We thank Dr. Daniel Bumbarger for the predation behavior picture. This work was funded by the Max-Planck Society.

1. 입 양식 표현형 <ol><li> 아가로 오스 패드에 입 양식 확인 참고 : 선충 입 모프를 시각화 아가로 오스 패드에 가벼운 마취 치료 벌레를 고정하고 다음과 같이 관찰하기 위해. <ol><li> 성장 및 P. 같은 선충 문화를 유지 pacificus에 6cm 표준 선충류 성장 미디어 (NGM) 접시와 E.의 세균 잔디밭에 공급 대장균 OP50 19. </li><li> 처음 3 ml의 2 % 아가로 오스 솔루션을 만들기 위해 15 ML 튜브에 3 ㎖의 H 2 O 0.06 g 아가로 오스를 추가하여 아가로 오스 패드를 확인합니다. 이 4 ℃에서 1 년까지 저장할 수 있습니다 </li><li> 믹스와 전자 레인지에서 철저하게 아가로 오스를 용융 또는 대안&gt; 88 ° C로 설정 열 블록을 사용 </li><li> 완전히 녹인 후, 아가 로스 10 % 아 지드 화 나트륨 용액 10 μl를 첨가하고 잘 혼합한다. 주의 : 드라이 아 지드 화 나트륨은 반응성이 모든 형태의 독성. </li><li> 1 ml에 사용마이크로 피펫을 표준 유리 현미경 슬라이드의 중간에 액상 아가 지드 믹스만큼이나 300 μL 방울을 놓는다. </li><li> 한천은 냉각하기 전에 신속하게 냉각시 패드를 형성하는 아가로 오스를 평평하게하기 위해 드롭의 상단에 두 번째 현미경 슬라이드를 놓습니다. 필요한만큼 패드에 대해 반복합니다. </li><li> 서로 떨어져 그들을 밀어, 껍질 떨어져 유리 현미경 슬라이드를 사용하기 직전에. 참고 : 아가로 오스 패드가 사전에 너무 멀리 준비하는 경우가 너무 건조 할 수 있고, 선충에 손상을 줄 수 있습니다. </li><li> 패드의 중심에 - (3 μL 2) 마취 아가로 오스 패드에 웜을 전송하려면, M9 버퍼의 드롭 놓습니다. 선택 2-3 젊은 P. 패드를 통해 신중하게 커버 슬립을 배치하기 전에 M9의 드롭로 pacificus 성인. P. pacificus의 선충은 아가로 오스에 고정하고 시각화 할 준비가 될 것입니다. </li><li> 적절한 현미경 A를 마취 된 웜을 포함하는 현미경 슬라이드 이동차 63X 노멀 스키 광학에서 관찰한다. 다음과 같은 기능을 기반으로 모프 ID를 분류 : 추가 하위 복부 치아, 확대 등의 치아와 넓은 입 구멍의 존재하는 eurystomatous 입 모프 동물 나타내는 하나의 지느러미 치아와 좁은 입 개방의 존재가 stenostomatous을 표시하면서 동물 (그림 1). 주 : 동물의 건강을 유지하기 위해, 웜 더 이상 5 분 이상 한천 패드 상에 유지되어야한다. </li><li> 입 모프 식별 한 후, 부드럽게 아가로 오스 패드 떨어져 그것을 밀어 커버 슬립을 제거하여 필요에 따라 eurystomatous 또는 stenostomatous 중 하나 선충을 복구 할 수 있습니다. 조심스럽게 아가로 오스 패드에서 선택한 동물을 선택 신선한 NGM 플레이트에 (대장균 OP50가 밀착 될 수 있도록 도움이되는 선택 사용할 수 있습니다). 정상적인 운동성 행동이 동물이 더 약탈 적 분석에 대한 준비가되어있는에 재개 될 때까지 마취에서 회복을 허용합니다. </li></ol></li> &lt;리&gt; 빠른 입 표현형 주 : 대안 적으로, 더 많은 경험 입 폼 타입 높은 배율 (150X)을 통해 임의의 실체 마취제 치료를 필요로하지 않고 분석 할 수있다. <ol><li> E.의 세균 잔디와 표준 NGM 플레이트에 배치 선충 현미경보기 영역 상에 대장균 OP50. </li><li> 입 크기와 폭의 차이를 검출한다. 참고 : 구조와 같은 더 치아 때문에 입 모프 식별이 단독으로 좁은 입 대 넓은 입 기반으로 관찰 할 수없는이 배율에서. </li></ol></li></ol> 2. 물린 분석 참고 : 물고 분석의 상세한 약탈 행동 분석을 허용합니다. <ol><li> 성장과 표준 NGM 플레이트 (6cm)에 선충 문화를 유지하고 E.의 세균 잔디밭에 공급 대장균 OP50 19. </li><li> 이러한 C.로 선정 먹이 선충 유충의 대량 증가로 분석 번호판을 확인 엘레 또는 알대체적으로 적절한 생태 학적으로 중요한 먹이. 참고 : 성인 C.를 애벌레 단계를 사용하는 것이 중요하므로 간스 적합한 먹이하기에는 너무 크다. <ol><li> C. 유지 엘레 또는 E.의 세균 잔디밭에 표준 NGM 접시와 공급의 다른 잠재적 인 먹이 종 대장균 OP50은 인구 갓 젊은 L1 유충의 풍부 결과, 공복 때까지. 참고 : 기아에 대한 시간 문화를 시작하는 데 사용 선충의 수, E.의 양 등 다양한 환경 및 실험 요인에 따라 달라집니다 콜라이 OP50 첨가하고 상온. </li></ol></li><li> M9 4 개의 이상의 갓 굶주린 먹이 접시를 씻고 15 ML 튜브에 수집하기 전에 모든 큰 동물과 나머지 계란을 제거하기 위해 두 개의 20 μm의 필터를 통해 웜 솔루션을 전달합니다. 만 작은 유충은 용액에 남아 있어야한다. </li><li> 유생 펠렛 1 분 동안 377 XG에서 필터링 된 먹이를 원심 분리 형성한다. </li><li&gt; 더 E.와 6cm의 NGM 플레이트 상에 순수 웜 펠릿의 피펫 3 μL 대장균 OP50 현재와 애벌레는 분석 플레이트를 생성하기 위해 충분히 확산을 위해 적어도 30 분을 기다립니다. 참고 : 표준 분석 플레이트에 순수한 웜 펠릿의 3 μL가&gt; 3,000 먹이 유충이 포함되어 있습니다. 이 포식자와 먹이 사이의 빈번한 접촉을 생성하기에 충분하다. </li><li> 필요한 입 모프 (프로토콜 1)에 대한 화면 약탈 선충. </li><li> 분석 플레이트에서 제대로 분류 육식 동물을 전송, 표준 웜 따기 기술 및 광 실체 현미경 (19)를 사용하여. 세균 오염을 최소화하기 위해 포식자를 전송할 때 분석 플레이트에 가능한 한 적은 OP50 박테리아 전송주의한다. 웜이 전송되는 스트레스 복구 및 웜이 전송에서 손상되지 않은 보장하기 위해 야생 형 운동성 행동을 확인 할 수 있도록 15 분을 기다립니다. 참고 : P.을 굶어 할 필요가 없습니다 PACificus, 그들은 잘 박테리아에 공급하는 동안에도 다른 선충 유충의 고효율 포식자가있다. </li><li> 복구 후, 10 분 동안 빛 실체 현미경을 사용하여 육식 동물을 관찰한다. 이 장비로, 관찰 및 먹이의 움직임을 제한하는 포식자 특징으로, 물고과 같은 별개의 공급 이벤트의 특성, 위치 검출되는 먹이 표피의 개방에 의해 살해을; 및 공급, 먹이 내장 (그림 2A, B 및 영화 1)의 관찰 소비로 분류. </li><li> 검사 및 정확도를 보장하기 위해 10 개인 육 선충 최소 관찰하여 분석을 반복한다. </li></ol> 3. 시체 분석 참고 : 시체 분석이 약탈 행동의보다 신속한 정량을 용이하게한다. <ol><li> 성장과 표준 NGM 플레이트에 선충 문화를 유지하고 세균 리터에 공급E.의 까끄라기 대장균 OP50 19. 앞서 언급 한 분석 플레이트 (- 2.5 프로토콜 2.1)의 삼중를 생성합니다. </li><li> 필요한 입 모프에 대한 화면 약탈 선충은 같은 표준 웜 따기 기술과 각 분석 플레이트에 필요한 입 모프와 빛 실체 전송 5 약탈 선충을 사용하여 프로토콜 1에서 설명했다. 2 시간 동안 먹이와 함께 포식자를 남겨주세요. </li><li> 2 시간 화면 비워 사체 (도 2B와 C)의 존재에 대한 분석 플레이트 후. 웜 조각을 내장 누출 또는 누락을 포함 분명한 형태 학적 결함과 함께 운동의 부재에 의해 시체를 확인합니다. </li></ol> 인두와 치아 운동 4. 분석 <ol><li> 성장과 표준 NGM 플레이트에 선충 문화를 유지하고 E.의 세균 잔디밭에 공급 대장균 OP50 19. 이전에 (- 2.5 프로토콜 2.1) 언급 한 바와 같이 분석 플레이트를 생성합니다. 표준 6cm 경우NGM 판은 적절한 대안으로 2 ml의 NGM을 포함하는 작은 35mm 배양 접시의 뚜껑을 사용하여 객관적이고 현미경 단계 사이에 적합하지 않다. </li><li> 필요한 입 모프에 대한 화면 약탈 선충 기술을 따기 표준 웜 및 광 실체 현미경을 사용하여 프로토콜 1에서 설명한 바와 같이, 분석 플레이트에 하나 제대로 분류 육식 동물을 전송합니다. 웜이 전송되는 스트레스로부터 복구 할 수 있도록 15 분을 기다립니다. </li><li> 고속 카메라 (영화 2 및 3)와, 63X Normaski - 40 현미경에 육식 동물을 관찰한다. 적어도 20 동물의 50 Hz에서 녹음 인두 펌핑 15 초 이상 치아 운동은, 정확한 정량을 보장합니다. 재생 개별 펌프와 치아 이벤트를 계산하기 위해 원하는 속도로 동영상을 기록했다. 참고 : 치아 이동이 입 구멍에 검출 할 만 산부인과 동안 펌핑는 인두의 중간에있는 코퍼스에서 관찰된다지느러미 치아에서 제공. </li></ol>

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The authors declare no financial or competing interests.

선충은 C.에 신경 생물학 및 행동을 이해하기위한 강력한 시스템을 제공 엘레은 지금까지 기본 도구 인. P.를 포함하지만, 많은 선충 종 결석 또는 모델 생물의 C.에서 복잡 다양 pacificus 표시 행위, 엘레 따라서는 이러한 행동의 진화 및 규제에 관한 흥미로운 질문을 제기. P. 포함하여 많은 다른 선충 종에서 발견 한 같은 추가 행동 pacificus이 약탈 공급 (1), (20)에 결합하여 세균의 식단을 보완 할 수있는 능력이다. 따라서 우리는 개발 및 선충에서 이러한 이전에 unanalyzed 약탈 행위의 쉽고 빠른 특성에 대한 상세한 프로토콜을 설명했다. 첫째, 우리는 선충 구강 내 장치를 공급 변동을 선별하는 방법을 제공하고 있습니다. 정확한 입 타입의 식별은 필수적인 제 s의만 eurystomatous 동물이 육식 공급 할 수있는 최소한 Pristionchus 속에서, 같은 성공적인 포식 분석을 위해 TEP. 그것은 훨씬 덜 침습적 인 입이 방법으로 프로토콜 1.2에 기술 된 &quot;빠른 입 표현형&quot;프로토콜로 변경해 파악하는 것이 가장 좋습니다 따라서는 약탈 행위가 교란 될 수 있다는 가능성이 적습니다. 그러나, 첫 번째 한천 패드에 마취 된 동물 (프로토콜 1.1)을 식별하여 다른 입 구조에 익숙해지는 것이 좋습니다. 원하는 입 모프의 식별에 따라, 우리는 약탈 먹이를 정량화이 분석을 설명했다. 이들은 (프로토콜 2)은 &quot;물린 분석&quot;을 통해하지만 더 깊이있는 행동 분석을 소모 빠른, 높은 처리량 &quot;시체 분석&quot;(프로토콜 3)과 더 많은 시간이다. 이러한 프로토콜 모두 experimen에 따라 분석을 최적화하기 위하여 여러 가지 변형을 허용 매우 유연탈 요구 사항. P.를 사용하여 물린 분석을위한 C.에 pacificus의 포식자 엘레 먹이 10 분의 시간 창에 대한 상호 육 행동 관찰은 다른 공급 이벤트와 함께 물기 상당한 양을 정량화하기에 충분했다. 다시 P.를 이용하여 &quot;시체 분석&quot;에 대한 C.에 pacificus의 포식자 엘레 먹이은 2 시간 5 육식 동물은 빠른 행동 분석을 가능하게 쉽게 정량화하고 일관된 시체 번호를 생산했다. 그러나, 다른 속도로 이동 육 선충의 종을 주목해야한다 다른 속도 먹고 일반적으로 다른 행동 한 큰 다양성을 증명한다. 또한, 다른 먹이 종은 비슷한 이유로 다른 속도로 먹을 수있다. 이는 그러므로 환경 조건에 차이에도 포식자 먹이로 모두 테스트 선충 종에 기초하여 분석을 최적화 할 것을 권장하고있다. 모두 &quot;입&quot;과 &quot;군단 중스트레스 또는 부상 포식자 효율적으로 죽이지 않을 것 같은 먹이와 포식자 모두가 건강한 것이 중요합니다 전자 &quot;분석은. 또한, 신선한 분석 플레이트에 악영향 오류로 이어지는 선충의 건강에 영향을 알아 건조 될 수 있습니다 이전 판과 같은 필수 분석법. 또한 많은 C. 관찰 행동 간스 (21, 22)를 조사하는 완성되었다 이러한 육 분석법 미래 반복이 많은 분석을 자동화 할 수 있도록 기술의 최근 발전을 활용할 수있을 것으로 기대된다. 현재 그들은 약탈 먹이를 폐지 할 가능성이 미세 유체 실에 격리와 고정을 훨씬 더 민감 문의하기 나타나는 문제는 P.의 pacificus와 같은 선충에서 발생할 가능성이 있습니다.이 도전 증명할 수 있지만 개별 선충을 용이하게 할 극복은 미묘한 약탈에 대한 검사한다 행동. 마지막으로, 우리는 또한 FO 방법을 제공 한R 고속 카메라 (4 프로토콜)를 사용하여 치아와 인두 펌핑 동역학을 정량함으로써 육 세균 공급 모드 사이의 비교를 용이하게 선충 공급 장치 자체 검사. C.에서 인두 펌핑 속도의 정량화 엘레은 C. 그러나 여러 해 23 먹이를 모니터링하기 위해 이용되고있다 엘레는 입 작은이 어떤 형태의 부족도 약탈 행동이 부족하다. 치아 활동의 펌핑 인두의 정량을 조합 통해 포식 특정 치아의 모든 신경 분포는 또한 관찰 될 수있다. 때문에 동물은 종종 초점면에서 이동 치아 이동을 관찰하는 데 필요한 배율에 따라서는 짧은 시간 창을위한 치아를 관찰하는 것이에만 가능합니다. 또한, C. 달리 엘레, P.의 인두 pacificus는 지속적으로 오히려 펌프와 공급의 주문에 종사, 펌프하지 않습니다. 따라서, 정확한 인두 PUM에 대한공급하면서 핑 속도는 연속 공급의 15 초를 기록하는 것이 중요하다 결정되어야한다. 여기에 제시된 이러한 방법은 따라서 선충 시스템에서 약탈 행위를 조사하기위한 첫 번째 프레임 워크를 제공한다. 또한, 그들은 또한 미생물, 곰팡이 및 진드기를 포함하여 포식에 추가 생태 학적으로 중요한 생물의 영향을 포함하여 선충 생태계 내의 다른 상호 작용을 조사에 사용하기 위해 적용 할 수있다 . 따라서 그들은 또한 자신의 생태 학적 의미를이 약탈 행위가 규제 그들이 어떻게 진화 수있는 방법과 해부 할 수있는 수단을 제공한다.

그들의 작지만 복잡한 신경계와 선충 행동을 포함한 신경 생물학의 여러 측면을 이해하기위한 강력한 도구를 입증했다. 이 연구의 대부분은 모델 생물 다른 동작의 재산이 성공적으로 해부하고 분석되고있는 예쁜 꼬마 선충에 초점을 맞추고있다. 이들은 thermotactic 5, 6 및 magnetotactic 7에 영향을 미치는, 8, 9 짝짓기 (10) 학습 및 공급 (11)을 행동 4 화성, 3 mechanosensory을 포함한다. 그러나, 다른 더 멀리 관련 선충 종은 rhabditid C.에서 관찰되지 않는 행동을 표시 엘레 또는 대안은 진화 및 규제에 관한 관련 질문을 제기 복잡성의 추가 레벨을 보여줍니다. 이 중 하나 이러한 경우는 훨씬 더 복잡 공급 될 표시 먼 관련 diplogastrid 선충 Pristionchus pacificus에서 관찰 할 수있다haviors와 C에서 관찰 된 것보다 리듬 두 종 상동 인두 신경 (12)을 공유에도 불구하고 간스 1.입니다. 이러한 추가 공급 행동, P.과 일치 그들은 또한 다른 선충의 유충에 공급하여 세균 식단을 보완 할 수있는 탐욕스러운 육식 동물이다로 pacificus 또한, 확장 된식이 범위를 표시합니다. 다행히도, P. pacificus는 비교 및 통합 진화 생물학의 모델로 개발되었다 때문에 많은 분자 유전 도구를 사용할 수 있습니다. 이들은 완전히 시퀀스 및 주석 게놈 (13), 형질 전환 유전자 14 CRISPR / Cas9 (15, 16)뿐만 아니라 새로 발견 된 자매 종을 포함하여 25 밀접하게 관련 종 상세하고 잘 주석 계통 (17)를 포함하는 분자 유전 학적 도구가 포함되어 있습니다. 또한, 다수의 Pristionchus 종의 생태는 P. 등 pacificus 우리입니다많은 종으로 정의 게요 지금 풍뎅이 딱정벌레와 necromenic 협회, 그들은 자주 다른 선충 종 (18)와 공유 호스트를 공유 설명 된. P. pacificus 따라서 새로운 행동의 진화 및 생태 학적 중요성을 해부하기에 훌륭한 모델 시스템을 제공합니다. 이러한 P. 같은 선충 종의 약탈 먹이 행동을 분석하기 위해 pacificus 우리는 쉽게 관찰과 약탈 행위의 정량화에 대한 몇 가지 새로운 행동 분석을 개발했다. P.로 pacificus 강하게 올바른 morphotype의 식별이 필수적 1, 2 인, 약탈 행동에 영향을 미치는 동종 이형 입 구조를 표시합니다. 좁은 입 stenostomatous 모프는 하나의 무딘 등의 치아를 담고 있으며, 어떤 약탈 공급에 관여하지 않습니다. 또한, 넓은 입 eurystomatous 모프는 훨씬 더 큰 갈고리 모양의 지느러미 치아와 반대 추가를 포함함께 효율적으로 먹이의 표피를 열고 운영 서브 복부 치아. 비 약탈 stenostomatous 형태로 약탈 eurystomatous의 비율은 P. 내에 Pristionchus 종에 따라 다르며 pacificus 그러나 eurystomatous 입의 비율은 P.에 모프 90 % 2 - pacificus 야생형 균주 (PS312)는 일반적으로 70이다. 또한, 입 형태의 비율이 (모두 알려진 기아뿐만 아니라 알 수없는 요인으로 신호 몇 가지 작은 분자 포함) 환경의 영향을 다른 약탈 eurystomatous 입 양식, 따라서 정확한 식별 및 격리에 따라 변동될 수 있습니다 성공적인 약탈 분석을 위해 필수적이다. 약탈 입 양식에 대한 설명과 함께 우리가 직접 관찰하고, 물고 죽이고 이벤트를 먹이 포함 약탈 행위의 정량화를위한​​ &quot;물린 분석&quot;을 개발했습니다. 여기에 먹이 선충은 필터를 통해 분리된다새로 굶주린 문화의 보내고과 약탈 성인 P.에 노출 짧은 시간 범위 동안 함께 관찰된다 pacificus. 또한, 우리는 육 이벤트 간접적으로 관찰 육 동작의 신속한 선별을 용이하게하기 위해 고 스루풋 &quot;시체 세이&quot;를 개발 하였다. 이 포식을 선별하는 도구로 애벌레 시체의 존재 활용합니다. 두 분석은 관찰 및 P. 같은 선충 종에서 약탈 행위를 측정하기위한 간단하고 매우 반복적 인 방법을 제공 pacificus.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="573">
	<tbody>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Nylon net filters (20 um)</td>
			<td style="width:71px;">Merck Millipore Ltd</td>
			<td style="width:119px;">NY2004700</td>
			<td style="width:167px;">Used to filter worms just leaving larvae for use as prey.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">PP Funnel for filter (54mm)</td>
			<td style="width:71px;">Duran</td>
			<td align="right" style="width:119px;">292215003</td>
			<td>Used to filter worms just leaving larvae for use as prey.</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Small petri dish (35/10 mm)</td>
			<td style="width:71px;">Greiner Bio-One&#160;</td>
			<td align="right" style="width:119px;">627102</td>
			<td>For imaging on High speed camera</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Zeiss SteREO Discovery V12</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>For mouth form identificaton</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Axio-Imager A1</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>For mouth form identificaton</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Glass Slides</td>
			<td style="width:71px;">Roth</td>
			<td style="width:119px;">H869</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Cover Slips</td>
			<td style="width:71px;">Roth</td>
			<td align="right" style="width:119px;">657</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Motion Scope M3 Highspeed camera</td>
			<td style="width:71px;">IDT</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td>High speed camera</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:216px;">Video zoom 44 ENG 1/2&#34; 0.5x to 2.4x</td>
			<td style="width:71px;">Zeis</td>
			<td style="width:119px;">452984-0000-000</td>
			<td>High speed camera zoom</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Nematode Growth Medium (NGM) ingredients:</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Agar</td>
			<td style="width:71px;">Roth</td>
			<td style="width:119px;">5210.2</td>
			<td>CAS-Nr. 9002-18-0</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sodium chloride (NaCl)</td>
			<td style="width:71px;">Roth</td>
			<td align="right" style="width:119px;">3957</td>
			<td>CAS-Nr. 7647-14-5</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Bacto Tryptone</td>
			<td style="width:71px;">BD</td>
			<td align="right" style="width:119px;">211699</td>
			<td>Lot 4316614</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Calcium chloride dihydrate (CaCl2)</td>
			<td style="width:71px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">C3306</td>
			<td>CAS-Nr. 10035-04-8</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Cholesterol from lanolin</td>
			<td style="width:71px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>F 26732 00050</td>
			<td>CAS-Nr. 57-88-5</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Magnesium sulfate heptahydrate (MgSO4)</td>
			<td style="width:71px;">Merck</td>
			<td align="right" style="width:119px;">1,058,861,000</td>
			<td>CAS-Nr. 10034-99-8</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4)</td>
			<td style="width:71px;">ACROS organics</td>
			<td align="right" style="width:119px;">271080025</td>
			<td>CAS-Nr. 7778-77-0</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">6 cm petri dish</td>
			<td style="width:71px;">Greiner Bio-One</td>
			<td align="right" style="width:119px;">628102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">3.5 cm petri dish</td>
			<td style="width:71px;">Greiner Bio-One</td>
			<td align="right" style="width:119px;">627102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">M9 ingredients:</td>
			<td style="width:71px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Potassium dihydrogen phosphate (KH2PO4)</td>
			<td style="width:71px;">ACROS organics</td>
			<td align="right" style="width:119px;">271080025</td>
			<td>CAS-Nr. 7778-77-0</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:216px;">Sodium hydrogen phosphate heptahydrate (NaHPO4)</td>
			<td style="width:71px;">Sigma-Aldrich</td>
			<td>S9390-500G-D</td>
			<td>CAS-Nr. 7782-85-6</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:216px;">Sodium chloride (NaCl)</td>
			<td style="width:71px;">Roth</td>
			<td align="right" style="width:119px;">3957</td>
			<td>CAS-Nr. 7647-14-5</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

assaying predatory feeding behaviors in pristionchus and other nematodes

This protocol provides multiple methods for the analysis and quantification of predatory feeding behaviors in nematodes. Many nematode species including Pristionchus pacificus display complex behaviors, the most striking of which is the predation of other nematode larvae. However, as these behaviors are absent in the model organism Caenorhabditis elegans, they have thus far only recently been described in detail along with the development of reliable behavioral assays 1. These predatory behaviors are dependent upon phenotypically plastic but fixed mouth morphs making the correct identification and categorization of these animals essential. In P. pacificus there are two mouth types, the stenostomatous and eurystomatous morphs 2, with only the wide mouthed eurystomatous containing an extra tooth and being capable of killing other nematode larvae. Through the isolation of an abundance of size matched prey larvae and subsequent exposure to predatory nematodes, assays including both "corpse assays" and "bite assays" on correctly identified mouth morph nematodes are possible. These assays provide a means to rapidly quantify predation success rates and provide a detailed behavioral analysis of individual nematodes engaged in predatory feeding activities. In addition, with the use of a high-speed camera, visualization of changes in pharyngeal activity including tooth and pumping dynamics are also possible.

<html> P.에서 적절한 입 모프를 성공적으로 식별 다음 pacificus, eurystomatous과 stenostomatous 동물 사이에 명확한 차이는 동작을 죽이고에 참여 만 eurystomatous 동물 (그림 3)를 검출 할 수있다. stenostomatous 동물에서이 문제를 완전히 억제 할 것으로 보인다. 또한, 박테리아와 먹이에 eurystomatous 동물의 치아 활동과 인두 펌프의 차이 (그림 4 및 동영상 2, 3) 또한 분명하다. 육 공급하면서, 펌핑 속도는 박테리아 공급 및 치아 이동은 인두 펌핑 한 비율로 한 검출시 관찰 이하로 감소된다. 이 다이어트를 다른에 대한 행동 반응을 조절 키 규제 메커니즘의 가능성을 나타낸다. S / ftp_upload / 54404 / 54404fig1.jpg &quot;/&gt; 그림 1. P. pacificus 문제를 먹이에 영향을주는 입 이형 태성이 있습니다. (A)에 eurystomatous 입 형태 포식 할 수 있고, 큰 발톱 모양의 등쪽 티스 (FALSE 컬러 레드) 및 (B)가 큰 대향 훅 형상 부 복부 티스 (거짓 색 청색)와 넓은 입구 개구를 갖는다. (다) stenostomatous 입 양식이 박테리아에 먹이에만 수 있으며, 부싯돌 모양의 지느러미 치아 (거짓 색 빨간색)와 (D)없이 서브 복부 치아 (*)와 좁은 입 구멍이 있습니다. Normaski 이미지는 63X하고 스케일 바는 10 μm의를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig2.jpg" /> <str옹&gt; 그림 2. 포식 분석 실험. (A) P. pacificus는 물린 및 C. 다른 선충의 유충을 죽인다 팅 분석 용 간스. (B) bitesby 포식 (*)의 수는 광 입체 성공적인 살해하여도 기록 된 이벤트를 공급 관찰 될 수있다. 시체가 명확하게 또한 볼 (원)입니다. (C) 시체 분석의 경우, 애벌레 시체 (화살표)을 쉽게 유충 생활에 비해 식별 할 수 있습니다. 스케일 바는 1 B에서 mm와 C에서 150 μm의 표현 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하세요.</a> <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig3.jpg" /> C.에 이빨과 시체 분석 실험 3. 결과 그림 엘레 먹이. (A) 물기 동작은 분명<html> 이 문제와 eurystomatous 입 형태로 stenostomatous 동물에 표시되지 않습니다. 오류 바 10 복제의 표준 편차를 나타냅니다. (B) stenostomatous 동물의 알 수없는 무는 행동과 일치, 시체 분석도 만 eurystomatous 동물의 분석 접시에 시체를 알 수있다. 오류 바 5 복제의 표준 편차를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/54404/54404fig4.jpg" /> eurystomatous 동물 약탈 공급에 종사하는 동안 그림 4. 약탈 수유하는 동안 속도와 치아 운동 펌핑 Eurystomatous. 치아의 움직임 만 관찰된다. 이것은 또한 인두 펌프의 감소와 일치한다. 오류 바는 10 복제의 표준 편차를 나타냅니다.<html> = &quot;https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/54404fig4large.jpg&quot;대상 = &quot;_ 빈&quot;HREF&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="영화 1" src="/files/ftp_upload/54404/54404movie1.jpg" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_1_Killing_behaviour.mp4">영화 가벼운 실체 현미경을 사용하여 물린 분석을위한 행동을 죽이는 1. 관측. (오른쪽 다운로드 클릭).</a> <img alt="영화 2" src="/files/ftp_upload/54404/54404movie2.jpg" /> <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_2_HS_Camera_Killing.mp4">P.의 영화 2. 고속 카메라 동영상 pacificus는 C. 사망 elegans의 애벌레. (오른쪽 다운로드 클릭).</a> 광고 / 54404 / 54404movie3.jpg &quot;/&gt; <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54404/Movie_3_HS_pumping_and_tooth.mp4">영화 3. 포식하는 동안 치아 이동의 고속 카메라에 확대. (오른쪽 다운로드 클릭).</a>

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Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

Behavioral assays provide powerful tools for understanding neuronal function. Here we present several protocols for quantifying predatory feeding behavior found in the model nematode Pristionchus pacificus and its relatives. Additionally, we provide methods for analyzing predatory feeding adaptations including mouth structures and teeth.

에서 약탈 먹이 행동을 분석<em&gt; Pristionchus</em&gt; 및 기타 선충

This protocol provides multiple methods for the analysis and quantification of predatory feeding behaviors in nematodes. Many nematode species including ...

assaying-predatory-feeding-behaviors-pristionchus-other

Research

JoVE Journal

Environment

Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

9.7K 조회수.  Max-Planck Institute for Developmental Biology. Behavioral assays provide powerful tools for understanding neuronal function. Here we present several protocols for quantifying predatory feeding behavior found in the model nematode Pristionchus pacificus and its relatives. Additionally, we provide methods for analyzing predatory feeding adaptations including mouth structures and teeth. 

비디오: Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

Optimize Flue Gas Settings to Promote Microalgae Growth in Photobioreactors via Computer Simulations

Flue gas from power plants can promote algal cultivation and reduce greenhouse gas emissions1. Microalgae not only capture solar energy more efficiently than plants3, but also synthesize advanced biofuels2-4. Generally, atmospheric CO2 is not a sufficient source for supporting maximal algal growth5. On the other hand, the high concentrations of CO2 in industrial exhaust gases have adverse effects on algal physiology. Consequently, both cultivation conditions (such as nutrients and light) and the control of the flue gas flow into the photo-bioreactors are important to develop an efficient &ldquo;flue gas to algae&rdquo; system. Researchers have proposed different photobioreactor configurations4,6 and cultivation strategies7,8 with flue gas. Here, we present a protocol that demonstrates how to use models to predict the microalgal growth in response to flue gas settings. We perform both experimental illustration and model simulations to determine the favorable conditions for algal growth with flue gas. We develop a Monod-based model coupled with mass transfer and light intensity equations to simulate the microalgal growth in a homogenous photo-bioreactor. The model simulation compares algal growth and flue gas consumptions under different flue-gas settings. The model illustrates: 1) how algal growth is influenced by different volumetric mass transfer coefficients of CO2; 2) how we can find optimal CO2 concentration for algal growth via the dynamic optimization approach (DOA); 3) how we can design a rectangular on-off flue gas pulse to promote algal biomass growth and to reduce the usage of flue gas. On the experimental side, we present a protocol for growing Chlorella under the flue gas (generated by natural gas combustion). The experimental results qualitatively validate the model predictions that the high frequency flue gas pulses can significantly improve algal cultivation.

Flue gas from power plants is a cheap CO2 source for algal growth. We have built prototype &#34;flue gas to algal cultivation&#34; systems and described how to scale up the algal cultivation process. We have demonstrated the use of a mass-transfer bio-reaction model to simulate and to design the optimal operation of flue gas for the growth of Chlorella sp. in algal photo-bioreactors.

컴퓨터 시뮬레이션을 통해 광 바이오 반응기에서 미세 조류의 성장을 촉진하기 위해 연소 가스 설정을 최적화

Flue gas from power plants can promote algal cultivation and reduce greenhouse gas emissions1. Microalgae not only capture solar energy more efficiently ...

연구

환경과학

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to two families: Steinernematidae and Heterorhabditidae. Until now, more than 70 species have been described in the Steinernematidae and there are about 20 species in the Heterorhabditidae. The nematodes have a mutualistic partnership with Enterobacteriaceae bacteria and together they act as a potent insecticidal complex that kills a wide range of insect species.
Herein, we focus on the most common techniques considered for collecting EPN from soil. The second part of this presentation focuses on the insect-baiting technique, a widely used approach for the isolation of EPN from soil samples, and the modified White trap technique which is used for the recovery of these nematodes from infected insects. These methods and techniques are key steps for the successful establishment of EPN cultures in the laboratory and also form the basis for other bioassays that consider these nematodes as model organisms for research in other biological disciplines. The techniques shown in this presentation correspond to those performed and/or designed by members of S. P. Stock laboratory as well as those described by various authors.

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Entomopathogenic nematodes are soil-inhabiting roundworms that parasitize a wide range of insects. We demonstrate sampling methods used for the isolation of these nematodes from the soil using two techniques: the insect baiting and the modified White trap, for the recovery of nematodes from soil samples and infected insect cadavers, respectively.

토양 샘플링과 곤충 병원성 선충의 분리 (Steine​​rnematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

A Fish-feeding Laboratory Bioassay to Assess the Antipredatory Activity of Secondary Metabolites from the Tissues of Marine Organisms

Marine chemical ecology is a young discipline, having emerged from the collaboration of natural products chemists and marine ecologists in the 1980s with the goal of examining the ecological functions of secondary metabolites from the tissues of marine organisms. The result has been a progression of protocols that have increasingly refined the ecological relevance of the experimental approach. Here we present the most up-to-date version of a fish-feeding laboratory bioassay that enables investigators to assess the antipredatory activity of secondary metabolites from the tissues of marine organisms. Organic metabolites of all polarities are exhaustively extracted from the tissue of the target organism and reconstituted at natural concentrations in a nutritionally appropriate food matrix. Experimental food pellets are presented to a generalist predator in laboratory feeding assays to assess the antipredatory activity of the extract. The procedure described herein uses the bluehead, Thalassoma bifasciatum, to test the palatability of Caribbean marine invertebrates; however, the design may be readily adapted to other systems. Results obtained using this laboratory assay are an important prelude to field experiments that rely on the feeding responses of a full complement of potential predators. Additionally, this bioassay can be used to direct the isolation of feeding-deterrent metabolites through bioassay-guided fractionation. This feeding bioassay has advanced our understanding of the factors that control the distribution and abundance of marine invertebrates on Caribbean coral reefs and may inform investigations in diverse fields of inquiry, including pharmacology, biotechnology, and evolutionary ecology.

This bioassay employs a model predatory fish to assess the presence of feeding-deterrent metabolites from organic extracts of the tissues of marine organisms at natural concentrations using a nutritionally comparable food matrix.

물고기 먹이 실험 생물 검정은 해양 생물의 조직에서 이차 대사 산물의 Antipredatory 활동을 평가하기 위해

Marine chemical ecology is a young discipline, having emerged from the collaboration of natural products chemists and marine ecologists in the 1980s with ...

Quantification of Heavy Metals and Other Inorganic Contaminants on the Productivity of Microalgae

Increasing demand for renewable fuels has researchers investigating the feasibility of alternative feedstocks, such as microalgae. Inherent advantages include high potential yield, use of non-arable land and integration with waste streams. The nutrient requirements of a large-scale microalgae production system will require the coupling of cultivation systems with industrial waste resources, such as carbon dioxide from flue gas and nutrients from wastewater. Inorganic contaminants present in these wastes can potentially lead to bioaccumulation in microalgal biomass negatively impact productivity and limiting end use. This study focuses on the experimental evaluation of the impact and the fate of 14 inorganic contaminants (As, Cd, Co, Cr, Cu, Hg, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V and Zn) on Nannochloropsis salina growth. Microalgae were cultivated in photobioreactors illuminated at 984 &#181;mol m-2 sec-1 and maintained at pH 7 in a growth media polluted with inorganic contaminants at levels expected based on the composition found in commercial coal flue gas systems. Contaminants present in the biomass and the medium at the end of a 7 day growth period were analytically quantified through cold vapor atomic absorption spectrometry for Hg and through inductively coupled plasma mass spectrometry for As, Cd, Co, Cr, Cu, Mn, Ni, Pb, Sb, Se, Sn, V and Zn. Results show N. salina is a sensitive strain to the multi-metal environment with a statistical decrease in biomass yieldwith the introduction of these contaminants. The techniques presented here are adequate for quantifying algal growth and determining the fate of inorganic contaminants.

Integration of microalgal cultivation with industrial flue gas will ultimately introduce heavy metals and other inorganic compounds into the growth media. This study presents a procedure used to determine the end fate and impact of heavy metals and inorganic contaminants on the growth of Nannochloropsis salina grown in photobioreactors.

중금속과 미세 조류의 생산성에 다른 무기 오염 물질의 정량화

Increasing demand for renewable fuels has researchers investigating the feasibility of alternative feedstocks, such as microalgae. Inherent advantages ...

Double-stranded RNA Oral Delivery Methods to Induce RNA Interference in Phloem and Plant-sap-feeding Hemipteran Insects

Phloem and plant sap feeding insects invade the integrity of crops and fruits to retrieve nutrients, in the process damaging food crops. Hemipteran insects account for a number of economically substantial pests of plants that cause damage to crops by feeding on phloem sap. The brown marmorated stink bug (BMSB), Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae) and the Asian citrus psyllid (ACP), Diaphorina citri Kuwayama (Hemiptera: Liviidae) are hemipteran insect pests introduced in North America, where they are an invasive agricultural pest of high-value specialty, row, and staple crops and citrus fruits, as well as a nuisance pest when they aggregate indoors. Insecticide resistance in many species has led to the development of alternate methods of pest management strategies. Double-stranded RNA (dsRNA)-mediated RNA interference (RNAi) is a gene silencing mechanism for functional genomic studies that has potential applications as a tool for the management of insect pests. Exogenously synthesized dsRNA or small interfering RNA (siRNA) can trigger highly efficient gene silencing through the degradation of endogenous RNA, which is homologous to that presented. Effective and environmental use of RNAi as molecular biopesticides for biocontrol of hemipteran insects requires the in vivo delivery of dsRNAs through feeding. Here we demonstrate methods for delivery of dsRNA to insects: loading of dsRNA into green beans by immersion, and absorbing of gene-specific dsRNA with oral delivery through ingestion. We have also outlined non-transgenic plant delivery approaches using foliar sprays, root drench, trunk injections as well as clay granules, all of which may be essential for sustained release of dsRNA. Efficient delivery by orally ingested dsRNA was confirmed as an effective dosage to induce a significant decrease in expression of targeted genes, such as juvenile hormone acid O-methyltransferase (JHAMT) and vitellogenin (Vg). These innovative methods represent strategies for delivery of dsRNA to use in crop protection and overcome environmental challenges for pest management.

This article demonstrates novel techniques developed for oral delivery of double-stranded RNA (dsRNA) through the vascular tissues of plants for RNA interference (RNAi) in phloem sap feeding insects.

체 관 부 식물 수액 공급 Hemipteran 곤충에 RNA 간섭을 유도 하 이중 가닥 RNA 구두 전달 방법

Phloem and plant sap feeding insects invade the integrity of crops and fruits to retrieve nutrients, in the process damaging food crops. Hemipteran ...

The Plant Infection Test: Spray and Wound-Mediated Inoculation with the Plant Pathogen Magnaporthe Grisea

Plants possess a powerful system to defend themselves against potential threats by pathogenic fungi. For agriculturally important plants, however, current measures to combat such pathogens have proved too conservative and, thus, not sufficiently effective, and they can potentially pose environmental risks. Therefore, it is extremely necessary to identify host-resistance factors to assist in controlling plant diseases naturally through the identification of resistant germplasm, the isolation and characterization of resistance genes, and the molecular breeding of resistant cultivars. In this regard, there is need to establish an accurate, rapid, and large-scale inoculation method to breed and develop plant resistance genes. The rice blast fungal pathogen Magnaporthe grisea causes severe disease symptoms and yield losses. Recently, M. grisea has emerged as a model organism for studying the mechanisms of plant-fungal pathogen interactions. Hence, we report the development of a plant virulence test method that is specific for M. grisea. This method provides for both spray inoculation with a conidial suspension and wounding inoculation with mycelium cubes or droplets of conidial suspension. The key step of the wounding inoculation method for detached rice leaves is to make wounds on plant leaves, which avoids any interference caused by host penetration resistance. This spray/wounding protocol contributes to the rapid, accurate, and large-scale screening of the pathotypes of M. grisea isolates. This integrated and systematic plant infection method will serve as an excellent starting point for gaining a broad perspective of issues in plant pathology.

The Plant Infection Test: Spray and Wound-Mediated Inoculation with the Plant Pathogen Magnaporthe Grisea

Here, we present a protocol to test plant virulence with the plant pathogen Magnaporthe grisea. This report will contribute to the large-scale screening of the pathotypes of fungi isolates and serve as an excellent starting point for understanding the resistant mechanisms of plants during molecular breeding.

식물 감염 테스트: 스프레이 식물 병원 체 Magnaporthe Grisea 와 상처-중재 접종

Plants possess a powerful system to defend themselves against potential threats by pathogenic fungi. For agriculturally important plants, however, current ...

Harvesting Venom Toxins from Assassin Bugs and Other Heteropteran Insects

Heteropteran insects such as assassin bugs (Reduviidae) and giant water bugs (Belostomatidae) descended from a common predaceous and venomous ancestor, and the majority of extant heteropterans retain this trophic strategy. Some heteropterans have transitioned to feeding on vertebrate blood (such as the kissing bugs, Triatominae; and bed bugs, Cimicidae) while others have reverted to feeding on plants (most Pentatomomorpha). However, with the exception of saliva used by kissing bugs to facilitate blood-feeding, little is known about heteropteran venoms compared to the venoms of spiders, scorpions and snakes.
One obstacle to the characterization of heteropteran venom toxins is the structure and function of the venom/labial glands, which are both morphologically complex and perform multiple biological roles (defense, prey capture, and extra-oral digestion). In this article, we describe three methods we have successfully used to collect heteropteran venoms. First, we present electrostimulation as a convenient way to collect venom that is often lethal when injected into prey animals, and which obviates contamination by glandular tissue. Second, we show that gentle harassment of animals is sufficient to produce venom extrusion from the proboscis and/or venom spitting in some groups of heteropterans. Third, we describe methods to harvest venom toxins by dissection of anaesthetized animals to obtain the venom glands. This method is complementary to other methods, as it may allow harvesting of toxins from taxa in which electrostimulation and harassment are ineffective. These protocols will enable researchers to harvest toxins from heteropteran insects for structure-function characterization and possible applications in medicine and agriculture.

Although many insects in the suborder Heteroptera (Insecta: Hemiptera) are venomous, their venom composition and the functions of their venom toxins are mostly unknown. This protocol describes methods to harvest heteropteran venoms for further characterization, using electrostimulation, harassment, and gland dissection.

독 독 소 암살자 버그와 다른 Heteropteran 곤충에서 수확

Heteropteran insects such as assassin bugs (Reduviidae) and giant water bugs (Belostomatidae) descended from a common predaceous and venomous ancestor, ...

Design and Use of an Apparatus for Quantifying Bivalve Suspension Feeding at Sea

As shellfish aquaculture moves from coastal embayments and estuaries to offshore locations, the need to quantify ecosystem interactions of farmed bivalves (i.e., mussels, oysters, and clams) presents new challenges. Quantitative data on the feeding behavior of suspension-feeding mollusks is necessary to determine important ecosystem interactions of offshore shellfish farms, including their carrying capacity, the competition with the zooplankton community, the availability of trophic resources at different depths, and the deposition to the benthos. The biodeposition method is used to quantify feeding variables in suspension-feeding bivalves in a natural setting and represents a more realistic proxy than laboratory experiments. This method, however, relies upon a stable platform to satisfy the requirements that water flow rates supplied to the shellfish remain constant and the bivalves are undisturbed. A flow-through device and process for using the biodeposition method to quantify the feeding of bivalve mollusks were modified from a land-based format for shipboard use by building a two-dimensional gimbal table around the device. Planimeter data reveal a minimal pitch and yaw of the chambers containing the test shellfish despite boat motion, the flow rates within the chambers remain constant, and operators are able to collect the biodeposits (feces and pseudofeces) with sufficient consistency to obtain accurate measurements of the bivalve clearance, filtration, selection, ingestion, rejection, and absorption at offshore shellfish aquaculture sites.

A flow-through device for using the biodeposition method to quantify filtration and feeding behavior of bivalve mollusks was modified for shipboard use. A two-dimensional gimbal table built around the device isolates the apparatus from boat motion, thereby allowing the accurate quantification of bivalve filtration variables at offshore shellfish aquaculture sites.

디자인 및 쌍 각 조개 서 스 펜 션 바다에서 먹이 측정 기구 사용

As shellfish aquaculture moves from coastal embayments and estuaries to offshore locations, the need to quantify ecosystem interactions of farmed bivalves ...

Leaf Area Index Estimation Using Three Distinct Methods in Pure Deciduous Stands

Accurate estimations of leaf area index (LAI), defined as half of the total leaf surface area per unit of horizontal ground surface area, are crucial for describing the vegetation structure in the fields of ecology, forestry, and agriculture. Therefore, procedures of three commercially used methods (litter traps, needle technique, and a plant canopy analyzer) for performing LAI estimation were presented step-by-step. Specific methodological approaches were compared, and their current advantages, controversies, challenges, and future perspectives were discussed in this protocol. Litter traps are usually deemed as the reference level. Both the needle technique and the plant canopy analyzer (e.g., LAI-2000) frequently underestimate LAI values in comparison with the reference. The needle technique is easy to use in deciduous stands where the litter completely decomposes each year (e.g., oak and beech stands). However, calibration based on litter traps or direct destructive methods is necessary. The plant canopy analyzer is a commonly used device for performing LAI estimation in ecology, forestry, and agriculture, but is subject to potential error due to foliage clumping and the contribution of woody elements in the field of view (FOV) of the sensor. Eliminating these potential error sources was discussed. The plant canopy analyzer is a very suitable device for performing LAI estimations at the high spatial level, observing a seasonal LAI dynamic, and for long-term monitoring of LAI.

An accurate estimation of leaf area index (LAI) is crucial for many models of material and energy fluxes within plant ecosystems and between an ecosystem and the atmospheric boundary layer. Therefore, three methods (litter traps, needle technique, and PCA) for taking precise LAI measurements were in the presented protocol.

순수 낙엽 스탠드에서 세 가지 뚜렷한 방법을 사용한 잎 영역 지수 추정

Accurate estimations of leaf area index (LAI), defined as half of the total leaf surface area per unit of horizontal ground surface area, are crucial for ...

A Small-Scale Setup for Algal Toxicity Testing of Nanomaterials and Other Difficult Substances

Ecotoxicity data is a requirement for pre- and post-market registration of chemicals by European and international regulations (e.g., REACH). The algal toxicity test is frequently used in regulatory risk assessment of chemicals. In order to achieve high reliability and reproducibility the development of standardized guidelines is vital. For algal toxicity testing, the guidelines require stable and uniform conditions of parameters such as pH, temperature, carbon dioxide levels and light intensity. Nanomaterials and other so-called difficult substances can interfere with light causing a large variation in results obtained hampering their regulatory acceptance. To address these challenges, we have developed LEVITATT (LED Vertical Illumination Table for Algal Toxicity Tests). The setup utilizes LED illumination from below allowing for a homogenous light distribution and temperature control while also minimizing intra-sample shading. The setup optimizes the sample volume for biomass quantification and does at the same time ensure a sufficient influx of CO2 to support exponential growth of the algae. Additionally, the material of the test containers can be tailored to minimize adsorption and volatilization. When testing colored substances or particle suspensions, the use of LED lights also allows for increasing the light intensity without additional heat generation. The compact design and minimal equipment requirements increase the possibilities for implementation of the LEVITATT in a wide range of laboratories. While compliant with standardized ISO and OECD guidelines for algal toxicity testing, LEVITATT also showed a lower inter-sample variability for two reference substances (3,5-Dicholorophenol and K2Cr2O7) and three nanomaterials (ZnO, CeO2, and BaSO4) compared to Erlenmeyer flasks and microtiter plates.

We demonstrate algal toxicity testing for difficult substances (e.g., colored substances or nanomaterials) using a setup illuminated vertically with an LED.

나노 물질 및 기타 어려운 물질의 조류 독성 테스트를위한 소규모 설정

Ecotoxicity data is a requirement for pre- and post-market registration of chemicals by European and international regulations (e.g., REACH). The algal ...