M.E.H.는 재정 지원을 위해 프로젝트 번호 413985647인 DFG(Deutsche Forschungsgemeinschaft)를 인정합니다. 저자들은 뮌헨 루트비히-막시밀리안 대학교의 미하엘 키블러 박사의 관대하고 광범위한 지원에 감사를 표한다. Walter Neupert의 과학적 의견, 유용한 토론 및 지속적인 영감에 감사드립니다. JF는 뮌헨 생명 과학 대학원(LSM)의 지원에 감사드립니다.

1. 완충액과 원액
<ol><li>탈이온수, pH 7.4에서 1M 3-모르폴리노프로판-1-술폰산(MOPS) 용액을 만듭니다. 4 °C에서 보관하십시오.</li>
	<li>탈이온수(pH 8.0)에서 500mM 에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA)을 준비합니다. 실온에서 보관하십시오.</li>
	<li>탈이온수에 2.4M 소르비톨을 준비합니다. 오토클레이브 후 실온에서 보관하십시오.</li>
	<li>탈이온수에 2.5M 자당을 준비합니다. 오토클레이브 후 실온에서 보관하십시오.</li>
	<li>이소프로판올에 200mM 페닐메틸설포닐플루오라이드(PMSF)를 준비합니다. -20 °C에서 보관하십시오. 주의: PMSF는 삼키면 독성이 있으며 심각한 피부 화상과 눈 손상을 일으킵니다. 먼지를 흡입하지 말고 보호 장갑과 고글을 착용하십시오.</li>
	<li>탈이온수에 72% 트리클로로아세트산(TCA)을 준비합니다. 4 °C에서 보관하십시오. 주의: TCA는 호흡기 자극, 심한 피부 화상 및 눈 손상을 유발할 수 있습니다. 먼지를 흡입하지 말고 보호 장갑과 고글을 착용하십시오.</li>
	<li>SM 완충액을 준비합니다: 20mM MOPS 및 0.6M 소르비톨, pH 7.4.</li>
	<li>팽윤 완충액을 준비합니다: 20mM MOPS, 0.5mM EDTA, 1mM PMSF 및 프로테아제 억제제 칵테일, pH 7.4.</li>
	<li>슈크로스 그래디언트 완충액을 준비합니다: 0.8 M, 0.96 M, 1.02 M, 1.13 M, 1.3 M 슈크로스를 20 mM MOPS 및 0.5 mM EDTA, pH 7.4에서 제조합니다. 알림: 모든 버퍼는 4°C에서 보관할 수 있습니다. 그러나, 곰팡이 성장을 피하기 위해 자당-함유 완충액을 -20°C에 보관하는 것이 권장된다. 프로테아제 억제제는 사용하기 전에 새로 추가해야 합니다.</li>
</ol>2. 제출연골 소포의 생성
<ol><li>확립된 프로토콜34,35에 따라 미토콘드리아를 신선하게 분리합니다. 참고: 이 실험을 위해 미토콘드리아는 맥주효모균(Saccharomyces cerevisiae)에서 분리되었습니다. 다른 세포 기관이 없는 구배 순수 미토콘드리아의 생성은 필요하지 않습니다.</li>
	<li>피펫팅을 통해 1.6mL SM 완충액(4°C)에 갓 분리한 미토콘드리아 10mg을 재현탁시킵니다(그림 2, 1단계).</li>
	<li>미토콘드리아 현탁액을 사전 냉각된 100mL 삼각 플라스크로 옮깁니다.</li>
	<li>20mL 유리 피펫을 사용하여 16mL의 팽창 완충액을 천천히 추가합니다. 추가하는 동안 얼음에 지속적으로 약한 저어주기를 적용합니다. 이 삼투압 처리는 매트릭스 공간으로 수분을 흡수합니다. 미토콘드리아 내막의 부종은 외막을 파괴합니다. 그러나, 두 멤브레인 모두 접촉 부위9에서 접촉을 유지한다(그림 2, 단계 2).</li>
	<li>얼음 위에서 30분 동안 지속적으로 약한 저어주면서 샘플을 배양합니다.</li>
	<li>5mL 유리 피펫을 사용하여 2.5M 슈크로스 용액 5mL를 천천히 추가하여 샘플의 슈크로스 농도를 약 0.55M로 높입니다. 이러한 삼투압 처리는 매트릭스(36)로부터 물의 유출을 초래한다. 내막의 수축은 외막의 잔류 조각까지의 거리를 최대화하기 위한 것입니다. 이것은 초음파 처리를 통해 내막과 외막의 인공 하이브리드 소포를 생성 할 확률을 감소시킵니다 (그림 2, 3 단계).</li>
	<li>얼음 위에서 15분 동안 가볍게 저어주면서 샘플을 배양합니다.</li>
	<li>미토콘드리아를 초음파 처리하여 제출 연골 막 소포를 생성합니다 (그림 2, 4 단계).<ol><li>미토콘드리아 현탁액을 사전 냉각된 로제트 셀로 옮깁니다.</li>
		<li>미토콘드리아 현탁액을 10 % 진폭으로 30 초 동안 초음파 처리하면서 얼음 수조에서 로제트 세포를 냉각시킵니다.</li>
		<li>서스펜션을 얼음 욕조에서 30초 동안 쉬십시오.</li>
		<li>2.8.2단계와 2.8.3단계를 세 번 더 반복합니다. 알림: 초음파 처리 조건은 사용 된 초음파 발생기에 따라 다릅니다. 개별 기계에 대한 최적화가 필요합니다. 너무 가혹한 초음파 처리는 미토콘드리아 내막과 외막으로 구성된 소포의 인위적인 형성으로 이어질 것입니다.</li>
	</ol></li>
</ol>3. 제출연골 소포의 분리
<ol><li>생성된 소포를 4°C에서 20분 동안 20,000 x g 에서 원심분리하여 나머지 온전한 미토콘드리아에서 분리합니다. 온전한 미토콘드리아는 펠릿을 만들고 소포는 상층액에 머뭅니다.</li>
	<li>소포 혼합물을 농축하십시오.<ol><li>상층액을 신선한 초원심분리 튜브로 옮깁니다.</li>
		<li>0.8 mm x 120 mm 캐뉼라가 장착된 1 mL 주사기를 사용하여 튜브 바닥에 0.3 mL의 2.5 M 자당 용액 쿠션을 로드합니다.</li>
		<li>118,000 x g 에서 4 °C에서 100분 동안 원심분리. 참고: 여기서는 최대 반경이 153.1mm인 스윙 버킷 로터가 사용되었습니다. 원심분리 조건은 로터에 따라 크게 달라지며 다른 로터를 사용할 때 조정해야 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>소포는 원심분리 후 자당 쿠션 상단에 디스크로 나타납니다. 상층액의 약 90%를 버립니다. 이제 위아래로 피펫팅하여 2.5M 자당을 포함한 나머지 완충액에 농축된 소포를 재현탁시켜 수확합니다. 서스펜션을 얼음처럼 차가운 Dounce 균질화기로 옮깁니다.</li>
	<li>폴리테트라플루오로에틸렌 포터를 사용하여 최소 10번의 스트로크로 현탁액을 균질화합니다.</li>
	<li>자당 그라디언트를 준비합니다.<ol><li>5단계(20mM MOPS 및 0.5mM EDTA, pH 7.4에서 1.3M, 1.13M, 1.02M, 0.96M 및 0.8M 슈크로스)가 있는 11mL 스텝 그래디언트의 경우, 각 층에는 2.2mL의 슈크로스 용액이 있습니다. 알림: 굴절계는 자당 농도를 측정하고 조정하는 것이 좋습니다. 그러나 필수는 아닙니다. 버퍼 10μL를 굴절계에 적용하고 각 굴절률을 검출합니다. 자당 농도의 계산은 다음과 같습니다. <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/65444/65444eq01v2.jpg" style="margin: auto;"> 1.3333은 물의 굴절률을 나타냅니다. 0.048403은 수용액( 37)에서 몰 굴절률에서 슈크로스 농도로의 몰 굴절률의 선형 스케일링으로부터 얻어진 슈크로스 특이적 전환지수이다.</li>
		<li>가장 높은 자당 농도를 원심분리 튜브에 추가하고 튜브를 -20°C에 둡니다. 레이어가 완전히 고정될 때까지 기다렸다가 다음 레이어를 적용합니다. 마지막 레이어가 추가될 때까지 계속 진행하고 기울기를 -20°C에 저장합니다. 참고: 실험을 시작할 때 그래디언트가 해동될 수 있도록 동결된 그래디언트를 4°C로 옮기는 것을 잊지 마십시오. 약 3 시간 정도 소요됩니다. 여기서 원심분리를 위해 13.2mL 용량의 스윙 버킷 로터가 사용되었습니다. 다른 로터를 사용하는 경우 그래디언트 단계 체적을 적절하게 조정해야 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>굴절계를 사용하여 샘플의 자당 농도를 측정합니다. 굴절계에 접근할 수 없는 경우 자당 농도가 2M라고 가정할 수 있습니다. 이 가정된 자당 농도는 다음 단계의 기초가 될 것입니다.</li>
	<li>적절한 양의 20mM MOPS, 0.5mM EDTA, 1mM PMSF 및 프로테아제 억제제 칵테일(pH 7.4)을 첨가하여 슈크로스 농도를 0.6M으로 조정합니다. 자당 농도가 측정되지 않고 2M으로 추정되는 경우, 조정 후 농도가 충분히 낮은지 테스트하는 것이 좋습니다. 시험관에 있는 0.8M 자당 200μL 위에 샘플의 작은 부분 표본(약 50μL)을 적용합니다. 샘플은 0.8M 자당 위에 있어야 합니다.</li>
	<li>샘플(약 1mL)을 자당 그래디언트 위에 로드합니다(나중에 참조할 수 있도록 10% 유지). 그래디언트의 교란을 피하기 위해서는 신중한 피펫팅이 중요합니다(그림 2, 5단계).</li>
	<li>200,000 x g 및 4 °C에서 12 시간 동안 원심 분리하여 소포를 분리합니다. 가능하면 기울기의 방해를 피하기 위해 원심분리기를 느린 가속 및 감속으로 설정합니다(그림 2, 6단계). 참고: 여기서는 최대 반경이 153.1mm인 스윙 버킷 로터가 사용되었습니다. 원심분리 조건은 로터에 따라 크게 달라지며 다른 로터를 사용할 때 조정해야 합니다.</li>
	<li>1mL 피펫을 사용하여 700μL 분획으로 그래디언트를 위에서 아래로 수확합니다. 이렇게 하면 17개의 분수가 생성되어 충분한 분해능을 얻을 수 있습니다.</li>
</ol>4. 제출연골 소포 분석
<ol><li>SDS-PAGE 샘플을 제조하기 위해 순차적으로 수행된 2개의 TCA 침전(38)에 각 분획을 적용하여 단백질을 농축시킨다.<ol><li>개별 분획에 72% TCA 200μL를 첨가하고 용액이 균질해질 때까지 혼합합니다. 얼음 위에서 30분 동안 분획을 배양하고, 20,000 x g 및 4°C에서 20분 동안 원심분리하여 침전된 단백질을 펠렛화합니다. 상층액을 버리고 500μL의 28% TCA 용액을 넣고 잘 섞은 다음 원심분리 단계를 반복합니다.</li>
		<li>펠릿을 1mL의 아세톤(-20°C)으로 세척하고 20,000 x g 및 4°C에서 10분 동안 원심분리합니다. 상층액을 버리고 펠릿을 자연 건조시킵니다. 펠릿을 60μL의 SDS 샘플 버퍼에 재현탁시키고 샘플을 95°C에서 5분 동안 배양합니다. 참고 : 많은 양의 자당은 특히 고밀도 분획에서 첫 번째 TCA 침전 후에 남아 있습니다. 이것은 추가 TCA 강수를 통해 제거됩니다.</li>
	</ol></li>
	<li>SDS-PAGE39 및 면역블로팅40,41,42,43으로 각 분획의 20μL를 분석합니다.</li>
</ol>

미토콘드리아 접촉 부위의 분리

저자는 이해 상충이 없다고 선언합니다.

미토콘드리아 분획은 여러 매우 복잡한 단계를 거쳐야 하는 복잡한 실험입니다. 따라서 우리는 확립된 방법32를 더욱 개선하고 어느 정도 단순화하는 것을 목표로 했습니다. 여기서 문제는 종종 개별 구조인 복잡하고 고도로 전문화된 장비에 대한 요구 사항과 막대한 시간과 에너지 소비였습니다. 이를 위해 선형 그래디언트를 주조 및 수확하는 데 사용되는 펌프와 개별 구조를 ...

미토콘드리아는 진핵생물에서 다양한 기능을 수행하며, 가장 잘 알려진 것은 산화적 인산화를 통한 ATP 생성입니다. 다른 기능으로는 철-황 클러스터의 생성, 지질 합성 및 고등 진핵 생물에서 Ca 2 + 신호 전달 및 세포 사멸유도 1,2,3,4가 있습니다. 이러한 기능은 복잡한 초미세 구조와 불가분의 관계에 있습니다.
미토콘드리아 초미세구조는 전자현미경5에 의해 처음 기술되었다. 미토콘드리아는 미토콘드리아 외막과 미토콘드리아 내막이라는 두 개의 막으로 구성된 다소 복잡한 세포 기관인 것으로 나타났습니다. 따라서 두 개의 수성 구획이 이러한 막에 의해 형성됩니다 : 막간 공간과 매트릭스. 미토콘드리아 내막은 더 많은 부분으로 나눌 수 있습니다. 내경막은 외막에 근접하여 유지되며 크리스타는 침범을 형성합니다. 소위 크리스타 접합부(crista junctions)는 내경막(inner boundary membrane)과 크리스타(cristae)를 연결합니다(그림 1). 또한, 삼투압으로 축소된 미토콘드리아의 전자 현미경 사진은 미토콘드리아 막이 단단히 연결된 부위가 존재한다는 것을 보여줍니다 6,7. 이러한 소위 접촉 부위는 두 막에 걸쳐 있는 단백질 복합체에 의해 형성됩니다(그림 1). 이러한 상호작용 부위는 미토콘드리아 역학 및 유전의 조절뿐만 아니라 세포질과 매트릭스8 사이의 대사 산물 및 신호 전달에 중요하기 때문에 세포 생존력에 필수적인 것으로 생각된다.
미토콘드리아 내막의 MICOS 복합체는 아마도 가장 특징적이고 가장 다재다능한 접촉 부위 형성 복합체일 것입니다. MICOS는 2011년 효모에 기술되어 있으며, Mic60, Mic27, Mic26, Mic19, Mic12 및 Mic10의 6개 소단위 9,10,1 1로 구성됩니다. 이들은 크리스타 접합부 9,10,11에 국한되는 약 1.5 MDa의 복합체를 형성합니다. 핵심 서브유닛인 Mic10 또는 Mic60을 삭제하면 이 복잡한 9,11이 없어지는데, 이는 이 두 서브유닛이 MICOS의 안정성에 필수적이라는 것을 의미합니다. 흥미롭게도, MICOS는 다양한 미토콘드리아 외막 단백질 및 복합체와 하나의 접촉 부위를 형성할 뿐만 아니라 여러 개의 접촉 부위를 형성합니다: TOM 복합체 11,12, TOB/SAM 복합체 9,12,13,14,15,16, Fzo1-Ugo1 복합체 9, Por1 10, OM4510 및 Miro 17. 이는 MICOS 복합체가 단백질 가져오기, 인지질 대사 및 미토콘드리아 초세구조18의 생성과 같은 다양한 미토콘드리아 과정에 관여한다는 것을 강력하게 시사한다. MIC10 또는 MIC60의 결실을 통해 유도된 MICOS 복합체의 부재는 일반 크리스타가 거의 완전히 결여된 비정상적인 미토콘드리아 초세구조로 이어지기 때문에 후자의 기능은 아마도 MICOS의 주요 기능일 것입니다. 대신, 내부 경계막에 연결되지 않은 내부 막 소포는19, 20을 축적합니다. 중요한 것은 MICOS가 효모에서 인간에 이르기까지 형태와 기능이 보존된다는 것입니다21. MICOS 소단위체의 돌연변이와 심각한 인간 질병의 연관성은 또한 더 높은 진핵생물에 대한 중요성을 강조합니다22,23. MICOS는 매우 다재다능하지만 추가 접촉 사이트가 존재해야 합니다(미공개 관찰 결과). 실제로, 미토콘드리아 특이적 인지질 카디올리핀(27)의 생합성에 관여하는 미토콘드리아 융합 기계 Mgm1-Ugo1/Fzo124,25,26 또는 Mdm31-Por1과 같은 몇 가지 다른 접촉 부위가 확인되었습니다. 최근에, 우리는 외막 복합체 Por1-Om1428로 형성된 새로운 접촉 부위의 일부로서 Cqd1을 식별하기 위해 MICOS의 식별로 이어진 방법을 개선했습니다. 흥미롭게도, 이 접촉 부위는 미토콘드리아 막 항상성, 인지질 대사 및 코엔자임 Q28,29의 분포와 같은 여러 과정에도 관여하는 것으로 보입니다.
여기서는 앞서 설명한 미토콘드리아 9,30,31,32,33의 분획의 변형을 사용했습니다. 미토콘드리아의 삼투압 처리는 미토콘드리아 외막의 파괴와 매트릭스 공간의 수축으로 이어져 두 막이 접촉 부위에서만 근접하게 됩니다. 이를 통해 미토콘드리아 외막 또는 미토콘드리아 내막으로만 구성되거나 온화한 초음파 처리를 통해 두 막의 접촉 부위를 포함하는 소포를 생성 할 수 있습니다. 미토콘드리아 내막은 단백질 대 지질 비율이 훨씬 높기 때문에 미토콘드리아 내막 소포는 미토콘드리아 외막 소포에 비해 더 높은 밀도를 나타냅니다. 밀도의 차이는 자당 부력 밀도 구배 원심 분리를 통해 막 소포를 분리하는 데 사용할 수 있습니다. 따라서, 미토콘드리아 외막 소포는 낮은 슈크로스 농도에서 축적되는 반면, 미토콘드리아 내막 소포는 높은 슈크로스 농도에서 농축된다. 접촉 부위를 포함하는 소포는 중간 자당 농도로 농축됩니다(그림 2). 다음의 프로토콜은 이전에 확립된 것에 비해 덜 전문화된 장비, 시간 및 에너지를 필요로 하는 이 개선된 방법을 상세히 설명하고, 가능한 접촉 부위 단백질의 식별을 위한 유용한 도구를 제공한다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>13.2 mL, Open-Top Thinwall Ultra-Clear Tube, 14 x 89mm</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>344059</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>50 mL, Open-Top Thickwall Polycarbonate Open-Top Tube, 29 x 104mm</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>363647</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>A-25.50 Fixed-Angle Rotor- Aluminum, 8 x 50 mL, 25,000 rpm, 75,600 x g</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>363055</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Abbe refractometer</td>
			<td>Zeiss, Germany</td>
			<td></td>
			<td>discontinued, 
			any pipet controller will suffice</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>accu-jet pro Pipet Controller</td>
			<td>Brandtech, USA</td>
			<td>BR26320</td>
			<td>discontinued, 
			any pipet controller will suffice</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Beaker 1000 mL</td>
			<td>DWK Life Science, Germany</td>
			<td>C118.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Branson&#160; Digital Sonifier W-250 D</td>
			<td>Branson Ultrasonics, USA</td>
			<td>FIS15-338-125</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Branson Ultrasonic 3mm TAPERED MICROTIP</td>
			<td>Branson Ultrasonics, USA</td>
			<td>101-148-062</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Branson Ultrasonics 200- and 400-Watt Sonifiers: Rosette Cooling Cell</td>
			<td>Branson Ultrasonics, USA</td>
			<td>15-338-70</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge Avanti JXN-26</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>B37912</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge Optima XPN-100 ultra</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>8043-30-0031</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>cOmplete Proteaseinhibtor-Cocktail</td>
			<td>Roche, Switzerland</td>
			<td>11697498001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-Sorbit</td>
			<td>Roth, Germany</td>
			<td>6213</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>EDTA (Ethylendiamin-tetraacetic acid disodium salt dihydrate)</td>
			<td>Roth, Germany</td>
			<td>8043</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Erlenmeyer flask, 100 mL</td>
			<td>Roth, Germany</td>
			<td>X747.1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>graduated pipette, Kl. B, 25:0, 0.1</td>
			<td>Hirschmann, Germany</td>
			<td>1180170</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>graduated pipette, Kl. B, 5:0, 0.05</td>
			<td>Hirschmann, Germany</td>
			<td>1180153</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ice bath</td>
			<td>neoLab, Germany</td>
			<td>&#160;S12651</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic stirrer RCT basic</td>
			<td>IKA-Werke GmbH, Germany</td>
			<td>Z645060GB-1EA</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MOPS (3-(N-Morpholino)propanesulphonic acid)</td>
			<td>Gerbu, Germany</td>
			<td>1081</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MyPipetman Select P1000</td>
			<td>Gilson, USA</td>
			<td>FP10006S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MyPipetman Select P20</td>
			<td>Gilson, USA</td>
			<td>FP10003S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MyPipetman Select P200</td>
			<td>Gilson, USA</td>
			<td>FP10005S</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Omnifix 1 mL</td>
			<td>Braun, Germany</td>
			<td>4022495251879</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)</td>
			<td>Serva, Germany</td>
			<td>32395.03</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>STERICAN cannula 21 Gx4 4/5 0.8x120 mm</td>
			<td>Braun, Germany</td>
			<td>4022495052414</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>stirring bar, 15 mm</td>
			<td>VWR, USA</td>
			<td>442-0366</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sucrose</td>
			<td>Merck, Germany</td>
			<td>S8501</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SW 41 Ti Swinging-Bucket Rotor</td>
			<td>Beckman Instruments, Germany</td>
			<td>331362</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Test tubes</td>
			<td>Eppendorf, Germany</td>
			<td>3810X</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue grinders, Potter-Elvehjem type, 2 mL glass vessel</td>
			<td>VWR, USA</td>
			<td>432-0200</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue grinders, Potter-Elvehjem type, 2 mL plunger with serrated tip</td>
			<td>VWR, USA</td>
			<td>432-0212</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trichloroacetic acid (TCA)</td>
			<td>Sigma Aldrich, Germany</td>
			<td>33731</td>
			<td>discontinued, 
			any TCA will suffice (CAS: 73-03-9)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TRIS</td>
			<td>Roth, Germany</td>
			<td>4855</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an improved method to isolate mitochondrial contact sites

미토콘드리아는 거의 모든 진핵 세포에 존재하며 철-황 클러스터, 지질 또는 단백질의 합성, Ca2+ 완충 및 세포 사멸 유도와 같은 에너지 생산을 훨씬 능가하는 필수 기능을 수행합니다. 마찬가지로 미토콘드리아 기능 장애는 암, 당뇨병 및 신경 퇴행과 같은 심각한 인간 질병을 초래합니다. 이러한 기능을 수행하기 위해 미토콘드리아는 두 개의 막으로 구성된 외피를 통해 세포의 나머지 부분과 통신해야 합니다. 따라서 이 두 멤브레인은 지속적으로 상호 작용해야 합니다. 미토콘드리아 내막과 외막 사이의 단백질 접촉 부위는 이 점에서 필수적입니다. 지금까지 여러 접촉 사이트가 확인되었습니다. 여기에 설명된 방법에서, 맥주효모균 미 토콘드리아는 접촉 부위를 분리하고, 따라서 접촉 부위 단백질에 적합한 후보를 식별하는 데 사용됩니다. 우리는 이 방법을 사용하여 미토콘드리아 내막의 주요 접촉 부위 형성 복합체 중 하나인 미토콘드리아 접촉 부위 및 크리스타 조직 시스템(MICOS) 복합체를 식별했으며, 이는 효모에서 인간으로 보존됩니다. 최근에는 이 방법을 더욱 개선하여 Cqd1 및 Por1-Om14 복합체로 구성된 새로운 접촉 부위를 식별했습니다.

Mitochondria perform a variety of different functions in eukaryotes, with the most well-known being the production of ATP through oxidative phosphorylation. Other functions include the production of iron-sulfur clusters, lipid synthesis, and in higher eukaryotes, Ca2+ signaling, and the induction of apoptosis1,2,3,4. These functions are inseparably linked to their complex ultrastructure.
The mitochondrial ultrastructure was first described by electron microscopy5. It was shown that mitochondria are rather complex organelles consisting of two membranes: the mitochondrial outer membrane and the mitochondrial inner membrane. Thus, two aqueous compartments are formed by these membranes: the intermembrane space and the matrix. The mitochondrial inner membrane can be even further divided into different sections. The inner boundary membrane stays in close proximity to the outer membrane, and the cristae form invaginations. So-called crista junctions connect the inner boundary membrane and the cristae (Figure 1). Furthermore, electron micrographs of osmotically shrunken mitochondria reveal that sites exist at which the mitochondrial membranes are tightly connected6,7. These so-called contact sites are formed by protein complexes spanning the two membranes (Figure 1). It is thought that these interaction sites are essential for cell viability due to their importance for the regulation of mitochondrial dynamics and inheritance, as well as the transfer of metabolites and signals between the cytosol and the matrix8.
The MICOS complex in the mitochondrial inner membrane is probably the best characterized and the most versatile contact site-forming complex. MICOS was described in yeast in 2011, and it consists of six subunits9,10,11: Mic60, Mic27, Mic26, Mic19, Mic12, and Mic10. These form a complex of approximately 1.5 MDa that localizes to the crista junctions9,10,11. The deletion of either core subunit, Mic10 or Mic60, leads to the absence of this complex9,11, meaning these two subunits are essential for the stability of MICOS. Interestingly, MICOS forms not only one but multiple contact sites with various mitochondrial outer membrane proteins and complexes: the TOM complex11,12, the TOB/SAM complex9,12,13,14,15,16, the Fzo1-Ugo1 complex9, Por110, OM4510, and Miro17. This strongly indicates that the MICOS complex is involved in various mitochondrial processes, such as protein import, phospholipid metabolism, and the generation of the mitochondrial ultrastructure18. The latter function is probably the major function of&#160;MICOS, as the absence of the MICOS complex induced through the deletion of MIC10&#160;or MIC60&#160;leads to an abnormal mitochondrial ultrastructure that virtually completely lacks regular cristae. Instead, internal membrane vesicles without connection to the inner boundary membrane accumulate19, 20. Importantly, MICOS is conserved in form and function from yeast to&#160;human21. The association of mutations in MICOS subunits with severe human diseases also emphasizes its importance for higher eukaryotes22,23. Although MICOS is highly versatile, additional contact sites must exist (based on our unpublished observations). Indeed, several other contact sites have been identified, for instance, the mitochondrial fusion machineries Mgm1-Ugo1/Fzo124,25,26&#160;or Mdm31-Por1, which is involved in the biosynthesis of the mitochondrial-specific phospholipid cardiolipin27. Recently, we improved the method that led us to the identification of MICOS to identify Cqd1 as part of a novel contact site formed with the outer membrane complex Por1-Om1428. Interestingly, this contact site also seems to be involved in multiple processes such as mitochondrial membrane homeostasis, phospholipid metabolism, and the distribution of coenzyme Q28,29.
Here, we used a variation of the previously described fractionation of mitochondria9,30,31,32,33. Osmotic treatment of mitochondria leads to the disruption of the mitochondrial outer membrane and to a shrinkage of the matrix space, leaving the two membranes only in close proximity at contact sites. This allows for the generation of vesicles that consist exclusively of mitochondrial outer membrane or mitochondrial inner membrane or at contain contact sites of both membranes through mild sonication. Due to the mitochondrial inner membrane possessing a much higher protein-to-lipid ratio, mitochondrial inner membrane vesicles exhibit a higher density compared to mitochondrial outer membrane vesicles. The difference in density can be used to separate the membrane vesicles through sucrose buoyant density gradient centrifugation. Thus, the mitochondrial outer membrane vesicles accumulate at low sucrose concentrations, while the mitochondrial inner membrane vesicles are enriched at high sucrose concentrations. The vesicles containing contact sites concentrate at intermediate sucrose concentrations (Figure 2). The following protocol describes this improved method, which requires less specialized equipment, time, and energy compared to our previously established one32, in detail and provides a useful tool for the identification of possible contact site proteins.

저자 스포트라이트: 미토콘드리아 접촉 부위 및 아키텍처 인사이트 공개 

미토콘드리아 접촉 부위를 분리하는 개선된 방법

We aim to understand the molecular function of mitochondrial contact sites, allowing the communication between the two mitochondrial membranes. This actually is a prerequisite to grasp the function for mitochondrial biogenesis and thus, cell viability. We discovered a new contact site between the mitochondrial inner and outer membrane created by Cqd1 and Om14-Por1.Our data suggests that this site might assist in lipid import like phosphatidic acid. Based on the identification of the MICOS complex, we contributed to get a deeper understanding of how mitochondrial membrane architecture is generated. This allowed us to develop a working model that explains how the two forms of mitochondrial cristae, lamellar and tubular cristae are formed.Our research was done in yeast in the past. However, we are convinced that the formation of correct mitochondrial architecture is important for higher eukaryotes too. So the next step in our research is analyzing the role of mitochondrial architecture elements in more complex models such as primary neurons.

미토콘드리아 내막과 외막을 분리하는 것은 비교적 쉽습니다. 그러나 접촉 부위 함유 소포의 생성 및 분리는 훨씬 더 어렵습니다. 우리의 의견으로는, 두 단계가 중요하고 필수적입니다 : 초음파 처리 조건과 사용 된 기울기.
일반적으로 선형 그래디언트는 스텝 그래디언트에 비해 해상도가 더 좋은 것으로 생각됩니다. 그러나 재현 가능한 생산은 지루하고 특수 장비가 필요?...

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미토콘드리아 접촉 부위는 미토콘드리아 내막 및 외막 단백질과 상호 작용하는 단백질 복합체입니다. 이 부위는 미토콘드리아 막과 세포질과 미토콘드리아 기질 사이의 통신에 필수적입니다. 여기에서는 이 특정 종류의 단백질에 적합한 후보를 식별하는 방법을 설명합니다.

Mitochondria are present in virtually all eukaryotic cells and perform essential functions that go far beyond energy production, for instance, the ...

우리는 미토콘드리아 접촉 부위의 분자 기능을 이해하여 두 미토콘드리아 막 사이의 통신을 가능하게 하는 것을 목표로 합니다. 이것은 실제로 미토콘드리아 생물 발생과 세포 생존력에 대한 기능을 파악하기 위한 전제 조건입니다. 우리는 Cqd1과 Om14-Por1에 의해 생성된 미토콘드리아 내막과 외막 사이의 새로운 접촉 부위를 발견했습니다.우리의 데이터는 이 사이트가 포스파티드산과 같은 지질 가져오기에 도움이 될 수 있음을 시사합니다. MICOS 복합체의 식별을 기반으로 미토콘드리아 막 구조가 어떻게 생성되는지에 대한 더 깊은 이해를 얻는 데 기여했습니다. 이를 통해 우리는 두 가지 형태의 미토콘드리아 크리스타, 라멜라와 세뇨관 크리스타가 어떻게 형성되는지 설명하는 작업 모델을 개발할 수 있었습니다.우리의 연구는 과거에 효모에서 수행되었습니다. 그러나 우리는 올바른 미토콘드리아 구조의 형성이 고등 진핵생물에게도 중요하다고 확신합니다. 따라서 우리 연구의 다음 단계는 일차 뉴런과 같은 더 복잡한 모델에서 미토콘드리아 구조 요소의 역할을 분석하는 것입니다.

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Biochemistry

An Improved Method to Isolate Mitochondrial Contact Sites

1.0K 조회수.  Ludwig-Maximilians University Munich. 우리는 미토콘드리아 접촉 부위의 분자 기능을 이해하여 두 미토콘드리아 막 사이의 통신을 가능하게 하는 것을 목표로 합니다. 이것은 실제로 미토콘드리아 생물 발생과 세포 생존력에 대한 기능을 파악하기 위한 전제 조건입니다. 우리는 Cqd1과 Om14-Por1에 의해 생성된 미토콘드리아 내막과 외막 사이의 새로운 접촉 부위를 발견했습니다.우리의 데이터는 이 사이트가 ?...