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* Estes autores contribuíram igualmente
Este artigo introduz um método simples para a produção rápida de vesículas unilamellar gigantes com proteínas citoesqueletal encapsuladas. O método se mostra útil para a reconstituição de estruturas citoesqueletal em interações de confinamento e citoesqueleto-membrana.
Vesículas unilamellar gigantes (GUVs) são frequentemente usadas como modelos de membranas biológicas e, portanto, são uma ótima ferramenta para estudar processos celulares relacionados à membrana in vitro. Nos últimos anos, o encapsulamento dentro dos GUVs provou ser uma abordagem útil para experimentos de reconstituição em biologia celular e campos relacionados. Ele imita melhor as condições de confinamento dentro das células vivas, em oposição à reconstituição bioquímica convencional. Métodos de encapsulamento dentro de GUVs muitas vezes não são fáceis de implementar, e as taxas de sucesso podem diferir significativamente de laboratório para laboratório. Uma técnica que tem sido bem sucedida para encapsular sistemas proteicos mais complexos é chamada de encapsulamento contínuo de cruzamento de interface de gotícula (cDICE). Aqui, um método baseado em cDICE é apresentado para encapsular rapidamente proteínas citoesqueletal em GUVs com alta eficiência de encapsulamento. Neste método, primeiro, gotículas lipídicas-monocamadas são geradas pela emulsificação de uma solução proteica de interesse em uma mistura lipídica/óleo. Depois de serem adicionados em uma câmara impressa em 3D rotativa, essas gotículas lipídicas-monocamadas passam por uma segunda monocamada lipídica em uma interface água/óleo dentro da câmara para formar GUVs que contêm o sistema de proteínas. Este método simplifica o procedimento global de encapsulamento dentro dos GUVs e acelera o processo, e assim nos permite limitar e observar a evolução dinâmica do conjunto de rede dentro de vesículas lipídicas bicamadas. Esta plataforma é útil para estudar a mecânica das interações citoesqueleto-membrana no confinamento.
Os compartimentos de bicamadas lipídicas são usados como modelo de células sintéticas para estudar reações orgânicas fechadas e processos baseados em membrana ou como módulos portadores em aplicações de entrega de medicamentos 1,2. A biologia de baixo para cima com componentes purificados requer sistemas experimentais mínimos para explorar propriedades e interações entre biomoléculas, como proteínas e lipídios 3,4. No entanto, com o avanço do campo, há uma necessidade aumentada de sistemas experimentais mais complexos que imitem melhor as condições nas....
1. Preparação de mistura óleo-lipídida
NOTA: A etapa precisa ser realizada em um capô de fumaça seguindo todas as diretrizes de segurança para o manuseio do clorofórmio.
Para demonstrar a geração bem sucedida de GUVs citosqueléticos usando o protocolo atual, estruturas de feixe de fascin-actin em GUVs foram reconstituídas. Fascin é um curto crosslinker de filamentos de actina que forma feixes rígidos de actina alinhados paralelos e é purificado de E. coli como Proteína de fusão Glutathione-S-Transferase (GST)26. 5 μM de actina foi primeiro reconstituído, incluindo 0,53 μM de atto488 actin no tampão de polimerização de actina e 7,5% do gradi.......
Diferentes métodos de geração de GUVs têm sido explorados para a criação de células sintéticas No entanto, a complexidade dos procedimentos, o tempo estendido para alcançar o encapsulamento, a restrição dos tipos lipídicos e a composição molecular do encapsulador, a necessidade de produtos químicos não fisiológicos para facilitar o encapsulamento, o baixo rendimento do GUV e as inconsistências na eficiência do encapsulamento continuaram a desafiar os pesquisadores neste campo. Considerando a ampla gama.......
Os autores não declaram conflitos de interesse.
A APL reconhece o apoio de uma Bolsa de Pesquisa Humboldt para Pesquisadores Experientes e da Fundação Nacional de Ciência (1939310 e 1817909) e institutos nacionais de saúde (R01 EB030031).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
18:1 Liss Rhod PE lipid in chloroform | Avanti Polar Lipids | 810150C | |
96 Well Optical Btm Pit PolymerBase | ThermoFisher Scientific | 165305 | |
Actin from rabbit skeletal muscle | Cytoskeleton | AKL99-A | |
ATTO 488-actin from rabbit skeletal muscle | Hypermol | 8153-01 | |
Axygen microtubes (200 µL) | Fisher Scientific | 14-222-262 | for handling ABPs |
Black resin | Formlabs | RS-F2-GPBK-04 | |
Cholesterol (powder) | Avanti Polar Lipids | 700100P | |
Choloroform | Sigma Aldrich | 67-66-3 | |
Clear resin | Formlabs | RS-F2-GPCL-04 | |
CSU-X1 Confocal Scanner Unit | YOKOGAWA | CSU-X1 | |
Density gradient medium (Optiprep) | Sigma-Aldrich | D1556 | |
DOPC lipid in chloroform | Avanti Polar Lipids | 850375C | |
Fascin | homemade | N/A | |
F-buffer | homemade | N/A | |
Fisherbrand microtubes (1.5 mL) | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
FS02 Sonicator | Fischer Scientific | FS20 | |
G-buffer | homemade | N/A | |
Glucose | Sigma-Aldrich | 158968 | |
iXon X3 camera | Andor | DU-897E-CS0 | |
Mineral oil | Acros Organics | 8042-47-5 | |
Olympus IX81 Inverted Microscope | Olympus | IX21 | |
Olympus PlanApo N 60x Oil Microscope Objective | Olumpus | 1-U2B933 | |
Silicone oil | Sigma-Aldrich | 317667 |
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