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Resumo

Hipofaringe glândula acinus tamanho é uma medida robusta de nutrição de abelhas de mel de enfermeira. Aqui, nós fornecemos um protocolo detalhado para dissecar, coloração, imagem e medição ácinos de glândula enfermeira abelha hipofaringe.

Resumo

As enfermeira hipofaringe glândulas produzem a fração proteica do trabalhador e geleia real que é alimentada para desenvolver as larvas e as rainhas. Estas glândulas pareadas localizadas na cabeça da abelha são altamente sensíveis à quantidade e qualidade de pólen e pólen substitutos que a enfermeira abelha consome. As glândulas ficam menores quando as enfermeiras são alimentadas com dietas deficientes e são grandes, quando eles são alimentados com dietas completas. Porque a enfermeira hipofaringe glândula tamanho é um indicador robusto da enfermeira nutrição, é essencial que os que estudam a nutrição de abelhas de mel sabem como medir essas glândulas. Aqui, nós fornecemos métodos detalhados para dissecando, coloração, imagem latente e glândulas de hipofaringe enfermeira abelha de medição. Apresentamos as comparações de dados que foram usados para estudar o impacto do pólen no tamanho da glândula e tecido imaculado e manchado. Este método tem sido usado para testar como dieta afeta o tamanho de glândula de hipofaringe, mas tem mais uso para compreender o papel dessas glândulas na saúde de colmeia.

Introdução

As abelhas são essenciais para a agricultura porque eles polinizam uma variedade de culturas que são consumidos por seres humanos e animais. Muita atenção para o declínio das populações de abelhas de mel como focalizar de perdas de colônia em torno de 30-40% anualmente no Estados Unidos1 e 10-15% na Europa,2,3. Múltiplos fatores, incluindo o acesso reduzido a alta qualidade de forragem, provável ato juntos para afetar negativamente a saúde das abelhas de mel. Monocultura, seca, práticas insustentáveis de apicultura e outros fatores diminuem a diversidade e a quantidade de pólens naturais disponíveis para colônias4,5. Porque as abelhas derivam quase todas as suas proteínas dietéticas e lipídios de pólen, acesso reduzido ao pólen pode limitar severamente a saúde individual e colônia.

As glândulas de hipofaringe são estruturas secretoras, localizadas na cabeça da abelha, entre os olhos e o cérebro6. Em circunstâncias normais, a trajetória do desenvolvimento e funcional das glândulas espelho que da abelha estão localizados no. Com aproximadamente 5-10 dias de idade, a abelha realiza comportamentos de enfermagem na colmeia. Neste mesmo momento, as glândulas de hipofaringe atingir seu pico e capacidade secretora, produzindo a fração de proteína principal do alimento ninhado ou geleia alimentado para o desenvolvimento de larvas e outros adultos, como a rainha. Neste tamanho de pico as glândulas se assemelhar a um cacho de uvas, onde cada uva é uma estrutura discreta lobo conhecida como o acinus (plural: acinar). Como a abelha operária, idades e assume diferentes tarefas na colmeia, as glândulas de hipofaringe encolhem e assumem diferentes funções, como quebrar açúcares no néctar7,8. As glândulas de hipofaringe, portanto, estão correlacionadas com a idade da abelha e sua tarefa associada a idade.

Tamanho de glândula enfermeira hipofaringe é sensível à quantidade e qualidade de proteína em sua dieta9,10,11. Quando a enfermeira abelhas são bem nutridas, suas glândulas são grandes. Considerando que, as glândulas são pequenas quando a abelha é privada de pólen, particularmente na primeira semana do desenvolvimento adulto. Para determinar o estado nutricional de uma abelha de enfermeira, pesquisadores normalmente medem as glândulas de hipofaringe, ou medindo diretamente a glândula acinus tamanho11,12,13,14 ou proteína15,16 de conteúdo ou medindo-se a proteína11 de conteúdo ou peso fresco17 de cabeça inteira onde eles estão localizados. Cada método tem suas próprias vantagens e desvantagens. Nós preferimos a resolução Obtida de medição ácinos da glândula, embora esse método pode ser um desafio de duas maneiras principais. O primeiro desafio é identificar e dissecar a glândula corretamente. O segundo é a obtenção de uma medida exata de cada acinus. Sob um microscópio de luz dissecação, as glândulas aparecem transparente ou leitoso branco e as fronteiras dos ácinos podem ser difícil de definir. Ter ferramentas para definir melhor a borda da acinar e aumentar a probabilidade de obter medições precisas da glândula é benéfica a ninguém estudar nutrição de abelha de mel.

Aqui, nós mostramos pesquisadores interessados como dissecar, mancha, imagem e medir a hipofaringe glândulas para que as medidas exatas de tamanho acinus podem ser alcançadas. O método que descrevemos oferece pesquisadores um método fácil, preciso e replicável para alcançar várias medições de glândula em um período relativamente curto de tempo, uma vez que o experimentador é suficientemente praticado. Um com confiança poderia medir as glândulas de quase 10 pessoas em mais de uma hora. Oferecemos detalhes sobre o método e materiais necessários para obter estas medidas. Os aspectos mais importantes dos métodos indicados abaixo são a dissecação adequada e coloração das glândulas. Apesar de capturar as imagens ampliadas e medir os ácinos com software comercial, os métodos que apresentamos podem ser facilmente adaptados para outras plataformas,18.

Protocolo

1. dissecando e manchando as glândulas de hipofaringe de trabalhadores de enfermeira

  1. Fazer uma placa de dissecação de cera derretendo cera de definição legal em uma pequena (60 mm x 15 mm) ou um copo grande (100 x 15 mm) placa de Petri. Esfrie a cera completamente antes de usar a placa para as dissecções.
  2. Para cada abelha para serem processados, prepare-se 20 µ l de uma 01:20 Giemsa solução de trabalho (01:20 v/v de preparado o corante de Giemsa em tampão fosfato salino (PBS: 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 10 mM Na2HPO4, 1.8 mM KH2PO4)).
    Cuidado: Giemsa mancha contém metanol e é inflamável. É tóxico se ingerido, inalado, ou se ele entra em contato com a pele. -Deve ser descartada de acordo com os requisitos da instituição local.
    Nota: Sempre faça uma solução fresca de trabalho apenas para o lote atual de amostras porque mancha Giemsa degrada rapidamente uma vez que está diluído. Descarte a mancha diluída se desenvolve de um precipitado.
  3. Pipetar 20 µ l Giemsa uma mancha nos poços de corrediças do microscópio e salina de 50 a 100 µ l a lâmina adjacente ao poço.
  4. Retire a cabeça de uma abelha, usando a tesoura de micro-Primavera de 10mm e incorporar o lado da frente da cabeça a placa de dissecação de cera usando fórceps e uma caneta de escultura de cera. Segure a cabeça na placa de cera para estabilidade adicional, inserindo os pinos nos olhos e um na boca.
  5. Usando uma lâmina de barbear afiada quebrável fixa no torno de bancada pino, fazer uma pequena (~ 2-3 mm) incisão entre os olhos e mandíbulas de cada lado da placa de cara. Delicadamente, executar a tesoura micro sob a placa de cara e cortou o nervo da antena que se estende entre a antena e o cérebro.
  6. Usando a pinça fina, pegar a placa de cara pela boca, flip-la e fixá-lo à placa de cera, com pinça de ponta fina e um pin. Se necessário, remova a placa de cara completamente.
  7. Pipetar 20 µ l PBS para o corte abre a seção da cabeça.
    Nota: As glândulas podem flutuar acima neste ponto ou um deve procurá-los. As glândulas se parece com um colar de pérolas e estão localizadas na parte superior do cérebro se intacto.
  8. Use pinça ponto super fino para remover suavemente uma das glândulas de hipofaringe (glândula pode quebrar, obrigá-la a ser removidas em segmentos) e transferir imediatamente a glândula para a mancha de Giemsa do slide de microscopia.
  9. Permitir que a glândula a incubar na solução de Giemsa por 5 min e então usar fórceps para transferir a glândula para o pool de soro no mesmo slide. Se necessário, corte a glândula em pequenos pedaços com uma tesoura de micro.
    Nota: Isso ajuda a tornar as glândulas mentir em um avião mais plano, tornando assim mais fácil de obter imagens claras dos ácinos da glândula.

2. medir a hipofaringe glândula acinar

  1. Ligue o microscópio e abrir o programa de medição. Ligue a fonte de luz para o microscópio, se ainda não estiver na. Defina a ampliação do microscópio para 10 X.
  2. Encontrar as glândulas e focar a imagem ampliada na ocular, sem o computador. Aumentar a ampliação de 60 – 80 X e focar a imagem na ocular.
  3. Na guia 'adquirir', ajustar e focar as glândulas a imagem ao vivo no computador.
  4. Digite a descrição do nome/amostra de imagem na caixa 'Nome de imagem' e clique em 'Adquirir imagem' para criar a imagem de glândulas para medições ainda mais.
  5. Selecione a guia 'Análise' a 'área ferramenta Selecionar' (destacada na Figura suplementar 1A) e desmarque 'valor' sob 'Exibir rótulos', que também irá desmarcar 'unidade'. Como todas as outras configurações padrão (Supplemental figura 1A).
    Nota: O software calibra automaticamente as medições de área, de acordo com o nível de ampliação para que a área Obtida de uma baixa ampliação é o mesmo que obtidos de uma maior ampliação.
  6. Medir cada acinus continuamente clicando ou continuamente mantendo pressionado o botão esquerdo do mouse enquanto o perímetro acinus de rastreamento tão cuidadosamente quanto possível. Medir pelo menos 10 acinar por abelha.
    Nota: Mais podem ser necessárias dependendo do experimento (veja a discussão). Pode exigir várias imagens/seções da glândula encontrar suficiente acinar clara e corretamente orientado para medição.
  7. Uma vez que todos os ácinos de uma única imagem foram medidos, selecione 'Criar relatório'. Certifique-se que as opções são selecionadas, como mostrado na Figura suplementar 1B e clique em 'Exportar'.
  8. Salve o relatório como desejado. Se um arquivo já foi criado para o conjunto de amostras e medições adicionais estão sendo adicionadas, certifique-se de que o arquivo de relatório não está aberto para que os novos dados são adicionados ao arquivo existente.
  9. Quando terminar, desligue a câmera do microscópio e a fonte de luz. Limpar o líquido e glândulas fora as lâminas de microscopia e eliminar de forma segura de qualquer material usado. Lave os slides com água destilada e limpe com álcool etílico (70% v/v em água) para reusar.

Resultados

Glândulas de hipofaringe foram dissecadas da enfermeira trabalhadores e visualizadas com e sem mancha na ampliação de 60 – 80 X (Figura 1). No tecido imaculado, é difícil encontrar o contraste adequado totalmente foco e definir as bordas dos ácinos. No tecido manchado, as bordas dos ácinos são nítidas devido o melhor contraste entre o tecido manchado e o fundo branco.

Discussão

Tamanho de glândula de hipofaringe é sensível à quantidade de proteína e pólen na dieta e um marcador crítico de nutrição em abelhas adultas jovens. Aqui, vamos demonstrar uma maneira barata e reprodutível para dissecar e medir este tecido. Estes tecidos podem ser difíceis de dissecar, mas com a prática, um pode obter cada vez mais limpas dissecações com o tecido relativamente intacta. A principal vantagem do método apresentado aqui é que o tecido é manchado, o que permite que o pesquisador Visualizar cl...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado por fundos internos a partir do USDA-ARS (número do projeto: 2022-21000-017-00-D). O USDA/ARS é um empregador que oferece oportunidades iguais e provedor.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Cool setting waxGrobet USA21.450
Glass petri dish, smallVWR89000-310
Glass petri dish, largeVWR89000-314
Super Max Wax PenEurotoolPEN-520.00
Breakable razor bladesElectron Microscopy Sciences72004
pin viseBioQuip4845
2A-SA flat/rounded tip forcepsRubis/BioQuip4522
Fine point forcepsRubis/BioQuip4523
5A-SA super fine point forcepsRubis/BioQuip4525
10 mm micro spring scissorsBioQuip4715
3 mm micro spring Vannas scissorsRobozRS-5610
Glass Depression Slides, Single CavityGSC International4-13057-DZ-12
PBS tabletsVWR97062-730
Giemsa stain, modified solutionSigma Aldrich32884
Insect pinsENTO SPHINX S.R.O.02.02
Leica Applications Suite measurement softwareLeica Microsystemsany measurement software, including free software, can be used

Referências

  1. Kulhanek, K., et al. A national survey of managed honey bee 2015-2016 annual colony losses in the USA. Journal of Apicultural Research. 56 (4), 328-340 (2017).
  2. Jacques, A., et al. A pan-European epidemiological study reveals honey bee colony survival depends on beekeeper education and disease control. PLoS One. 12 (3), e0172591 (2017).
  3. Zee, R. v. d., et al. Results of international standardised beekeeper surveys of colony losses for winter 2012-2013: analysis of winter loss rates and mixed effects modelling of risk factors for winter loss. Journal of Apicultural Research. 53 (1), 19-34 (2014).
  4. Decourtye, A., Mader, E., Desneux, N. Landscape enhancement of floral resources for honey bees in agro-ecosystems. Apidologie. 41 (3), 264-277 (2010).
  5. Vaudo, A. D., Tooker, J. F., Grozinger, C. M., Patch, H. M. Bee nutrition and floral resource restoration. Current Opinion in Insect Science. 10, 133-141 (2015).
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  8. Johnson, B. R. Division of labor in honeybees: form, function, and proximate mechanisms. Behavioral Ecology and Sociobiology. 64 (3), 305-316 (2010).
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  19. Jack, C. J., Uppala, S. S., Lucas, H. M., Sagili, R. R. Effects of pollen dilution on infection of Nosema ceranae in honey bees. Journal of Insect Physiology. 87, 12-19 (2016).
  20. Crailsheim, K. The protein balance of the honey bee worker. Apidologie. 21, 417-429 (1990).

Reimpressões e Permissões

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