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Resumo

O protocolo ilustra o uso do exame histopatológico e imuno-histoquímica para perfil o macrófago de beta de receptor de folato e sua relação com a célula total imune infiltrar-se na biópsia da artéria temporal na arterite de células gigantes.

Resumo

Arterite de células gigantes (GCA) é uma doença crónica, imune-mediada das artérias de tamanhos médio para grande afeta adultos mais velhos. GCA manifestos com artrite e oclusivos sintomas de dores de cabeça, derrame ou perda de visão. Macrófagos e linfócitos T-helper infiltrar a parede vascular e produzem uma resposta pro-inflamatórios que levam a lesão vascular e isquemia. Até à data, não há nenhum biomarcador de GCA que pode monitorar a resposta terapêutica guia e atividade de doença.

Beta de receptor de folato (FRB) é uma proteína de glicosilfostidilinosiol que está ancorada na membrana celular e normalmente expresso na linhagem mielomonocítica e na maioria das células de leucemia mieloide, bem como no tumor e macrófagos sinoviais reumatoides, onde sua expressão se correlaciona com a severidade da doença. A capacidade de FRB vincular compostos de ácido fólico, ácido fólico-conjugados e drogas antifolate tornou um alvo druggable na pesquisa de doenças inflamatórias e câncer. Este relatório descreve os métodos de histopatológico e imuno-histoquímicos utilizados para avaliar a expressão e a distribuição de FRB em relação GCAimmunopathology.

Biópsias de artéria temporal fixada em formol e parafina do GCA e controles normais foram coradas com hematoxilina e eosina, para rever a histologia do tecido e identificar características patognomônicas. Imuno-histoquímica foi usado para detectar a expressão FRB, CD68 e CD3. Uma análise microscópica foi realizada para quantificar o número de células coradas positivamente em 10 seções selecionadas do elevado-poder-campo e seus respectivos locais na parede arterial.

Inflamação Lymphohistiocytic (LH) acompanhado por hiperplasia da íntima e lâmina elástica interrompida foi vista em GCA com nenhum encontrado nos controles. O infiltrado de LH foi composto de aproximadamente 60% macrófagos linfócitos e 40%. FRB expressão era restrito aos macrófagos, composto por 31% da população de macrófagos CD68 + total e localizado para a mídia e adventícia. Não FRB foi visto em controles.

Este protocolo demonstrou um padrão distinto de numérico e espacial do macrófago FRB em relação o microambiente imune vascular em GCA.

Introdução

Arterite de células gigantes (GCA) é uma doença inflamatória das artérias de médio a grande, visando a aorta e seus ramos e afetando adultos mais velhos. Apresenta-se com leve a graves complicações isquêmicas, tais como dores de cabeça, dor no maxilar, perda de visão, acidente vascular cerebral e tecido gangrena. O diagnóstico é confirmado pela altos marcadores inflamatórios como taxa de sedimentação de eritrócitos (ESR) e um padrão distinto de histopatológico na artéria temporal biópsia (TAB)1. GCA é a vasculite mais comum de adulta e a acessibilidade da artéria temporal obtida para o diagnóstico apresenta uma vantagem sobre outros vasculopathies, permitindo que se estude a sua patogênese mais prontamente. Os achados típicos na guia incluem um infiltrado de histiócitos/macrófagos e linfócitos T, encontrados em todas as camadas vasculares da túnica íntima, mídia e adventícia com simultânea destruição da lâmina elástica que normalmente separa estas compartimentos2. A evidência atual demonstra que o GCA envolve um antígeno desconhecido que ativa as células dendríticas no adventitia vascular, seguido pelo recrutamento de auxiliar células T (Th), especificamente Th1 e Th17 subtipos que secretam Interleucina-17 e interferon-gama (IFG) respectivamente. IFG então recrutas e ativa macrófagos a produzir citocinas e proteases. Estes incluem citocinas pró-inflamatórias; incluindo a IL-12, que reciprocamente, ativa as células Th1, proporcionando assim uma retroalimentação positiva; fator de necrose tumoral e interleucina-6, que causam artrite e febres e metaloproteases que danificam a lâmina elástica. Glicocorticoides (GC), que constituem a padrão terapêutica crónica, parcialmente controlam as vias de citocina, atenuando o Th17/IL-17, mas não o braço de Th1/IFG da resposta imune3,4. Infelizmente, a descontinuação do GC resulta em recaída da doença. Como uma modalidade alternativa, metotrexato tem foi realocado para o tratamento de GCA, mas os pontos de extremidade clínicos desejados não foram consistentemente alcançados, embora mais sensíveis biomarcadores não tenham sido utilizados para terapêutica monitoramento5,6 . Em 2017, o bloqueador de interleucina 6, tocilizumab, foi aprovado para o tratamento de GCA como demonstrou efetivamente o controle de doença e esteroide poupadores efeitos7,8.

Até à data, não há nenhuma boas biomarcadores para GCA. Como resultado, é difícil monitorar a atividade da doença e titula-se doses de drogas disponíveis para evitar efeitos adversos e reduzir a carga de custos para a sociedade. Assim, é imperativo para procurar um biomarcador de candidato que correlaciona-se com atividade de doença, fornecem introspecções novela na patogênese e ajuda nas decisões terapêuticas.

A desregulação da ativação de macrófagos é um fator crítico na patogênese do GCA. Assim, um meio eficaz de tratar a GCA pode ser a seleção de alvos de macrófagos ativados. O beta de receptor de folato (FRB) é uma glicoproteína glycosyl-fosfatidilinositol que está ancorada na membrana celular expressos nas células mielomonocítica normal, as células de leucemia mieloide e ativados macrófagos. Seu ligante, ácido fólico, é uma vitamina essencial na sua forma reduzida, o que permite que celulares DNA síntese, metilação e reparação9. Expressão de FRB é induzida em doença auto-imune e durante a carcinogênese. Sua expressão é restrito à superfície de monócitos ou pró-inflamatórias macrófagos M1 na artrite reumatoide, ou aos anti-inflamatórios M2 de macrófagos em órgãos sólidos e neoplasias mieloides10,11,12 , 13. além de seu papel potencial como um biomarcador de macrófagos ativados, a FRB pode habilitar o transporte seletivo de drogas através de um processo de várias etapa que começa com a ligação ao receptor de ácido fólico, antifolates ou drogas conjugada com ácido fólico na célula superfície, seguido de interiorização, lançamento e eventual entrega de droga desejada para a célula interna máquinas12,14,15,16. Em contraste com a FRB expressa em células cancerosas e ativados macrófagos, FRB, expressa em células hematopoiéticas normais é incapaz de vincular folatos, assegurando que entrega de droga FRB/ácido fólico-mediada é limitada a FRB-positivo inflamatória ou células cancerosas.

Em nosso estudo anterior, temos demonstrado pela primeira vez FRB é expressa em macrófagos GCA e sua expressão correlacionados com CD68 + e endotelina macrófagos de beta do receptor, que contribuem para a patogênese de GCA17. Neste relatório, descrevemos o histopatológico e imuno-histoquímica métodos utilizados para avaliar o macrófago FRB e analisaram os linfócitos totais e macrófago conta ganhar a introspecção em posição a FRB na paisagem vascular GCA.

Protocolo

Todos os métodos descritos foram aprovados pelo Conselho de revisão institucional estado de Penn.

1. histopatológica preparação, processamento e após a obtenção de biópsia da artéria Temporal

Nota: A biópsia da artéria temporal (TAB) é realizada sob anestesia local e condições estéreis por um cirurgião certificado. Depois de obter cirurgicamente uma seção arterial de 3 cm no lado mais afetado, o espécime é fixado em formalina imediatamente por 24 h, dividido em seções de 3 a 4 mm e incorporado em parafina, pagando a atenção cuidadosa para o alinhamento adequado do tecido no bloco que é então armazenado em temperatura ambiente. Seleção de amostra é realizada após verificar os registros médicos. O diagnóstico baseia-se na American College of Rheumatology 1990 critérios que requer que indivíduos cumpram 3 dos 5 domínios: idade > 50 anos, Nova dor de cabeça, sensibilidade da artéria temporal, uma taxa de sedimentação de eritrócitos > 50 mm/hora pelo método de Westergren e um guia de anormal. Para segurança, luvas de proteção devem ser usadas em todos os momentos quando manusear as amostras, produtos químicos e anticorpos.

  1. Dos blocos incorporados, 4-5 µm espessura seções usando um micrótomo de corte. e mancha com hematoxilina e eosina (H & E). Use uma seção de controle de tecido normal selecionado para a garantia da qualidade.
  2. Flutuador cortar seções sobre um banho de água quente aquecida a 40 ° C para remover rugas e pegar com um slide microscópicas de vidro revestido.  Coloque as lâminas de vidro em um prato quente em um forno de 60 ° C por 60 minutos facilitar a secagem e a aderência da seção para o slide.
  3. Coloque as lâminas de vidro em um prato quente em um forno de 60 ° C por 60 minutos facilitar a secagem e a aderência da seção para o slide.
  4. Monte 3 seções em corrediças do microscópio.
  5. Coloque slides em um rack vertical e secar durante a noite a 37 ° C por 24 h.
  6. Coloque slides em um recipiente e em 4 ° C.

2. imuno-histoquímica preparação, desparafinagem, recuperação do antígeno e coloração15,18,19,20

  1. Carregar slides em um rack de slide. Execute o rack através de pratos como segue: duas vezes em xilol 100% por 5 minutos com 10 segundos de agitação suave em 30 segundos, uma vez em 100% de etanol com agitação de 10 segundos, uma vez em etanol a 90% com agitação de 10 segundos, uma vez em etanol a 70% com agitação de 10 segundos , e duas vezes em bidestilada H2O com agitação de 10 segundos.
    Nota: Manipulação de xileno e a acetona deve ser feita em capas ventiladas para evitar a inalação e toxicidade respiratória.
  2. Recuperar o antígeno pela transferência do rack para um recipiente de vidro com 200 mL de 10 mmol/L, pH 6.0 tampão pré-aquecido a 95 ° C. Definir o timer por 30 minutos em banho-maria e, em seguida, esfriar em temperatura ambiente por 20 minutos, em seguida, enxaguar com água corrente por 5 minutos.
  3. Remova a atividade peroxidase endógena incubando em 200 mL de água oxigenada 3% por 10 minutos. Lave slides 3 vezes em 200 µ l de solução salina tampão Tris (TBSS).
  4. Remover as lâminas do rack e pincele cada um com cuidado para limpar o buffer de excesso. Para a coloração, adicione 200 µ l dos seguintes anticorpos primários, adicionar lamínulas em slides e incubar em uma câmara úmida por 1 hora em temperatura ambiente:
    1:800 anticorpo anti-FRB diluído
    Anti-humanos de anticorpo monoclonal de rato CD68, diluição de 1: 200
    Diluição de 1: 100 policlonal de coelho anti-CD3
    Nota: Secções de parafina fixada em formol da placenta também foram processadas conforme descrito em passos 2.1 a 2.9 e incubadas com anti-FRB18 e usadas como controle positivo. Coloração resultados foram obtidos por encontrar a concentração do anticorpo e foi realizada por titulação do anticorpo em diluições duplas (por exemplo, 01:50, 1: 100, 1: 200, 1: 400, 1:800, 1:1600).
  5. Remova a lamínula após incubação e descarte. Enxágue slides 3 vezes por 2 minutos cada com TBSS, drenar e limpar o buffer de excesso.
  6. Adicione 200 µ l de solução anticorpo secundário contendo Rabbit/Mouse secundário biotinilado para reagir com o anticorpo primário unconjugated vinculado ao antígeno de tecido. Coloque as lamelas em slides e incubar em uma câmara húmida durante 45 minutos à temperatura ambiente.
  7. Remova a lamínula após incubação e descarte. Enxágue slides 3 vezes por 2 minutos cada com TBS, drenar e limpar o buffer de excesso.
  8. Adicionar 200 µ l de diaminobenzidina (DAB) + tampão de substrato (imidazol HCl)-sistema de cromogénio e incubar durante 10 minutos para visualizar a coloração padrão. Lavar com TBSS em seguida em água corrente por 10 minutos.
  9. Counterstain com hematoxilina durante 3 minutos.
  10. Monte os slides aplicando 70 µ l de meio de montagem à superfície da lâmina. Lentamente, dica a lamela sobre o meio de montagem e evitar criar bolhas como desligá-lo no lugar. Espere 24 horas para secar.

3. histopatológico e imuno-histoquímica (IHC) análise

Examine o H & E e IHC manchado seções de assuntos positivos e normais GCA, usando um microscópio de luz.

  1. Para a H & E manchado seções:
    1. Avaliar a arquitetura vascular e identificam as células endoteliais na túnica íntima, células musculares lisas na túnica média e fibroblastos e vasa vasorum na túnica adventícia21,22.
    2. Identifica características do GCA, que incluem os linfócitos e infiltração de macrófagos/histiócitos, hiperplasia celular e degradação da lâmina elástica interna.
    3. Analise o infiltrado lymphohistiocytic, identificando e quantificando o número de macrófagos em relação os linfócitos. Avaliar o grau de rompimento da lâmina elástica interna e alterações hiperplásicas nas células residentes e comparar com os controles.
  2. Para a IHC manchado seções:
    1. Examinar o padrão de coloração das FRB, tomando nota de sua expressão por um determinado tipo ou tipos de células e sua distribuição dentro as camadas vasculares e sua relação para o infiltrado total imune, o marcador para macrófagos total, anti-CD68 e o pan marcador de linfócitos anti-CD3.
    2. Quantificar a expressão das FRB, CD68 e CD3 células através da contagem das células coradas positivamente em 10 vários campos selecionados aleatoriamente de alta potência (hpf) e gravar os meios.
      Nota: A identificação dessas células normais e patológicas e estruturas foram realizados por um patologista cardiovascular certificado (J.M.) e reumatologista (V.A.A) e os resultados foram registrados em todos os casos.
    3. Capture imagens representativas, usando uma câmera digital.
      Nota: Após estas etapas, permanecendo alíquotas pode ser armazenada a-80 ° C.

Resultados

Achados histopatológicos

A H & E manchas em anatomia arterial normal de espécimes normal demonstrada com células endoteliais na túnica íntima, células musculares lisas da túnica média, e uma matriz de colagénio heterogêneo incluem fibroblastos e vasos alimentador chamado vasa vasorum no adventitia túnica. Não há nenhum infiltrado inflamatório identificado. Artérias temporais positivas de GCA demon...

Discussão

GCA é a vasculite mais comum em adultos, e sua marca patológica exemplifica uma potente combinação de linfócitos T helper e ativados macrófagos que também podem ser encontrados em outras doenças granulomatosas ou vasculopathies como sarcoidose e granulomatosa poliangiite2,3. Em GCA, a artéria temporal fornece uma boa representação de tamanho médio a grande artéria e a biópsia TA dá uma amostra considerável que pode ser armazenada em blocos de para...

Divulgações

Os autores não têm nada para divulgar.

Agradecimentos

Este trabalho foi feito possível pelo suporte de Stairs de Douglas do Dr., Marianne Klinger, Ann Benko, divisão de Reumatologia/departamento de medicina e o Molecular e histopatológico de núcleo de laboratório, Estado Penn University College of Medicine, Hershey PA.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
MicrotomeReichert-Jung
plain and frosted microscope slides and cover slipsFisher Scientific 
Vertical rackFisher Scientific 
Light microscopeOlympus BX60  microscope
Xylene
Acetone in distilled waterconcentrations 100%, 90%, 70%
Tris-buffered saline solution (TBS) Dako Wash BufferS3006
3% hydrogen peroxide in TBS
Diaminobenzidine (DAB)Sigma Fast Tablet set
Chemical Permount  Mounting MediumFisher Scientific SP-15-100
Harleco Gill's III HematoxylinFiisher Scientific 23-750-019
Harleco Eosin Y 1% Alcoholic Stock SolutionFisher Scientific 23-749-977
10 mM citric acid monohydrate (pH 6.0)
Polyclonal rabbit anti-folate receptor beta Manohar Ratnamoptimized at 1:800
Monoclonal mouse anti-human CD68Dako M071801optimized at 1:200
Polyclonal rabbit anti-CD3Agilent DakoA0452optimized at 1:100
Polymer goat anti- rabbit/mouse secondary antibodyDako
Placental tissue for FRB positive control

Referências

  1. Klippel, J. H., Stone, J. H., White, P. H. . Primer on the rheumatic diseases. , (2008).
  2. Weyand, C. M., Goronzy, J. J. Immune mechanisms in medium and large-vessel vasculitis. Nature Reviews Rheumatol. 9 (12), 731-740 (2013).
  3. Weyand, C. M., Liao, Y. J., Goronzy, J. J. The immunopathology of giant cell arteritis: diagnostic and therapeutic implications. Journal of Neuro-ophthalmology. 32 (3), 259-265 (2012).
  4. Deng, J., Younge, B., Olshen, R., Goronzy, J., Weyand, C. Th17 and Th1 T-cell responses in giant cell arteritis. Circulation. 121, 906-915 (2010).
  5. Mahr, A. D., et al. Adjunctive methotrexate for treatment of giant cell arteritis: an individual patient data meta-analysis. Arthritis & Rheumatology. 56 (8), 2789-2797 (2007).
  6. Hoffman, G. S., et al. A multicenter, randomized, double-blind, placebo-controlled trial of adjuvant methotrexate treatment for giant cell arteritis. Arthritis & Rheumatology. 46 (5), 1309-1318 (2002).
  7. Stone, J. H., Klearman, M., Collinson, N. Trial of Tocilizumab in Giant-Cell Arteritis. New England Journal of Medicine. 377 (15), 1494-1495 (2017).
  8. Milman, N. Tocilizumab increased sustained glucocorticoid-free remission from giant cell arteritis. Annals of Internal Medicine. 167 (12), JC63 (2017).
  9. Xia, W., et al. A functional folate receptor is induced during macrophage activation and can be used to target drugs to activated macrophages. Blood. 113 (2), 438-446 (2009).
  10. Shen, J., et al. Folate receptor-beta constitutes a marker for human proinflammatory monocytes. Journal of Leukocyte Biology. 96 (4), 563-570 (2014).
  11. Salazar, M. D., Ratnam, M. The folate receptor: what does it promise in tissue-targeted therapeutics. Cancer and Metastasis Reviews. 26 (1), 141-152 (2007).
  12. Low, P. S., Henne, W. A., Doorneweerd, D. D. Discovery and development of folic-acid-based receptor targeting for imaging and therapy of cancer and inflammatory diseases. Accounts of Chemical Research. 41 (1), 120-129 (2008).
  13. Puig-Kroger, A., et al. Folate receptor beta is expressed by tumor-associated macrophages and constitutes a marker for M2 anti-inflammatory/regulatory macrophages. Cancer Research. 69 (24), 9395-9403 (2009).
  14. Nakashima-Matsushita, N., et al. Selective expression of folate receptor beta and its possible role in methotrexate transport in synovial macrophages from patients with rheumatoid arthritis. Arthritis & Rheumatology. 42 (8), 1609-1616 (1999).
  15. vander Heijden, J. W., et al. Folate receptor beta as a potential delivery route for novel folate antagonists to macrophages in the synovial tissue of rheumatoid arthritis patients. Arthritis & Rheumatology. 60 (1), 12-21 (2009).
  16. Jansen, G., Peters, G. J. Novel insights in folate receptors and transporters: implications for disease and treatment of immune diseases and cancer. Pteridines. 26 (2), 41-53 (2015).
  17. Albano-Aluquin, S., Malysz, J., Aluquin, V. R., Ratnam, M., Olsen, N. An immunohistochemical analysis of folate receptor beta expression and distribution in giant cell arteritis - a pilot study. American Journal of Clinical and Experimental Immunology. 6 (6), 107-114 (2017).
  18. Ross, J. F., Chaudhuri, P. K., Ratnam, M. Differential regulation of folate receptor isoforms in normal and malignant tissues in vivo and in established cell lines. Physiologic and clinical implications. Cancer. 73 (9), 2432-2443 (1994).
  19. Reiner, N. E. Methods in molecular biology. Macrophages and dendritic cells. Methods and protocols. Preface. Methods in Molecular Biology. 531, (2009).
  20. Robertson, D., Savage, K., Reis-Filho, J. S., Isacke, C. M. Multiple immunofluorescence labelling of formalin-fixed paraffin-embedded (FFPE) tissue. BMC Cell Biology. 9, 13 (2008).
  21. Pawlina, W. . Histology: A text and atlas with correlated cell and molecular biology. , (2016).
  22. Kumar, V., Abbas, A., Robbins Aster, J. . Robbins and Cotran pathologic basis of disease. , (2015).
  23. Dabbs, D. J. . Diagnostic immunohistochemistry. , (2019).
  24. Ross, J. F., et al. Folate receptor type beta is a neutrophilic lineage marker and is differentially expressed in myeloid leukemia. Cancer. 85 (2), 348-357 (1999).
  25. Holzapfel, G. A., Fratzl, P. Collagen in arterial walls: biomechanical aspects. Collagen. Structure and Mechanics. , 285-324 (2008).
  26. Sultan, H., Smith, S. V., Lee, A. G., Chevez-Barrios, P. Pathologic Markers Determining Prognosis in Patients with Treated or Healing Giant Cell Arteritis. American Journal of Ophthalmology. , (2018).

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