이 연구는 NSF DBI 생물학 통합 연구소(BII) 보조금(수상 번호 2119968; PI-Ceballos) 및 Arkansas INBRE 프로그램, NIGMS(National Institute of General Medical Sciences), P20 GM103429 National Institutes of Health의 보조금을 받았습니다. 저자는 또한 Ouachita Baptist University의 Patterson 여름 학부 연구 프로그램의 지원에 감사드립니다.

이 프로토콜은 Gordonia terrae용으로 작성되었지만 Gordonia lacunae, Gordonia rubripertincta 및 Gordonia westfalica에도 성공적으로 사용되었습니다.
1. 박테리아 준비
<ol><li>생물 안전 캐비닛에서 Good Microbiological Practice 17을 사용하여 Gordonia terrae CAG3의 단일 콜로니를 0.01mg/mL 시클로헥시미드가 포함된 펩톤 효모 칼슘 브로스18(PYCa) 200mL와 함께1L 멸균 배플 플라스크에 접종합니다(재료 표 참조).</li>
	<li>플라스크를 30°C에서 배양물이 포화될 때까지 또는 3일 동안 250 rpm으로 진탕하면서 인큐베이션한다7.</li>
	<li>포화 G. terrae 배양액을 PYCa 배지에 연속적으로 희석하고, PYCa 플레이트 19,20에 10-4, 10-5 및 10-6 희석액을 각각 100 μL를 스프레드 플레이트로 희석한다. 희석되지 않은 포화 배양액을 4°C에서 냉장 보관한다.</li>
	<li>확산 플레이트를 30°C에서 3일 동안 거꾸로 배양한다.</li>
	<li>배양 후, 20-200 개의 콜로니가있는 플레이트 인 "셀 수있는 플레이트"를 확인하십시오. 그 판에 있는 집락의 수를 세고 밀리리터당 집락 형성 단위(cfu/mL)를 계산하십시오.19,20.</li>
	<li>PYCa 배양액으로 포화 배양액을 4.0 x 106 cfu/mL 박테리아로 희석합니다.</li>
</ol>2. 파지 준비
참고: 보고된 대표적인 결과는 G. terrae에서 분리된 온대 박테리오파지인 Gordonia 파지 DelRio21로 얻은 것입니다. 이들 방법은 또한 다른 고르도니아 파지와 함께 성공적으로 사용되었다.
<ol><li>분리된 박테리오파지로 시작하여, 파지 완충액7에서 파지 샘플을 1 x 10-8 희석액으로 연속적으로 희석한다. 0.3 mL의 포화 G. terrae 배양물을 각 파지 희석액 10 μL로 감염시켜 이중층 한천 파지 역가 분석7을 수행하였다. 5-10 분 실온 배양 후, 박테리아 - 파지 혼합물을 3 mL의 PYCa 상단 한천과 결합하고, PYCa 한천 플레이트에 부어 넣는다.</li>
	<li>30°C에서 3일 동안 또는 플라크가 형성될 때까지 거꾸로 된 플레이트를 인큐베이션한다 7.</li>
	<li>배양 후, 20-200 개의 플라크가있는 플레이트 인 "셀 수있는 플레이트"를 확인하십시오. 해당 플레이트의 플라크 수를 세고 밀리리터당 플라크 형성 단위(pfu/mL)7를 계산합니다.</li>
</ol>3. 마이크로플레이트 준비
알림: 이 방법에는 바닥이 평평한 96웰 마이크로플레이트( 재료 표 참조)를 사용해야 합니다. 모든 플레이트 준비 및 로딩은 생물 안전 캐비닛에서 완료되어야 하며 Good Microbiological Practice17을 사용해야 합니다.
<ol><li>Triton-X 100 100 μL, 100% 이소프로판올 40mL, 탈이온수22 160mL를 혼합하여 김서림 방지 뚜껑 코팅 용액을 준비합니다. 섞이도록 저어주고 실온에서 보관하십시오.</li>
	<li>생물 안전 캐비닛에서 멸균 된 6 웰 마이크로 플레이트 뚜껑의 내부 표면에 96 mL의 뚜껑 코팅 용액을 넣고 뚜껑의 가장자리를 잡고 회전시켜 용액으로 덮이도록합니다. 용액을 뚜껑에 20초 동안 그대로 둔 다음 용액을 붓고 뚜껑이 완전히 마를 때까지 오토클레이브 종이 타월로 뚜껑을 비스듬히 뒤집습니다(일반적으로 35-45분 소요). 뚜껑의 가장자리를 잡으십시오.</li>
	<li>각 96-웰 마이크로플레이트에 대해 물 중 0.1% 아가로스 20 mL를 준비하고, 전자레인지에 돌려 아가로스를 녹인다.</li>
	<li>일단 아가로오스가 50-60°C로 냉각되면, 100 μL의 0.1% 아가로스를 플레이트의 웰 사이의 모든 공간으로 피펫하고, 200 μL의 아가로스를 열 A 및 열 H 및 열 1, 열 2, 열 11, 및 열 12의 웰 내로23 번 피펫한다(도 1).</li>
</ol>4. 플레이트에 박테리아와 파지 넣기
알림: 모든 플레이트 준비 및 로딩은 생물 안전 캐비닛에서 완료되어야 하며 우수한 미생물 실습17 을 사용해야 합니다.
<ol><li>96웰 플레이트에는 각 웰에 2.0 x 106cfu/mL 박테리아 75μL이 포함됩니다9. 4.0 x 10 6 cfu/mL 세균 배양액을 2x PYCa 배양액으로 1:1로 2.0 x 106 cfu/mL로 희석합니다. 96웰 플레이트당 5mL를 준비합니다.</li>
	<li>파지 버퍼7 을 사용하여 파지 용해물을 희석하여 각각 2.0 x 106 pfu/mL, 2.0 x 105 pfu/mL 및 2.0 x 104 pfu/mL 농도의 1mL를 만듭니다. 이것은 마이크로플레이트9 내에서 1, 0.1 및 0.01의 감염 다중도(MOI)를 허용합니다.</li>
	<li>마이크로플레이트를 로드하려면 김서림 방지 용액과 아가로스로 준비된 플레이트를 가져와서 그림 1에 따라 2.0 x 106cfu/mL 박테리아 75μL를 컬럼 3-10에 피펫합니다.</li>
	<li>컬럼 3과 컬럼 4에 75μL의 멸균 파지 버퍼를 각 웰에 추가하여 그림 1에 따라 파지가 없는 양성 대조군으로 사용하고 각 첨가 후 피펫을 위아래로 혼합합니다. 컬럼 5 및 컬럼 6에 2.0 x 106 pfu/mL 파지 75 μL, 컬럼 7 및 컬럼 8에 2.0 x 105 pfu/mL 파지 75 μL, 컬럼 9 및 컬럼 10에 2.0 x 10 4 pfu/mL 파지 75 μL를 추가하고, 각 첨가 후 혼합하기 위해 위아래로 피펫팅합니다.</li>
	<li>플레이트의 양쪽 짧은 면을 0.5인치 라벨링 테이프로 테이프로 감아 가스 교환을 허용하면서 플레이트를 부분적으로 밀봉합니다.</li>
</ol>5. 배양 및 흡광도 측정
<ol><li>플레이트에 박테리아와 파지가 로드되면 250rpm의 마이크로플레이트 셰이커에 놓고 30°C에서 배양합니다.</li>
	<li>플레이트를 96시간 동안 배양하고 16시간부터 8시간마다 마이크로플레이트 리더에서 600nm에서 광학 밀도를 측정합니다. 측정 사이에 플레이트를 셰이커로 되돌립니다. 참고: 0시간부터 4시간, 6시간, 8시간 및 12시간의 측정 기간을 평가했으며, 감염 후 16시간에서 시작하는 8시간 샘플링 기간이 고르도니아-파지 상호작용을 가장 잘 포착한 것으로 확인되었습니다.</li>
	<li>실험 내내 뚜껑에 응결이 있는지 모니터링합니다. 응결이 관찰되면 3.2단계에 따라 코팅된 다른 뚜껑으로 뚜껑을 교체하십시오.</li>
	<li>프로토콜 섹션 6에 따라 대조군 및 감염된 성장 곡선을 생성합니다.</li>
</ol>6. 데이터 분석
<ol><li>스프레드시트 프로그램을 사용하여 Stacy-Ceballos-Index GitHub 리포지토리(https://github.com/eichristenson/Stacy-Ceballos-Index)의 스프레드시트 레이아웃에 따라 각 파지 희석에 대한 평균 및 표준 편차를 계산합니다.</li>
	<li>DescTools24, dplyr25, ggplot2 26 및 readxl27 패키지와 함께 Stacy-Ceballos-Index GitHub 리포지토리(https://github.com/eichristenson/Stacy-Ceballos-Index)의 R 스크립트에 따라 R(재료 표 참조)을 사용하여 대조군 및 감염된 성장 곡선을 만들고 감염 지표를 계산합니다.<ol><li>AUCcon 은 감염되지 않은 대조군 곡선 아래 면적이고, AUCinf 는 감염 곡선 아래 면적이다16. AUC를 계산한 다음 다음 방정식을 사용하여 곡선 아래 면적 값인 PIAUC16을 기준으로 성장 억제율을 계산합니다. (1 - [AUCinf/AUCcon]) × 100</li>
		<li>각 곡선의 수평선 점선은 N 점근선(con)으로 표시된 감염되지 않은 성장 피크와 N 점근선(inf)으로 표시된 감염되지 않은 성장 피크와 함께 최대 성장을 나타냅니다. N점근선 값을 식별한 다음, 다음 방정식을 사용하여 이러한 피크 성장 값, PIMAX16을 기반으로 성장 억제 백분율을 계산합니다. (1 - [N점근선(inf)/ N점근선(con)]) × 100</li>
		<li>다음과 같이 PIAUC 및 PImax 값으로부터 Stacy-Ceballos 지수 ISC16을 계산한다. (PIAUC × PImax) 0.5 시간 경과에 따른 Stacy-Ceballos 지수를 적분하여 상대적 독성을 계산합니다16.</li>
	</ol></li>
</ol>

Characterizing Actinobacteriophage infection Using an Adapted Optical Density Assay(적응된 광학 밀도 분석을 사용한 악티노박테리오파지 감염 특성 분석)

<ol>
	<li>Mushegian, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Are+there+1031+virus+particles+on+Earth,+or+more,+or+fewer.">Are there 1031 virus particles on Earth, or more, or fewer.</a> Journal of Bacteriology. 202 (9), e00052-e00020 (2020).</li><li>Chevallereau, A., Pons, B. J., van Houte, S., Westra, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interactions+between+bacterial+and+phage+communities+in+natural+environments.">Interactions between bacterial and phage communities in natural environments.</a> Nature Reviews Microbiology. 20 (1), 49-62 (2022).</li><li>Olszak, T., Latka, A., Roszniowski, B., Valvano, M. 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A., Wilpiszeski, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+analysis+of+growth+differences+among+phage+strains.">High-throughput analysis of growth differences among phage strains.</a> Journal of Microbiological Methods. 88 (1), 117-121 (2012).</li><li>Storms, Z. J., Teel, M. R., Mercurio, K., Sauvageau, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+virulence+index:+A+metric+for+quantitative+analysis+of+phage+virulence.">The virulence index: A metric for quantitative analysis of phage virulence.</a> PHAGE. 1 (1), 27-36 (2020).</li><li>. Phage Discovery Guide Available from: <a target="_blank" href="https://seaphagesphagediscoveryguide.helpdocsonline.com/home">https://seaphagesphagediscoveryguide.helpdocsonline.com/home</a> (2012)</li><li>Martinez-Soto, C. 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이 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 방법은 박테리오파지 숙주 범위 및 감염 역학(11)에 대한 조사를 가능하게 하고 박테리오파지 독성의 척도로서 Stacy-Ceballos 지수(16)의 유용성을 보여줍니다. 이 방법은 모든 박테리오파지 숙주 시스템에서 사용할 수 있지만 방선균과 같이 느리게 성장하는 박테리아에 사용하기 위해 빠른 마이크로플레이트 성장 분석 9,10,11을 적용하도록 특별히 설계되었습니다. 신속한 마이크로플레이트 분석은 증발 및 뚜껑 응축을 해결하기 위한 수정 없이는 느리게 성장하는 박테리아에 사용할 수 없습니다. 이 방법은 이러한 필요한 수정을 설명하고, 박테리오파지 감염을 설명하기 위해 Stacy-Ceballos 지수 및 관련 메트릭16의 사용을 처음으로 보여줍니다.
증발은 여러 날의 96웰 플레이트 성장 곡선 분석에서 상당한 도전이 될 수 있습니다. 이 방법은 경계 우물과 우물 사이의 공간에 아가로스를 추가하여 문제를 해결합니다. 김서림 방지 뚜껑 처리(22)와 조합된 아가로스 마진은 마이크로플레이트 내에 필요한 습도를 제공하고 신뢰할 수 있는 광학 밀도 측정을 가능하게 합니다. 습도가 추가되지 않으면, 상당한 에지 효과 증발이 필요한 긴 배양 기간 동안 발생하여(23 ), 인위적으로 높은 광학 밀도 판독값을 유도한다. 김서림 방지 뚜껑 처리는 뚜껑 응결이 광학 밀도 값을 인위적으로 높일 수 있기 때문에 필요한 수정입니다. 방선균 박테리아가 성장하는 동안 뭉쳐서 인위적으로 높은 광학 밀도 값을 제공하고 감염의 다양성을 효과적으로 감소시킬 수 있으므로 배양 기간 동안 플레이트를 흔드는 것이 좋습니다.
감염 역학을 특징짓는 실험에서 박테리아와 파지의 비율은 매우 중요한데, 그 이유는 감염 효과를 나타내기에 충분한 파지가 있어야 하지만 숙주 박테리아 개체군이 즉시 충돌하거나용원성 빈도가 급격히 증가할 정도로 많지는 않기때문이다 28. 이 방법에서 일관된 결과를 얻는 데 가장 효과적인 것으로 밝혀진 비율은 MOI가 1이었지만 MOI가 0.1과 0.01인 사용 가능한 결과도 얻었습니다. 이 방법을 구현할 때 하나의 농도의 박테리아를 선택하고 0.01-1 9,10,11의 MOI 범위에서 여러 파지 농도를 테스트하는 것이 좋습니다.
여기에 설명된 이 기술은 박테리오파지-숙주 상호작용이 각 측정 간격에서 더 큰 배양 플라스크로부터의 서브-샘플링(sub-sampling)을 사용하는 것이 아니라, 고-처리량 마이크로플레이트 분석(high-throughput microplate assay)에서 느리게 성장하는 박테리아에 대해 평가될 수 있게 한다29. 또한, 마이크로플레이트 성장 분석법 9,10,11이 어떻게 적용될 수 있는지를 입증함으로써, 이 기술은 파지 특성화 5,6,12 및 진화 연구 30,31을 포함하여, 느리게 성장하는 박테리아에 대한 다른 마이크로플레이트 기반 박테리오파지 분석의 유용성을 증가시킨다. 마지막으로, 이 방법은 박테리오파지 감염을 설명하기 위해 Stacy-Ceballos 지수16을 사용하는 것을 보여줍니다. 이 메트릭은 처음에 고세균 바이러스 모델 시스템의 데이터로 개발되었으며 광학 밀도 값에서 계산되므로 서로 다른 바이러스 시스템 전반에 걸쳐 널리 유용합니다.

박테리오파지 또는 파지는 박테리아를 감염시키는 바이러스입니다. 박테리오파지는 지구상에서 가장 많은 생물학적 존재이며1, 박테리오파지가 박테리아의 진화와 생태계 과정에 영향을 미친다는 것은 일반적으로 받아들여지고 있다 2,3,4. 박테리오파지 숙주 범위8 및 감염역학5,6을 기술, 측정 및 분석하기 위한 몇 가지 방법이 존재하며, 여기에는 이중층 한천법7 및 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 방법8,9,10,11,12과 같은 한천 기반 방법이 포함된다 . 각 방법에는 고유한 장점과 단점이 있습니다. 효율성 때문에 이중층 한천 분석법을 사용한 도금 시험은 숙주 범위 분석의 "황금 표준"이지만 이 방법은 시간과 노동력이 많이 소요된다9. 24시간 이내에 결과를 반환하는 신속한 마이크로플레이트 방법은 대장균 9,10,11,12 과 같이 빠르게 성장하는 박테리아 숙주에 대해 우수한 결과를 제공하지만 방선균 7,13,14,15와 같이 느리게 성장하는 박테리아 숙주에서 박테리오파지 감염 진행을 보여주기에는 너무 짧습니다.
빠르게 성장하는 박테리아를 위해 설계된 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 분석은 증발이 일어나지 않고 인위적으로 높은 박테리아 밀도를 제공하지 않고는 느리게 성장하는 숙주 박테리아의 감염 역학을 특성화하는 데 필요한 며칠 동안 실행할 수 없습니다. 따라서 느리게 성장하는 박테리아 종에 대한 박테리오파지 감염 역학에 대한 비교 가능한 고처리량 데이터를 얻으려면 이러한 박테리아에 적합한 특수 기술이 필요합니다.
여기에 제시된 마이크로플레이트 방법은 증발을 줄여 느리게 성장하는 박테리아를 연장된 96시간 동안 파지와 함께 배양할 수 있도록 하고 파지 감염 역학 및 숙주 범위에 대한 조사를 가능하게 합니다. 이 방법은 또한 서로 다른 숙주 바이러스 시스템 간의 독성 비교를 허용하는 광학 밀도 기반 메트릭인 Stacy-Ceballos 지수16을 보여줍니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Agarose</td>
			<td>Omni-Pur</td>
			<td>2090</td>
			<td>for filling border wells of microplate&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Costar 96 Well Lid Low Evaporation Corner Notch</td>
			<td>Corning</td>
			<td>3931</td>
			<td>replacement microplate lid</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isopropanol</td>
			<td>Fisher Chemical</td>
			<td>A461-4</td>
			<td>for lid coating</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microplate reader</td>
			<td>Tecan Spark 20M</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Microplate Shaker with 4-Place Platform</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>88-861-023</td>
			<td>to shake plates during incubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Non-Tissue Culture-Treated Plate 96 well</td>
			<td>Falcon (a Corning Brand)</td>
			<td>351172</td>
			<td>microplate for growth curve assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone yeast calcium (PYCa) agar</td>
			<td>Homemade</td>
			<td></td>
			<td>1 g peptone 
			15 g yeast extract 
			15 g agar 
			990 mL dd H2O 
			4.5 mL 1 M CaCl2 
			2.5 mL 40% dextrose 
			1 mL 10 mg/mL cycloheximide</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone yeast calcium (PYCa) broth</td>
			<td>Homemade, from Reference 16</td>
			<td></td>
			<td>1 g peptone 
			15 g yeast extract 
			990 mL dd H2O 
			4.5 ml 1 M CaCl2 
			2.5 mL 40% dextrose 
			1 mL 10 mg/mL cycloheximide</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptone yeast calcium (PYCa) top agar</td>
			<td>Homemade</td>
			<td></td>
			<td>1 g peptone 
			15 g yeast extract 
			4 g agar 
			990 mL dd H2O 
			4.5 mL 1M CaCl2 
			2.5 mL 40% dextrose</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Petri plates</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>FB0875713</td>
			<td>for determination of bacterial concentration and phage titer assay</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phage Buffer</td>
			<td>Homemade, from Reference 7</td>
			<td></td>
			<td>10 mL 1 M Tris, pH 7.5 
			10 mL 1 M MgSO4 
			4 g NaCl 
			980 ml dd H2O</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>R software</td>
			<td>https://www.r-project.org/</td>
			<td>version 4.3.0</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Disposable PETG Flask Baffled Bottom w/Vented Closure</td>
			<td>Thermo Fisher Scientific</td>
			<td>4116-1000</td>
			<td>for bacterial culture</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Triton X-100</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>9036-19-5</td>
			<td>for lid coating</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

an adapted optical density-based microplate assay for characterizing actinobacteriophage infection

박테리오파지는 자연 환경의 핵심 부분이며 박테리아 개체군을 형성하는 강력한 능력을 가지고 있습니다. 개별 파지가 방선균과 같이 느리게 성장하는 박테리아 숙주와 어떻게 상호 작용하는지 이해하려면 파지가 있는 상태에서 장기 박테리아 성장을 정량화하는 쉽고 신뢰할 수 있는 방법이 필요합니다. 분광광도계 마이크로플레이트 리더를 사용하면 고처리량 반복 측정이 가능하지만, 소량을 장시간 배양하면 기술적인 문제가 발생할 수 있습니다. 이 절차는 표준 96웰 마이크로플레이트를 조정하여 96시간 동안 하위 샘플링 없이 파지와 박테리아의 공동 배양을 허용하며, 분광 광도계 흡광도 값을 사용하여 8시간마다 박테리아 성장을 기록합니다. 이러한 광학 밀도 값은 R을 사용하여 분석되어 성장 억제 비율, 상대 독성 및 Stacy-Ceballos 지수를 포함한 감염 메트릭을 산출합니다. 여기에 설명된 방법은 연장된 기간의 마이크로플레이트 성장 곡선 실험을 수행하고 분석하는 효과적인 방법을 제공하며 증발 및 뚜껑 응축을 줄이기 위한 수정을 포함합니다. 이러한 프로토콜은 느리게 성장하는 박테리아 숙주와 박테리오파지 간의 상호 작용에 대한 마이크로플레이트 기반 분석을 용이하게 합니다.

Bacteriophages or phages are viruses that infect bacteria. They are the most numerous biological entities on the planet1, and it is generally accepted that bacteriophages influence bacterial evolution and ecosystem processes2,3,4. Several methods exist to describe, measure, and analyze bacteriophage host range8 and infection dynamics5,6, including agar-based methods such as the double-layer agar method7 and optical density-based microplate methods8,9,10,11,12. Each method has its own advantages and disadvantages. Due to their efficiency, plating tests using the double-layer agar method are the &#34;gold standard&#34; for host range assays, but this method is time- and labor-intensive9. Rapid microplate methods, which return results in 24 h or less, give excellent results for fast-growing bacterial hosts such as Escherichia coli9,10,11,12 but are too brief to showcase bacteriophage infection progression in slower-growing bacterial hosts such as actinomycetes7,13,14,15.
An optical density-based microplate assay designed for fast-growing bacteria cannot be run for the multiple days required to characterize infection dynamics in a slow-growing host bacterium without evaporation occurring and giving artificially high bacterial densities. Thus, obtaining comparable high-throughput data on bacteriophage infection dynamics for slow-growing bacterial species requires specialized techniques adapted for these bacteria.
The microplate method presented here reduces evaporation, thus allowing slow-growing bacteria to be co-cultured with a phage for an extended 96 h period and enabling investigations into phage infection dynamics and host range. This method also showcases the Stacy-Ceballos index16, an optical density-based metric that allows for virulence comparisons among disparate host-virus systems.

저자 집중 조명: 악티노박테리오파지 감염 특성화를 위한 적응형 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 분석  

방선균테리오파지 감염을 특성화하기 위한 적응형 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 분석

Ultimately, we're interested in bacteriophage-host interactions. This protocol enables the measurement of phage infection in slow-growing bacteria, generating descriptive infection metrics. This methodology is instrumental in studying bacteriophage-host coevolution in slow-growing Actinomycete bacteria.Rapid microplate methods give excellent results for fast-growing bacterial hosts, but are too brief to showcase bacteria-phage infection progression in slower growing bacterial hosts, such as actinomycetes. Our method is adapted for slow-growing bacteria, allowing bacteria and phage to be co-cultured for the multiple days required to characterize the bacteriophage infection dynamics. Our protocol allows bacteriophage-host interactions to be assessed for slow-growing bacteria in microplates rather than requiring sub-sampling from a larger culture flask.This protocol uses readily available materials to adapt for extended culture times and allows multiple replicates to be plated in a single microplate.

결과 성장 곡선이 흡광도의 급격한 변동 없이 시간이 지남에 따라 양성 대조군 박테리아 개체군의 증가를 나타내면 실험이 성공한 것입니다. 생산적인 파지 감염이 있거나 없는 1의 MOI에서 성공적인 실험의 예가 각각 그림 2 및 그림 3에 나와 있습니다. MOI 0.01의 생산적 감염은 그림 4에 나와 있습니다. 세 그림 모두에서 볼 수 있는 양성 대조군 성장 패턴(녹색 곡선)은 박테리아가 성장하고 있으며 성장 중에 뭉치지 않으며 오염 물질이 존재하지 않음을 나타냅니다. 응집과 오염은 단일 시점에서 비정상적으로 높은 흡광도로 표시됩니다. 표준 편차는 일반적으로 실험 기간 동안 증가합니다. 그러나 대조군과 감염된 곡선 사이의 급격한 증가 또는 표준 편차는 하나 이상의 웰에서 오염 또는 응집을 나타낼 수 있습니다.
그림 2로 표시된 생산적인 파지 감염을 묘사하는 성장 곡선은 파지가 추가된 웰에서 시간이 지남에 따라 감소된 박테리아 흡광도를 보여줍니다. 박테리아 밀도의 이러한 감소는 그림 3과 같이 박테리아가 파지의 숙주 범위를 벗어나면 나타나지 않습니다.
감염 메트릭은 모든 대표적인 실험에 대해 도시되어 있으며, 도 2 및 도 4에서 생산적인 감염에 대한 비교적 큰 ISC와 숙주 박테리아를 효율적으로 감염시키지 않은 파지에 대한 도 3에서 매우 작은ISC를 갖는다. 
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65482/65482fig01.jpg"> 그림 1: 마이크로플레이트 레이아웃. 회색 영역은 0.1 % 아가로스로 채워져 있습니다. 컬럼 3 및 컬럼 4의 블랭크 웰은 파지 완충액과 2.0 x 106 cfu/mL 박테리아만 포함하는 파지가 없는 양성 대조군 웰입니다. 점선 웰에는 파지와 2.0 x 106 cfu/mL 박테리아가 포함되어 있습니다. 컬럼 5와 컬럼 6의 큰 점은 2.0 x 106 pfu/mL 파지에서 MOI 1을 나타냅니다. 컬럼 7 및 컬럼 8의 중간 점은 2.0 x 105 pfu/mL 파지에서 0.1의 MOI를 나타냅니다. 컬럼 9 및 컬럼 10의 작은 점들은 2.0 x 104 pfu/mL 파지에서 0.01의 MOI를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65482/65482fig01large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65482/65482fig02.jpg"> 그림 2: 숙주 박테리아를 생산적으로 감염시키는 MOI 1의 파지를 사용한 성공적인 성장 곡선 실험. 평균 흡광도 값(± 표준편차)은 감염되지 않은 박테리아(녹색)와 파지가 첨가된 박테리아(파란색)에 대해 표시됩니다. 약어: AUC = 곡선 아래 면적; PIAUC = 곡선 아래 면적으로부터 계산된 성장 억제율; N점근선 = 피크 성장 값; PImax = 피크 성장 값으로부터 계산된 성장 억제율; ISC = Stacy-Ceballos 지수. 이 그래프는 G. terrae를 감염시키는 온대 Gordonia 파지 DelRio를 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65482/65482fig02large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65482/65482fig03.jpg"> 그림 3: 숙주 박테리아를 효율적으로 감염시키지 않는 MOI 1의 파지를 사용한 성공적인 성장 곡선 실험. 평균 흡광도 값(± 표준편차)은 감염되지 않은 박테리아(녹색)와 파지가 첨가된 박테리아(파란색)에 대해 표시됩니다. 약어: AUC = 곡선 아래 면적; PIAUC = 곡선 아래 면적으로부터 계산된 성장 억제율; N점근선 = 피크 성장 값; PImax = 피크 성장 값으로부터 계산된 성장 억제율; ISC = Stacy-Ceballos 지수. 이 그래프는 DelRio에 의한 G. rubripertincta 감염을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65482/65482fig03large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/65482/65482fig04.jpg"> 그림 4: MOI 0.01에서 파지를 사용한 성공적인 성장 곡선 실험. 평균 흡광도 값(± 표준편차)은 감염되지 않은 박테리아(녹색)와 파지가 첨가된 박테리아(파란색)에 대해 표시됩니다. 약어: AUC = 곡선 아래 면적; PIAUC = 곡선 아래 면적으로부터 계산된 성장 억제율; N점근선 = 피크 성장 값; PImax = 피크 성장 값으로부터 계산된 성장 억제율; ISC = Stacy-Ceballos 지수. 이 그래프는 DelRio에 의한 G. terrae 감염을 나타냅니다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/65482/65482fig04large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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광학 밀도 기반 마이크로플레이트 방법은 방선균 및 기타 느리게 성장하는 박테리아에 적합한 박테리오파지가 있는 상태에서 장기간 박테리아 성장을 정량화하는 데 설명됩니다. 이 방법에는 증발 및 뚜껑 응축을 줄이기 위한 수정과 곡선 아래 면적, 성장 최대 및 상대적 독성을 포함한 바이러스 감염 메트릭을 계산하기 위한 R 코드가 포함됩니다.

Bacteriophages are a key part of natural environments, and they have a powerful ability to shape bacterial populations. To understand how individual ...

궁극적으로 우리는 박테리오파지-숙주 상호 작용에 관심이 있습니다. 이 프로토콜을 사용하면 느리게 성장하는 박테리아에서 파지 감염을 측정하여 설명적인 감염 메트릭을 생성할 수 있습니다. 이 방법론은 느리게 성장하는 방선균 박테리아에서 박테리오파지-숙주 공진화를 연구하는 데 중요한 역할을 합니다.신속한 마이크로플레이트 방법은 빠르게 성장하는 박테리아 숙주에 대해 우수한 결과를 제공하지만 방선균과 같이 느리게 성장하는 박테리아 숙주에서 박테리아-파지 감염 진행을 보여주기에는 너무 짧습니다. 당사의 방법은 느리게 성장하는 박테리아에 적용되어 박테리오파지 감염 역학을 특성화하는 데 필요한 며칠 동안 박테리아와 파지를 공동 배양할 수 있습니다. 당사의 프로토콜을 사용하면 더 큰 배양 플라스크에서 하위 샘플링을 요구하지 않고 마이크로플레이트에서 느리게 성장하는 박테리아에 대해 박테리오파지-숙주 상호 작용을 평가할 수 있습니다.이 프로토콜은 쉽게 구할 수 있는 재료를 사용하여 배양 시간 연장에 적응하고 단일 마이크로플레이트에 여러 복제물을 도금할 수 있습니다.

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Research

JoVE Journal

Biology

An Adapted Optical Density-Based Microplate Assay for Characterizing Actinobacteriophage Infection

1.5K 조회수.  Ouachita Baptist University. 궁극적으로 우리는 박테리오파지-숙주 상호 작용에 관심이 있습니다. 이 프로토콜을 사용하면 느리게 성장하는 박테리아에서 파지 감염을 측정하여 설명적인 감염 메트릭을 생성할 수 있습니다. 이 방법론은 느리게 성장하는 방선균 박테리아에서 박테리오파지-숙주 공진화를 연구하는 데 중요한 역할을 합니다.신속한 마이크로플레이트 방법은 빠르게 성장하는 박테?...

비디오: 저자 집중 조명: 악티노박테리오파지 감염 특성화를 위한 적응형 광학 밀도 기반 마이크로플레이트 분석  

Bacteriophages are a key part of natural environments, and they have a powerful ability to shape bacterial populations. To understand how individual phages interact with slow-growing bacterial hosts such as actinomycetes, an easy and reliable method for quantifying long-term bacterial growth in the presence of phages is needed. Spectrophotometric microplate readers allow for high-throughput repeated measurements, but incubating a small volume for an extended time can present technical challenges. This procedure adapts a standard 96-well microplate to allow for the co-culturing of phages and bacteria without sub-sampling for 96 h, with the bacterial growth recorded every 8 h using spectrophotometric absorbance values. These optical density values are analyzed using R to yield infection metrics, including the percent growth inhibition, relative virulence, and the Stacy-Ceballos index. The methods outlined here provide an effective way to conduct and analyze extended-duration microplate growth curve experiments and includes modifications to reduce evaporation and lid condensation. These protocols facilitate microplate-based assays of interactions between slow-growing bacterial hosts and their bacteriophages.

An optical density-based microplate method is described to quantify long-term bacterial growth in the presence of bacteriophages, suitable for actinomycetes and other slow-growing bacteria. This method includes modifications to reduce evaporation and lid condensation and R code to calculate virus infection metrics, including the area under the curve, growth maximum, and relative virulence.

연구

생물학

Microplate Preparation for Actinobacteriophage Infection

To begin, add six milliliters of lid coating solution to the inside surface of a sterile 96 well microplate lid, holding it by the edges. Rotate the lid to ensure complete coverage of the solution. Allow the solution to sit for 20 seconds before pouring it off.Invert the lid onto an autoclaved paper towel at an angle and let it dry for 35 to 45 minutes. Cool the melted Agarose to a temperature between 50 and 60 degrees Celsius. Then pipette 100 microliters of the 0.1%Agaros solution into the spaces between the wells of the plate.Then pipette 200 microliters of Agaros into the wells located in row A, row H, column one, column two, column 11 and column 12.

방선균테리오파지 감염에 대한 마이크로플레이트 준비

Actinobacteriophage Infection and Absorbance Measurement

Take a previously prepared microplate with anti-fog solution and agarose. Pipette 75 microliters of the bacteria into columns three to 10. Next, add 75 microliters of sterile phage buffer to wells in columns three and four as a no-phage positive control.Mix the solution by pipetting up and down after each addition. Then add 75 microliters of the phage at varied concentrations to the columns, and mix each solution by pipetting up and down again after each addition. Stick both short sides of the plate using 0.5 inch labeling tape, which will partially seal the plate while allowing for gas exchange.Incubate the plate on a microplate shaker, and measure optical density using a microplate reader. Then, with the optical density measurements, generate control and infected growth curves. The growth curve depicts a productive phage infection shown by the reduced bacterial absorbance over time in wells with the phage added.This reduction in bacterial density will not be seen if the bacterium is outside the phage's host range.