이 연구는 NIH-NINDS(R21NS130241), IND DEPT HLTH(55051, 74247, 74244) 및 US ARMY(HT94252310700)의 지원을 받았습니다.

동물 연구 프로토콜은 인디애나 대학교 의과대학의 기관 동물 관리 및 사용 위원회(Institutional Animal Care and Use Committee)의 승인을 받았습니다. 승인 코드: 21098MD/R/MSS/HZ 승인 날짜: 2021년 9월 29일.
1. 카테터의 준비
<ol><li>30cm 폴리에틸렌 PE-30 튜브(.017인치 x .030인치)를 자릅니다. 라이터를 사용하여 튜브의 한쪽 끝을 플레어하여 화염에 닿지 않도록 하고 튜브가 적절하게 둥근 종 모양의 팁을 형성하면 라이터를 빼냅니다.</li>
	<li>3G 바늘의 약 4/25을 튜브의 다른 쪽 끝에 조심스럽게 삽입합니다. 1mL 주사기를 준비하고 멸균 0.9% NaCl로 채웁니다. 주사기를 25G 바늘에 연결합니다.</li>
	<li>식염수를 부드럽게 주입하여 바늘 끝이 적절하게 둥글고 바늘 끝에서 누출되지 않는지 확인합니다. 압력이 느껴지지 않고 식염수가 카테터를 통해 원활하게 흐르는지 확인하십시오.</li>
</ol>2. 전극의 준비
<ol><li>길이가 20cm 인 강선 2 개를 준비합니다. 강선을 잡고 코팅 영역의 양쪽 끝에 샌드 폴리시를 바르고 와이어의 5mm를 벗겨냅니다.</li>
	<li>25G 바늘을 가져 와서 와이어의 한쪽에 삽입하십시오. 와이어가 손상되지 않도록 바늘을 조심스럽게 삽입해야 합니다. 와이어의 벗겨진 부분을 후크처럼 구부립니다. 후크는 와이어를 EUS 근육에 연결하는 데 도움이 됩니다.</li>
	<li>땜납을 사용하여 핀을 스트라이프 와이어의 다른 쪽 끝에 부착합니다. 납땜은 핀을 와이어에 고정하고 강력한 연결을 보장하는 데 도움이 됩니다. 주석-납 납땜이 녹아 와이어와 핀을 덮을 때까지 가열해야 합니다.</li>
</ol>3. 동물의 준비
<ol><li>Institutional Animal Care에 따라 동물 시설에 암컷 C57BL/6 마우스(생후 8주, 체중 18-20g)를 12시간 연암주기로 두고 물과 표준 식품 알갱이에 무제한으로 접근합니다.</li>
</ol>4. 수술 중 마취
<ol><li>동물을 2% 이소플루란과 순수한 산소(1L/분) 챔버에 넣습니다. 마스크로 옮기기 전에 음성 발가락 꼬집기 검사를 사용하여 동물의 완전한 마취를 확인하십시오. 확인이 완료되면 가스 상태를 마스크로 변경합니다.</li>
	<li>마취 마스크가 멸균 수술 필드의 적절한 위치에 고정되었는지 확인하십시오. 흡입 소형 마스크(2% 이소플루란이 포함된 0.8-1L/min)에 코를 두고 멸균 드레이프에 동물을 앙와놓고 마취를 계속합니다.</li>
</ol>5. 수술 준비
<ol><li>테이프로 동물의 팔다리를 고정하십시오. 전기 면도기를 사용하여 하복부와 요도 고기(생식기 부위) 주변의 털을 면도합니다.</li>
	<li>눈의 잠재적인 건조를 방지하기 위해 눈 연고를 바르십시오. 포비돈-요오드 용액을 사용하여 면도 부위를 준비하고 70% 에탄올로 용액을 닦아냅니다. 수술 부위에 멸균 드레이프를 씌웁니다.</li>
</ol>6. 수술 절차
<ol><li>방광 카테터 이식<ol><li>수술용 현미경에서 Metzenbaum의 직선적이고 뭉툭한 가위를 사용하여 복부 골반 피부의 정중선에 1-2cm를 절개합니다. 정중선의 근막과 근육을 절개하여 절개 상처를 통해 방광을 노출시킵니다.</li>
		<li>절개 상처를 통해 방광이 보이면 수술 부위를 명확하게 볼 수 있도록 필요에 따라 주변 장기나 조직을 집어넣습니다. 방광에 불필요한 조작이나 긴장이 가해지면 소변 누출이나 주변 구조물의 손상과 같은 합병증이 발생할 수 있으므로 주의하십시오.</li>
		<li>블래더 돔을 잡고 테이퍼 팁 바늘이 있는 5-0 비흡수성 모노필라멘트 봉합사를 사용하여 지갑 끈을 놓습니다.</li>
		<li>마이크로 가위를 사용하여 지갑 끈 안에 작은 방광루를 만들고 소변이 나올 때까지 구멍을 뚫습니다.</li>
		<li>카테터의 둥근 끝 끝을 잡고 구멍을 통해 삽입합니다. 튜브의 끝이 구멍을 통과하면 튜브 주위의 지갑 끈을 봉합합니다. 그런 다음 팁이 봉합사 아래에서 느껴질 때까지 튜브를 바깥쪽으로 부드럽게 당깁니다.</li>
		<li>튜브의 다른 쪽 끝에서 식염수 1mL를 천천히 주입하여 방광을 팽창시킵니다. 카테터 주변에 누출이 있는지 확인하십시오. 누출이 있는 경우 추가 봉합사를 배치합니다.</li>
		<li>식염수가 요도에서 나오면 식염수를 빼내어 방광의 감압을 제거합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>EUS 전극 주입(그림 1)<ol><li>수술용 가위를 사용하여 복부 절개 부위를 골반저까지 확장합니다.</li>
		<li>방광과 일직선상에 있도록 근육과 막을 음부관으로 이동시키고 요도와 외괄약근을 찾습니다. 장골과 중간 꼬리 혈관 및 음부 신경을 다치지 않도록 주의하십시오.</li>
		<li>전극이 들어있는 바늘을 사용하여 요도 고기에서 1cm 떨어진 양측으로 피부를 찔렀습니다.</li>
		<li>집게로 후크 팁을 조심스럽게 잡고 바늘을 피부에서 부드럽게 잡아당깁니다.</li>
		<li>전극의 끝을 사용하여 EUS 근육을 양측으로 조심스럽게 연결합니다. 너무 깊게 펀칭하면 근육에 해를 끼쳐 소변이 누출될 수 있으므로 피하십시오.</li>
		<li>3-0 비흡수성 모노필라멘트를 사용하여 골반과 복부 근육과 피부를 봉합합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>피부 방수<ol><li>전극이 나오는 피부에 시아노아크릴레이트 접착제를 얇게 바르고 전극을 제자리에 고정합니다.</li>
		<li>시아노아크릴레이트 접착제를 요도 고기를 둘러싸고 복부와 봉합 부위까지 3cm 더 뻗어 바릅니다. 접착제와의 접촉을 피하려면 집게로 고기를 조심스럽게 잡으십시오.</li>
		<li>0.5-10 μL 마이크로 피펫을 사용하여 촉진액을 빼내어 접착제를 건조시킵니다. 주의: 촉진액은 가연성 액체입니다.</li>
		<li>적절한 접착 반응을 보장하기 위해 촉진액을 첨가하십시오. 이렇게 하면 접착제를 더 빨리 건조시키고 단단히 고정하는 데 도움이 됩니다.</li>
	</ol></li>
	<li>요역동학 준비<ol><li>길이, 너비, 깊이가 4.5cm인 역폴리스티렌 계량 보트를 준비합니다. 밑면이 4cm인 삼각형 모양으로 잘라 이 공간에 쥐의 요도 고기를 넣습니다. 소변을 모을 수 있는 공간 아래에 37mm x 24mm x 5mm의 일회용 기본 몰드를 놓습니다.</li>
		<li>마우스를 엎드린 위치로 재배치하고 방독면이 장착된 맞춤형 플레이트 위로 조심스럽게 이동합니다.</li>
		<li>요도 고기가 홈 내에 적절하게 위치했는지 확인하십시오. 쥐의 머리와 팔다리를 테이프로 부드럽게 고정하고 쥐가 완전한 의식을 회복할 때까지 플레이트를 가열 패드에 놓습니다(그림 2).</li>
		<li>쥐가 완전히 깨어 있을 때, 즉 마취에서 회복된 후 최소 40분 후에만 방광 검사를 수행하십시오.</li>
	</ol></li>
</ol>7. 방광경 검사 및 EUS-EMG 기록 준비
<ol><li>제조업체의 지침에 따라 주입 펌프를 설정하고 보정합니다.</li>
	<li>직경이 19.05mm인 20mL 주사기를 실온에서 멸균 0.9% NaCl로 채웁니다. 주입 펌프에 주사기를 고정합니다. 주입 속도를 0.01mL/분으로 설정합니다.</li>
	<li>PE-30 튜브로 주사기를 3방향 커넥터의 한쪽에 연결합니다. 반대쪽에 있는 방광 카테터를 압력 변환기에 연결합니다. 방광 카테터를 연결하기 전에 모든 기포를 제거해야 합니다.</li>
	<li>압력 변환기를 마우스 블래더와 동일한 높이에 고정합니다. 압력 트랜스듀서는 증폭기를 통해 데이터 수집 시스템에 연결됩니다.</li>
	<li>접지선 후크 하나를 피부에 연결하고 다른 하나를 전극 커넥터 위치에 연결합니다. 소프트웨어에 압력을 기록하십시오.</li>
	<li>소프트웨어를 시작한 후 방광 내 압력(IVP) 및 EUS-EMG 신호를 확인합니다. 샘플 이름을 저장하고 시간을 설정합니다.</li>
	<li>펌프 주입을 시작합니다. 신호를 기록합니다.</li>
</ol>

시아노아크릴레이트 피부 장벽을 사용한 깨어 있는 쥐의 정확한 요역동학 측정

<ol>
	<li>Leslie, S. W., Tadi, P., Tayyeb, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurogenic+bladder+and+neurogenic+lower+urinary+tract+dysfunction.">Neurogenic bladder and neurogenic lower urinary tract dysfunction.</a> Statpearls. , (2024).</li><li>Doelman, A. W., Streijger, F., Majerus, S. J., Damaser, M. S., Kwon, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessing+neurogenic+lower+urinary+tract+dysfunction+after+spinal+cord+injury:+Animal+models+in+preclinical+neuro-urology+research.">Assessing neurogenic lower urinary tract dysfunction after spinal cord injury: Animal models in preclinical neuro-urology research.</a> Biomedicines. 11 (6), 1539 (2023).</li><li>Fraser, M. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Best+practices+for+cystometric+evaluation+of+lower+urinary+tract+function+in+muriform+rodents.">Best practices for cystometric evaluation of lower urinary tract function in muriform rodents.</a> Neurourol Urodyn. 39 (6), 1868-1884 (2020).</li><li>Hashimoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sex+differences+in+lower+urinary+tract+function+in+mice+with+or+without+spinal+cord+injury.">Sex differences in lower urinary tract function in mice with or without spinal cord injury.</a> Neurourol Urodyn. 43 (1), 267-275 (2024).</li><li>Kadekawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+bladder+and+external+urethral+activity+in+mice+with+or+without+spinal+cord+injury-a+comparison+study+with+rats.">Characterization of bladder and external urethral activity in mice with or without spinal cord injury-a comparison study with rats.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 310 (8), R752-R758 (2016).</li><li>Lee, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+periurethral+muscle-derived+stem+cell+injection+on+leak+point+pressure+in+a+rat+model+of+stress+urinary+incontinence.">The effects of periurethral muscle-derived stem cell injection on leak point pressure in a rat model of stress urinary incontinence.</a> Int Urogynecol J. 14, 31-37 (2003).</li><li>Mann-Gow, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+the+procedure+for+performing+awake+cystometry+in+a+mouse+model.">Evaluating the procedure for performing awake cystometry in a mouse model.</a> J Vis Exp. (123), e55588 (2017).</li><li>Saito, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time-dependent+progression+of+neurogenic+lower+urinary+tract+dysfunction+after+pinal+cord+injury+in+the+mouse+model.">Time-dependent progression of neurogenic lower urinary tract dysfunction after pinal cord injury in the mouse model.</a> Am J Physiol Renal Physioly. 321 (1), F26-F32 (2021).</li><li>Schneider, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+urodynamic+model+for+lower+urinary+tract+assessment+in+awake+rats.">A novel urodynamic model for lower urinary tract assessment in awake rats.</a> BJU Int. 115, 8-15 (2015).</li><li>Habib, A., Mehanna, A., Medra, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cyanoacrylate:+A+handy+tissue+glue+in+maxillofacial+surgery:+Our+experience+in+alexandria,+egypt.">Cyanoacrylate: A handy tissue glue in maxillofacial surgery: Our experience in alexandria, egypt.</a> J Maxillofac Oral Surg. 12, 243-247 (2013).</li><li>Sunjic Roguljic, V., Roguljic, L., Jukic, I., Kovacic, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+influence+of+wound+closure+techniques+after+surgical+decompression+in+patients+with+carpal+tunnel+syndrome+on+sleep+disturbance+and+life+quality:+A+prospective+comparison+of+surgical+techniques.">The influence of wound closure techniques after surgical decompression in patients with carpal tunnel syndrome on sleep disturbance and life quality: A prospective comparison of surgical techniques.</a> Clin Pract. 14 (2), 546-555 (2024).</li><li>Sohn, J. J., Gruber, T. M., Zahorsky-Reeves, J. L., Lawson, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+2-ethyl-cyanoacrylate+and+2-butyl-cyanoacrylate+for+use+on+the+calvaria+of+cd1+mice.">Comparison of 2-ethyl-cyanoacrylate and 2-butyl-cyanoacrylate for use on the calvaria of cd1 mice.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 55 (2), 199-203 (2016).</li><li>Ren, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Injectable,+self-healing+hydrogel+adhesives+with+firm+tissue+adhesion+and+on-demand+biodegradation+for+sutureless+wound+closure.">Injectable, self-healing hydrogel adhesives with firm tissue adhesion and on-demand biodegradation for sutureless wound closure.</a> Sci Adv. 9 (33), 4327 (2023).</li><li>Ito, H., Pickering, A. E., Kanai, A., Fry, C. H., Drake, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Muro-neuro-urodynamics;+a+review+of+the+functional+assessment+of+mouse+lower+urinary+tract+function.">Muro-neuro-urodynamics; a review of the functional assessment of mouse lower urinary tract function.</a> Front Physiol. 8, 240395 (2017).</li><li>Abdelkhalek, A. S., Youssef, H. A., Saleh, A. S., Bollen, P., Zvara, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anesthetic+protocols+for+urodynamic+studies+of+the+lower+urinary+tract+in+small+rodents-a+systematic+review.">Anesthetic protocols for urodynamic studies of the lower urinary tract in small rodents-a systematic review.</a> PloS One. 16 (6), e0253192 (2021).</li><li>Saab, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Short-term+memory+impairment+after+isoflurane+in+mice+is+prevented+by+the+&#945;5+&#947;-aminobutyric+acid+type+a+receptor+inverse+agonist+l-655,708.">Short-term memory impairment after isoflurane in mice is prevented by the &#945;5 &#947;-aminobutyric acid type a receptor inverse agonist l-655,708.</a> J Am Soc Anesthesiol. 113 (5), 1061-1071 (2010).</li><li>Cannon, T. W., Damaser, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+anesthesia+on+cystometry+and+leak+point+pressure+of+the+female+rat.">Effects of anesthesia on cystometry and leak point pressure of the female rat.</a> Life Sci. 69 (10), 1193-1202 (2001).</li><li>Weiss, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphology+of+the+external+genitalia+of+the+adult+male+and+female+mice+as+an+endpoint+of+sex+differentiation.">Morphology of the external genitalia of the adult male and female mice as an endpoint of sex differentiation.</a> Mol Cell Endocrinol. 354 (1-2), 94-102 (2012).</li><li>Leggat, P. A., Kedjarune, U., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toxicity+of+cyanoacrylate+adhesives+and+their+occupational+impacts+for+dental+staff.">Toxicity of cyanoacrylate adhesives and their occupational impacts for dental staff.</a> Ind Health. 42 (2), 207-211 (2004).</li></ol>

저자는 밝힐 것이 없습니다.

이 요역동학 기법은 깨어 있고 억제된 마우스에서 소변량과 EUS-EMG 신호를 측정하기 위한 개선된 절차를 설명합니다. 요도 및 복부 주변에 털이 있으면 소변을 흡수하여 VV 측정의 정확성을 방해할 수 있습니다. 요도와 복부를 둘러싼 털은 수술 전에 조심스럽게 면도되었지만, 이 부위와 피부에 남아 있는 작은 털은 여전히 소변을 흡수하여 기록 후 복부에 젖은 부분을 남겼습니다. 이 문제는 요도 ?...

소변의 저장과 배출은 방광과 외부 요도 괄약근(EUS)의 조정된 활동에 달려 있습니다. 신경인성 방광과 같은 일부 병리학에서는 방광 배뇨근과 괄약근이 모두 기능 장애를 일으켜 특히 외상성 척수 손상(SCI) 후 심각한 방광 문제를 일으킬 수 있습니다1.
작은 설치류는 일반적으로 하부 요로(LUT)의 전임상 기능을 연구하기 위한 실험 모델로 사용됩니다2. 충전 방광경법(FC) 및 EUS 근전도(EUS-EMG) 기록 기법은 방법 선택, 정확한 측정 및 결과 해석에 따라 정밀하고 객관적인 정보를 제공할 수 있습니다3. 요역동학 검사는 일반적으로 배뇨량(VV), 배뇨 효율(VE) 및 방광 용량4을 평가하는 데 사용됩니다. VE는 방광이 얼마나 효과적으로 스스로를 비울 수 있는지를 측정합니다. 공극 부피를 공극 부피와 잔류 부피의 합(VV+RV)으로 나누어 계산합니다. 한편, 방광 용량은 VV(배뇨 중 배출되는 소변의 양)에 RV(배뇨 후 방광에 남아 있는 소변의 양)에 더하여 계산합니다5. 따라서 VV 및 RV의 측정은 다른 매개 변수를 추론하는 열쇠입니다.
요역동학 검사 중 마우스의 VV를 정확하게 측정하는 것은 다양한 과제를 제시합니다. 설치류의 소변은, 엎드린 자세로 물리적으로 제지될 때, 중력의 영향으로 인해 복부 복벽을 통해 아래쪽으로 빨려 들어가는 경향이 있다6. 이 현상은 복부 털과 피부에 의해 소변이 흡수되는 원인이 될 수 있으며, 이는 차례로 배설되는 소변의 양을 과소 평가합니다. 마우스에 의해 생성되는 소량의 소변을 고려할 때, 이러한 흡광도가 결과의 정확성에 미치는 영향은 훨씬 더 두드러진다7. 더욱이, SCI의 모델에서, VV는 배뇨근 괄약근 시너지아(detrusor sphincter dyssynergia, DSD)의 영향으로 인해 일반 마우스보다 낮은 경우가 많으며, 이는 누설점 압력 및 모피에 의한 소변 흡수의 위험을 증가시킨다8. 이러한 요인은 결과에 상당한 영향을 미칩니다. 따라서 생쥐의 말기 요역추학 연구에서 VV와 RV를 정확하게 측정하는 것이 매우 중요하다9. 현재 마우스 모델에서 소변량을 정확하게 측정하는 방법에 대해 출판된 문헌에 제공된 방법론에는 세부 사항이 부족합니다.
시아노아크릴레이트 접착제는 빠르고 효과적인 접착 특성으로 인해 인간 및 동물 모델의 외과 절차에 일반적으로 사용되는 접착제 유형입니다10,11,12. 이 접착제는 피부에 도포할 때 강하고 유연한 결합을 형성하기 때문에 상처와 열상을 봉합하는 데 특히 유용합니다13. 또한, 털과 상처에 닿을 수 있는 소변과 습기에 대한 큰 장벽이 될 수 있다11.
이 기사에서는 시아노아크릴레이트 접착제를 사용하여 깨어 있는 마우스의 방광 분석 및 EUS-EMG 기록에서 정확한 결과를 얻을 수 있는 새롭고 비용 효율적인 기술을 개발했습니다. 이 방법은 방광 기능 장애의 근본적인 원인을 이해하고 LUT 장애에 대한 보다 효과적인 치료법을 고안하는 데 도움이 될 것입니다.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Accelerator</td>
			<td>BOB SMITH INDUSTRIES</td>
			<td>BSI-152</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cyanoacrylate&#160;</td>
			<td>TED PELLA, Inc</td>
			<td>14478</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Disposable base mold</td>
			<td>TED PELLA, Inc</td>
			<td>27147-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Infusion pump</td>
			<td>Harvard Apparatus PHD ULTRA</td>
			<td>70-3006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Henry Schein Inc</td>
			<td>1182097</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PIN</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>5482</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polyethylene Tubing 30</td>
			<td>Braintree Scientific Inc</td>
			<td>PE30</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Sterile Weighing Boat</td>
			<td>HEATHROW SCIENTIFIC</td>
			<td>797CK2</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Windaq/Lite&#160;</td>
			<td>DATAQ INSTRUMENTS</td>
			<td>249022</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

optimizing mouse urodynamic techniques for improved accuracy 

깨어 있는 쥐의 요로 매개변수를 정확하게 측정하는 것은 특히 신경인성 방광 외상 후 척수 손상(SCI)과 같은 상태에서 하부 요로(LUT) 기능 장애를 이해하는 데 중요합니다. 그러나 생쥐에서 방광경 분석을 수행하는 것은 주목할 만한 도전 과제를 제시합니다. 생쥐가 기록 세션 동안 엎드려 제한된 위치에 있을 때 소변은 털과 피부에 흡수되는 경향이 있어 공극량(VV)이 과소평가됩니다. 이 연구의 목표는 깨어 있는 쥐에서 방광 측정 및 외부 요도 괄약근 전기검사(EUS-EMG) 기록의 정확도를 향상시키는 것이었습니다. 시아노아크릴레이트 접착제를 사용하여 요도와 복부 주변에 방수 피부 장벽을 형성하여 소변 흡수를 방지하고 정확한 측정을 보장하는 독특한 방법을 개발했습니다. 결과는 시아노아크릴레이트를 적용한 후 VV와 RV의 합이 주입된 식염수 부피와 일관되게 유지되었으며 실험 후 습한 영역이 관찰되지 않았음을 보여주며, 이는 소변 흡수를 성공적으로 예방했음을 나타냅니다. 또한 이 방법은 외부 요도 괄약근(EUS)과 연결된 전극을 동시에 안정화하고, 안정적인 근전도(EMG) 신호를 보장하며, 깨어난 마우스의 움직임과 실험자의 조작으로 인한 아티팩트를 최소화했습니다. 방법론적 세부 사항, 결과 및 시사점에 대해 논의하고 전임상 연구에서 요역동학 기법 개선의 중요성을 강조합니다.

The storage and release of urine are dependent on the coordinated activity of the urinary bladder and external urethral sphincter (EUS). In some pathologies such as neurogenic bladder, both the bladder detrusor muscles and the sphincter can become dysfunctional, leading to significant bladder problems, especially after traumatic spinal cord injury(SCI)1.
Small rodents are commonly used as an experimental model to study the preclinical function of the lower urinary tract (LUT)2. Filling Cystometry (FC) and EUS electromyography (EUS-EMG) recording techniques can provide precise objective information depending on the choice of methods, accurate measurement, and interpretation of results3. Urodynamic tests are commonly used to evaluate the voiding volume (VV), voiding efficiency (VE), and bladder capacity4. VE measures how effectively the bladder can empty itself. It is calculated by dividing the voided volume by the sum of voided and residual volumes (VV+RV). On the other hand, bladder capacity is calculated by adding the VV (the amount of urine expelled during urination) to the RV (the amount of urine left in the bladder after urination)5. Therefore, the measurement of VV and RV are the keys to deducing other parameters.
Precisely measuring VV in mice during urodynamic tests presents various challenges. The urine of rodents, when physically restrained in a prone position, tends to be drawn downwards through the ventral abdominal wall due to the influence of gravity6. This phenomenon can lead to the absorption of urine by the abdominal fur and skin, which, in turn, underestimates the volume of urine excreted. Considering the small amount of urine produced by mouse, the impact of this absorbance on the accuracy of results is even more pronounced7. Furthermore, in models of SCI, VV is often lower than in normal mice due to the impact of the detrusor sphincter dyssynergia (DSD), which increases the risk of leak point pressures and urine absorption by the fur8. These factors have a significant impact on the results. Therefore, accurate measurement of VV and RV during terminal urodynamic studies in mice is crucial9. Currently, there is a lack of details in the methodologies provided in published literature about how to measure urine volume accurately in mouse models.
Cyanoacrylate adhesive is a type of glue that is commonly used in surgical procedures in human and animal models due to its quick and effective bonding properties10,11,12. This adhesive is particularly useful for closing wounds and lacerations, as it forms a strong and flexible bond when applied to the skin13. Moreover, it can be a great barrier against urine and wetness that may come into contact with fur and wounds11.
In this article, we have developed a novel and cost-effective technique that utilizes cyanoacrylate adhesive to achieve precise results in cystometry and EUS-EMG recordings in awake mice. This method will be beneficial in understanding the underlying causes of bladder dysfunction and devising more effective treatments for LUT disorders.

저자 스포트라이트: 신경인성 방광이 있는 깨어 있는 마우스에서 정확한 소변 측정을 위한 향상된 요역동학적 방법

정확도 향상을 위한 마우스 요역동학 기술 최적화 

The goal of this study is to improve the urodynamic technology to increase the accuracy of the urine measurement. Accurate measurement of the urinary parameter awake mice is crucial understanding lower urinary tract dysfunction, particularly in condition like a neurogenic bladder, post-traumatic spinal injury. We developed a unique method utilizing cyanoacrylate adhesive to create a waterproof skin barrier around the and abdomen, preventing urine absorption and ensuring precise measurements of voided volume.We would use this more accurate assay to evaluate urinary function in the spinal cord injury animal models, and another neurodegenerative disease.

방광경 측정 및 EUS-EMG 활동 추적을 사용하여 데이터를 분석했습니다. 연속 방광경 분석 방법은 방광에 식염수를 주입하는 동시에 방광의 압력과 부피 변화를 측정하는 것입니다. VV를 측정하기 위해 0.4mL의 식염수를 0.01mL/분의 속도로 주입하고 캡에서 40분 동안 소변을 수집했습니다. PVR(post-void residual)은 카테터를 통해 식염수를 흡인하여 얻을 수 있습니다. 접착제가 없는 일반 마우스에서 VV와 RV의...

이 프로토콜은 털과 피부에 의한 소변 흡수를 방지하기 위해 시아노아크릴레이트로 피부를 방수하는 가이드를 제공합니다. 여기에는 접착제를 피부에 바르고, 방광 카테터를 이식하고, 깨어 있는 쥐에서 방광 측정 및 외부 요도 괄약근 전기 조영 기록을 위한 전극에 대한 지침이 포함되어 있습니다.

Accurate measurement of urinary parameters in awake mice is crucial for understanding lower urinary tract (LUT) dysfunction, particularly in conditions ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Optimizing Mouse Urodynamic Techniques for Improved Accuracy 

317 조회수.  Indiana University School of Medicine. 이 연구의 목표는 요역동학 기술을 개선하여 소변 측정의 정확도를 높이는 것입니다. 깨어 있는 쥐의 소변 매개변수를 정확하게 측정하는 것은 특히 신경인성 방광, 외상 후 척추 손상과 같은 상태에서 하부 요로 기능 장애를 이해하는 데 중요합니다. 우리는 시아노아크릴레이트 접착제를 사용하여 복부 주변에 방수 피부 장벽을 만들어 소변 흡수를...