Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Гортаноглотки железы Ацинус размер является надежной мерой медсестра мед пчелы питания. Здесь мы предоставляем подробный протокол для рассечения, окрашивание, изображений и измерение медсестра пчел гортаноглотки железы Ацинусы.

Аннотация

Медсестра гортаноглотки железы производят белковые фракции работника и маточное молочко, которое подается для развивающихся личинок и королев. Эти парные железы, которые находятся в голове пчелы очень чувствительны к количество и качество пыльцы и пыльцы заменяет, что медсестра пчела потребляет. Желез уменьшаются, когда медсестры кормят недостаточно диеты и велики, когда они кормили полной диеты. Потому, что медсестра гортаноглотки железы размер является надежным показателем медсестра питания, важно, что тех, кто обучается мед пчелы питания знают как измерить эти железы. Здесь мы предоставляем подробные методы для рассечения, окрашивание, изображений и измерение медсестра пчел гортаноглотки желез. Мы представляем сравнения окрашенных и неокрашенных ткани и данных, которые использовались для изучения влияния пыльцы на размер железы. Этот метод был использован для тестирования как диета влияет на размер гортаноглотки железы, но имеет дальнейшего использования для понимания роли этих желез в улье здоровья.

Введение

Медоносных пчел имеют важное значение для сельского хозяйства, потому что они опыляют различных культур, которые потребляются людьми и животными. Большое внимание было уделено сокращение популяций пчел мед как колонии потери парить около 30-40% каждый год в Соединенных Штатах1 и 10 – 15%, в Европе2,3. Несколько факторов, включая сокращение доступа к высокому качеству корма, вероятно, действовать сообща в целях негативно сказаться на здоровье пчел мед. Монокультуры, засуха, неустойчивых пчеловодства практики и других факторов уменьшение разнообразия и количества природных пыльца для колоний4,5. Потому, что пчелы получают почти все их пищевых белков и липидов из пыльцы, сокращение доступа к пыльцы может серьезно ограничить здоровья личности и колонии.

Гортаноглотки железы являются секреторной структур, расположенных в голове пчелы между глаз и мозга6. При нормальных обстоятельствах траекторию развития и функциональных желез зеркало, что пчелы, когда они находятся в. В возрасте примерно дней 5 – 10 пчела выполняет кормящих поведения в улье. В это же время гортаноглотки железы достигают их пикового размера и секреторную потенциала, производить крупные белковые фракции пищу расплода или желе, кормили развивающихся личинок и других взрослых, такие, как королева. На этот пик размер желез напоминают гроздь винограда, где каждый виноград является дискретной доли структуры, известной как Ацинус (во множественном числе: ацинусов). Как пчела рабочих возрастов и принимает различные задачи в улье, гортаноглотки желез сокращаться и брать на себя различные функции, как разрушение сахара в нектар7,,8. Гортаноглотки желез таким образом коррелирует с возрастом пчелы и их возраста связанные задачи.

Медсестра гортаноглотки железы размер чувствителен к количеству и качеству белка в их диета9,10,11. Когда медсестра пчел хорошо питаться, их желез являются большими. В то время как желез являются небольшими когда пчела лишен пыльцы, особенно в первую неделю взрослых развития. Чтобы определить состояние питания медсестра пчел, исследователи обычно измеряют гортаноглотки желез, либо непосредственно измерения железы Ацинус размер11,12,,1314 или белка содержание15,16 или путем измерения протеин содержание11 или свежие вес17 всю голову, где они расположены. Каждый метод имеет свои плюсы и минусы. Мы предпочитаем резолюции, полученные от измерения железы ацинусов, хотя этот метод может быть сложным в два основных пути. Первая задача – правильно идентифицировать и анализировать железы. Второй является получение точное измерение каждого Ацинус. Под микроскопом рассечения света железы появляются четкие или молочно белый и границы Ацинусы может быть трудно определить. Имея инструменты лучше определить края ацинусов и увеличить вероятность получения точных железы измерения выгодно кому изучать питание мед пчелы.

Здесь мы показать заинтересованным исследователям как вскрыть, пятно, изображения и измерить гортаноглотки желез, так что точных измерений Ацинус размера может быть достигнуто. Метод, который мы описываем предлагает исследователям легко, точные и воспроизводимые метод для достижения нескольких измерений железы в относительно короткий период времени после того, как экспериментатор практикуется достаточно. Один уверенно можно измерить желез почти 10 лиц в чуть более часа. Мы предлагаем детали на как метода, так и материалы, необходимые для получения этих измерений. Самые важные аспекты методов, описанных ниже, надлежащего вскрытия и пятнать желез. Хотя мы захватить увеличенного изображения и измерить Ацинусы с коммерческим программным обеспечением, методы, которые мы представляем может быть легко адаптирована для других платформ18.

протокол

1. разбор и пятнать гортаноглотки желез от медсестра рабочих

  1. Сделайте плиты рассечение воск плавления воска прохладно параметр в малых (60 x 15 мм) или больших (100 x 15 мм) стекла Петри. Воск полностью остыть перед использованием пластины для вскрытия.
  2. Для каждой пчелы для обработки, подготовить 20 мкл рабочего раствора Гимзы 1:20 (1:20 v/v подготовленных Гимзе в фосфат амортизированное saline (PBS: 137 мм NaCl, 2,7 мм KCl, 10 мм Na2HPO4, 1.8 мм х2PO4)).
    Предупреждение: Гимзе содержит метанола и является легковоспламеняемым. Он токсичен при проглатывании и вдыхании, или если она приходит в контакт с кожей. Она должна удаляться согласно требованиям местные учреждения.
    Примечание: Всегда сделайте свежий рабочий раствор только для текущего пакета образцов, потому что Гимзе быстро снижается после того, как она растворяется. Если осадок развивается отказаться от разбавленных пятно.
  3. Накапайте 20 мкл Гимзе в скважины Микроскоп слайды и 50 – 100 мкл saline на слайд, прилегающих к колодцу.
  4. Снимите головку с пчелой, используя ножницы микро Весна 10 мм и вставлять голову лицевой стороне вверх воск рассечение пластину с помощью щипцов и воск резьба пера. Придавить голову в пластину воск для дополнительной стабильности, вставив ПИН в глаза и в рот.
  5. Использование резкого бьющихся лезвием бритвы фиксированной в тиски PIN-код, сделать небольшой (~ 2-3 мм) разрез между глазами и мандибулы на каждой стороне лицевой панели. Осторожно запустить микро ножницы под лицевой и вырезать усиков нерв, который проходит между антеннами и мозг.
  6. С помощью тонкой щипцы, захватить лицевой рот, переверните его вверх, и закрепите его на пластину воск с тонкой точке щипцы и ПИН-код. При необходимости полностью удалите пластину лицо.
  7. Накапайте 20 мкл PBS на срезе открыть раздел головы.
    Примечание: Желез может плавать вверх на данный момент, или один должны искать их. Желез выглядят как нитка жемчуга и расположены на верхней части мозга, если нетронутыми.
  8. Используйте супер тонкой точке щипцами осторожно удалить одну из гортаноглотки железы (железы может сломаться, требуя его будут удалены в сегментах) и немедленно передать железы Гимзе на слайде микроскопии.
  9. Разрешить железы для инкубации в раствор Гимза 5 минут, а затем использовать щипцы для передачи в железе в пул физиологического раствора на тот же слайд. При необходимости, сократить железы на более мелкие куски с микро ножницами.
    Примечание: Это помогает сделать железы лежат в плоскости льстить, что облегчает для получения четких изображений Ацинусы железы.

2. Измерение гортаноглотки Ацинусы железы

  1. Включите микроскопом и открыть программу измерений. Включите источник света для микроскопа, если это уже не на. Набор микроскоп увеличением до 10 X.
  2. Найдите желез и сосредоточиться увеличенное изображение в окуляр, без компьютера. Увеличить масштаб до 60-80 X и резкость изображения в окуляр.
  3. На вкладке «получить» корректировать и сосредоточиться желез на живой изображения на компьютере.
  4. Введите описание имя/образец изображения в поле «Имя образа» и нажмите «Приобрести изображение» принимать изображение желез для дальнейших измерений.
  5. Выберите вкладку «Анализа» выберите «области инструмента (выделены Дополнительные рис. 1A) и снимите флажок «значение» в разделе «Отображать метки», который будет также отменить «блок». Установите все остальные настройки по умолчанию (Дополнительные рис. 1A).
    Примечание: Программное обеспечение автоматически калибрует области измерений согласно уровень увеличения, так, что площадь, полученные из нижней увеличение же, что полученные с большим увеличением.
  6. Измерьте каждый Ацинус, постоянно нажимая или непрерывно удерживая нажатой левую кнопку мыши во время трассировки Ацинус периметру так же тщательно, как можно скорее. Измерения по меньшей мере 10 Ацинусы на пчел.
    Примечание: Более может потребоваться в зависимости от эксперимент (см. обсуждение). Это может потребовать несколько изображений/секций железы найти достаточно четко, правильно ориентированные Ацинусы для измерения.
  7. После того, как были измерены все Ацинусы с одного изображения, выберите «Создать отчет». Убедитесь, что параметры выбраны, как показано в дополнительном Рисунок 1B и нажмите кнопку «Экспорт».
  8. Сохраните отчет как желаемого. Если файл уже был создан для набора образцов и добавляются дополнительные измерения, убедитесь, что файл отчета не открыт, так что новые данные будут добавлены в существующий файл.
  9. Закончив, выключите камеры микроскопа и источник света. Протрите жидкости и желез у микроскопии слайды и безопасно распоряжаться любой используемый материал. Промойте слайды с дистиллированной водой и протрите этанола (70% v/v в воде) для повторного использования.

Результаты

Гортаноглотки железы были расчленены от медсестра рабочих и визуализированы с и без пятен на 60-80 X увеличением (рис. 1). В неокрашенных ткани трудно найти надлежащий контраст полностью сосредоточиться и определить края Ацинусы. В окрашенные ткани края А?...

Обсуждение

Гортаноглотки железы размер чувствителен к количество белков и пыльцы в рационе питания и критических маркер питания в молодых взрослых пчел. Здесь мы демонстрируем недорогой и воспроизводимые способ вскрыть и измерения этой ткани. Эти ткани может быть трудно анализировать, но с прак?...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего сообщать.

Благодарности

Эта работа была поддержана внутренних средств от USDA-ARS (номер проекта: 2022-21000-017-00-D). ARS/USDA является работодатель равных возможностей и поставщика.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Cool setting waxGrobet USA21.450
Glass petri dish, smallVWR89000-310
Glass petri dish, largeVWR89000-314
Super Max Wax PenEurotoolPEN-520.00
Breakable razor bladesElectron Microscopy Sciences72004
pin viseBioQuip4845
2A-SA flat/rounded tip forcepsRubis/BioQuip4522
Fine point forcepsRubis/BioQuip4523
5A-SA super fine point forcepsRubis/BioQuip4525
10 mm micro spring scissorsBioQuip4715
3 mm micro spring Vannas scissorsRobozRS-5610
Glass Depression Slides, Single CavityGSC International4-13057-DZ-12
PBS tabletsVWR97062-730
Giemsa stain, modified solutionSigma Aldrich32884
Insect pinsENTO SPHINX S.R.O.02.02
Leica Applications Suite measurement softwareLeica Microsystemsany measurement software, including free software, can be used

Ссылки

  1. Kulhanek, K., et al. A national survey of managed honey bee 2015-2016 annual colony losses in the USA. Journal of Apicultural Research. 56 (4), 328-340 (2017).
  2. Jacques, A., et al. A pan-European epidemiological study reveals honey bee colony survival depends on beekeeper education and disease control. PLoS One. 12 (3), e0172591 (2017).
  3. Zee, R. v. d., et al. Results of international standardised beekeeper surveys of colony losses for winter 2012-2013: analysis of winter loss rates and mixed effects modelling of risk factors for winter loss. Journal of Apicultural Research. 53 (1), 19-34 (2014).
  4. Decourtye, A., Mader, E., Desneux, N. Landscape enhancement of floral resources for honey bees in agro-ecosystems. Apidologie. 41 (3), 264-277 (2010).
  5. Vaudo, A. D., Tooker, J. F., Grozinger, C. M., Patch, H. M. Bee nutrition and floral resource restoration. Current Opinion in Insect Science. 10, 133-141 (2015).
  6. Snodgrass, R. E. . Anatomy of the Honey Bee. , (1984).
  7. Winston, M. L. . The Biology of the Honey Bee. , (1987).
  8. Johnson, B. R. Division of labor in honeybees: form, function, and proximate mechanisms. Behavioral Ecology and Sociobiology. 64 (3), 305-316 (2010).
  9. Crailsheim, K., Stolberg, E. Influence of diet, age and colony condition upon intestinal proteolytic activity and size of the hypopharyngeal glands in the honeybee (Apis mellifera L). Journal of Insect Physiology. 35 (8), 595-602 (1989).
  10. Pernal, S. F., Currie, R. W. Pollen quality of fresh and 1-year-old single pollen diets for worker honey bees (Apis mellifera L). Apidologie. 31 (3), 387-409 (2000).
  11. DeGrandi-Hoffman, G., Chen, Y., Huang, E., Huang, M. H. The effect of diet on protein concentration, hypopharyngeal gland development and virus load in worker honey bees (Apis mellifera L). Journal of Insect Physiology. 56 (9), 1184-1191 (2010).
  12. Corby-Harris, V., Snyder, L., Meador, C., Ayotte, T. Honey bee (Apis mellifera) nurses do not consume pollens based on their nutritional quality. PLoS One. 13 (1), e0191050 (2018).
  13. Corby-Harris, V., et al. Transcriptional, translational, and physiological signatures of undernourished honey bees (Apis mellifera) suggest a role for hormonal factors in hypopharyngeal gland degradation. Journal of Insect Physiology. 85, 65-75 (2016).
  14. Corby-Harris, V., Jones, B. M., Walton, A., Schwan, M. R., Anderson, K. E. Transcriptional markers of sub-optimal nutrition in developing Apis mellifera nurse workers. BMC Genomics. 15, 134 (2014).
  15. Sagili, R. R., Pankiw, T., Zhu-Salzman, K. Effects of soybean trypsin inhibitor on hypopharyngeal gland protein content, total midgut protease activity and survival of the honey bee (Apis mellifera L). Journal of Insect Physiology. 51 (9), 953-957 (2005).
  16. Sagili, R. R., Pankiw, T. Effects of protein-constrained brood food on honey bee (Apis mellifera L.) pollen foraging and colony growth. Behavioral Ecology and Sociobiology. 61 (9), 1471-1478 (2007).
  17. Hrassnigg, N., Crailsheim, K. Adaptation of hypopharyngeal gland development to the brood status of honeybee (Apis mellifera L.) colonies. Journal of Insect Physiology. 44 (10), 929-939 (1998).
  18. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nature Methods. 9, 671 (2012).
  19. Jack, C. J., Uppala, S. S., Lucas, H. M., Sagili, R. R. Effects of pollen dilution on infection of Nosema ceranae in honey bees. Journal of Insect Physiology. 87, 12-19 (2016).
  20. Crailsheim, K. The protein balance of the honey bee worker. Apidologie. 21, 417-429 (1990).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

139Apis mellifera

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены