species, for analysis of signal transduction pathways, transcriptional regulatory networks, gene expression, genome-editing, and gene-silencing. Furthermore, significant progress has been made in the regeneration of plants from protoplasts, which has generated even more interest in the use of these systems for plant genomics. In this work, a protocol has been developed for automation of protoplast isolation and transformation from a &#39;Bright Yellow&#39; 2 (BY-2) tobacco suspension culture using a robotic platform. The transformation procedures were validated using an orange fluorescent protein (OFP) reporter gene (pporRFP) under the control of the Cauliflower mosaic virus 35S promoter (35S). OFP expression in protoplasts was confirmed by epifluorescence microscopy. Analyses also included protoplast production efficiency methods using propidium iodide. Finally, low-cost food-grade enzymes were used for the protoplast isolation procedure, circumventing the need for lab-grade enzymes that are cost-prohibitive in high-throughput automated protoplast isolation and analysis. Based on the protocol developed in this work, the complete procedure from protoplast isolation to transformation can be conducted in under 4 hr, without any input from the operator. While the protocol developed in this work was validated with the BY-2 cell culture, the procedures and methods should be translatable to any plant suspension culture/protoplast system, which should enable acceleration of crop genomics research.

A high-throughput, automated, tobacco protoplast production and transformation methodology is described. The robotic system enables massively parallel gene expression and discovery in the model BY-2 system that should be translatable to non-model crops.

높은 처리량 원형질체 분리 및 변환을위한 로봇 플랫폼

Over the last decade there has been a resurgence in the use of plant protoplasts that range from model species to crop species, for analysis of signal ...

연구

유전학

Transient Expression in Nicotiana Benthamiana Leaves for Triterpene Production at a Preparative Scale

The triterpenes are one of the largest and most structurally diverse families of plant natural products. Many triterpene derivatives have been shown to possess medicinally relevant biological activity. However, thus far this potential has not translated into a plethora of triterpene-derived drugs in the clinic. This is arguably (at least partially) a consequence of limited practical synthetic access to this class of compound, a problem that can stifle the exploration of structure-activity relationships and development of lead candidates by traditional medicinal chemistry workflows. Despite their immense diversity, triterpenes are all derived from a single linear precursor, 2,3-oxidosqualene. Transient heterologous expression of biosynthetic enzymes in N. benthamiana can divert endogenous supplies of 2,3-oxidosqualene towards the production of new high-value triterpene products that are not naturally produced by this host. Agro-infiltration is an efficient and simple means of achieving transient expression in N. benthamiana. The process involves infiltration of plant leaves with a suspension of Agrobacterium tumefaciens carrying the expression construct(s) of interest. Co-infiltration of an additional A. tumefaciens strain carrying an expression construct encoding an enzyme that boosts precursor supply significantly increases yields. After a period of five days, the infiltrated leaf material can be harvested and processed to extract and isolate the resulting triterpene product(s). This is a process that is linearly and reliably scalable, simply by increasing the number of plants used in the experiment. Herein is described a protocol for rapid preparative-scale production of triterpenes utilizing this plant-based platform. The protocol utilizes an easily replicable vacuum infiltration apparatus, which allows the simultaneous infiltration of up to four plants, enabling batch-wise infiltration of hundreds of plants in a short period of time.

Transient Expression in Nicotiana Benthamiana Leaves for Triterpene Production at a Preparative Scale

Transient heterologous expression of biosynthetic enzymes in Nicotiana benthamiana leaves can divert endogenous supplies of 2,3-oxidosqualene towards the production of new high-value triterpene products. Herein is described a detailed protocol for rapid (5 days) preparative-scale production of triterpenes and analogs utilizing this powerful plant-based platform.

Nicotiana Benthamiana 에 과도 식 보관 생산 대리점 규모에 대 한 나뭇잎

The triterpenes are one of the largest and most structurally diverse families of plant natural products. Many triterpene derivatives have been shown to ...

생화학

Characterization of Complex Systems Using the Design of Experiments Approach: Transient Protein Expression in Tobacco as a Case Study

Plants provide multiple benefits for the production of biopharmaceuticals including low costs, scalability, and safety. Transient expression offers the additional advantage of short development and production times, but expression levels can vary significantly between batches thus giving rise to regulatory concerns in the context of good manufacturing practice. We used a design of experiments (DoE) approach to determine the impact of major factors such as regulatory elements in the expression construct, plant growth and development parameters, and the incubation conditions during expression, on the variability of expression between batches. We tested plants expressing a model anti-HIV monoclonal antibody (2G12) and a fluorescent marker protein (DsRed). We discuss the rationale for selecting certain properties of the model and identify its potential limitations. The general approach can easily be transferred to other problems because the principles of the model are broadly applicable: knowledge-based parameter selection, complexity reduction by splitting the initial problem into smaller modules, software-guided setup of optimal experiment combinations and step-wise design augmentation. Therefore, the methodology is not only useful for characterizing protein expression in plants but also for the investigation of other complex systems lacking a mechanistic description. The predictive equations describing the interconnectivity between parameters can be used to establish mechanistic models for other complex systems.

We describe a design of experiments approach that can be used to determine and model the influence of transgene regulatory elements, plant growth and development parameters, and incubation conditions on the transient expression of monoclonal antibodies and reporter proteins in plants.

사례 연구로 담배에 과도 단백질 발현 : 실험 접근의 디자인을 사용하여 복잡한 시스템의 특성

Plants provide multiple benefits for the production of biopharmaceuticals including low costs, scalability, and safety. Transient expression offers the ...

생체공학

Activated Cross-linked Agarose for the Rapid Development of Affinity Chromatography Resins - Antibody Capture as a Case Study

The purification of monoclonal antibodies (mAbs) is commonly achieved by Protein A affinity chromatography, which can account for up to 25% of the overall process costs. Alternative, cost-effective capture steps are therefore valuable for industrial-scale manufacturing, where large quantities of a single mAb are produced. Here we present a method for the immobilization of a DsRed-based epitope ligand to a cross-linked agarose resin allowing the selective capture of the HIV-neutralizing antibody 2F5 from crude plant extracts without using Protein A. The linear epitope ELDKWA was first genetically fused to the fluorescent protein DsRed and the fusion protein was expressed in transgenic tobacco (Nicotiana tabacum) plants before purification by immobilized metal-ion affinity chromatography. Furthermore, a method based on activated cross-linked agarose was optimized for high ligand density, efficient coupling and low costs. The pH and buffer composition and the soluble ligand concentration were the most important parameters during the coupling procedure, which was improved using a design-of-experiments approach. The resulting affinity resin was tested for its ability to selectively bind the target mAb in a crude plant extract and the elution buffer was optimized for high mAb recovery, product activity and affinity resin stability. The method can easily be adapted to other antibodies with linear epitopes. The new resins allow gentler elution conditions than Protein A and could also reduce the costs of an initial capture step for mAb production.

In this procedure, a DsRed-based epitope ligand is immobilized to produce a highly selective affinity resin for the capture of monoclonal antibodies from crude plant extracts or cell culture supernatants, as an alternative to Protein A.

선호도 크로마토그래피 수지의 신속한 개발을 위한 활성화된 상호 연결 아가로스 - 사례 연구로서의 항체 포획

The purification of monoclonal antibodies (mAbs) is commonly achieved by Protein A affinity chromatography, which can account for up to 25% of the overall ...

Methods to Evaluate Cytotoxicity and Immunosuppression of Combustible Tobacco Product Preparations

Among other pathophysiological changes, chronic exposure to cigarette smoke causes inflammation and immune suppression, which have been linked to increased susceptibility of smokers to microbial infections and tumor incidence. Ex vivo suppression of receptor-mediated immune responses in human peripheral blood mononuclear cells (PBMCs) treated with smoke constituents is an attractive approach to study mechanisms and evaluate the likely long-term effects of exposure to tobacco products. Here, we optimized methods to perform ex vivo assays using PBMCs stimulated by bacterial lipopolysaccharide, a Toll-like receptor-4 ligand. The effects of whole smoke-conditioned medium (WS-CM), a combustible tobacco product preparation (TPP), and nicotine were investigated on cytokine secretion and target cell killing by PBMCs in the ex vivo assays. We show that secreted cytokines IFN-&#947;, TNF, IL-10, IL-6, and IL-8 and intracellular cytokines IFN-&#947;, TNF-&#945;, and MIP-1&#945; were suppressed in WS-CM-exposed PBMCs. The cytolytic function of effector PBMCs, as determined by a K562 target cell killing assay was also reduced by exposure to WS-CM; nicotine was minimally effective in these assays. In summary, we present a set of improved assays to evaluate the effects of TPPs in ex vivo assays, and these methods could be readily adapted for testing other products of interest.

Using optimized human peripheral blood mononuclear cell (PBMC) ex vivo assays, we showed that a combustible tobacco product preparation markedly suppresses receptor-mediated intracellularly secreted cytokines and cytolytic ability of effector PBMCs. These rapid assays may be useful in product evaluation and understanding the potential long-term effects of tobacco exposure.

방법은 가연성 담배 제품 준비의 세포 독성 및 면역 억제를 평가하기

Among other pathophysiological changes, chronic exposure to cigarette smoke causes inflammation and immune suppression, which have been linked to ...

면역학 및 감염병학

Optimization and Utilization of Agrobacterium-mediated Transient Protein Production in Nicotiana

Agrobacterium-mediated transient protein production in plants is a promising approach to produce vaccine antigens and therapeutic proteins within a short period of time. However, this technology is only just beginning to be applied to large-scale production as many technological obstacles to scale up are now being overcome. Here, we demonstrate a simple and reproducible method for industrial-scale transient protein production based on vacuum infiltration of Nicotiana plants with Agrobacteria carrying launch vectors. Optimization of Agrobacterium cultivation in AB medium allows direct dilution of the bacterial culture in Milli-Q water, simplifying the infiltration process. Among three tested species of Nicotiana, N. excelsiana (N. benthamiana &#215; N. excelsior) was selected as the most promising host due to the ease of infiltration, high level of reporter protein production, and about two-fold higher biomass production under controlled environmental conditions. Induction of Agrobacterium harboring pBID4-GFP (Tobacco mosaic virus-based) using chemicals such as acetosyringone and monosaccharide had no effect on the protein production level. Infiltrating plant under 50 to 100 mbar for 30 or 60 sec resulted in about 95% infiltration of plant leaf tissues. Infiltration with Agrobacterium laboratory strain GV3101 showed the highest protein production compared to Agrobacteria laboratory strains LBA4404 and C58C1 and wild-type Agrobacteria strains at6, at10, at77 and A4. Co-expression of a viral RNA silencing suppressor, p23 or p19, in N. benthamiana resulted in earlier accumulation and increased production (15-25%) of target protein (influenza virus hemagglutinin).

Optimization and Utilization of Agrobacterium-mediated Transient Protein Production in Nicotiana

Transient protein production in Nicotiana plants based on vacuum infiltration with Agrobacteria carrying launch vectors (Tobacco mosaic virus-based) is a rapid and economic approach to produce vaccine antigens and therapeutic proteins. We simplified the procedure and improved target accumulation by optimizing conditions of bacteria cultivation, selecting host species, and co-introducing RNA silencing suppressors.

최적화 및 활용<em&gt; 아그로 박테 리움</em에서&gt; 매개 과도 단백질 생산<em&gt;는 담배</em

Agrobacterium-mediated transient protein production in plants is a promising approach to produce vaccine antigens and therapeutic proteins within a short ...

생물학

Assaying Proteasomal Degradation in a Cell-free System in Plants

The ubiquitin-proteasome pathway for protein degradation has emerged as one of the most important mechanisms for regulation of a wide spectrum of cellular functions in virtually all eukaryotic organisms. Specifically, in plants, the ubiquitin/26S proteasome system (UPS) regulates protein degradation and contributes significantly to development of a wide range of processes, including immune response, development and programmed cell death. Moreover, increasing evidence suggests that numerous plant pathogens, such as Agrobacterium, exploit the host UPS for efficient infection, emphasizing the importance of UPS in plant-pathogen interactions.
The substrate specificity of UPS is achieved by the E3 ubiquitin ligase that acts in concert with the E1 and E2 ligases to recognize and mark specific protein molecules destined for degradation by attaching to them chains of ubiquitin molecules. One class of the E3 ligases is the SCF (Skp1/Cullin/F-box protein) complex, which specifically recognizes the UPS substrates and targets them for ubiquitination via its F-box protein component. To investigate a potential role of UPS in a biological process of interest, it is important to devise a simple and reliable assay for UPS-mediated protein degradation. Here, we describe one such assay using a plant cell-free system. This assay can be adapted for studies of the roles of regulated protein degradation in diverse cellular processes, with a special focus on the F-box protein-substrate interactions.

Targeted protein degradation represents a major regulatory mechanism for cell function. It occurs via a conserved ubiquitin-proteasome pathway, which attaches polyubiquitin chains to the target protein that then serve as molecular &#8220;tags&#8221; for the 26S proteasome. Here, we describe a simple and reliable cell-free assay for proteasomal degradation of proteins.

식물의 셀없는 시스템에서 프로 테오 저하 시금

The ubiquitin-proteasome pathway for protein degradation has emerged as one of the most important mechanisms for regulation of a wide spectrum of cellular ...

Protein-protein Interactions Visualized by Bimolecular Fluorescence Complementation in Tobacco Protoplasts and Leaves

Many proteins interact transiently with other proteins or are integrated into multi-protein complexes to perform their biological function. Bimolecular fluorescence complementation (BiFC) is an in vivo method to monitor such interactions in plant cells. In the presented protocol the investigated candidate proteins are fused to complementary halves of fluorescent proteins and the respective constructs are introduced into plant cells via agrobacterium-mediated transformation. Subsequently, the proteins are transiently expressed in tobacco leaves and the restored fluorescent signals can be detected with a confocal laser scanning microscope in the intact cells. This allows not only visualization of the interaction itself, but also the subcellular localization of the protein complexes can be determined. For this purpose, marker genes containing a fluorescent tag can be coexpressed along with the BiFC constructs, thus visualizing cellular structures such as the endoplasmic reticulum, mitochondria, the Golgi apparatus or the plasma membrane. The fluorescent signal can be monitored either directly in epidermal leaf cells or in single protoplasts, which can be easily isolated from the transformed tobacco leaves. BiFC is ideally suited to study protein-protein interactions in their natural surroundings within the living cell. However, it has to be considered that the expression has to be driven by strong promoters and that the interaction partners are modified due to fusion of the relatively large fluorescence tags, which might interfere with the interaction mechanism. Nevertheless, BiFC is an excellent complementary approach to other commonly applied methods investigating protein-protein interactions, such as coimmunoprecipitation, in vitro pull-down assays or yeast-two-hybrid experiments.

Formation of protein complexes in vivo can be visualized by bimolecular fluorescence complementation. Interaction partners are fused to complementary parts of fluorescent tags and transiently expressed in tobacco leaves, resulting in a reconstituted fluorescent signal upon close proximity of the two proteins.

담배 원형질체 및 잎에 이분자 형광 보완에 의해 시각 단백질 - 단백질 상호 작용

Many proteins interact transiently with other proteins or are integrated into multi-protein complexes to perform their biological function. Bimolecular ...

A Comparative Analysis of Recombinant Protein Expression in Different Biofactories: Bacteria, Insect Cells and Plant Systems

Plant-based systems are considered a valuable platform for the production of recombinant proteins as a result of their well-documented potential for the flexible, low-cost production of high-quality, bioactive products.
In this study, we compared the expression of a target human recombinant protein in traditional fermenter-based cell cultures (bacterial and insect) with plant-based expression systems, both transient and stable.
For each platform, we described the set-up, optimization and length of the production process, the final product quality and the yields and we evaluated provisional production costs, specific for the selected target recombinant protein.
Overall, our results indicate that bacteria are unsuitable for the production of the target protein due to its accumulation within insoluble inclusion bodies. On the other hand, plant-based systems are versatile platforms that allow the production of the selected protein at lower-costs than Baculovirus/insect cell system. In particular, stable transgenic lines displayed the highest-yield of the final product and transient expressing plants the fastest process development. However, not all recombinant proteins may benefit from plant-based systems but the best production platform should be determined empirically with a case-by-case approach, as described here.

In this study the expression of a target human recombinant protein in different production platforms was compared. We focused on traditional fermenter-based cultures and on plants, describing the set-up of each system and highlighting, on the basis of the reported results, the inherent limits and advantages for each platform.

박테리아, 곤충 세포 및 공장 시스템 : 재조합 단백질 다른 Biofactories에서 표현의 비교 분석

Plant-based systems are considered a valuable platform for the production of recombinant proteins as a result of their well-documented potential for the ...

Screening of Tobacco Genotypes for Phytophthora nicotianae Resistance

Black shank, caused by the oomycetes Phytophthora nicotianae, is destructive to tobacco, and this pathogen is highly pathogenic to many solanaceous crops. P. nicotianae is well adapted to high temperatures; therefore, research on this pathogen is gaining importance in agriculture worldwide because of global warming. P. nicotianae-resistant varieties of tobacco plants are commonly screened by inoculation with oat grains colonized by P. nicotianae and monitoring for the disease symptoms. However, it is difficult to quantify the inoculation intensity since accurate inoculation is crucial in this case. This study aimed to develop an efficient and reliable method for evaluating the resistance of tobacco to infection with P. nicotianae. This method has been successfully used to identify resistant varieties, and the inoculation efficiency was confirmed by real-time PCR. The resistance evaluation method presented in this study is efficient and practical for precision breeding, as well as molecular mechanism research.

Screening of Tobacco Genotypes for Phytophthora nicotianae Resistance

Here, a protocol is presented for the efficient and accurate screening of tobacco genotypes for Phytophthora nicotianae resistance in seedlings. This is a practical approach for precision breeding, as well as molecular mechanism research.

Phytophthora nicotianae 저항성에 대한 담배 유전자형의 스크리닝

Black shank, caused by the oomycetes Phytophthora nicotianae, is destructive to tobacco, and this pathogen is highly pathogenic to many solanaceous crops. ...