Name: gonadectomy and blood sampling procedures in the small size teleost model japanese medaka (oryzias latipes)
Uploaded: 2020-12-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 31 s
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저자는 생선 축산에 그녀의 도움을 주셔서 미스 루르드 카레온 G 탄에게 감사드립니다. 이 사업은 일본과학진흥회(JSPS)의 NMBU,보조금 지원(교부번호 18H04881 및 18K19323)에 의해 지원되었으며, 스미토모 재단에서 SK에 기초과학 연구 프로젝트를 지원했습니다.

모든 실험과 동물 취급은 노르웨이 생명 과학 대학의 실험 동물 복지에 대한 권고에 따라 수행되었습니다. 고나데토미를 사용한 실험은 노르웨이 식품 안전 당국(FOTS ID 24305)에 의해 승인되었습니다.
참고: 실험은 성인 남성과 여성(생후 6~7개월, 체중 0.35g, 길이 2.7cm)을 사용하여 수행하였다. 상기 성은42,47에기재된 바와 같이 등쪽 및 항문 지느러미의 크기 및 모양과 같은 이차성 특성을 구별함으로써 결정되었다.
1. 기기 및 솔루션 준비
<ol><li>마취 주식 솔루션 (0.6 % 트리카인)을 준비합니다.<ol>
<li>10x 인산염 완충식살린(PBS)의 100mL에서 트리카인(MS-222)을 0.6g 희석한다.</li>
		<li>트리카인 스톡 용액 1mL을 여러 1.5mL 플라스틱 튜브에 분배하고 사용할 때까지 -20°C에 보관하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>수족관 용수 2L에 NaCl 18g을 추가하여 회수수(0.9% NaCl 솔루션)를 준비합니다. 사용 전까지 실온에 용액을 보관하십시오.</li>
	<li>날카로운 점을 얻기 위해 대각선으로 면도기를 파괴하여 절개 도구를 준비(도 1A).</li>
	<li>혈액 항응고제 용액(0.05 U/μL 의 나트륨 헤파린)을 1x PBS의 500 μL로 나트륨 헤파린 25 μL을 희석하여 준비합니다. 사용 전까지 항응고제 용액을 4°C에 저장합니다.</li>
	<li>제조업체의 지시에 따라 바늘풀러(도 1B)로유리 모세관을 당겨 90mm 길이의 유리 모세관에서 2개의 유리 바늘을 준비한다. 참고: 유리 바늘의 외경은 1mm이고 내부 직경은 0.6 mm입니다.</li>
	<li>뚜껑을 절단하여 1.5mL 플라스틱 튜브 뚜껑을 준비하고 바늘 외부직경(도 1C)에맞는 구멍을 만듭니다. 구멍을 만들기 위해 9mm 유리 모세관의 한쪽 끝을 가열하고 뚜껑을 통해 가열 된 유리 모세관을 찌르십시오. 또는 바늘을 사용하여 구멍의 직경이 9mm 유리 모세관에 맞을 때까지 뚜껑을 찌르게하십시오.</li>
</ol>2. 고나데토미 시술
<ol><li>수족관 수의 30mL에 트리카인 재고(0.6%)의 튜브 1개(0.6%)를 희석하여 마취용액의 0.02%를 준비한다.</li>
	<li>1.3 단계에서 설명된 초미세 및 2개의 미세한 집게(비교적 넓은 팁이 있는 분수), 작은 가위, 나일론 실 및 면도기 등 해부 도구를 준비합니다.</li>
	<li>물고기를 30-60초 동안 0.02% 마취용액에 넣어 생선을 마취합니다. 참고: 마취 의 지속 시간은 물고기의 크기와 무게에 따라 달라 지며 적응해야합니다. 물고기가 완전히 마취되도록 하기 위해 물고기 몸은 집게를 사용하여 부드럽게 꼬집을 수 있습니다. 물고기가 반응하지 않으면 고나데스토미를 시작할 수 있습니다.</li>
	<li>마취 용액에서 물고기를 꺼내 어처 현미경으로 물 밖으로 물고기를 측면에 수평으로 놓습니다.</li>
	<li>암컷의 오바리절제술(OVX)<ol>
<li>난수성 계란(암컷 몸 바깥에 매달려 있는 계란)을 제거하고 절개부위(도 2A)에서비늘을 긁어낸 경우.</li>
		<li>면도날을 사용하여 골반과 항문 지느러미(그림2A)사이에 갈비뼈 사이에 약 2-2.5mm 길이의 절개를 부드럽게 만듭니다. 그런 다음 넓은 팁으로 미세 한 포셉을 사용하여 난소를 조금씩 꺼내면서 생선 복부를 부드럽게 꼬집습니다.</li>
		<li>미세 포셉을 사용하여 난소의 끝을 잘라 내분(도 2B)을제쳐 놓습니다. 참고 : 가능하면 난소 주머니를 부러 뜨리지 않도록주의하십시오. 난소 낭이 깨진 경우, 심지어 비 배란 계란을 떠나지 않고 가능한 한 완전히 모든 gonad 흔적을 제거합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>남성의 낙초 절제술<ol>
<li>항문 위의갈비뼈(그림 2A)를부드럽게 절개하고 미세한 집게를 사용하여 절개를 천천히 엽니다.</li>
		<li>미세 한 집게를 사용하여 부드럽게 고환을 잡고 천천히 고환을 꺼냅니다. 그 후, 고환의 끝을 완전히 제거하기 위해 고환의 끝을 잘라(도 2B). 남성 치열 절제술의 경우, 모든 제제는 절개 부위까지 여성에서 유사합니다. 고환을 잡을 때, 때때로 고환을 닮은 지방이 얻어집니다. 그러나 지방을 복원한 후 고환을 다시 찾아볼 수있다(도 2B). 참고: 남성과 여성 모두, 사망률로 이어질 수 있는 과도 한 손상을 방지 하기 위해 복부에 절개 크기를 최소화 하는 것이 중요 하다. 때때로 내장은 또한 곤드와 함께 절개를 통해 나타날 수 있습니다, 그래서 그들은 제대로 닫기 전에 절개 내부에 반환 되어 있는지 확인. 난소와 메다카 복부의 고환 위치에 대한 사전 지식이 필수적입니다.</li>
	</ol></li>
	<li>남성과 여성에서 유사하게 절개를 봉합(그림 3).<ol>
<li>절개 부위 옆에 나일론 실을 놓고 초미세 포셉을 사용하여 내체 캐비티를 통해 절개 오른쪽으로부터 피부를 찌르고 미세한 집게로 실을 채운다(도3;1-2).</li>
		<li>실을 꺼내기 위해 외부 바디 캐비티를 통해 절개 왼쪽에서 피부를 찌르십시오 (도 3;3-4).</li>
		<li>절개 개구부를 닫고 두 개의 매듭을 만들고 과도한 스레드를 잘라냅니다(그림 3; 4-6). 참고: 봉합사는 적절히 단단해야 하며, 물고기의 나머지 실은 봉합사의 느슨해지는 것을 막을 수 있을 만큼 충분히 길어야 합니다. 마취에서 봉합까지의 전체 절차는 일반적으로 최대 6 분이 걸립니다. 시간이 길어지면 필멸의 삶이 될 수 있습니다.</li>
		<li>물고기를 복구 물에 넣고 수족관 시스템으로 옮기기 전에 적어도 24 시간 동안 물고기를 둡니다. 참고: 고나절제생선은 보통 회복수에서 1-2시간 후에 정상적인 행동을 보여줍니다. 따라서 실험 목적에 따라 이 시간 간격 이후에 물고기를 샘플링할 수 있습니다.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 혈액 샘플링 절차
<ol><li>유리 바늘, 실리콘 모세관, 구멍이있는 플라스틱 튜브, 빈 1.5 mL 플라스틱 튜브, 소형 심립분리기 및 테이프 : 도구를 준비합니다.</li>
	<li>2.1단계에서 설명된 바와 같이 0.02% 마취용액을 사용하여 물고기를 마취시키고, 물고기를 수직위치(도 4A)에해부 현미경아래에 놓는다. 소달 펑크 정맥의 시각화를 용이하게하기 위해 밝은 표면에 물고기를 놓습니다.</li>
	<li>실리콘 모세관(도4B)에유리 바늘을 부착하여 혈액 서랍을 설치합니다. 넓은 팁 집게로 바늘의 끝을 깨고 흡입 및 불면 항 응고용으로 바늘 내부를 코팅하십시오. 참고: 흡입 시 혈액의 직접적인 접촉을 피하기 위해 최소 50cm 길이의 빨판과 실리콘 모세관을 사용하는 것이 좋습니다. 또한 바늘 끝의 개구부가 충분히 커서 혈액을 그릴 수 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>바늘을 물고기의 페더클 영역쪽으로 직접, caudal peduncle 정맥을 목표로(도 5A)바늘의 총 부피가 채워질 때까지 적어도 4 분의 1까지 입을 사용하여 혈액을 그립니다(도 5B). 참고 : 물고기 몸에서 바늘을 제거하기 전에 흡입을 중지하는 것이 중요합니다.</li>
	<li>바늘을 풀어 바늘의 날카로운 면의 근접에 테이프 조각을 넣어. 수거 튜브에 구멍이 있는 뚜껑을 놓고 바늘을 외부에 바늘 끝으로 구멍을 통해 튜브 내부에 놓습니다(도5C).</li>
	<li>물고기를 복구 물에 넣고 수족관 시스템으로 옮기기 전에 적어도 24 시간 동안 물고기를 둡니다. 참고: 동일한 물고기에서 두 번째 혈액 샘플링을 수행하려면 첫 번째 혈액 샘플링 후 1 주일 후에 혈액을 샘플링하십시오.</li>
	<li>채취한 혈액을 1-2초 동안 실온에서 1,000xg로 스핀다운하여 튜브의 혈액을 채취합니다.</li>
	<li>다운스트림 응용 프로그램으로 직접 진행하거나 사용전까지 -20°C에 혈액을 저장하십시오. 참고: 전체 혈액에서 섹스 스테로이드 추출에 대 한 이전 연구를 참조48.</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

이전 문헌에서 보고 된 바와 같이, gonadectomy 및 혈액 샘플링 은 BPG 축의 조절에 섹스 스테로이드의 역할과 관련된 질문을 조사하기 위해 오랫동안 다른 모델 종에서 사용되었습니다. 그러나 이러한 기술은 더 큰 동물에게만 가능할 것으로 보입니다. 일반적으로 사용되는 텔레오스트 모델인 일본 메다카의 작은 크기를 고려하여, 이 종에 대해 가능한 고나데토미및 혈액 샘플링을 위한 상세한 프로?...

척추 동물에서, 성 스테로이드, 주로 생식선에 의해 생산 되는, 다양 한 피드백메커니즘을통해 뇌-뇌 뇌-Gonadal (BPG) 축의 규제에 중요 한 역할을1,2,3,4,5. 또한, 성 스테로이드는 뇌에서 뉴런의 증식 및 활동에 영향을 미치는6,7,8 및 내분비 세포, gonadotropes를 포함 하 여, 뇌 하 수 체9,10,따라서 뇌와 뇌 하 수 체 가소성에서 중요 한 역할을 제공. 포유류에 상대적으로 좋은 지식에도 불구 하 고, 성 스테로이드에 의해 중재 BPG 축 조절의 메커니즘은 비 포유류 종에서 이해 되 고에서 멀리, 진화 보존 원리의 가난한 이해로 이어지는11. 뇌와 뇌 하 수 체 가소성에 섹스 스테로이드의 역할을 문서화 하는 연구의 여전히 제한 된 수가 있다, 따라서 다양 한 척추 동물 종에 섹스 스테로이드의 역할 및 효과의 추가 조사에 대 한 필요성을 제기.
척추동물 중, 텔레오스트는 스트레스 반응12,13,성장14,15,영양 생리학16,17 및 재생2를포함하여 수많은 생물학적 및 생리학적 질문을 해결하는 강력한 모델 동물이되었다. 텔레오스트, 있는 섹스 스테로이드는 주로 에스트라디올에 의해 표현된다 (E2) 여성과 11 케토 테스토스테론 (11-KT)남성에서 18,19,종에 걸쳐 재생의 일반적인 원리를 조사하기위한 신뢰할 수있는 실험 모델이었다. 텔레오스트는 시상 하 부-뇌 하 수 체 연결에 있는 고유성을 보여줍니다20,21 및 뚜렷한 염소도트로프 세포(22),이는 때때로 규제 메커니즘의 해명에 대 한 편리. 또한, 실험실과 현장 실험 모두에 그들의 편의성으로 인해, teleosts는 다른 유기체에 비해 많은 장점을 제공합니다. 그들은23,24를구입하고 유지하는 것이 상대적으로 저렴합니다. 특히, 제브라피쉬(Daniorerio)와일본 메다카(Oryziaslatipes)와같은 작은 텔레오스트 모델은 매우 높은 fecundity와 상대적으로 짧은 수명 주기가 있는 종으로 유전자 기능 및 질병메커니즘(23)의신속한 분석을 가능하게 하며, 따라서 많은 잘 발달된 프로토콜과 유전적 질병을 고려하여 생물학적 및 생리학적 문제의 과다를 해결하는 데 더 큰 이점을제공한다.
수많은 연구에서, 혈액샘플링 기술과 함께 생식선(gonadectomy)을 제거하는 것은 포유류26,27,28,조류29 및 양서류30에서척추동물 생식 생리학에 미치는 영향을 포함하여 많은 생리적 질문을 조사하는 방법으로 사용되어 왔다. 생식 생리학에 대한 생식 세포절제술 효과는 타목시펜과 클로미펜과 같은 성 스테로이드 길항제에 의해 대안적으로 모방될 수 있지만, 약물의 효과는양성효과(31,32)로인해 일관성이 없는 것으로 보인다. 성 스테로이드 길항제에 만성 노출 난 소 확대로 이어질 수 있습니다33,34,건강에 해로운 표현형으로 인해 장기 목적을 위한 그것의 효과의 관찰을 비활성화할 수 있습니다. 또한, 특정 성 스테로이드의 특정 효과를 보증하기 위해, 성 스테로이드 길항제 치료 후 복구 실험을 수행하는 것은 불가능하다. 그 앞서 언급 한 포인트와 함께, 섹스 스테로이드 길항제 사용의 다른 트레이드 오프 광범위 하 게 검토 되었습니다31,32. 따라서, gonadectomy 여전히 섹스 스테로이드의 역할을 조사 하는 강력한 기술로 오늘 나타납니다.
고나데절과 혈액 샘플링 기술은 상대적으로 더 큰 종에서 수행하기 쉽지만, 유럽 농어(디센트라쿠스 라브릭스)35,블루 헤드 wrasse(탈라소마 비파시아툼)36,도그피쉬(실리오리누스 캐니쿨라)37 및 메기(헤테롭네스 화석 과 클라리아스 목욕 라쿠스)38,39,그들은 작은 물고기에 적용 할 때 도전을 제기한다. 예를 들어, 물고기 마취 전달 시스템 (FADS)40의 사용은 덜 실현 가능하고 작은 물고기에 대한 과도한 물리적 손상경향이있는 것으로 보인다. 또한, 일반적으로 더 큰 물고기(40)에 사용되는 gonadectomy 절차는 과도한 손상을 피하기 위해 높은 정밀도를 필요로하는 작은 물고기에 적합하지 않습니다. 마지막으로, 혈액 샘플링은 혈관에 대한 제한된 접근과 그 동물에 있는 혈액의 소량 때문에 도전적입니다. 따라서, 작은 텔레오스트에서 gonadectomy 및 혈액 샘플링의 모든 단계를 보여주는 명확한 프로토콜은 중요합니다.
이 프로토콜은 동아시아가 원산지인 작은 민물고기인 일본 메다카에서 혈액 샘플링을 거쳐 고나데스토미의 단계별 절차를 보여줍니다. 일본 메다카는 서열게놈, 여러 분자 및 유전적 도구25개,이차성 특성 또는 생식선 이전에 성적 차이에 대한 조사를 허용하는 유전적 성결정 시스템이41로잘 개발된다. 흥미롭게도, 일본 메다카는 다른 많은 텔레오스트 종에 반하는 융합 된 조나(42)를가지고 있습니다. 이 두 가지 기술을 결합한 이 두 가지 기술은 총 8분밖에 걸리지 않으며혈관(43)의라벨링, 뇌하수체섹션(44) 및 뇌뉴런(45)의 패치 클램프, 1차 세포배양(46)을포함하는 이 종에 대해 이미 존재하는 비디오 프로토콜 목록을 완성할 것이다. 이러한 기술은 연구 커뮤니티가 미래에 뇌와 뇌 하 수 체 가소성뿐만 아니라 피드백 메커니즘에서 섹스 스테로이드의 역할을 조사하고 더 잘 이해할 수 있게 해 줄 것입니다.

<table><tbody><tr><td>Glass capilary</td><td></td><td>GD1</td><td>Glass Capillary with Filament GD-1; Narishige</td></tr><tr><td>Heparin sodium salt</td><td></td><td>H4784-1G</td><td>Sigma-aldrich</td></tr><tr><td>Needle puller</td><td></td><td>P97</td><td>Flaming/Brown Micropipette puller Model P-97; Sutter Instrument</td></tr><tr><td>Nylon thread</td><td></td><td>N45VL</td><td>Polyamide suture, 0.2 metric; Crownjun</td></tr><tr><td>Plastic tube</td><td></td><td>T9661</td><td>Eppendorf Safe-lock microcentifuge tube 1.5 ml, Sigma-aldrich</td></tr><tr><td>Razor blade</td><td></td><td>-</td><td>Astra Superior Platinum Double Edge Razor Blades Green, salonwholesale.com</td></tr><tr><td>Silicone capillary</td><td></td><td>a16090800ux0403</td><td>Uxcell Silicone Tube 1 mm ID x 2 mm OD, amazon.com&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Tricaine</td><td></td><td>WXBC9102V</td><td>Aldrich chemistry</td></tr></tbody></table>

gonadectomy and blood sampling procedures in the small size teleost model japanese medaka (oryzias latipes)

성 스테로이드, 생식선에 의해 생산, 뇌와 뇌 하 수 체 조직 가소성및 뇌와 뇌 하 수 체에 피드백을 제공 하 여 모든 척추 동물에서 재생의 신경 내 분 비 제어에 필수적인 역할을. Teleost 물고기는 포유동물에 비해 생식 전략의 조직 가소성과 변화의 높은 수준을 가지고 있으며 섹스 스테로이드의 역할과 그들이 행동하는 메커니즘을 조사하는 유용한 모델로 나타납니다. 스테로이드 레벨을 측정 하기 위해 혈액 샘플링함께 gonadectomy를 사용 하 여 섹스 스테로이드 생산의 주요 소스의 제거 는 잘 설립 하 고 더 큰 물고기에서 상당히 실현 하 고 역할 및 섹스 스테로이드의 효과 조사 하는 강력한 기술. 그러나 이러한 기술은 소규모 텔레오스트 모델에서 구현될 때 문제를 제기합니다. 여기에서는 남성과 여성 일본 메다카 모두에서 고나데토미의 단계별 절차를 설명하고 혈액 샘플링을 진행합니다. 이러한 프로토콜은 높은 생존율, 물고기의 수명 및 표현형에 대한 안전, 성 스테로이드 클리어런스의 관점에서 재현성이 높은 메다카에서 매우 실현 가능한 것으로 나타났다. 이 작은 teleost 모델을 사용 하 여의 다른 장점과 결합 된 이러한 절차의 사용은 크게 척추 동물에서 섹스 스테로이드에 의해 제공 된 생식 및 조직 가소성의 신경 내 분 비 제어에 피드백 메커니즘의 이해를 향상 시킬 것 이다.

이 프로토콜은 작은 크기의 모델 텔레오스트, 일본 메다카에서 gonadectomy 및 혈액 샘플링을 수행하기위한 모든 단계를 설명합니다. 암컷의 오방 절제술(OVX) 후 물고기의 생존율은 100%(물고기 10마리 중 10개)이며, 수컷의 94%(물고기 18마리 중 17마리)는 난초 절제술 후 살아남았다. 한편, 혈액 샘플링 절차가 수행 된 후, 모든 (38 물고기) 물고기가 살아남았다.
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Gonadectomy and Blood Sampling Procedures in the Small Size Teleost Model Japanese Medaka Oryzias latipes

이 기사는 동물 생리학에서 성 스테로이드의 역할을 조사하기 위해 일본 메다카(Oryzias latipes)를모델로 사용하여 작은 텔레오스트 물고기에서 혈액을 고나데톰화하고 샘플링하는 빠른 프로토콜을 설명합니다.

작은 크기의 텔레오스 모델 일본어 메다카(오리지아스 latipes)에서고나데토미및 혈액 샘플링 절차

Sex steroids, produced by the gonads, play an essential role in brain and pituitary tissue plasticity and in the neuroendocrine control of reproduction in ...

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Research

JoVE Journal

Biology

Gonadectomy and Blood Sampling Procedures in the Small Size Teleost Model Japanese Medaka (Oryzias latipes)

4.3K 조회수.  Norwegian University of Life Sciences. 이 기사는 동물 생리학에서 성 스테로이드의 역할을 조사하기 위해 일본 메다카(Oryzias latipes)를모델로 사용하여 작은 텔레오스트 물고기에서 혈액을 고나데톰화하고 샘플링하는 빠른 프로토콜을 설명합니다. 

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Salinity-dependent Toxicity Assay of Silver Nanocolloids Using Medaka Eggs

Salinity is an important characteristic of the aquatic environment. For aquatic organisms it defines the habitats of freshwater, brackish water, and seawater. Tests of the toxicity of chemicals and assessments of their ecological risks to aquatic organisms are frequently performed in freshwater, but the toxicity of chemicals to aquatic organisms depends on pH, temperature, and salinity. There is no method, however, for testing the salinity dependence of toxicity to aquatic organisms. Here, we used medaka (Oryzias latipes) because they can adapt to freshwater, brackish water, and seawater. Different concentrations of embryo-rearing medium (ERM) (1x, 5x, 10x, 15x, 20x, and 30x) were employed to test the toxicity of silver nanocolloidal particles (SNCs) to medaka eggs (1x ERM and 30x ERM have osmotic pressures equivalent to freshwater and seawater, respectively). In six-well plastic plates, 15 medaka eggs in triplicate were exposed to SNCs at 10 mg/L&#8722;1 in different concentrations of ERM at pH 7 and 25 &#176;C in the dark.
We used a dissecting microscope and a micrometer to measure heart rate per 15 sec and eye diameter on day 6 and full body length of the larvae on hatching day (section 4). The embryos were observed until hatching or day 14; we then counted the hatching rate every day for 14 days (section 4). To see silver accumulation in embryos, we used inductively coupled plasma mass spectrometry to measure the silver concentration of test solutions (section 5) and dechorionated embryos (section 6).The toxicity of the SNCs to medaka embryos obviously increased with increasing salinity. This new method allows us to test the toxicity of chemicals in different salinities.

Embryonic stages are the most susceptible to xenobiotics. Although chemical toxicity depends on salinity, no method exists to test the salinity dependence of toxicity to aquatic organisms. Here, we describe a new and high-throughput method for determining the salinity dependence of toxicity to aquatic embryos.

메다카 계란을 사용하여 실버 Nanocolloids의 염도에 의존하는 독성 분석

Salinity is an important characteristic of the aquatic environment. For aquatic organisms it defines the habitats of freshwater, brackish water, and ...

연구

발생학

Drug Treatment and In Vivo Imaging of Osteoblast-Osteoclast Interactions in a Medaka Fish Osteoporosis Model

Bone-forming osteoblasts interact with bone-resorbing osteoclasts to coordinate the turnover of bone matrix and to control skeletal homeostasis. Medaka and zebrafish larvae are widely used to analyze the behavior of bone cells during bone formation, degeneration, and repair. Their optical clarity allows the visualization of fluorescently labeled bone cells and fluorescent dyes bound to the mineralized skeletal matrix. Our lab has generated transgenic medaka fish that express the osteoclast-inducing factor Receptor Activator of Nuclear-factor &#954;B Ligand (RANKL) under the control of a heat&#160;shock-inducible promoter. Ectopic expression of RANKL results in the excess formation of activated osteoclasts, which can be visualized in reporter lines with nlGFP expression under the control of the cathepsin K (ctsk) promoter. RANKL induction and ectopic osteoclast formation leads to severe osteoporosis-like phenotypes. Compound transgenic medaka lines that express ctsk:nlGFP in osteoclasts, as well as mCherry under the control of the osterix (osx) promoter in premature osteoblasts, can be used to study the interaction of both cell types. This facilitates the in vivo observation of cellular behavior under conditions of bone degeneration and repair. Here, we describe the use of this system to test a drug commonly used in human osteoporosis therapy and describe a protocol for live imaging. The medaka model complements studies in cell culture and mice, and offers a novel system for the in vivo analysis of drug action in the skeletal system.

Drug Treatment and In Vivo Imaging of Osteoblast-Osteoclast Interactions in a Medaka Fish Osteoporosis Model

Small laboratory fish have become popular models for bone research on the mechanisms underlying human bone disorders and for the screening of bone-modulating drugs. In this report, we describe a protocol to assess the effect of alendronate on bone cells in medaka larvae with osteoporotic lesions.

약물 치료와<em&gt; 생체</em&gt;은 메다카 물고기 골다공증 모델에서 조골 파골 세포 상호 작용의 영상

Bone-forming osteoblasts interact with bone-resorbing osteoclasts to coordinate the turnover of bone matrix and to control skeletal homeostasis. Medaka ...

Microinjection of Medaka Embryos for use as a Model Genetic Organism

In this video, we demonstrate the technique of microinjection into one-cell stage medaka embryos. Medaka is a small egg-laying freshwater fish that allows both genetic and embryological analyses and is one of the vertebrate model organisms in which genome-wide phenotype-driven mutant screens were carried out 1, as in zebrafish and the mouse. Divergence of functional overlap of related genes between medaka and zebrafish allows identification of novel phenotypes that are unidentifiable in a single species 2, thus medaka and zebrafish are complementary for genetic dissection of vertebrate genome functions.
To take advantage of medaka fish whose embryos are transparent and develop externally, microinjection is an essential technique to inject cell-tracers for labeling cells, mRNAs or anti-sense oligonucleotides for over-expressing and knocking-down genes of interest, and DNAs for making transgenic lines.

Medaka and zebrafish are complementary for genetic dissection of vertebrate genome functions. This protocol highlights the key points for successful microinjection into medaka embryos, an important technique for embryological and genetic analysis using medaka and zebrafish in a laboratory.

모델 생물체 유전자로 사용하기 위해 Medaka의 태아의 Microinjection

In this video, we demonstrate the technique of microinjection into one-cell stage medaka embryos. Medaka is a small egg-laying freshwater fish that allows ...

생물학

Dechorionation of Medaka Embryos and Cell Transplantation for the Generation of Chimeras

Medaka is a small egg-laying freshwater fish that allows both genetic and embryological analyses and is one of the three vertebrate model organisms in which genome-wide phenotype-driven mutant screens were carried out 1. Divergence of functional overlap of related genes between medaka and zebrafish allows identification of novel phenotypes that are unidentifiable in a single species 2, thus medaka and zebrafish are complementary for genetic dissection of the vertebrate genome functions. Manipulation of medaka embryos, such as dechorionation, mounting embryos for imaging and cell transplantation, are key procedures to work on both medaka and zebrafish in a laboratory. Cell transplantation examines cell autonomy of medaka mutations. Chimeras are generated by transplanting labeled cells from donor embryos into unlabeled recipient embryos. Donor cells can be transplanted to specific areas of the recipient embryos based on the fate maps 3 so that clones from transplanted cells can be integrated in the tissue of interest during development. Due to the hard chorion and soft embryos, manipulation of medaka embryos is more involved than in zebrafish. In this video, we show detailed procedures to manipulate medaka embryos.

Due to the hard chorion and soft embryos, manipulation of medaka embryos is more involved than in zebrafish. This video shows step-by-step procedures for how to manipulate medaka embryos, including dechorionation, mounting in agarose for imaging and cell transplantation for the production of chimeras. These procedures are essential to use medaka and zebrafish in a laboratory to take full advantage of their complementary features for the genetic dissection of vertebrate genome functions.

Chimeras의 생성에 대한 Medaka의 태아 및 세포 이식의 Dechorionation

Medaka is a small egg-laying freshwater fish that allows both genetic and embryological analyses and is one of the three vertebrate model organisms in ...

<meta charset="utf8"></head><body>배아 발달을 연구하기 위한 Murine Round Spermatid Injection Procedure

Mouse Round Spermatid Injection

Round spermatids, characterized by their haploid genetic content, represent the precursor cells to mature spermatozoa. Through the innovative technique of round spermatid injection (ROSI), oocytes can be successfully fertilized and developed into viable fetuses. In a groundbreaking milestone achieved in 1995, the first mouse fetus was born through ROSI technology. ROSI has since emerged as a pivotal tool for unraveling the intricate mechanisms governing embryonic development and holds significant potential in various applications, including the acceleration of mouse generation and the production of genetically modified mice. In 1996, a milestone was reached when the first human fetus was born through ROSI technology. However, the clinical applications of this method have shown a fluctuating pattern of success and failure. To date, ROSI technology has not found widespread application in clinical practice, primarily due to its low birth efficiency and insufficient validation of fetal safety. This article provides a comprehensive account of the precise methods of performing ROSI in mice, aiming to shed new light on basic research and its potential clinical applications.

<meta charset="utf8"></head><body>마우스 라운드 Spermatid 주입

Here, we introduce a method for performing round spermatid injection (ROSI) in mice, a technique with promising clinical applications and utility for investigating the mechanisms underlying embryonic development.

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Repeated Blood Collection for Blood Tests in Adult Zebrafish

Repeated blood collection is one of the most common techniques performed on laboratory animals. However, a non-lethal protocol for blood collection from zebrafish has not been established. The previous methods for blood collection from zebrafish are lethal, such as lateral incision, decapitation and tail ablation. Thus we have developed a novel &#8220;repeated&#8221; blood collection method, and present here a detailed protocol outlining this procedure. This method is minimally invasive and results in a very low mortality rate (2.3%) for zebrafish, thus enabling repeated blood sampling from the same individual. The maximum volume of blood sampling is dependent on body weight of the fish. The volume for repeated blood sampling at intervals should be&#160;&#8804;0.4% of body weight every week or &#8804;1% every 2 weeks, which were evaluated by measurements of blood hemoglobin. Additionally, hemoglobin, fasting blood glucose, plasma triacylglycerol (TG) and total cholesterol levels in male and female adult zebrafish were measured. We also applied this method to investigate the dysregulation of glucose metabolism in diet-induced obesity. This blood collection method will allow many applications, including glucose and lipid metabolism and hematological studies, which will increase the use of zebrafish as a human disease model organism.

Repeated blood sampling is necessary and important in animal research. We developed a novel, non-lethal and reliable method for repeated blood collection from adult zebrafish, and applied this method to the study of blood biochemistry, including glucose metabolism.

성인 Zebrafish의에서 혈액 검사에 대한 반복 채혈

Repeated blood collection is one of the most common techniques performed on laboratory animals. However, a non-lethal protocol for blood collection from ...

Noninvasive Monitoring of Lesion Size in a Heterologous Mouse Model of Endometriosis

Here, we describe a protocol for the implementation of a heterologous mouse model in which progression of endometriosis can be assessed in real time through noninvasive monitoring of fluorescence emitted by implanted ectopic human endometrial tissue. For this purpose, biopsies of human endometrium are obtained from donor women ongoing oocyte donation. Human endometrial fragments are cultured in the presence of adenoviruses engineered to express cDNA for the reporter fluorescent protein mCherry. Upon visualization, labeled tissues with an optimal rate of fluorescence after infection are subsequently chosen for the implantation in recipient mice. One week prior to the implantation surgery, recipient mice are oophorectomized, and estradiol pellets are placed subcutaneously to sustain the survival and growth of lesions. On the day of surgery mice are anesthetized, and peritoneal cavity accessed through a small (1.5 cm) incision by the linea-alba. Fluorescently labeled implants are tweezed, briefly soaked in glue and attached to the peritoneal layer. Incisions are sutured, and animals left to recover for a couple of days. Fluorescence emitted by endometriotic implants is usually non-invasively monitored every 3 days for 4 weeks with an in vivo imaging system. Variations in the size of endometriotic implants can be estimated in real time by quantification of the mCherry signal and normalization against the initial time-point showing maximal fluorescence intensity.
Traditional preclinical rodents of models of endometriosis do not allow non-invasive monitoring of lesion in real time but rather allow evaluation of the effects of drugs assayed at the end point. This protocol allows one to track lesions in real time and is more useful to explore the therapeutic potential of drugs in preclinical models of endometriosis. The main limitation of the model thus generated is that non-invasive monitoring is not possible over long periods of time due to the episomal expression of Ad-virus.

Here, we present a protocol for live-imaging of fluorescently labeled human endometrial fragments grafted in mice. The method allows studying the effects of drugs of choice on endometriotic lesion size through monitoring and quantification of fluorescence emitted by the fluorescent reporter on real time

궁의 분리 마우스 모델에서 병 변 크기의 비 침 투 적인 모니터링

Here, we describe a protocol for the implementation of a heterologous mouse model in which progression of endometriosis can be assessed in real time ...

Reproductive Techniques for Ovarian Monitoring and Control in Amphibians

Ovarian control and monitoring in amphibians require a multi-faceted approach. There are several applications that can successfully induce reproductive behaviors and the acquisition of gametes and embryos for physiological or molecular research. Amphibians contribute to one-quarter to one-third of vertebrate research, and of interest in this context is their contribution to the scientific community&#39;s knowledge of reproductive processes and embryological development. However, most of this knowledge is derived from a small number of species. In recent times, the decimation of amphibians across the globe has required increasing intervention by conservationists. The captive recovery and assurance colonies that continue to emerge in response to the extinction risk make existing research and clinical applications invaluable to the survival and reproduction of amphibians held under human care. The success of any captive population is founded on its health and reproduction and the ability to develop viable offspring that carry forward the most diverse genetic representation of their species. For researchers and veterinarians, the ability to monitor and control ovarian development and health is, therefore, imperative. The focus of this article is to highlight the different assisted reproductive techniques that can be used to monitor and, where appropriate or necessary, control ovarian function in amphibians. Ideally, any reproductive and health issues should be reduced through proper captive husbandry, but, as with any animal, issues of health and reproductive pathologies are inevitable. Non-invasive techniques include behavioral assessments, visual inspection and palpation and morphometric measurements for the calculation of body condition indices and ultrasound. Invasive techniques include hormonal injections, blood sampling, and surgery. Ovarian control can be exercised in a number of ways depending on the application required and species of interest.

The study of amphibian biology provides valuable information on the reproductive, physiological, embryological and developmental processes that drive organisms of many taxonomic groups. Here, we present a comprehensive guide on different methodologies that can be used to study ovarian control and monitoring in amphibians.

양서류에서 난소 모니터링 및 제어를위한 생식 기술

Ovarian control and monitoring in amphibians require a multi-faceted approach. There are several applications that can successfully induce reproductive ...

작은 크기의 텔레오스 모델 일본어 메다카(오리지아스 latipes)에서고나데토미및 혈액 샘플링 절차

요약

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메다카 계란을 사용하여 실버 Nanocolloids의 염도에 의존하는 독성 분석

약물 치료와

모델 생물체 유전자로 사용하기 위해 Medaka의 태아의 Microinjection

Chimeras의 생성에 대한 Medaka의 태아 및 세포 이식의 Dechorionation

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성인 Zebrafish의에서 혈액 검사에 대한 반복 채혈

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