É necessária uma assinatura da JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou comece sua avaliação gratuita.
Method Article
Este protocolo descreve a preparação de culturas de fatias organotípicas (OTSCs). Esta técnica facilita o cultivo ex vivo de tecido multicelular intacto. As OTSCs podem ser usadas imediatamente para testar sua respectiva resposta a medicamentos em um ambiente multicelular.
Modelos pré-clínicos realistas de câncer de pâncreas primário e metástase são urgentemente necessários para testar a resposta à terapia ex vivo e facilitar o tratamento personalizado do paciente. No entanto, a ausência de microambiente específico do tumor nos modelos usados atualmente, por exemplo, linhagens celulares derivadas de pacientes e xenoenxertos, permite apenas insights preditivos limitados. As culturas de fatias organotípicas (OTSCs) compreendem tecido multicelular intacto, que pode ser rapidamente usado para o teste de resposta a medicamentos espacialmente resolvido.
Este protocolo descreve a geração e o cultivo de fatias tumorais viáveis de câncer de pâncreas e suas metástases. Resumidamente, o tecido é fundido em agarose de baixa fusão e armazenado em tampão isotônico frio. Em seguida, fatias de tecido de 300 μm de espessura são geradas com um vibratome. Após a preparação, as fatias são cultivadas em uma interface ar-líquido usando insertos de cultura de células e um meio de cultivo apropriado. Durante o cultivo, as mudanças na diferenciação e viabilidade celular podem ser monitoradas. Além disso, essa técnica permite a aplicação do tratamento a tecidos tumorais humanos viáveis ex vivo e análises subsequentes a jusante, como perfil de transcriptoma e proteoma.
As OTSCs oferecem uma oportunidade única para testar a resposta individual ao tratamento ex vivo e identificar perfis transcriptômicos e proteômicos individuais associados à respectiva resposta de fatias distintas de um tumor. As OTSCs podem ser exploradas para identificar estratégias terapêuticas para personalizar o tratamento do câncer de pâncreas primário e metástase.
Os modelos pré-clínicos existentes de adenocarcinoma ductal pancreático (PDAC) e respectivas metástases são preditores fracos de resposta ao tratamento em pacientes, o que é uma grande desvantagem no desenvolvimento de medicamentos e na identificação de biomarcadores preditivos1. Embora modelos como organoides derivados de pacientes e xenoenxertos derivados de pacientes sejam promissores, seu uso permanece limitado2. As principais limitações desses modelos in vitro são a falta do microambiente tumoral e o xenoenxerto em espécies imunocomprometidas não humanas. Especialmente no PDAC e suas metástases, o microambiente tumoral ganhou consideravelmente interesse nos últimos anos devido às suas funções cruciais na biologia tumoral. É composto por componentes celulares e acelulares, como (mio)fibroblastos, células estreladas pancreáticas, células imunes, vasos sanguíneos, matriz extracelular, citocinas e fatores de crescimento3. Esse microambiente não é um componente tumoral não funcional, mas induz progressão tumoral e metástase e parece contribuir substancialmente para a resistência à rádio e quimioterapia4. O microambiente PDAC não apenas compromete mecanicamente a entrega de medicamentos, mas também possui atividade imunológica e de eliminação de medicamentos 5,6,7. Assim, modelos pré-clínicos que reflitam a complexa interação das células tumorais e do microambiente tumoral são urgentemente necessários para testar adequadamente a resposta ao tratamento ex vivo dos pacientes e orientar o tratamento clínico individualizado.
Culturas ex vivo de amostras frescas de tumores representam uma aproximação do tumor in situ. Culturas de fatias organotípicas (OTSCs) foram recentemente desenvolvidas e estudadas para vários tumores, como câncer de cabeça, pescoço, mama, próstata, pulmão, cólon e pâncreas 8,9,10,11,12. Foi demonstrado que as OTSCs mantêm sua morfologia basal, atividade proliferativa e microambiente durante o cultivo por um período definido e dependente do tecido 11,12,13. As OTSCs de PDACs mantiveram sua viabilidade, morfologia e a maioria dos componentes de seu microambiente tumoral por 4-9 dias em vários estudos in vitro 5,12,14. Perspectiva, essa técnica permite uma aplicação imediata do tratamento ao tecido tumoral humano viável ex vivo e análises subsequentes a jusante, como o perfil do transcriptoma e do proteoma.
O estabelecimento de OTSCs oferece uma oportunidade única para testar a resposta ao tratamento ex vivo imediatamente após a cirurgia. Assim, as OTSCs permitirão identificar prospectivamente estratégias terapêuticas para personalizar o tratamento da doença metastática. Este protocolo descreve a geração e o cultivo de OTSCs viáveis de câncer de pâncreas.
As amostras de tecido foram coletadas e processadas após aprovação pelo comitê de ética local da Universidade de Lübeck (# 16-281).
1. Coleta e manuseio de tecidos frescos
NOTA: Cada amostra de tecido humano não fixada deve ser manuseada com cautela para evitar o risco de infecção por patógenos transmitidos pelo sangue. Todos os pacientes devem ser testados para serem negativos para HIV, HBV e HCV antes do processamento do tecido. Use um casaco protetor e manuseie amostras de tecido humano com luvas.
2. Preparação
3. Incorporação de tecido em agasse de baixo ponto de fusão
4. Corte do tecido embebido em agarose usando um vibratomo
5. Cultura de culturas organotípicas de fatias
6. Ensaio de viabilidade de resazurina
NOTA: O ensaio de viabilidade da resazurina mede a atividade metabólica geral das culturas de fatias organotípicas com base na redução da resazurina azul não fluorescente em resorufina fluorescente vermelha em células vivas15. O ensaio não tem efeitos tóxicos nas células e pode ser aplicado às culturas repetidamente, dependendo da questão de pesquisa individual. A viabilidade foi medida usando o ensaio de resazurina a cada 2-3 dias.
7. Fixação de formalina e incorporação de parafina de OTSCs
8. Coloração de hematoxilina e eosina (H&E)
9. Imuno-histoquímica de OTSCs
A Figura 1 fornece uma visão geral do fluxo de trabalho para cultivar OTSCs de tecido tumoral fresco e descongelado. Amostras de PCACs primárias e metástases foram coletadas diretamente após a ressecção cirúrgica e armazenadas durante a noite em gelo úmido a 4 °C na solução de armazenamento de tecido. Os espécimes foram processados e as fatias foram cultivadas conforme descrito no protocolo. A morfologia macroscópica de cada OTSC não mudou macroscopicamente durante o cultivo. N...
As OTSCs de amostras de tumor fresco são uma aproximação do tumor in situ. Eles mantêm sua morfologia basal, atividade proliferativa e microambiente durante o cultivo por um período definido e dependente do tecido 11,12,13. Esta técnica permite a aplicação imediata do tratamento ao tecido tumoral humano viável ex vivo e análises subsequentes a jusante, como o perfil do transcriptoma e do proteoma. Uma...
Os autores não revelaram potenciais conflitos de interesse.
R. Braun foi apoiado pela Clinician Scientist School Lübeck (DFG # 413535489) e pelo Programa de Financiamento Júnior da Universidade de Lübeck.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Advanced DMEM/F-12 Medium | Gibco | 12634028 | |
Agarose Low Melt | Roth | 6351.2 | 8% in Ringer solution |
Antibody Diluent, Background Reducing | Dako | S3022 | |
AquaTex | Merck | 108562 | |
Bioethanol (99%, denatured) | CHEMSolute | 2,21,19,010 | |
Citric Acid monohydrate | Sigma Aldrich | C7129 | |
Cleaved Caspase-3 (Asp175) (5A1E) Rabbit mAb | Cell Signalling Technology | 9664 | 1:400 dilution |
Derby Extra Double Edge Safety Razor Blades | Derby Tokai | ||
Embedding cassettes | Roth | H579.1 | |
Eosin Y-solution 0,5% aqueous | Merck | 10,98,44,100 | |
Eukitt Quick hardening mounting medium | Sigma-Aldrich | 3989 | |
Fetal bovine serum | Gibco | 10270106 | |
Formaldehyde solution 4,5%, buffered | Büfa Chemikalien | B211101000 | |
Hem alum solution acid acc. to Mayer | Roth | T865 | |
Human EGF | Milteniy Biotec | 130-097-794 | |
Hydrocortisone | Sigma Aldrich (Merck) | H0888 | |
Hydrogen peroxide 30% | Merck | 1,08,59,71,000 | |
Insulin human | Sigma Aldrich (Merck) | 12643 | |
Liquid DAB+ Substrate Chromogen System | Dako | K3468 | |
MACS Tissue Storage Solution | Milteniy Biotech | 130-100-008 | |
Methanol | Merck | 10.600.092.500 | |
Microscope Slides Superfrost Plus | Thermo Scientific | J1800AMNZ | |
Millicell Cell Culture Insert, 30 mm, hydrophilic PTFE, 0.4 µm | Millipore (Merck) | PICM0RG50 | |
Monoclonal mouse anti-human Cytokeratin 7 (Clone OV-TL 12/30) | Dako | M7018 | 1:200 dilution |
Monoclonal mouse anti-human Ki67 Clone MIB-1 | Dako | M7240 | 1:200 dilution |
Monoclonal mouse Anti-vimentin (Clone V9) | Dako | M0725 | 1:200 dilution |
Negative control Mouse IgG2a | Dako | X0943 | 1:200 dilution |
Negative control Mouse IgG1 | Dako | X093101-2 | 1:200 dilution |
Paraffin (melting temperature 56°- 58°) | Merck | 10,73,37,100 | |
Penicillin-Streptomycin (10.000 U/ml) | Gibco | 15140122 | |
PBS pH 7,4 (1x) Flow Cytometry Grade | Gibco | A12860301 | |
Resazurin sodium salt; 10 mg/ml in PBS | Sigma Aldrich | R7017 | 1:250 dilution |
Ringer's solution | Fresenius Kabi | 2610813 | |
RPMI-1640 Medium | Sigma Aldrich (Merck) | R8758 | |
Tissue culture testplate 6 | TPP | 92006 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | 9002-93-1 | |
VECTASTAIN Elite ABC-Peroxidase Kit | Vector Laboratories | PK-6200 | |
Xylene (extra pure) | J.T.Baker | 8,11,85,000 | |
Equipment | |||
ClarioStar Microplate Reader | BMG Labtech | ||
Paraffin Embedding Center E61110 | Leica | ||
Rotary Microtome Microm HM355S | Thermo Scientific | ||
Section Transfer System Microm STS | Thermo Scientific | ||
VT 1200S Vibratom | Leica |
Solicitar permissão para reutilizar o texto ou figuras deste artigo JoVE
Solicitar PermissãoThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados