Avaliar efeitos Neuroprotective do Glycyrrhizae Radix et Rhizoma extrair usando um modelo de Mouse de oclusão transitória de artéria Cerebral média

Resumo

Neste estudo, nós modificamos um método experimental existente para obter resultados mais reprodutíveis, estabelecendo um modelo do rato (MCAO) de oclusão de artéria cerebral média. A administração oral de Glycyrrhizae Radix et extrato de metanol de rizoma (GR) (GRex), após indução de acidente vascular cerebral, diminuiu significativamente o volume de infarto total em relação ao grupo controle não tratado.

Resumo

Isquemia seguida de reperfusão do fluxo sanguíneo cerebral após um acidente vascular cerebral leva à morte das células nervosas e perda de tecido cerebral. O modelo animal mais comumente usado para estudar o curso é o modelo de oclusão (MCAO) da artéria cerebral média. Estudos anteriores relataram tamanhos diferentes de infarto mesmo quando a mesma espécie de animal experimental foi utilizada em condições similares MCAO. Portanto, nós desenvolvemos um método experimental melhorado para resolver esta discrepância. Os ratos foram submetidos a MCAO usando um filamento como o material de oclusão para imitar as condições do acidente vascular cerebral humano e espessura do filamento foi otimizada para estabelecer mais volume de infarto pode ser reproduzido. Camundongos tratados com um metanol extrair do Glycyrrhizae Radix et rizoma (GRex) após a indução de acidente vascular cerebral mostrou um volume de infarto total significativamente diminuída e aumento do número de sobreviventes de células em relação ao grupo controle não tratado. Este modificado com êxito o protocolo experimental e reproducibly demonstrado o efeito benéfico de GRex sobre acidente vascular cerebral isquêmico.

Introdução

Danos cerebrais causados por isquemia e reperfusão do fluxo sanguíneo cerebral leva à morte das células nervosas e perda de tecido cerebral. Este tipo de dano cerebral continua a aumentar com o aumento da prevalência de doenças cerebrovasculares, devido à propagação de doenças metabólicas como obesidade, hipertensão arterial e diabetes mellitus^1,2. O número absoluto de pacientes idosos com acidente vascular cerebral tem aumentado drasticamente em todo o mundo, e o custo da assistência médica para estes pacientes, que muitas vezes são deixados com deficiência a longo prazo, é um grande fardo societal. Portanto, a deficiência secundária deve ser atenuada tanto quanto possível para reduzir o encargo económico^1,2.

O modelo de roedor mais comumente usado de infarto cerebral é o modelo de oclusão (MCAO) de artéria cerebral média (MCA), no qual o MCA é obstruído com um filamento de silicone revestido cirúrgico sutura para bloquear o fluxo sanguíneo, causando acidente vascular cerebral isquêmico^{3, 4}. usando um filamento, como o material de oclusão permite o controle do tempo de oclusão e permanência manipulando-se a duração da inserção do filamento intra-luminal.

Estudos anteriores mostraram que, mesmo quando é usado o mesmo modelo MCAO de roedores, o volume total de infarto cerebral varia entre experimentos, causando baixa reprodutibilidade dos estudos. Para melhorar a reprodutibilidade, nós aperfeiçoamos a espessura do filamento mint utilizado no experimento. Os resultados de um estudo preliminar sobre o período de isquemia cerebral e infarto induzido mostrou que mais de 60 min e um período isquêmico permitido região volumétrica de danificado tecido cerebral para ser observada e quantificada.

Glycyrrhizae Radix et Rhizoma (GR), também conhecida como alcaçuz, consiste nas raízes secas e rizomas de Glycyrrhiza uralensis e g. glabra. Ela tem sido usada na medicina tradicional chinesa e coreana para diversos fins, inclusive como um aditivo alimentar e medicinalmente^5,6,7.

Em um anterior estudo⁸, pré-tratamento com GR extrato de metanol (GRex) mostrou um efeito antiapoptose em ratos MCAO, incluindo significativa prevenção da diminuição na expressão de proteínas de linfoma de célula B 2 (Bcl-2) e Bcl extra-grande (Bcl-xL). Este estudo foi realizado para melhorar a reprodutibilidade do modelo convencional de rato MCAO avaliando sua eficiência em determinar se o tratamento pós-infarto com GRex efetivamente reduziu o volume de infarto em dano cerebral induzida por MCAO.

Protocolo

Todos os procedimentos que envolvam animais foram aprovados pelo Comitê de ética da Universidade Nacional de Pusan (número de aprovação, PNU-2016-1087). Uma visão geral gráfica deste estudo é mostrada na Figura 1.

1. preparação e administração de GRex

Nota: O GR utilizado neste estudo foi comprado de uma empresa farmacêutica comercial.

1. Coloque 200 g de GR em 2.000 mL de metanol e incubar a temperatura ambiente (25 ° C) por 5 dias.
2. Filtrar a mistura usando papel de filtro com 0,26 mm de espessura e tamanho de poros de 5 µm e em seguida, remover o sobrenadante. Adicione 1.000 mL de metanol ao resíduo GR e filtrar novamente.
3. Combinar os dois sobrenadantes, filtrar por papel de filtro, concentrar-se sob vácuo e em seguida congela o resíduo para produzir GRex.
4. Dissolver o GRex em dimetilsulfóxido (DMSO), diluir com soro fisiológico 0,9% e filtrar através de um filtro de seringa de 0,45 µm. Em seguida, ajuste a concentração final de DMSO a < 5%.
5. Administre GRex (300 mg/kg de peso corporal) 1 h após a reperfusão de MCAO via oral gavage. Administre DMSO diluída em soro fisiológico (10 mL/kg de peso corporal) só para o grupo normal e grupos de controle, respectivamente.
   Nota: A concentração de GRex usado neste experimento foi determinada de acordo com a concentração que foi ativa através de nossa anterior estudo⁸.

2. Mouse modelo de MCAO

1. Camundongos C57BL/6 machos de uso com idades entre 6 semanas e pesando 22-25 g. fornecer a todos os animais com acesso gratuito ao chow padrão e água e casa-los em um ambiente com temperatura controlada (22 ± 1 ° C) e um ciclo claro/escuro de 12 h.
   1. Divida os ratos em grupos de seis ratos cada, que devem consistir de GRex grupos de tratamento, controle e operação normal.
   2. Realizar a cirurgia MCAO (modificação do método de Koizumi et al ⁹) no controle e tratamento de GRex grupos usando um estereoscópio.
2. Induzi a anestesia por inalação em ratos usando 2% de isoflurano em 70% N₂O e 30% O₂. Anestesia é considerada suficiente quando o mouse se torna não responde a estímulos mecânicos aplicados a sua cauda. Manter a temperatura do corpo dos ratos a 36,5 ± 0,5 ° C, com um corpo de temperatura-terra arrendada cobertor conectado a um termômetro.
3. Remover todos os pelos no peito e pescoços dos ratos de corte seguido pelo uso de creme depilatório, desinfectar o local cirúrgico da pele com esfoliante de betadine, alternando com álcool por duas vezes e então fazem uma incisão de aproximadamente 2 cm de comprimento com cirúrgica lâmina no centro do pescoço. Cuidadosamente, isole a artéria carótida comum esquerda (LCCA), artéria carótida externa e o ramo da artéria carótida interna de tecidos conectivos circundantes.
4. Ligar a artéria carótida externa e artéria carótida comum com uma sutura cirúrgica (sutura de seda 4-0, half hitch nó) para bloquear temporariamente o fluxo sanguíneo na artéria carótida interna durante a operação.
5. Inserir uma sutura de silicone revestido de nylon (monofilamento 8-0, 11 mm de comprimento) através da artéria carótida interna para a origem do MCA a esquerda. Ajustar a espessura da parte do silicone revestido do filamento de uma gama de 0,10-0.12 mm.
6. Medir a diminuição do fluxo sanguíneo cerebral relativo (rCBF) no MCA usando um medidor de fluxo Doppler laser. MCAO será confirmada quando o rCBF é mantida no < 20% dos valores de condição de descanso durante todo o período de isquemia.
7. Corrigir o filamento inserido para o vaso sanguíneo para 2 h, enquanto a artéria cerebral é obstruída e em seguida, Retire cuidadosamente o filamento para restaurar o fluxo de sangue para 22 h de reperfusão. Sutura da pele por costura em 5 lugares (sutura de seda 3-0, dois engates meio nó) e permitir que cada mouse para despertar da anestesia.
8. No grupo normal, realizar uma operação de Souza, seguindo o mesmo procedimento acima (até 2.4), com a seguinte exceção. Ligar a artéria carótida comum e suturar a incisão no músculo e pele.

3. a medição do Volume de tecido cerebral danificado

1. Após eutanásia dos ratos para medição de danos cerebrais com inalação de CO₂ , impostos especiais de consumo o mouse cérebros 24 h após o início da MCAO usando uma tesoura cirúrgica íris e pinça angular.
   1. Depois de retirar a cabeça com uma tesoura, fazer uma incisão na pele na linha média da cabeça virar a pele do crânio.
   2. Quebrar os ossos parietais com pinça angular, descascando dura matéria ao mesmo tempo e então isolar o cérebro cuidadosamente do crânio.
2. Corte o tecido excisado em seções (1 mm de espessura) usando uma matriz de cérebro de rato e em seguida mancha as seções para 17 min em uma solução de cloreto de 2,3,5-triphenyltetrazolium de 2% (TTC).
3. Corrigir as seções em formol a 10% pelo menos 2h e então fotografá-los usando uma câmera digital. TTC será observado para manchar o tecido viável vermelha enquanto que as áreas de necrose será brancas.
4. Analisar e quantificar a área de infarto cerebral de cada seção usando o ImageJ.

4. hematoxilina e eosina (H & E) e cresilo coloração violeta de cortes histológicos

1. Eutanásia por inalação de CO₂ em ratos para estudo histológico e perfundi-los transcardially com 10 mL de tampão fosfato salino (PBS), seguido por 10 mL de paraformaldeído 4% (PFA). Isolar o cérebro usando o mesmo procedimento acima (3.1) e mergulhe o cérebro em 10 mL de 30% de sacarose durante a noite.
2. Incorporar o tecido cerebral no ideal da temperatura de corte (OCT) composto e cortá-lo em seções de 15 µm de espessura usando um criostato. Monte as seções em lâminas de vidro, seguidas de coloração com hematoxilina e eosina (H & E) ou cresilo violetas.
3. Imergir as lâminas de vidro em etanol a 80% por 1 min, seguido de coloração na solução de hematoxilina por 5 min.
   1. Mergulhe os slides em álcool ácido 1% duas vezes, mergulhe na solução saturada de carbonato de lítio por 30 s, lave com água da torneira por 30 s e em seguida corante de contraste em solução de eosina por 30 s.
   2. Lavar as lâminas em água da torneira, mergulhe em 95% e etanol absoluto consecutivamente.
   3. Secar ao ar livre os slides, eliminá-los em xilol pelo menos 10 min e montar as lamelas usando o meio de montagem.
4. Coloque as lâminas de vidro em um slide mais quente pelo menos 1 h, seguido de imersão em etanol a 50% diluída com clorofórmio durante a noite.
   1. Mancha os slides com violeta de cresilo 0,1% por 10 min em forno seco de 40 ° C.
   2. Mergulhe em etanol a 95% por 30 min e, em seguida, desidrata-se em etanol absoluto por 2 vezes.
   3. Clear 2 vezes em xilol por 5 min e, em seguida, montar com meio de montagem após a secagem do ar.
5. Usando um microscópio, observe as alterações histológicas que ocorreram após a lesão cerebral induzida por MCAO.

5. análise estatística

1. Expressar os resultados experimentais como meios ± desvio-padrão e determinar a significância estatística entre os grupos usando um só de ida de análise de variância (ANOVA) seguido de análise post hoc de Tukey usando um software de análise de dados.
2. Definir a significância estatística em um p-valor < 0,05.

Resultados

O grupo normal de operação, sem infarto cerebral observa-se Considerando que no grupo controle, observa-se uma gama relativamente ampla de áreas danificadas. Nos ratos, 300 mg/kg administrado GRex no grupo modelo MCAO, uma redução estatisticamente significativa na área danificada é observada (Figura 2).

As alterações histológicas são investigadas pela coloração de seções de isquemia c...

Discussão

Com o aumento da prevalência de doenças metabólicas como hipertensão crônica, diabetes e hiperlipidemia, quais são os principais fatores de risco para AVC, tratamento e prevenção de acidente vascular cerebral tornaram-se uma importante área de pesquisa médica^{12, 13}. déficits na linguagem e movimento após um acidente vascular cerebral estão fortemente correlacionados com o grau de dano ao tecido¹⁴ no cérebro e resultar em uma ...

Materiais

Name	Company	Catalog Number	Comments
Glycyrrhizae Radix et Rhizoma	Gwangmyoung Pharmaceuticals Co., Korea		Glycyrrhizae Radix et Rhizoma
Qualitative filter paper	Advantec	Filter paper No. 2	Qualitative filter paper
Dimethyl sulfoxide (DMSO)	Sigma	D8418-250ML	Dimethyl sulfoxide (DMSO)
Syringe filter (0.45 µm)	Sigma	CLS431220	Syringe filter (0.45 µm)
Stereo Microscope	Leica	M50	Stereo Microscope
Stereo Microscope	Nikon	SMZ745	Stereo Microscope
Laser Doppler	Moor Instrument	moorVMS-LDF	Laser Doppler
Anesthesia Tabletop Bracket with N2O&O2 Flowmeter System	Harvard Appratus	34-1352	Anesthesia Tabletop Bracket with N2O&O2 Flowmeter System
Homeothermic Monitoring System	Harvard Appratus	55-7020	Homeothermic Monitoring System
Digital Camera	Canon	Eos-M2	Digital Camera
Cryostat	Leica	CM3050S	Cryostat
Microscope	Carl Zeiss	Zeiss Axio	Microscope
Data Analysis	Systat Software Inc.	SigmaPlot version 12	Data Analysis
Data Analysis	NIH Image	ImageJ	Data Analysis
Mouse diet	Doo Yeol Biotech	Standard rodent chow	Mouse diet
Isoflurane	JOONGWAE	A02104781	Isoflurane
Isoflurane	TROIKAA	ISOTROY 100	Isoflurane
Silk suture (4-0 Black silk)	AILEE	SK47510	Silk suture (4-0 Black silk)
Silk suture (3-0 White silk)	Baekjae	57	Silk suture (3-0 White silk)
Nylon suture (8-0 monofilament)	AILEE	NB825	Nylon suture (8-0 monofilament)
2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC)	Sigma	T8877-25G	2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC)
Formalin (Formaldehyde solution)	JUNSEI	69360-1263 20KG	Formalin (Formaldehyde solution)
Hematoxylin (Harris Hematoxylin)	YD Diagnostics	EasyStain	Hematoxylin (Harris Hematoxylin)
Eosin (1% Eosin Y Solution)	MUTO PURE CHEMICALS	3200-2	Eosin (1% Eosin Y Solution)
Cresyl violet (acetate)	Sigma	C5042-10G	Cresyl violet (acetate)
Paraformaldehyde	Sigma-Aldrich	P6148-1KG	Paraformaldehyde
Sucrose	JUNSEI	31365-0350 1KG	Sucrose
Optimum cutting temperature (OCT) compound	Scigen	4583	Optimum cutting temperature (OCT) compound
Disecting Knife	Fine Science Tools	10055-12	Disecting Knife
#4 Forcep	Fine Science Tools	11241-30	#4 Forcep
#5 Forcep	Fine Science Tools	11254-20	#5 Forcep
#6 Forcep	Fine Science Tools	11260-20	#6 Forcep
#7 Fine Forcep	Fine Science Tools	11274-20	#7 Fine Forcep
Surgical Scissors	Fine Science Tools	14001-12	Surgical Scissors
Extra Fine Bonn Scissors	Fine Science Tools	14084-08	Extra Fine Bonn Scissors
Moria Pascheff-Wolff Spring Scissors	Fine Science Tools	15371-92	Moria Pascheff-Wolff Spring Scissors
Vessel Dilating Forcep	Fine Science Tools	18153-11	Vessel Dilating Forcep